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基于前導(dǎo)肽和成熟區(qū)共進(jìn)化提高米黑霉脂肪酶熱穩(wěn)定性研究

2021-02-25 08:51胡麗麗張育敏
生物學(xué)雜志 2021年1期
關(guān)鍵詞:前導(dǎo)熱穩(wěn)定性易錯(cuò)

王 玨,胡麗麗,張育敏,吳 娜,李 睿

(山西中醫(yī)藥大學(xué) 基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,晉中 030600)

天然蛋白由于性能的局限性,在一些反應(yīng)中有所限制,故須對(duì)目的蛋白進(jìn)行改造,以優(yōu)化相關(guān)活性或穩(wěn)定性。傳統(tǒng)的方法包括理性設(shè)計(jì)點(diǎn)突變及定向進(jìn)化技術(shù)引入隨機(jī)突變[1-2]。這兩種技術(shù)也并不獨(dú)立,很多學(xué)者通過(guò)結(jié)合目標(biāo)蛋白三級(jí)結(jié)構(gòu),對(duì)定向進(jìn)化得到的隨機(jī)突變位點(diǎn)進(jìn)行分析,可篩選出對(duì)于目的基因改造更有意義的突變位點(diǎn),從而打破進(jìn)化瓶頸,實(shí)現(xiàn)改造蛋白多種性能的目標(biāo)[3]。

RML是源于真菌米黑霉的脂肪酶,其全基因序列包括24個(gè)氨基酸構(gòu)成的信號(hào)肽,70個(gè)氨基酸組成的前導(dǎo)肽以及269個(gè)氨基酸組成的成熟區(qū)3部分,其中前導(dǎo)肽位于成熟區(qū)的N端,主要作用是幫助目標(biāo)蛋白正確折疊[4]。成熟的RML可催化甘油三酯為甘油二酯,為工業(yè)油脂的改良所應(yīng)用。但由于其來(lái)源于嗜溫微生物,在高壓高溫等環(huán)境中不穩(wěn)定、易失活,不利于大規(guī)模工業(yè)生產(chǎn)[5],因此,對(duì)RML熱穩(wěn)定性的改造顯得尤為重要。近年來(lái)人們也開始通過(guò)氨基酸序列突變結(jié)合蛋白結(jié)構(gòu)模擬來(lái)預(yù)測(cè)突變對(duì)于蛋白熱穩(wěn)定性的影響[6],有關(guān)RML熱穩(wěn)定性研究的最新報(bào)道是通過(guò)計(jì)算機(jī)模擬對(duì)RML成熟區(qū)(不包括前導(dǎo)肽)進(jìn)行定點(diǎn)突變及二硫鍵的設(shè)計(jì),得到的突變體半衰期比野生型提高了12.5倍(70 ℃處理下)[7]。前期工作證明,前導(dǎo)肽突變對(duì)RML活性有影響[8],因此,包含前導(dǎo)肽的全基因進(jìn)化為蛋白性能的改造拓展了基因研究范圍。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 菌株 RML全基因序列與pET30a構(gòu)建的重組質(zhì)粒,命名為pET30a-pro-RML,用作第一輪定向進(jìn)化中易錯(cuò)PCR的模板;大腸桿菌BL21,制備感受態(tài)細(xì)胞。

1.1.2 工具酶 T4 DNA連接酶;TaqDNA聚合酶;限制性內(nèi)切酶NcoI、Hind III購(gòu)于生工生物工程(上海)有限公司。

1.1.3 試劑 細(xì)胞裂解液(用于96孔細(xì)菌培養(yǎng)板上裂解細(xì)胞釋放酶液);酚酞指示劑(用于酸堿滴定檢測(cè)酶活指示);Inoue轉(zhuǎn)化緩沖液(用于制備超級(jí)感受態(tài))。

1.1.4 設(shè)備與耗材 PCR儀,超聲破碎儀,堿式滴定管,蛋白純化儀,恒溫(可低溫)搖床,冷凍離心機(jī),凝膠成像系統(tǒng),96微孔培養(yǎng)板,質(zhì)粒提取試劑盒,凝膠純化試劑盒,Quick change定點(diǎn)突變?cè)噭┖械取?/p>

1.2 方法

1.2.1 易錯(cuò)PCR與突變體文庫(kù)的建立 易錯(cuò)PCR(體系加入Mn2+)上游引物: 5′-CGCGCCATGGTGCCAATCAAGAGACAATC-3′(包括酶切位點(diǎn)NcoI);下游引物:5′-GCCGAAGCTTAAGTACAGAGGCCTGTGT-3′(包括酶切位點(diǎn)Hind III)。帶有隨機(jī)突變的RML全基因與pET30a進(jìn)行連接轉(zhuǎn)化,獲得大量重組子。

1.2.2 RML脂肪酶突變體的誘導(dǎo)表達(dá) 將1.2.1轉(zhuǎn)化所得突變體文庫(kù)的單菌落逐一接于96孔培養(yǎng)板中(此板命名為母板),于37 ℃,12~16 h培養(yǎng)后以2%的接種量將母板中的菌液對(duì)應(yīng)轉(zhuǎn)接入一塊新的96孔培養(yǎng)板(此板命名為子板)。將轉(zhuǎn)接后的菌液37 ℃進(jìn)行培養(yǎng)誘導(dǎo)(IPTG終濃度為0.1 mmol/L)。誘導(dǎo)4 h后,離心收集子板菌體。將子板放入-80 ℃冷凍12 h以上,取出后每個(gè)培養(yǎng)孔中加入250 μL的細(xì)胞裂解液,放置于37 ℃ 1~2 h,使菌體裂解,目標(biāo)蛋白釋放在細(xì)胞裂解液中。具體方法參考文獻(xiàn)[9]。

1.2.3 突變體熱穩(wěn)定性的初篩 研究采用一種新型高效的用于脂肪酶高通量篩選的方法[10],該方法選擇油酸作為真實(shí)底物,通過(guò)指示劑的顏色變化,觀察酶活性高低。篩選時(shí),先將酶液置于70 ℃保溫2 h,再進(jìn)行活性鑒定。注意使用野生型酶液做對(duì)照。

1.2.4 突變體熱穩(wěn)定性的復(fù)篩 圖1為野生型RML純化前后的SDS-PAGE圖,分別在37 ℃和16 ℃下誘導(dǎo),可看出低溫誘導(dǎo)蛋白表達(dá)量更高[11],因此最終選擇16 ℃為每個(gè)蛋白樣品的復(fù)篩誘導(dǎo)條件。蛋白純化利用Ni柱與載體pET30a的蛋白標(biāo)簽His-tag親和進(jìn)行純化。以野生型蛋白為例,將1.2.3方法中通過(guò)高通量初篩得到的每個(gè)優(yōu)勢(shì)突變體都按照與野生型相同的誘導(dǎo)及純化條件進(jìn)行操作。試驗(yàn)采用堿滴定法測(cè)定純蛋白的比活進(jìn)行復(fù)篩。酶活定義為:酶分子每分鐘催化底物(油脂)釋放出1 μmol脂肪酸的酶量為1個(gè)脂肪酶活力單位(U),具體蛋白質(zhì)比活計(jì)算公式如下:

M:蛋白標(biāo)準(zhǔn)品;1: 37 ℃誘導(dǎo)RML表達(dá)情況;2: 37 ℃ RML表達(dá)純化結(jié)果;3:16 ℃誘導(dǎo)RML表達(dá)情況;4:16 ℃ RML 表達(dá)純化結(jié)果

式中:V代表滴定反應(yīng)體系(加酶液后)所消耗的NaOH溶液體積(mL);V0代表滴定空白體系(無(wú)酶液)所消耗的NaOH溶液體積(mL);t代表反應(yīng)時(shí)間(min);n代表酶液體積(純化后)(mL);M代表滴定用的NaOH溶液的濃度(mmol/L)(注:研究表示蛋白催化活性單位為U/mg,即需測(cè)定蛋白濃度,換算所得)。

1.2.5 定點(diǎn)突變和定點(diǎn)飽和突變 研究采用Quick-Change定點(diǎn)突變?cè)噭┖?,根?jù)RML定向進(jìn)化得到的隨機(jī)突變位點(diǎn),設(shè)計(jì)相關(guān)位點(diǎn)的定點(diǎn)突變和定點(diǎn)飽和突變,分別包括168位氨基酸定點(diǎn)突變,48位、67位、240位、311位以及313位氨基酸定點(diǎn)飽和突變。其中擴(kuò)增目標(biāo)突變體所需的上下游擴(kuò)增引物見表1(其中311位和313位氨基酸相隔較近,故設(shè)計(jì)一對(duì)定點(diǎn)飽和突變引物)。

表1 用于定點(diǎn)突變和飽和突變的引物序列

2 結(jié)果與分析

2.1 RML基因突變結(jié)果

通過(guò)2輪易錯(cuò)PCR、2次定點(diǎn)突變和4次定點(diǎn)飽和突變,共得到9株活性和耐熱性有不同程度提高的突變體,試驗(yàn)設(shè)計(jì)流程如圖2和圖3所示。

①:第一輪定向進(jìn)化;②:第二輪定向進(jìn)化

如圖2所示,研究以野生型RML全基因?yàn)槟0?,進(jìn)行第一輪易錯(cuò)PCR定向進(jìn)化,得到2株熱穩(wěn)定性有明顯提高的突變體,分別為M1:L57V/S168P和M2:D48V/V67A/T311S。將M1上的突變點(diǎn)S168P通過(guò)定點(diǎn)突變構(gòu)建在突變體M2上(研究人員單獨(dú)對(duì)57位和168位突變點(diǎn)進(jìn)行單點(diǎn)突變,發(fā)現(xiàn)L57V的單點(diǎn)突變體經(jīng)過(guò)熱處理后,幾乎不表現(xiàn)活性,故選擇放棄該突變點(diǎn)),得到突變體M3:D48V/V67A/S168P/T311S;然后以M3的重組基因?yàn)槟0?,進(jìn)行第二輪易錯(cuò)PCR定向進(jìn)化,得到突變體M4:D48V/V67A/S168P/F240S/T311S和M5:D48V/V67A/S168P/T311S/D313H,都表現(xiàn)出更高的熱穩(wěn)定性;之后將M4上的突變點(diǎn)F240S和M5出現(xiàn)的突變點(diǎn)D313H通過(guò)定點(diǎn)突變結(jié)合,得到突變體M6:D48V/V67A/S168P/F240S/T311S/D313H。

由圖3所示,從突變體M6出發(fā),選擇兩輪定向進(jìn)化出現(xiàn)的突變點(diǎn)進(jìn)行定點(diǎn)飽和突變,包括兩個(gè)位于前導(dǎo)肽的突變點(diǎn)(48位和67位),以及3個(gè)位于RML成熟區(qū)的突變點(diǎn)(240位、311位及313位),分別得到突變體M7:D48V/A67D/S168P/F240ST311S/D313H,M8:D48V/V67A/S168P/S240A/T311S/D313H,M9:D48V/V67A/S168P/S240A/S311C/D313H,相對(duì)M6而言,都表現(xiàn)為更高的熱穩(wěn)定性,其中以M9最佳(168位氨基酸出現(xiàn)脯氨酸置換,根據(jù)脯氨酸的熱穩(wěn)定性效應(yīng)[12],故不再對(duì)該位點(diǎn)進(jìn)行飽和突變)。

圖3 從M6菌株出發(fā),進(jìn)行4輪定點(diǎn)飽和突變流程示意圖

2.2 RML突變體熱穩(wěn)定性檢測(cè)結(jié)果

將野生型RML以及蛋白突變體M1-M9放置70 ℃ 2 h進(jìn)行熱處理,檢測(cè)其保留活性,同時(shí)以常溫(37 ℃)酶活做對(duì)比。檢測(cè)結(jié)果如圖4所示。研究證明,通過(guò)2輪定向進(jìn)化、2次定點(diǎn)突變和4輪定點(diǎn)飽和突變,成功提高了RML的熱穩(wěn)定性,從野生型RML到突變體M9,無(wú)論是37 ℃時(shí)的酶活,還是70 ℃熱處理后的酶活,整體都呈現(xiàn)出增長(zhǎng)的趨勢(shì)。野生型RML經(jīng)熱處理后幾乎不表現(xiàn)活性,而M9經(jīng)熱處理后,保留活性可達(dá)(1 316±31)U/mg(保留38%)。同時(shí),RML在37 ℃下對(duì)甘油三酯的催化活力從(253±20)U/mg提高到(3 609±100)U/mg,提高了14.3倍。另一方面,M7與M4和M5相比,M7在37 ℃下的蛋白比活較前兩者高,但其熱處理后的穩(wěn)定性有所降低,這個(gè)現(xiàn)象可由Dan S.Tawfik[13]提出的“折衷(trade off)”理論來(lái)解釋,并不是所有突變體在常溫下的活性和熱處理后的活性都是相對(duì)應(yīng)提高的,該學(xué)者指出很多時(shí)候定向進(jìn)化中的突變是不穩(wěn)定的(Destabilizing mutations,△△G>0),即某些突變點(diǎn)提高蛋白質(zhì)在常溫下的比活是以降低其穩(wěn)定性為代價(jià)。因此,尋找一個(gè)常溫和熱處理后活性都能明顯提高的突變體(M9)就尤為重要。

圖4 RML野生型和9株突變體的比活及熱穩(wěn)定性變化趨勢(shì)

3 討論

3.1 突變位點(diǎn)氨基酸性質(zhì)分析

如表2所示,突變體M1-M9的獲得過(guò)程中,共出現(xiàn)10次不同位點(diǎn)的突變,其中有6次突變都是趨向于向疏水性氨基酸的改變。氨基酸側(cè)鏈從極性變成非極性后與有利于為底物與酶的結(jié)合提供疏水環(huán)境,降低結(jié)合狀態(tài)的自由能,從而有利于催化反應(yīng)的進(jìn)行。又發(fā)現(xiàn)M7比M6熱穩(wěn)定性降低是由于67位氨基酸由疏水性丙氨酸突變?yōu)樗嵝缘奶於彼?,這一系列試驗(yàn)數(shù)據(jù)說(shuō)明定向進(jìn)化過(guò)程中疏水性氨基酸的出現(xiàn)可能對(duì)目的蛋白形成更穩(wěn)定的“內(nèi)核”結(jié)構(gòu)有幫助,從而穩(wěn)定蛋白的整體結(jié)構(gòu);另一方面,酶分子的疏水性內(nèi)核常常都作為其活性中心域,這也為疏水性氨基酸的出現(xiàn)可提高目的蛋白熱保留活性作出解釋。

表2 突變體 M1-M9突變位點(diǎn)氨基酸性質(zhì)分析

3.2 突變位點(diǎn)氨基酸空間結(jié)構(gòu)分析

圖5(a)是野生型RML的三級(jí)結(jié)構(gòu)示意圖(PDB:6QPP),其中,A點(diǎn)與B點(diǎn)之間為RML前導(dǎo)肽,B點(diǎn)和C點(diǎn)之間為連接區(qū),C點(diǎn)和D點(diǎn)之間為RML成熟區(qū)的蛋白結(jié)構(gòu);圖5(b)是突變體M9的蛋白三級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)圖(http://swissmodel.expasy.org/),根據(jù)基因研究范圍,該結(jié)構(gòu)含有前導(dǎo)肽和蛋白成熟區(qū)。

數(shù)據(jù)來(lái)源:NCBI,蛋白序列號(hào)6QPP

突變體M9與野生型蛋白的結(jié)構(gòu)同源性較高,因此M9仍具備野生型RML的相關(guān)性能,且可用作氨基酸突變位點(diǎn)的分析。M9的熱穩(wěn)定性得到了明顯提高,其基因包含6個(gè)突變位點(diǎn):D48V、V67A、S168P、S240A、S311C以及D313H。使用Chimera軟件,對(duì)以上突變位點(diǎn)進(jìn)行分析,結(jié)果見圖6。

圖6(a)顯示48位氨基酸上游是前導(dǎo)肽的α螺旋,48位原Asp被疏水性Val替代,可能有利于區(qū)域結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定,而疏水作用的增強(qiáng),有利于α螺旋的穩(wěn)定[14],因此該位點(diǎn)的突變可能幫助穩(wěn)定了前導(dǎo)肽的α螺旋。圖6(b)顯示67位氨基酸位于前導(dǎo)肽和成熟區(qū)的連接處,其下游是成熟區(qū)蛋白的第一個(gè)β折疊,該位點(diǎn)由Val突變?yōu)锳la,氨基酸側(cè)鏈基團(tuán)更小,可能使得前導(dǎo)肽和成熟區(qū)相連接區(qū)域的空間位阻更小,而前導(dǎo)肽的主要功能是幫助與其相連的目標(biāo)蛋白正確折疊表達(dá),因此,以上兩個(gè)位點(diǎn)的突變可能都通過(guò)對(duì)前導(dǎo)肽區(qū)域的優(yōu)化而有利于RML熱穩(wěn)定性的提高。圖6(c)顯

圖6 M9突變位點(diǎn)分析

4 結(jié)論

研究以包含前導(dǎo)肽的RML全基因?yàn)檠芯繉?duì)象,利用易錯(cuò)PCR定向進(jìn)化技術(shù),定點(diǎn)突變,定點(diǎn)飽和突變相結(jié)合策略,成功提高了RML的熱穩(wěn)定性,同時(shí),由于RML可以水解甘油三酯為甘油二酯,從而改良油脂的營(yíng)養(yǎng)和性能,因此這一研究結(jié)果對(duì)工業(yè)生產(chǎn)也具有重要意義。另一方面,通過(guò)基因改造的過(guò)程發(fā)現(xiàn),往往需要多種方法結(jié)合才能更好地設(shè)計(jì)一條“流暢的通路”以提高目的蛋白的相關(guān)性質(zhì),而對(duì)于RML前導(dǎo)肽和成熟區(qū)共同進(jìn)化的事實(shí)也為蛋白定向進(jìn)化提供了新的思路和方法。

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