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不同灸法對環(huán)磷酰胺所致免疫抑制兔脾組織程序性死亡因子-1及其配體表達的影響

2020-11-19 08:24王旭孫妮娜田岳鳳翟春濤單增天吳愛花
中國中醫(yī)藥信息雜志 2020年11期
關(guān)鍵詞:餅灸灸法環(huán)磷酰胺

王旭,孫妮娜,田岳鳳,翟春濤,單增天,吳愛花

不同灸法對環(huán)磷酰胺所致免疫抑制兔脾組織程序性死亡因子-1及其配體表達的影響

王旭1,孫妮娜2,田岳鳳2,翟春濤2,單增天2,吳愛花2

1.山西衛(wèi)生健康職業(yè)學(xué)院,山西 晉中 030619;2.山西中醫(yī)藥大學(xué),山西 晉中 030619

觀察不同灸法對環(huán)磷酰胺所致免疫抑制兔脾組織程序性死亡因子-1(PD-1)及其配體PD-L1表達的影響。大耳白兔32只隨機分為空白組、模型組、隔藥餅灸組、艾灸組。除空白組外,其余3組腹腔注射環(huán)磷酰胺制備免疫抑制兔模型,連續(xù)7 d。成模后,隔藥餅灸組和艾灸組分別給予隔藥餅灸、艾灸干預(yù),隔日灸,共灸10次。治療結(jié)束后次日動物麻醉,摘取脾臟。采用RT-qPCR檢測PD-1、PD-L1 mRNA表達,免疫組化檢測PD-1蛋白表達。與空白組比較,模型組兔脾組織PD-1、PD-L1 mRNA表達明顯升高(<0.01);與模型組比較,隔藥餅灸組兔脾組織PD-1、PD-L1 mRNA表達明顯降低(<0.01),艾灸組兔脾組織PD-L1 mRNA表達明顯降低(<0.05),PD-1 mRNA表達雖有降低趨勢但差異無統(tǒng)計學(xué)意義(>0.05)。免疫組化結(jié)果顯示,兔脾組織棕褐色PD-1陽性表達主要在細胞漿、細胞膜或間質(zhì),與空白組比較,模型組兔脾組織PD-1蛋白表達顯著升高(<0.01);與模型組比較,隔藥餅灸組和艾灸組兔脾組織PD-1蛋白表達顯著降低(<0.01,<0.05)。不同灸法對免疫抑制兔免疫功能均有明顯改善作用,隔藥餅灸較艾灸更具優(yōu)勢。

灸法;程序性死亡因子-1;程序性死亡因子-1配體;環(huán)磷酰胺;免疫抑制;兔

程序性死亡因子-1(PD-1)及其配體(PD-L1)于1992年由Ishida等[1]提出,最初發(fā)現(xiàn)于凋亡的T細胞雜交瘤,是一種廣泛存在于活化的T淋巴細胞、B淋巴細胞和巨噬細胞表面的受體。PD-1是免疫球蛋白B7-CD28家族成員之一,PD-L1為其配體。PD-1作為一種重要的免疫抑制分子,在維持淋巴細胞穩(wěn)態(tài)方面起關(guān)鍵作用。課題組前期研究顯示,不同灸法對環(huán)磷酰胺所致免疫抑制兔血細胞、免疫球蛋白、補體、免疫細胞、免疫因子及免疫器官均有明顯的調(diào)節(jié)作用,且隔藥餅灸改善上述指標的作用優(yōu)于艾灸[2]。本實驗在前期研究的基礎(chǔ)上,采用RT-qPCR和免疫組化方法觀察隔藥餅灸、艾灸對免疫抑制兔脾組織共刺激分子PD-1、PD-L1表達的影響,并對兩種灸法的作用進行比較。

1 實驗材料

1.1 動物

大耳白兔40只,體質(zhì)量(2.5±0.3)kg,雌雄各半,北京昌揚西山養(yǎng)殖場提供,動物許可證號SCXK(京)2011-0010。飼養(yǎng)于溫度18~25 ℃、相對濕度50%~70%環(huán)境,自由攝食飲水,分籠飼養(yǎng)7 d。

1.2 艾條、主要試劑和儀器

18 mm×200 mm艾條、艾絨,江蘇盱眙華佗中藥廠。cDNA第一鏈合成試劑盒,立陶宛Fermentas,批號K1622;15596-026Trizol,美國Invitrogen;QPK201Real-time PCR Master Mix(SYBR Green),日本Toyobo;XW-80A渦旋振蕩器,海門其林貝爾;Centrifuge 5804R高速冷凍離心機,法國Eppendorf;UV-2450紫外光度儀,日本Shimadzu;MultiGene Gradient PCR循環(huán)儀,美國Labnet;DA7600熒光定量PCR循環(huán)儀,中山達安;DYY-6B核酸電泳儀,北京六一;Gel Doc XR凝膠成像儀,美國Bio-Rad; Histocentre 3型石蠟包埋機,英國Shandon;Finesse 325型石蠟切片機,英國Shandon;Excelsior型全自動組織脫水機,英國Shandon;H550L顯微鏡,日本尼康;配套電子顯微鏡DS-Fi3,配套圖像處理軟件NIS-Elements,日本尼康。

2 實驗方法

2.1 分組及造模

大耳白兔40只隨機分為空白組、模型組、隔藥餅灸組、艾灸組,每組10只。適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后,除空白組外,其余各組參照文獻[2]方法造模,經(jīng)課題組改良后按60 mg/kg腹腔注射環(huán)磷酰胺(山西普德藥業(yè)股份有限公司,批號20180802)制備免疫抑制兔模型,即每日上午腹腔注射環(huán)磷酰胺(用生理鹽水稀釋),每日1次,連續(xù)7 d。以動物出現(xiàn)精神狀態(tài)差、飲食少、有脫毛現(xiàn)象及血白細胞計數(shù)明顯降低為造模成功的標志??瞻捉M每日給予等量生理鹽水腹腔注射。最終以每組8只動物進入統(tǒng)計分析。

2.2 干預(yù)

①穴位選擇:神闕、關(guān)元、足三里(雙)、脾俞(雙)、腎俞(雙),定位參照《實驗針灸學(xué)》[3]常用動物穴位定位法及擬人比照法。②藥餅制作:以六味地黃湯原方比例組方(熟地黃∶山萸肉∶山藥∶澤瀉∶牡丹皮∶茯苓=8∶4∶4∶3∶3∶3),飲片購自山西同仁堂大藥房,使用時按上述比例打碎成粉末,過120目篩備用,臨用前以溫水調(diào)勻,用模具制成直徑1 cm、厚0.3 cm藥餅。③施灸方法:造模結(jié)束后次日,隔藥餅灸組和艾灸組每日上午施灸治療。動物穴位處剪毛,綁縛固定于兔臺。隔藥餅灸組用艾柱模型將艾絨制成底徑0.8 cm、高0.5 cm大小相等的圓錐形艾柱,置于藥餅上,以線香點燃,燃盡更換,每穴連灸5壯,隔日灸,共灸10次;艾灸組將與5壯艾柱的等量艾絨用卷煙器制作成小艾條,置于自制艾灸架上,在穴位上方約2~3 cm處施灸,隔日灸,共灸10次。④取材:治療結(jié)束后第2日,動物腹腔注射10%水合氯醛麻醉,摘取脾臟,置于生理鹽水中漂洗,濾紙吸干,稱重;取部分脾臟中段組織置于液氮中,用于RT-qPCR檢測;取部分脾臟中段組織放入10%福爾馬林中固定保存,用于免疫組化觀察。

2.3 指標檢測

2.3.1 實時熒光定量PCR檢測

RNA提取:取適量樣品置于冰冷組織勻漿器中,加入1 mL冰冷的Trizol,冰上研磨至無顆粒狀澄清液,移至1.5 mL離心管,室溫放置5 min;加入氯仿,振蕩15 s,室溫靜置3 min;4 ℃、12 000×離心15 min,取上清液至另一離心管,加入等體積異丙醇,輕輕混勻,室溫靜置10 min;4 ℃、12 000×離心10 min,棄上清,加75%乙醇1 mL,輕輕混勻。室溫干燥沉淀約5 min,加入30~50 μL無RNase水溶解RNA沉淀,待完全溶解后置于-70 ℃冰箱保存。RNA濃度和純度測定:取RNA樣品用1×TE Buffer稀釋樣品100倍,測定260 nm和280 nm處吸光度,確定RNA質(zhì)量,計算RNA濃度,OD260/OD280均在1.8~2.1。cDNA第一鏈合成(20 μL體系);為減少干擾,每個cDNA樣本稀釋10倍(5 μL cDNA+45 μL H2O),引物F和R均在同一管中,濃度均為10 μmol/L。兔脾臟分組處理,RT-qPCR檢測樣品基因的表達,實驗重復(fù)3次,所得數(shù)據(jù)用2-ΔΔCt法進行相對定量分析。引物序列見表1。

表1 各基因PCR引物序列

基因名稱引物序列(5’~3’)產(chǎn)物長度/bp PD1F:CACTGCTGCTGTGCTTGTC146 R:CTGGTGCTCCCTGGTCTACT PD-L1F:TGGATCCAGTCACCTCTGAA138 R:ACTTCTCCTCTCGGTTGGAA GAPDHF:AAGGTCATCCACGACCACTT145 R:AGGCAGGGATGATGTTCTG

2.3.2 免疫組化檢測

取脾臟組織中段2 cm×1 cm×1 cm置于10%福爾馬林中固定,石蠟包埋,切片。采用顯微攝像系統(tǒng)進行圖像采集,根據(jù)表達情況及組織大小分別采集5個區(qū)域圖像;應(yīng)用圖像分析系統(tǒng)Image-Pro Plus6.0測定所采集全部圖像的平均光密度,每張切片采集5張,取其平均值。

3 統(tǒng)計學(xué)方法

4 結(jié)果

4.1 不同灸法對模型兔脾組織PD-1 mRNA表達的影響

與空白組比較,模型組兔脾組織PD-1 mRNA表達明顯升高(<0.01);與模型組比較,隔藥餅灸組兔脾組織PD-1 mRNA表達明顯降低(<0.01),艾灸組兔脾組織PD-1 mRNA表達有所降低,但差異無統(tǒng)計學(xué)意義(>0.05);與艾灸組比較,隔藥餅灸組兔脾組織PD-1 mRNA表達有所下降,但差異無統(tǒng)計學(xué)意義(>0.05)。結(jié)果見表2。

表2 各組兔脾組織PD-1 mRNA表達比較(±s)

注:與空白組比較,**<0.01;與模型組比較,##<0.01

4.2 不同灸法對模型兔脾組織PD-L1 mRNA表達的影響

與空白組比較,模型組兔脾組織PD-L1 mRNA表達明顯升高(<0.01);與模型組比較,隔藥餅灸組和艾灸組兔脾組織PD-L1 mRNA表達明顯降低,(<0.01,<0.05);與艾灸組比較,隔藥餅灸組兔脾組織PD-1 mRNA表達有下降趨勢,但差異無統(tǒng)計學(xué)意義(>0.05)。結(jié)果見表3。

表3 各組兔脾組織PD-L1 mRNA表達比較(±s)

注:與空白組比較,**<0.01;與模型組比較,#<0.05,##<0.01

4.3 不同灸法對模型兔脾組織PD-1蛋白表達的影響

免疫組化染色顯示,兔脾組織棕褐色PD-1陽性表達主要在細胞漿、細胞膜或間質(zhì),見圖1。與空白組比較,模型組兔脾組織PD-1蛋白表達顯著升高,(<0.01);與模型組比較,隔藥餅灸組和艾灸組兔脾組織PD-1蛋白表達明顯降低(<0.01,<0.05);與艾灸組比較,隔藥餅灸組兔脾組織PD-1蛋白表達有所下降,但差異無統(tǒng)計學(xué)意義(>0.05),見表4。

圖1 各組兔脾組織PD-1陽性表達(免疫組化染色,×400)

表4 各組兔脾組織PD-1蛋白表達比較(±s)

注:與空白組比較,**<0.01;與模型組比較,#<0.05,##<0.01

5 討論

PD-1屬CD28家族分子,為免疫細胞的抑制性共刺激分子,對免疫細胞的功能有著重要的負性調(diào)控作用。PD-1及其配體PD-L1的組織分布特點及所傳遞的抑制信號,在抗原特異性T細胞的活化、增殖及效應(yīng)過程中有重要作用。研究表明,PD-1在T細胞受到刺激后數(shù)小時內(nèi)可表達于激活的T細胞表面,而靜止期的T細胞不表達PD-1[4]。PD-1和PD-L1信號通路具有維持外圍正常免疫效應(yīng)的作用,PD-1以不同的親和力與其配體PD-L1和PD-L2結(jié)合。

中醫(yī)藥調(diào)節(jié)機體免疫功能具有整體性、平衡性、多系統(tǒng)和多靶點特點,可改善機體內(nèi)環(huán)境,使機體處于陰陽平衡狀態(tài)。隔藥餅灸是集藥物、穴位、艾灸三者作用為一體的一種獨特艾灸治療方法,它借助艾絨易于燃燒,火力溫和,熱力具有穿透皮膚、直達組織深部的特點,使所隔藥物透皮吸收,減少對胃腸道的刺激。本研究所用藥物為經(jīng)方六味地黃湯,方中熟地黃滋補肝腎、益精填髓,山萸肉補益肝腎,山藥補脾益腎,三藥配合,肝、脾、腎三陰并補,以補肝腎為主;茯苓健脾燥濕、利水滲濕,澤瀉利濕泄?jié)?,牡丹皮清泄虛熱,三藥配合瀉肝脾腎。全方有開合之妙,補中有瀉、瀉中有補,補而不膩,瀉不傷正。研究表明,六味地黃湯組成藥物及成方均含有提高或調(diào)節(jié)機體免疫功能的活性物質(zhì),可調(diào)節(jié)機體的免疫功能[5]。

在穴位選擇上,本研究選用脾俞、腎俞、神闕、足三里、關(guān)元,均為傳統(tǒng)保健要穴。脾俞和腎俞為背俞穴,具有調(diào)補脾腎之氣之功,二穴同用可補腎滋陰、健脾益氣,增強先后天之本。足三里為足陽明胃經(jīng)合穴,是強身保健、延年益壽的要穴。神闕屬任脈,為真氣所承,是“五臟六腑之本,沖脈循行之地,元氣歸藏之根”,具有養(yǎng)生保健、延年益壽、溫補元陽、健運脾胃、復(fù)蘇固脫之功效。關(guān)元為足三陰經(jīng)、任脈之會,小腸之募穴,為先天之原氣與元陰元陽交關(guān)之所,有溫腎固精、補氣回陽、通調(diào)沖任、理氣和血之功效。本實驗結(jié)果顯示,艾灸“關(guān)元”“足三里”“脾俞”等穴可改善胃腫瘤大鼠一般狀況和荷瘤生存狀態(tài),明顯提高荷瘤大鼠胸腺、脾臟指數(shù)及外周血CD3-CD161+NK和CD3+CD161+NKT含量,改善大鼠生存狀態(tài),其調(diào)控機制與強化機體非特異性抗腫瘤免疫相關(guān)[6]。艾灸“腎俞”“足三里”可通過降低類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎大鼠血清白細胞介素-6含量,抑制免疫細胞分化產(chǎn)生相關(guān)炎癥因子,控制類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎的發(fā)展[7]。不同灸量隔藥餅灸“脾俞”“腎俞”“足三里”“關(guān)元”“神闕”可改善環(huán)磷酰胺所致兔免疫功能低下,且不同灸量效果有一定差異[8]。臨床研究表明,化膿灸足三里治療中晚期結(jié)腸癌患者,可通過調(diào)節(jié)外周血T細胞亞群中CD4+、CD8+含量,降低血清轉(zhuǎn)化生長因子-β1水平,提高機體的免疫功能,從而提高其生活質(zhì)量[9]。艾灸腎俞、關(guān)元治療可通過改善運動員紅細胞免疫功能和T細胞亞群功能異常,提高其機體免疫力[10]。

PD-1及其配體作為近年研究體內(nèi)免疫反應(yīng)重要分子的負性調(diào)節(jié)因子,其信號通路可誘導(dǎo)和維持外周組織的免疫耐受,對防止組織的過度炎癥反應(yīng)以及自身免疫性疾病的發(fā)生具有積極作用。研究發(fā)現(xiàn),采用腹腔注射環(huán)磷酰胺制備免疫抑制小鼠模型,其PD-1 mRNA處于高表達狀態(tài),給予云芝多糖肽治療后PD-1 mRNA表達顯著降低,表明云芝糖肽可能通過下調(diào)環(huán)磷酰胺誘導(dǎo)的免疫抑制小鼠脾臟組織免疫負調(diào)控分子PD-1 mRNA表達而發(fā)揮免疫增強作用[11]。還有研究用黃芪、金銀花、野菊花、鬼針草、半枝蓮組成中藥復(fù)方提取液,采用RT-PCR檢測脾臟PD-1/PD-L1的表達,隨著中藥提取液濃度的增加,脾臟淋巴細胞PD-1表達顯著降低,而PD-L1 mRNA表達無顯著變化,表明中藥復(fù)方能抑制淋巴細胞PD-1的表達[12]。此外,有研究表明,黃芪提取物黃芪多糖能抑制荷瘤小鼠脾組織PD-1 mRNA的表達,而PD-L1 mRNA表達無顯著變化[13]。本研究發(fā)現(xiàn),空白組兔脾組織PD-1、PD-L1 mRNA呈低水平表達,注射環(huán)磷酰胺造成免疫抑制模型后,均表現(xiàn)出高表達;經(jīng)干預(yù)后,隔藥餅灸組較模型組PD-1、PD-L1 mRNA表達均明顯降低;艾灸組PD-1 mRNA表達與模型組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義,PD-L1 mRNA表達較模型組差異顯著。作為配體的PD-L1 mRNA的表達較PD-1 mRNA的表達顯著,可能與T細胞的免疫活化有關(guān)。

PD-1屬免疫球蛋白超家族成員,其以單體形式存在于細胞表面,正常人淋巴組織生發(fā)中心中T淋巴細胞表面可檢測到PD-1的表達,PD-L1通常表達于腫瘤細胞表面,也表達在T細胞和B細胞、樹突狀細胞、巨噬細胞、間充質(zhì)干細胞和骨髓來源的肥大細胞等。劉敏龍等[14]通過觀察膿毒癥小鼠脾臟PD-L1表達,發(fā)現(xiàn)采用盲腸結(jié)扎穿孔法造模小鼠脾臟PD-L1陽性細胞出現(xiàn)在紅髓和脾小體,且24 h和48 h單核細胞PD-L1的表達均較假手術(shù)組升高,表明膿毒癥小鼠脾臟PD-L1表達可能參與膿毒癥發(fā)生發(fā)展。臨床研究發(fā)現(xiàn),PD-1和PD-L1鼻咽癌及鼻咽部正常黏膜組織中均有表達,但在鼻咽癌組織中的表達均異常升高,高于正常組織;PD-1陽性表達主要位于細胞核和/或細胞漿中,與患者年齡、性別、病理類型、分期及淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移無關(guān),與吸煙有關(guān);PD-L1主要表達場所位于細胞漿中,與患者性別、吸煙、病理類型及淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移無關(guān),與年齡及分期有關(guān)[15]。研究還發(fā)現(xiàn),PD-1在食管癌患者正常組織中均未見表達,PD-1和PD-L1在癌組織和癌旁組織中均呈陽性表達,且有遠處轉(zhuǎn)移的食管癌PD-L1高表達率明顯高于無遠處轉(zhuǎn)移的食管癌[16]。還有研究發(fā)現(xiàn),急性腎移植排斥腎組織PD-1/PD-L1的表達,急性腎移植排斥腎組織PD-L1、PD-1較正常組增多、增強,其小管PD-L1陽性強度與腎間質(zhì)PD-1陽性細胞數(shù)呈正相關(guān),與小管間質(zhì)病理損害程度呈負相關(guān),表明PD-L1/PD-1信號通路在急性腎移植排斥腎小管間質(zhì)病理損害中起重要作用[17]。本研究結(jié)果顯示,兔脾組織棕褐色PD-1陽性表達主要在細胞漿、細胞膜或間質(zhì),且模型組兔脾組織PD-1蛋白表達較空白組顯著升高;經(jīng)干預(yù)后,隔藥餅灸組和艾灸組兔脾組織蛋白表達均明顯降低,但隔藥餅組與艾灸組蛋白表達比較差異不明顯。

綜上,兔脾組織棕褐色PD-1陽性表達主要在細胞漿、細胞膜或間質(zhì),隔藥餅灸和艾灸均可降低兔脾組織PD-1蛋白表達。隔藥餅灸可降低脾組織PD-1、PD-L1 mRNA表達,而艾灸雖能抑制PD-1、PD-L1 mRNA的表達,但對PD-1 mRNA的表達抑制程度不明顯??梢姡煌姆▽γ庖咭种仆妹庖吖δ芫忻黠@的改善作用,隔藥餅灸較艾灸更具優(yōu)勢。此項觀察是基于前期不同灸法對機體免疫功能調(diào)節(jié)作用研究開展的,后續(xù)將在此基礎(chǔ)上圍繞PD-1及PD-L1通路對T細胞、B細胞的免疫活化、免疫耐受等進行更深層次的研究。

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Effects of Different Types of Moxibustion on Expressions of PD-1 and PD-L1 mRNA in Immunosuppressive Rabbits Induced by Cyclophosphamide

WANG Xu1, SUN Nina2, TIAN Yuefeng2, ZHAI Chuntao2, SHAN Zengtian2, WU Aihua2

To observe the changes of expressions of PD-1 and PD-L1 in immunosuppressive rabbits induced by cyclophosphamide through different types of moxibustion.Totally thirty-two rabbits were randomly divided into blank group, model group, herbal cake-separated moxibustion group and moxibustion group. Except the blank group, the other three groups were intraperitoneally injected with cyclophosphamide to make immunosuppressive rabbit model for 7 days. After the model was established, herbal cake-separated moxibustion group and moxibustion group were treated with herbal cake-separated moxibustion and directed-moxibustion respectively, once every other day, 10 times in total. The next day after the treatment, the animals were anesthetized and the spleen was removed. The expressions of PD-1 and PD-L1 mRNA were detected by real-time fluorescence quantitative PCR, and the expression of PD-1 protein was detected by immunohistochemistry.Compared with the blank group, the expressions of PD-1 and PD-L1 mRNA in the spleen tissue of the model group increased significantly (<0.01). Compared with the model group, the expressions of PD-1 and PD-L1 mRNA in the spleen tissue of the rabbits in the herbal cake-separated moxibustion group was significantly lower (<0.01), and the expression of PD-L1 mRNA in the spleen tissue of the moxibustion group was significantly lower (<0.05), while the PD-1 mRNA showed a decreasing trend, without statistical significance (>0.05). Immunohistochemical results showed that the positive expression of PD-1 in rabbit spleen tissue was mainly in the cytoplasm, cell membrane or interstitial. Compared with the blank group, the expression of PD-1 protein in the rabbit spleen tissue of the model group significantly increased (<0.01). Compared with the model group, the expression of PD-1 protein in the spleen tissues of rabbits in the herbal cake-separated moxibustion group and moxibustion group was significantly reduced (<0.01,<0.05).Different types of moxibustion have obviously improved the immune function of immunosuppressive rabbits, and herbal cake-separated moxibustion has more advantages than moxa moxibustion.

moxibustion; PD-1; PD-L1; cyclophosphamide; immunosuppressive; rabbits

R245

A

1005-5304(2020)11-0066-05

10.19879/j.cnki.1005-5304.202007162

國家自然科學(xué)基金(81674062)

田岳鳳,E-mail:tyfsx@163.com

(2020-07-09)

(2020-07-29;編輯:華強)

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