李欣怡,李亞軍,李祎琳,陳 莉,陳 潔,許 玥,張 莉*,劉 通*
(1.北京中醫(yī)藥大學(xué),北京100029;2.河北省保定市第一中心醫(yī)院,河北 保定071000;3.承德醫(yī)學(xué)院,河北 承德067000;4.中國(guó)中醫(yī)藥出版社,北京100029;5.廣州中醫(yī)藥大學(xué)第五臨床醫(yī)學(xué)院,廣東 廣州510000)
腰多裂肌是腰椎的最強(qiáng)穩(wěn)定器,腰多裂肌損傷影響腰椎穩(wěn)定。肌衛(wèi)星細(xì)胞(muscle satellite cells,MSC)作為肌肉損傷微環(huán)境的重要干細(xì)胞,受到牽拉刺激被激活,促進(jìn)損傷肌肉的修復(fù)[1]。 肝細(xì)胞生長(zhǎng)因子(hepatocyte growth factor, HGF)通過(guò)激活肌衛(wèi)星細(xì)胞參與組織再生和修復(fù)[2],它的特異性受體酪氨酸激酶c-Met 與HGF 結(jié)合而被激活,響應(yīng)環(huán)境刺激促進(jìn)組織重塑。 細(xì)胞性骨髓瘤樣癌基因(cellularmyelocytomatosis oncogene, c-Myc)蛋白表達(dá)受生長(zhǎng)因子影響,同樣在參與細(xì)胞增殖活動(dòng)中發(fā)揮重要作用[3]。因此,HGF 與c-Met、c-Myc 對(duì)于損傷微環(huán)境的改變值得探究。電針作為一種外源性刺激促進(jìn)多裂肌損傷后修復(fù)[4],觀察電針委中穴后相關(guān)因子動(dòng)態(tài)改變,可加深對(duì)損傷微環(huán)境的認(rèn)識(shí)。 故本文通過(guò)復(fù)制建立腰多裂肌損傷大鼠模型,探究不同時(shí)間點(diǎn)電針干預(yù)對(duì)于腰多裂肌損傷后HGF、c-Met、c-Myc 的表達(dá)及組織修復(fù)的影響。
SPF 級(jí)雄性SD 大鼠54 只,體質(zhì)量為(300±20) g,由北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,許可證號(hào):SCXK(京)2016-0006。 隨機(jī)分籠并適應(yīng)性飼養(yǎng)10 d,自由飲食普通飼料和水,明暗周期為12 h∶12 h,溫度環(huán)境24 ℃,濕度40%~50%。 將54 只大鼠采用完全隨機(jī)方法分為空白組、模型組、電針組,每組18 只。 根據(jù)干預(yù)時(shí)間點(diǎn)每組再分1 d、3 d 和7 d 3 個(gè)亞組,各組6 只。
1.2.1 主要試劑 布比卡因鹽酸鹽(美國(guó)Sigma 公司, 批號(hào):80-477-DK);10% 水合氯醛(北京百諾威生物科技有限公司,貨號(hào):RH32027);4%多聚甲醛溶液(北京雷根生物技術(shù)有限公司,批號(hào):90090525);HE(蘇木素-伊紅)染色劑試劑盒(北京索萊寶科技有限公司,批號(hào):G1121);山羊抗兔二抗(北京中杉金橋生物科技有限公司,批號(hào):SAP-9101);兔多抗HGF 抗體、兔單抗c-Myc 抗體(美國(guó)Abacm 公司,批號(hào):ab216623,ab32072);兔多抗c-Met 抗體(美國(guó)Proteintech 公司,批號(hào):25869-1-AP);兔多抗β-actin抗體(北京博奧森生物試劑有限公司,批號(hào):bs-0061R);預(yù)染蛋白Maker(美國(guó)Thermo 公司,批號(hào):26616);BCA 蛋白濃度測(cè)定試劑盒、SDS-PAGE 凝膠制備試劑盒(北京索萊寶科技有限公司,批號(hào):PC0020,P1200);5X 蛋白上樣緩沖液、RIPA 裂解液、ECL 超敏發(fā)光液(北京Coolaber 生物有限公司,批號(hào)分別為:SL1170,SL1010,SL1350)。
1.2.2 主要儀器 半自動(dòng)化石蠟切片機(jī)(德國(guó)萊卡儀器有限公司,RM2245);電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱(黃石市恒豐醫(yī)療器械有限公司,SKP-02.600);高速冷凍離心機(jī)(德國(guó)Eppendorf 有限公司,5810R);超低溫病冰箱(美國(guó)Thermo Scientific 公司,F(xiàn)ORMA907);全自動(dòng)組織脫水機(jī)(德國(guó)徠卡儀器有限公司,ASP300S);正置智能型顯微鏡及采集系統(tǒng)(奧林巴斯中國(guó)有限公司,BX53);韓式電針儀(北京思盛達(dá)醫(yī)療器械中心,HANS200A);凝膠成像系統(tǒng)儀(美國(guó)AI-phaInnoteeh公司);電熱恒溫培養(yǎng)箱(黃石市恒豐醫(yī)療器械有限公司,SKP-02.600)。
模型組和電針組復(fù)制大鼠腰多裂肌注射布比卡因建立損傷模型[4]。首先,選用10%的水合氯醛溶液(350 mg/kg)進(jìn)行大鼠腹腔注射麻醉,以消除疼痛反射為度。成功后將大鼠四肢固定,背部備皮后暴露下腰,一次性注射器緊貼L4-L5 水平脊柱雙側(cè)的4 點(diǎn)棘突旁進(jìn)針,針到達(dá)骨面后回抽無(wú)血注射。 每處注100 μL 的0.5% 布比卡因溶液,時(shí)間≥3 s,旋轉(zhuǎn)針頭拔出,操作過(guò)程保持無(wú)菌,模型制作完成。
(1)電針組:造模24 h 后,將大鼠固定在操作臺(tái)上,暴露背部和雙側(cè)后肢,參照大鼠解剖圖[5]和最新國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)穴位圖[6],于大鼠膝關(guān)節(jié)背面正中取雙側(cè)委中穴干預(yù)。 針刺前用75%乙醇消毒,華佗牌0.25 mm×13 mm 一次性針灸針垂直刺入委中穴,連接韓式電針儀HANS-200A,2/100 Hz 的疏密波,電流強(qiáng)度1 mA,1 次/d,每次持續(xù)20 min。 (2)模型組:與電針組同步抓取、固定,不做其他處理。(3)空白組:不做任何干預(yù),與其他兩組大鼠同步取材。
空白組、模型組和電針組分別于干預(yù)后1、3、7 d 同步取材。麻醉方式同動(dòng)物造模,成功后將大鼠四肢固定,充分暴露腹部,先進(jìn)行5 mL 以上的腹主動(dòng)脈取血,再解開(kāi)大鼠,將其俯臥暴露背部,固定四肢和頭部,剪開(kāi)大鼠背部皮膚,以鑷子和組織剪剝離腰部筋膜,使腰骶部肌肉暴露,剝離開(kāi)髂肋肌和最長(zhǎng)肌,于L4-L5 銳性取下大鼠腰部的多裂肌,一側(cè)放入4%多聚甲醛溶液固定,一側(cè)迅速放入凍存管后投入液氮,待冷卻后轉(zhuǎn)移至-80 ℃冰箱。
1.6.1 HE 染色觀察腰多裂肌形態(tài) 大鼠腰多裂肌組織置于4%多聚甲醛溶液固定48 h,將每一塊組織轉(zhuǎn)移至單個(gè)的包埋盒中。脫水與透明后,浸蠟包埋。使用半自動(dòng)切片機(jī)連續(xù)切片,將包埋好的蠟塊至水中展片,后在載玻片貼上,制好的載玻片于45 ℃恒溫箱中進(jìn)行烘干。結(jié)束后將石蠟切片放入浸泡用的鐵架,經(jīng)二甲苯(Ⅰ、Ⅱ,分別15 min)浸泡脫去切片中的石蠟,再經(jīng)由高濃度至低濃度(100%、95%、90%、80%、70%、50%,分別1 min)的乙醇浸泡,最后轉(zhuǎn)移至自來(lái)水沖洗2 min。 浸泡蘇木素5 min 染色,再自來(lái)水洗1 min。 分化液10 s,自來(lái)水清洗10 min。浸泡伊紅染色液2 min。 將切片浸于梯度乙醇脫水,二甲苯透明。 封片自然陰干后即進(jìn)行顯微鏡觀察。1.6.2 免疫組化法染色測(cè)HGF、c-Myc 表達(dá) 石蠟組織切片制作成功后,放入3%雙氧水中浸泡10 min,PBS 溶液浸泡3 次,每次3 min,置抗原修復(fù)液中加熱,自然冷卻1 h 后,PBS 溶液浸泡3 次,每次3 min。切片于20%蛋清20 min 孵育,PBS 溶液浸泡1 次,3 min。 加山羊血清孵育在37 ℃環(huán)境下20 min,結(jié)束后不洗甩干。滴加一抗,置于4 ℃孵育過(guò)夜。結(jié)束后移至室溫下復(fù)溫30 min,而后放入PBS 溶液浸泡3 次,每次3 min。 滴加二抗,37 ℃孵育20 min。 結(jié)束后于PBS 溶液浸泡3 次,每次3 min。 滴加試劑SABC,于37 ℃20 min,最后PBS 溶液浸泡3次,每次3 min。 顯色:滴加DAB 顯色液10 min,在顯微鏡下觀察,顯色即可自來(lái)水沖洗,蒸餾水再次沖洗。蘇木素溶液中復(fù)染3 min。脫水、透明后封片,自然陰干后即進(jìn)行顯微鏡觀察,采集圖像進(jìn)行分析。
1.6.3 Western blot 測(cè)c-Met 含量 取出存放在-80 ℃的腰部多裂肌組織,放置于預(yù)先配置的蛋白酶抑制劑和RIPA 裂解液混合溶液。使用超聲粉碎儀充分裂解腰部多裂肌組織,選用BCA 法測(cè)量樣品蛋白含量,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線后測(cè)定蛋白原液濃度。 用5×上樣緩沖液按1∶4 比例與蛋白原液、RIPA 裂解液混合,放置水浴鍋中加熱,100 ℃5 min 后迅速靜置冰上降溫。 電泳、電轉(zhuǎn)后,將膜取出置于麗春紅染色液中,若目標(biāo)蛋白完整清晰,用TBST 將染色液快速洗脫。然后將其浸沒(méi)于由脫脂奶粉與TBST 配置的封閉液中,常溫下置于搖床上,緩慢搖動(dòng)1.5 h。 將膜取出放置于稀釋好的一抗(c-Met 按1∶500 稀釋,選用脫脂奶粉與10×TBST 配置)中,4 ℃搖床孵育過(guò)夜,后室溫TBST 洗膜。 結(jié)束后將條帶放入配制好的二抗稀釋液(1∶3 000 稀釋,選用脫脂奶粉與10×TBST 配置)中,室溫?fù)u床上慢速孵育1 h,后TBST洗膜。 洗膜結(jié)束后將目標(biāo)條帶顯影曝光,進(jìn)行圖像分析。
采用SPSS 20.0 軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。每組樣本數(shù)據(jù)用“±s”表示,服從正態(tài)分布采用單因素方差分析(One-Way ANOVA),兩兩比較方差齊時(shí)用LSD-t 檢驗(yàn),方差不齊用非參數(shù)檢驗(yàn)。 以P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
空白組肌纖維細(xì)長(zhǎng)多核,粗細(xì)均勻,縱向分布緊密;胞核呈扁橢圓形且靠近肌膜。干預(yù)1 d 后,模型組肌纖維壞死變形,肌纖維間隙增寬明顯,間隙分布大量炎性細(xì)胞;電針組肌纖維增寬,間隙較模型組縮短,浸潤(rùn)的炎性細(xì)胞減少。干預(yù)3 d 后,模型組肌纖維形態(tài)仍不規(guī)則,部分排列開(kāi)始緊湊,但仍有肌纖維的碎片存在,且大量炎性細(xì)胞分布;電針組肌纖維較模型組形態(tài)均勻、排列規(guī)則,間隙仍有炎性細(xì)胞浸潤(rùn)。干預(yù)7 d 后,模型組可見(jiàn)新生的肌纖維,且纖維間較干預(yù)1 d 和3 d 的模型組間隙縮短明顯,仍有部分炎性細(xì)胞分布;電針組新生的肌纖維融合,排列緊密,細(xì)胞核開(kāi)始向新生肌纖維邊緣遷移。 詳見(jiàn)圖1。
圖1 大鼠腰多裂肌HE 染色結(jié)果(×200)
2.2.1 各組大鼠腰部的多裂肌HGF 陽(yáng)性表達(dá)比較 與空白組比較,模型組1 d 組大鼠腰多裂肌HGF陽(yáng)性表達(dá)降低(P<0.01);模型組3 d 組、7 d 組差異均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。與模型組比較,電針組治療1 d 后腰多裂肌HGF 陽(yáng)性表達(dá)升高(P<0.01);電針組3 d 組和7 d 組差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見(jiàn)表1、圖2。
表1 各時(shí)間點(diǎn)大鼠腰多裂肌HGF 的平均光密度值(n=6,±s)
表1 各時(shí)間點(diǎn)大鼠腰多裂肌HGF 的平均光密度值(n=6,±s)
注:與空白組比較,##P<0.01;與模型組比較,&&P<0.01
組別空白組模型組電針組1 d 組0.37±0.02 0.30±0.02##0.36±0.05&&3 d 組0.38±0.03 0.36±0.04 0.40±0.01 7 d 組0.34±0.02 0.36±0.09 0.37±0.03
2.2.2 各組大鼠腰部的多裂肌c-Myc 陽(yáng)性表達(dá)比較 與空白組比較,模型組1 d 組腰多裂肌c-Myc陽(yáng)性表達(dá)升高(P<0.05),模型組3 d 組、7 d 組差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),電針組1 d 組、7 d 組腰多裂肌c-Myc 陽(yáng)性表達(dá)升高(P<0.05 或P<0.01),電針組3 d 組差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。與模型組比較,電針組1 d 組、3 d 組腰多裂肌c-Myc 陽(yáng)性表達(dá)差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),電針組7 d 組表達(dá)升高(P<0.01)。 見(jiàn)表2、圖3。
圖2 大鼠腰多裂肌HGF 陽(yáng)性表達(dá)結(jié)果(×200)
圖3 大鼠腰多裂肌c-Myc 陽(yáng)性表達(dá)(×200)
表2 各取材時(shí)間點(diǎn)大鼠腰多裂肌c-Myc 的平均光密度值(n=6,±s)
表2 各取材時(shí)間點(diǎn)大鼠腰多裂肌c-Myc 的平均光密度值(n=6,±s)
注:與空白組比較,#P<0.05,##P<0.01;與模型組比較,&&P<0.01
組別空白組模型組電針組1 d 組0.20±0.01 0.24±0.02#0.25±0.04#3 d 組0.19±0.02 0.19±0.01 0.21±0.02 7 d 組0.18±0.02 0.18±0.01 0.23±0.03##&&
與空白組相比,模型組和電針組各時(shí)間點(diǎn)腰多裂肌c-Met 表達(dá)量均降低(P<0.01);與模型組相比,電針組1 d 組、7 d 組腰多裂肌c-Met 表達(dá)量降低(P<0.05),電針組3 d 組腰多裂肌c-Met 表達(dá)量升高(P<0.01)。 見(jiàn)表3、圖4。
表3 各取材時(shí)間點(diǎn)大鼠腰多裂肌c-Met 表達(dá)量(n=6,±s)
表3 各取材時(shí)間點(diǎn)大鼠腰多裂肌c-Met 表達(dá)量(n=6,±s)
注:與空白組比較,##P<0.01;與模型組比較,&P<0.05,&&P<0.01
組別空白組模型組電針組1 d 組0.54±0.03 0.31±0.02##0.28±0.02##&3 d 組0.48±0.03 0.24±0.02##0.36±0.02##&&7 d 組0.40±0.01 0.22±0.02##0.17±0.02##&
圖4 各取材時(shí)間點(diǎn)大鼠腰多裂肌c-Met 表達(dá)量
多裂肌作為脊柱肌肉維持著腰椎穩(wěn)定。 臨床上許多腰痛患者通過(guò)MRI 檢測(cè)到單雙側(cè)多裂肌萎縮[7-8]。由此可以看出,腰部多裂肌損傷后修復(fù)對(duì)于預(yù)防和治療腰痛尤為重要。
本實(shí)驗(yàn)復(fù)制腰多裂肌損傷模型,一次性直接定量注射局部麻醉藥0.5%鹽酸布比卡因溶液,布比卡因具有肌肉毒性,可在不影響肌衛(wèi)星細(xì)胞的情況下改變肌組織形態(tài)[4]。 HE 染色結(jié)果發(fā)現(xiàn),模型組肌纖維破壞,提示造模成功。 干預(yù)后電針加速了多裂肌的恢復(fù),出現(xiàn)新生肌纖維融合,電針在多裂肌損傷后的修復(fù)作用直觀可見(jiàn)。 研究發(fā)現(xiàn)與腰多裂肌損傷后即刻干預(yù)和48 h 干預(yù)相比,24 h 電針干預(yù)的大鼠Myostatin、Myod、Foxol 和CDK4 表達(dá)改變差異更為顯著,提示損傷后24 h 電針干預(yù)效果最佳[9-10]。在干預(yù)時(shí)間方面,研究發(fā)現(xiàn)與腎俞穴比較,電針委中穴對(duì)于骨骼肌損傷后早期有較好促修復(fù)作用[11],故本實(shí)驗(yàn)選擇干預(yù)后1 d、3 d 和7 d,以觀察早期電針干預(yù)對(duì)腰多裂肌損傷修復(fù)的影響。
肌衛(wèi)星細(xì)胞作為成體肌源干細(xì)胞,受環(huán)境刺激激活進(jìn)行增殖分化以修復(fù)受損細(xì)胞,對(duì)骨骼肌損傷修復(fù)發(fā)揮重要作用[12]。 研究表明外源性注射HGF 到正常肌肉中可激活靜息狀態(tài)衛(wèi)星細(xì)胞,將HGF 注射到受損肌肉中則可促進(jìn)肌細(xì)胞增殖[13]。 HGF 對(duì)針刺的機(jī)械牽拉刺激較為敏感,可誘導(dǎo)肌衛(wèi)星細(xì)胞增殖,促進(jìn)骨骼肌損傷后修復(fù)[14-15]。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)模型組多裂肌損傷早期HGF 表達(dá)降低,提示腰部多裂肌損傷影響HGF 表達(dá),7 d 后表達(dá)增高可能與損傷多裂肌組織的自我恢復(fù)有關(guān)。電針組整體趨勢(shì)均高于模型組,且不同時(shí)間點(diǎn)變化趨勢(shì)提示干預(yù)3 d 后HGF陽(yáng)性表達(dá)升高,由此提示HGF 對(duì)電針干預(yù)后的骨骼肌修復(fù)早期效果明顯。
HGF 與特異性受體c-Met 結(jié)合激活肌衛(wèi)星細(xì)胞,共同參與對(duì)組織損傷的重塑。c-Met 作為受體酪氨酸激酶參與細(xì)胞增殖,對(duì)骨骼肌發(fā)育和再生起著重要作用[16]。 研究發(fā)現(xiàn),c-Met 在骨骼肌損傷組織的肌衛(wèi)星細(xì)胞中有表達(dá),可能是肌損傷后修復(fù)的關(guān)鍵蛋白[17]。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),模型組整體腰部的多裂肌c-Met表達(dá)量低于空白組,提示多裂肌損傷致該蛋白表達(dá)減少。干預(yù)后1 d、7 d 電針組c-Met 表達(dá)量低于模型組,干預(yù)后3 d 電針組高于模型組,且不同時(shí)間點(diǎn)變化顯示3 d 表達(dá)量高,提示電針干預(yù)后3 d肌衛(wèi)星細(xì)胞中的c-Met 增加,但隨著腰多裂肌組織再生,肌衛(wèi)星細(xì)胞減少致c-Met 減少。
c-Myc 參與細(xì)胞周期、細(xì)胞增殖等變化。 c-Myc蛋白在增殖細(xì)胞中的表達(dá)較高,隨細(xì)胞分化而降低,并失去促進(jìn)增殖的能力[18]。 c-Myc 的水平得以提高在很大程度上依賴于生長(zhǎng)因子[3,19]。研究發(fā)現(xiàn),HGF 誘導(dǎo)髓母細(xì)胞瘤細(xì)胞中的c-MycmRNA 和蛋白質(zhì)水平。當(dāng)被生長(zhǎng)因子刺激時(shí),c-Myc 迅速積累并在整個(gè)細(xì)胞周期中保持高含量[20]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,模型組1 d 腰多裂肌c-Myc 陽(yáng)性表達(dá)高于空白組,模型組3 d 和7 d 表達(dá)與之基本一致,提示多裂肌損傷早期刺激c-Myc 參與細(xì)胞周期、細(xì)胞增殖等活動(dòng)。 電針組腰多裂肌c-Myc 陽(yáng)性表達(dá)高于模型組,且不同時(shí)間點(diǎn)變化趨勢(shì)顯示1 d 表達(dá)較之高,提示電針干預(yù)多裂肌損失模型引起c-Myc 早期作用,促多裂肌損傷后細(xì)胞增殖,進(jìn)而有助于損傷后的修復(fù)。
綜上所述,本實(shí)驗(yàn)通過(guò)建立大鼠腰多裂肌損傷模型,觀察電針委中穴后不同組間的HGF 及相關(guān)因子表達(dá)情況,發(fā)現(xiàn)電針委中穴干預(yù)早期大鼠腰多裂肌HGF、c-Met、c-Myc 均上調(diào),促肌衛(wèi)星細(xì)胞修復(fù)損傷的腰多裂肌。
湖南中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報(bào)2020年12期