国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

砧穗互作對(duì)菊花嫁接苗耐鹽性的影響

2021-03-09 00:56孟蕊劉曄趙爽房偉民蔣甲福陳素梅陳發(fā)棣管志勇
關(guān)鍵詞:根苗耐鹽性嫁接苗

孟蕊,劉曄,趙爽,房偉民,蔣甲福,陳素梅,陳發(fā)棣,管志勇

砧穗互作對(duì)菊花嫁接苗耐鹽性的影響

孟蕊,劉曄,趙爽,房偉民,蔣甲福,陳素梅,陳發(fā)棣,管志勇

南京農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院/作物遺傳與種質(zhì)創(chuàng)新國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/農(nóng)業(yè)農(nóng)村部景觀農(nóng)業(yè)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,南京 210095

【】揭示黃蒿嫁接菊花對(duì)菊花耐鹽性的影響,明確砧穗互作影響菊花耐鹽性的機(jī)理。測(cè)定120 mmol·L-1NaCl脅迫下的‘鐘山嫣紅’的扦插苗(自根苗)、扦插苗的自根嫁接苗(自接苗)、黃蒿砧木嫁接菊花(異根嫁接苗)的生理指標(biāo)和葉片、莖段的Na+、K+離子含量。NaCl脅迫下,異根嫁接苗葉片受害率低于‘鐘山嫣紅’的自根苗和自接苗。異根嫁接苗的葉片相對(duì)電導(dǎo)率、丙二醛含量、脯氨酸含量均低于自接苗和自根苗,葉綠素含量、超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化物酶(POD)含量高于自接苗和自根苗。異根嫁接苗中部與下部葉的Na+含量、Na+/K+比值均最低,其次是自接苗,最高是自根苗。自根嫁接與異根嫁接苗上部葉的Na+含量差異不顯著;異根嫁接苗接口以上莖段的Na+含量顯著低于自接苗和自根苗,而自接苗和自根苗上部莖段的Na+無顯著差異,接口以下的黃蒿莖段Na+濃度和Na+/K+是同為砧木的菊花莖段中的兩倍。菊花自接苗運(yùn)輸?shù)街胁俊⑾虏咳~片的離子顯著少于自根苗,以黃蒿作為砧木嫁接菊花后,砧木對(duì)Na+較高的富集能力降低了Na+在嫁接接口上部的積累,同時(shí),菊花異根嫁接苗表現(xiàn)出更強(qiáng)的光合性能和抗氧化酶活性。因此,以黃蒿作砧木的‘鐘山嫣紅’異根嫁接苗耐鹽性提高,是砧穗愈合導(dǎo)致向上運(yùn)輸?shù)饺~片的離子減少和黃蒿砧木滯留更多Na+的共同作用。

嫁接;菊花;黃蒿;生理指標(biāo);Na+;K+;耐鹽性

0 引言

【研究意義】園林小菊是經(jīng)長(zhǎng)期人工雜交育種所得,其花色艷麗、植株低矮、株型緊湊,是理想的園林造景花卉,被廣泛應(yīng)用于園林、花海等景觀營(yíng)造和城市街道綠化美化[1]。但是菊花在沿海灘涂及干旱內(nèi)陸鹽堿地區(qū)栽培易受到鹽脅迫而出現(xiàn)生長(zhǎng)障礙,或長(zhǎng)期在設(shè)施條件下栽培由于土壤次生鹽漬化而易出現(xiàn)生理障礙[2]。‘鐘山嫣紅’為筆者課題自主選育并在近年廣泛推廣的園林小菊之一,該品種灌叢圓整、開花密集、花色濃艷、觀賞價(jià)值高,但在蘇北沿海等鹽堿地區(qū)使用時(shí),與多數(shù)園林小菊品種一樣,有明顯的鹽害癥狀。因此,研究菊花通過嫁接能否提高其耐鹽性,具有園林建設(shè)實(shí)踐需求性及品種代表性。鹽脅迫對(duì)植物造成的傷害首先是滲透脅迫,然后是離子失調(diào)引起的毒害和營(yíng)養(yǎng)失衡,以及氧化脅迫導(dǎo)致的生理生化代謝紊亂和有毒物質(zhì)積累,并最終影響植物的生長(zhǎng)發(fā)育[3-6]。嫁接技術(shù)可利用砧木為接穗提供良好的根系,從而提高植株抵抗逆境的能力,保證植物在逆境環(huán)境下正常生長(zhǎng)[7]。研究砧木嫁接對(duì)菊花耐鹽性的影響,可以進(jìn)一步了解砧穗互作影響菊花耐鹽性的機(jī)制,并且為園林小菊的推廣應(yīng)用提供實(shí)踐依據(jù)。【前人研究進(jìn)展】研究表明,嫁接可以在多個(gè)方面提高植物的耐鹽性,包括調(diào)節(jié)Na+、K+的吸收和分配[8-11],提高光合性能[12-13],增強(qiáng)抗氧化能力[14-15],以及增加可溶性糖、甜菜堿、可溶性蛋白等滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的含量[16],這些因素綜合構(gòu)成了嫁接提高植物耐鹽性的生理基礎(chǔ)。黃蒿()是菊科蒿屬的植物[17],以黃蒿為砧木嫁接菊花,可以提高菊花的抗旱性[18]、抗蚜性[19],緩解菊花的連作障礙[20]??梢?,以黃蒿為砧木嫁接菊花是提高菊花抗性的有效手段。嫁接菊花的耐鹽性研究發(fā)現(xiàn),鹽脅迫下以黃蒿為砧木的嫁接苗生物量、凈光合速率、呼吸速率、抗氧化酶活性(SOD、CAT、APX)等均顯著高于自根苗,而MDA、超氧陰離子自由基(O2-)增幅明顯低于自根苗;并且異根嫁接苗莖、葉等部位的Na+含量均顯著低于自根苗,砧木根系Na+含量高于自根苗,根、莖、葉的Ca2+、Mg2+、K+含量顯著高于自根苗[2]?!颈狙芯壳腥朦c(diǎn)】鹽脅迫下,離子在異根嫁接苗不同器官的區(qū)域化分布是理解嫁接提高菊花耐鹽性的重要因素,嫁接操作形成的傷口及愈合過程、不同的砧木與接穗組合是否會(huì)影響菊花的耐鹽性,離子的分配策略是否因此而發(fā)生變化,已有的研究尚不能對(duì)上述問題完全闡述清楚?!緮M解決的關(guān)鍵問題】本研究以黃蒿為砧木,鹽敏感品種園林小菊‘鐘山嫣紅’為接穗進(jìn)行嫁接,設(shè)置菊花‘鐘山嫣紅’扦插苗(自根苗)和扦插苗自根嫁接苗(自接苗)2組對(duì)照,研究NaCl脅迫條件下[21],嫁接對(duì)菊花耐鹽性的影響以及鹽離子在菊花(含砧木)不同器官的分配策略以及嫁接本身是否也能影響抗性,研究嫁接對(duì)菊花生理特性以及菊花不同部位Na+、K+含量的影響,旨在初步揭示嫁接提高菊花耐鹽性的機(jī)理,為擴(kuò)大園林小菊的應(yīng)用范圍提供參考。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)材料

供試植物材料黃蒿()和園林小菊‘鐘山嫣紅’,均由南京農(nóng)業(yè)大學(xué)中國(guó)菊花種質(zhì)資源保存中心提供。

1.2 試驗(yàn)處理

2019年2月中旬在玻璃溫室內(nèi)播種黃蒿種子,栽培基質(zhì)為復(fù)合基質(zhì)(草炭﹕珍珠巖=2﹕1),4月初選擇生長(zhǎng)良好的黃蒿幼苗移栽至塑料盆(直徑19 cm,高17 cm)中。4月5日從菊花‘鐘山嫣紅’的母株上選擇健壯的插穗進(jìn)行扦插,4月20日生根后轉(zhuǎn)移至塑料盆中用于菊花自根嫁接,同時(shí)扦插菊花‘鐘山嫣紅’。4月30日,黃蒿長(zhǎng)至株高30 cm、莖粗5 mm時(shí),菊花長(zhǎng)至8片葉、莖粗5 mm時(shí),采用劈接法,分別以黃蒿和菊花作為砧木進(jìn)行嫁接。5月15日選擇長(zhǎng)勢(shì)一致的異根嫁接苗、自接苗、自根扦插苗各60株進(jìn)行試驗(yàn)。

將材料移于盛有1/2 Hogland營(yíng)養(yǎng)液的塑料周轉(zhuǎn)箱(體積23.4 L)內(nèi)進(jìn)行通氣水培,氣泵24 h·d-1通氣。緩苗生長(zhǎng)7 d后,分別在清水和120 mmol·L-1NaCl條件下進(jìn)行脅迫處理,脅迫濃度以每日60 mmol·L-1的濃度增加,在同一時(shí)間達(dá)到不同處理濃度,每5 d更換一次營(yíng)養(yǎng)液,每處理20株,重復(fù)3次。

1.3 測(cè)定方法

鹽處理后第0、1、4和8天通過描葉稱重法[22]結(jié)合Smartscape圖像分析軟件測(cè)量受害葉(黃葉、萎蔫葉、干枯葉)葉面積,計(jì)算葉片受害面積比率(葉片受害面積比率=受害葉葉面積/單株總?cè)~面積),每處理測(cè)定6個(gè)單株,取平均值。

鹽處理后的第0、1、4和8天,選取自上向下第3片完全展開葉,用美國(guó)LI-COR公司產(chǎn)的LI-6400便攜式光合測(cè)定系統(tǒng),設(shè)定光量子通量密度為800 μmol·m-2·s-1,溫度25℃,CO2濃度為390 μL·L-1,于上午9:00—11:00測(cè)定凈光合速率。

鹽處理后的第0、1、4和8天,選取自上向下第3片完全展開葉測(cè)定葉綠素含量、葉片相對(duì)電導(dǎo)率、丙二醛含量、脯氨酸含量、過氧化氫酶(CAT)活性、過氧化物酶(POD)活性、超氧化物歧化酶(SOD)活性。葉綠素含量采用乙醇浸提比色法[23],質(zhì)膜透性采用電導(dǎo)率法[24]。游離脯氨酸含量采用酸性茚三酮法[25],MDA含量測(cè)定采用硫代巴比妥酸(TBA)比色法[26],SOD活性測(cè)定采用氮藍(lán)四唑(NBT)還原法,POD活性測(cè)定采用愈創(chuàng)木酚顯色法,CAT采用紫外吸收法進(jìn)行測(cè)定[27]。

鹽處理后的第0、1、4和8天,取菊花上部(自上向下第1片完全展開葉)、中部(自上向下第3—4片完全展開葉)、下部(自上向下第8片完全展開葉)葉片,嫁接接口處向上1.5 cm的莖和嫁接接口處向下1.5 cm黃蒿的莖(自根苗取與自接苗相同位置菊花的莖),用去離子水沖洗3次,再用干凈的吸水紙吸干水分,置于烘箱中105℃殺青15 min,再于75℃下烘干至恒重,用研缽研成粉末,過40目篩。使用微波消解儀進(jìn)行消解,稱取不同部位烘干樣品50 mg至干燥消化管中,添加65%濃HNO3和30% H2O2(比例4﹕1)。從室溫10 min勻速升溫到165℃,保溫15 min,然后風(fēng)冷降溫。消解完成后用超純水定容至25 ml,稀釋母液后,用電感耦合等離子體發(fā)射光譜儀(ICP-MS)測(cè)定Na+、K+濃度[28]。

1.4 數(shù)據(jù)處理和分析方法

采用Microsoft Excel 2003軟件對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行處理和繪圖,使用SPSS 23.0 Duncan’s多重比較法進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析(<0.05)。

2 結(jié)果

2.1 嫁接降低了菊花葉面積受害比率

如表1所示,隨著NaCl脅迫時(shí)間的延長(zhǎng),各處理的葉面積受害比率均有所升高。自根苗、自接苗的葉片分別在鹽處理的第1天和第4天開始出現(xiàn)明顯的受害癥狀,葉面積受害比率隨著脅迫時(shí)間的延長(zhǎng)逐漸升高,而異根嫁接苗直到脅迫的第8天才有輕微傷害,且異根嫁接苗的葉面積受害比率明顯低于自根苗和自接苗;自根苗、自接苗的根系在第8天有明顯發(fā)黑現(xiàn)象,而異根嫁接苗黃蒿砧木的莖段粗壯、根系發(fā)達(dá),未見明顯顏色變化。圖1是自根苗、自接苗和異根嫁接苗在無NaCl(圖1-A)和120 mmol?L-1NaCl(圖1-B)處理0、1、4和8 d的形態(tài)變化。由此可見,黃蒿嫁接緩解了鹽脅迫對(duì)菊花造成的傷害。

2.2 嫁接對(duì)光合速率和葉綠素含量的影響

如圖2-A所示,隨著NaCl脅迫時(shí)間的延長(zhǎng),葉綠素(a+b)含量呈逐漸下降的趨勢(shì)。在整個(gè)NaCl處理期間,異根嫁接苗葉綠素含量高于自根苗和自接苗,且降低幅度顯著低于自根苗和自接苗。第8天時(shí),自根苗、自接苗和異根嫁接苗葉片葉綠素含量分別為對(duì)照的82.47%、88.57%和98.78%。對(duì)照條件下,各組材料的凈光合速率在整個(gè)處理期間保持相對(duì)穩(wěn)定的狀態(tài);鹽脅迫下,自根苗、自接苗和異根嫁接苗的凈光合速率隨著時(shí)間的延長(zhǎng)逐漸下降。第8天時(shí),與對(duì)照相比,自根苗、自接苗和異根嫁接苗葉片凈光合速率分別降低33.56%、27.57%、15.15%,且異根嫁接苗的凈光合速率始終高于自根苗和自接苗(圖2-B)。結(jié)果表明,嫁接緩解了鹽脅迫誘導(dǎo)對(duì)菊花幼苗生長(zhǎng)的抑制,改善了植株的光合能力。嫁接使葉片光和色素的含量保持在較高水平,使光合系統(tǒng)保持相對(duì)穩(wěn)定的狀態(tài),降低了對(duì)菊花生長(zhǎng)發(fā)育的影響。

表1 單株葉面積受害比率

a-0、a-1、a-4、a-8表示自根苗在無脅迫第0、1、4、8天的形態(tài);b-0、b-1、b-4、b-8表示自接苗在無NaCl脅迫第0、1、4、8天的形態(tài);c-0、c-1、c-4、c-8表示異根嫁接苗在無NaCl脅迫第0、1、4、8天的形態(tài);d-0、d-1、d-4、d-8表示自根苗在120 mmol?L-1 NaCl脅迫第0、1、4、8天的形態(tài);e-0、e-1、e-4、e-8表示自接苗在120 mmol?L-1 NaCl脅迫第0、1、4、8天的形態(tài);f-0、f-1、f-4、f-8表示異根嫁接苗在120 mmol?L-1 NaCl脅迫第0、1、4、8天的形態(tài)

2.3 嫁接對(duì)菊花葉片相對(duì)電導(dǎo)率、MDA以及脯氨酸含量的影響

由圖3可知,隨著鹽脅迫時(shí)間的延長(zhǎng),各處理的葉片相對(duì)電導(dǎo)率和MDA含量均逐漸升高。第8天時(shí),鹽脅迫下自根苗、自接苗和異根嫁接苗的相對(duì)電導(dǎo)率分別為對(duì)照的2.18、1.85、1.25倍,MDA含量分別為對(duì)照的1.69、1.62、1.08倍。表明鹽脅迫下異根嫁接苗葉片的質(zhì)膜透性和受害程度顯著低于自根苗和自接苗。

如圖4所示,隨著脅迫時(shí)間的延長(zhǎng),各處理的脯氨酸含量呈逐漸上升的趨勢(shì),并在第8天達(dá)到最大值。從第4天開始,各處理之間表現(xiàn)出顯著差異。到第8天時(shí),鹽脅迫下自根苗、自接苗和異根嫁接苗的脯氨酸含量分別為對(duì)照的14.08、15.0、6.24倍,自根苗含量最高,異根嫁接苗最低,自接苗居中。

不同小寫字母表示同一時(shí)間不同處理間差異顯著(P<0.05)。下同

2.4 嫁接對(duì)菊花抗氧化系統(tǒng)的影響

對(duì)照條件下,在不同的時(shí)間節(jié)點(diǎn),自根苗、自接苗和異根嫁接苗的SOD活性存在一定波動(dòng),異根嫁接苗的SOD活性始終高于自根苗和自根嫁接苗。鹽脅迫下,隨著時(shí)間的延長(zhǎng),各組處理均表現(xiàn)出先下降再上升的趨勢(shì)。第4天時(shí),自根苗的SOD活性降到最低,僅為對(duì)照的59.74%,自接苗和異根嫁接苗在處理后的第1天降到最低,分別約為對(duì)照的89.40%、98.41%。異根嫁接苗的SOD活性降低幅度小,且活性始終高于自根苗和自接苗(表2)。由此可見,SOD可能在異根嫁接苗緩解鹽脅迫的過程中發(fā)揮了重要作用。

圖4 嫁接對(duì)菊花‘鐘山嫣紅’在120 mmol·L-1 NaCl脅迫下脯氨酸含量的影響

對(duì)照條件下,自根苗、自接苗和異根嫁接苗的POD活性保持在相對(duì)穩(wěn)定的狀態(tài),且各處理間基本無顯著性差異。鹽脅迫下,隨著時(shí)間的延長(zhǎng),各處理的POD活性逐漸下降,第8天時(shí),自根苗、自接苗和異根嫁接苗的POD活性分別為對(duì)照的88.63%、85.46%、97.81%,異根嫁接苗POD活性降低幅度較小,且活性顯著高于自根苗和自接苗。在鹽脅迫下,自根苗、自接苗和異根嫁接苗的CAT活性表現(xiàn)出先升高后降低的趨勢(shì)。在脅迫的整個(gè)過程中,自接苗的CAT活性顯著高于自根苗和異根嫁接苗(表2)。

2.5 嫁接對(duì)菊花各部位Na+、K+含量及Na+/K+比值的影響

2.5.1 對(duì)上部葉片的影響 隨著NaCl脅迫時(shí)間的延長(zhǎng),自根苗、自接苗和異根嫁接苗上部葉片的Na+含量均呈逐漸上升的趨勢(shì)。自根苗的Na+含量始終高于自接苗和異根嫁接苗,自接苗和異根嫁接苗之間無顯著性差異。到第8天時(shí),鹽脅迫下自根苗、自接苗和異根嫁接苗上部葉片的Na+含量分別為對(duì)照的56.01、52.5和45.93倍(圖5-A)。NaCl脅迫對(duì)自根苗、自接苗和異根嫁接苗上部葉片的K+含量產(chǎn)生了影響,其中,自根苗的K+含量顯著下降,變化最為顯著(圖5-B)。Na+/K+比值的變化趨勢(shì)與Na+一致,在處理第1、4和8天,自根苗的Na+/K+比值顯著低于自接苗和異根嫁接苗,自接苗和異根嫁接之間無顯著性差異(圖5-C)。

2.5.2 對(duì)中部葉片的影響 如圖6-A所示,隨著NaCl脅迫時(shí)間的延長(zhǎng),自根苗、自接苗和異根嫁接苗中部葉片的Na+含量均呈逐漸上升的趨勢(shì)。在鹽脅迫的第1天和第4天,自根苗的Na+含量始終高于自接苗和異根嫁接苗,自接苗和異根嫁接苗之間不表現(xiàn)顯著性差異。到第8天時(shí),鹽脅迫下各組間表現(xiàn)出顯著差異,其中自根苗的Na+含量最高,為對(duì)照的39倍;自接苗次之,為對(duì)照的25倍;異根嫁接苗最低。

表2 嫁接對(duì)菊花‘鐘山嫣紅’在120 mmol·L-1 NaCl脅迫下葉片SOD、POD、CAT活性的影響

不同小寫字母表示同一時(shí)間不同處理間差異顯著(<0.05)。下同

Different lowercase letters indicate the difference between different treatments at the same time are significant (<0.05). The same as below

圖5 嫁接對(duì)菊花‘鐘山嫣紅’在120 mmol·L-1 NaCl脅迫下的上部葉片Na+(A)、K+(B)含量及Na+/K+(C)的影響

圖6 嫁接對(duì)菊花‘鐘山嫣紅’在120 mmol·L-1 NaCl脅迫中部葉Na+(A)、K+(B)含量及Na+/K+(C)的影響

受NaCl脅迫的影響,隨著時(shí)間延長(zhǎng),自根苗、自接苗和異根嫁接苗中部葉片的K+含量逐漸降低,在第8天時(shí),自根苗、自接苗和異根嫁接苗中部葉片的K+含量分別為對(duì)照的68.74%、74.47%、84.60%(圖6-B)。各處理的Na+/K+比值的變化與Na+趨勢(shì)一致,均隨脅迫時(shí)間的延長(zhǎng)而逐漸升高,但是異根嫁接苗的Na+/K+比值顯著低于自根苗和自接苗(圖6-C)。結(jié)果表明,嫁接降低了菊花中部葉片Na+的積累,使Na+/K+比值維持在較低水平,緩解了對(duì)葉片造成的傷害。

2.5.3 對(duì)下部葉片的影響 隨著NaCl脅迫時(shí)間的延長(zhǎng),自根苗、自接苗和異根嫁接苗下部葉片的Na+含量均呈逐漸上升的趨勢(shì)。在鹽脅迫的第1和第4天,自根苗的Na+含量始終高于自接苗和異根嫁接苗,自接苗和異根嫁接苗之間不表現(xiàn)顯著性差異。到第8天時(shí),鹽脅迫下各組間表現(xiàn)出顯著性差異,其中自根苗的Na+含量最高,為對(duì)照的45.61倍;自接苗次之,為對(duì)照的30.21倍;異根嫁接苗最低,僅為對(duì)照的25.56倍(圖7-A)。

如圖7-B所示,隨著脅迫時(shí)間的延長(zhǎng),自根苗下部葉片的K+含量逐漸降低。自接苗和異根嫁接苗顯著降低,自根苗、自接苗和異根嫁接苗中部葉片的K+含量分別為對(duì)照的31.50%、75.25%、84.58%。同樣,各處理材料的Na+/K+比值在鹽脅迫下顯著提高,第8天時(shí),自根苗、自接苗和異根嫁接苗的Na+/K+比值分別為2.45、1.12、0.75,異根嫁接苗的Na+/K+比值最低(圖7-C)。結(jié)果表明,鹽脅迫下菊花下部葉片聚集了大量的Na+,嫁接降低了菊花下部葉片Na+的積累,使Na+/K+比值顯著低于自根苗和自接苗,緩解了Na+對(duì)葉片造成的傷害。

2.5.4 對(duì)嫁接接口上部莖的影響 鹽脅迫下,自根苗、自接苗和異根嫁接苗接口上部莖的Na+含量均顯著上升。處理第8天時(shí),異根嫁接苗的Na+含量顯著低于自根苗和自接苗(圖8-A)。同時(shí),受鹽脅迫影響,自根苗、自接苗和異根嫁接苗接口上部莖的K+含量顯著降低(圖8-B)。第8天時(shí),異根嫁接苗Na+/K+比值低于自根苗和自接苗,但是差異不顯著(圖8-C)。

圖7 嫁接對(duì)菊花‘鐘山嫣紅’在120 m mol·L-1 NaCl脅迫下的下部葉Na+(A)、K+(B)含量及Na+/K+(C)的影響

圖8 嫁接對(duì)菊花‘鐘山嫣紅’在120 mmol·L-1NaCl脅迫下的上部莖Na+(A)、K+(B)含量及Na+/K+(C)的影響

Fig. 8 The effects of 120 mmol·L-1NaCl treatment on the upper stem Na+(A), K+(B) content and Na+/K+(C) of chrysanthemum Zhongshan Yanhong

2.5.5 對(duì)嫁接接口下部莖的影響 NaCl處理后,自根苗、自接苗和異根嫁接苗接口下部莖的Na+含量均顯著性上升。從第4天開始,異根嫁接苗下部莖的Na+含量顯著高于自根苗和自接苗,到第8天時(shí),自根苗、自接苗和異根嫁接苗接口下部莖的Na+含量分別為對(duì)照的6.44、5.55、8.24倍(圖9-A)。NaCl處理后,自根苗、自接苗和異根嫁接苗接口下部莖的K+含量均顯著性降低,處理第8天時(shí),自根苗、自接苗和異根嫁接苗的K+含量分別為對(duì)照的93.07%、79.30%、59.22%(圖9-B)。在鹽脅迫第4、8天時(shí),異根嫁接苗的Na+/K+比值顯著高于自根苗和自接苗,第8天時(shí),異根嫁接苗的Na+/K+比值約為自根苗和自接苗的2倍(圖9-C)。結(jié)果表明,與自根苗和自接苗相比,鹽脅迫下異根嫁接苗嫁接接口下部莖中富集了更多的Na+,使向上運(yùn)輸?shù)腘a+含量減少,從而緩解鹽脅迫對(duì)葉片產(chǎn)生的離子毒害。

3 討論

3.1 嫁接與NaCl脅迫下菊花生理特性的關(guān)系

嫁接體通過砧木、接穗間的相互作用,可以改變植物體內(nèi)原有的一系列生理、生化反應(yīng),對(duì)植株的生長(zhǎng)、發(fā)育、抗性等諸多方面產(chǎn)生影響[29]。形態(tài)變化是植物受到逆境脅迫最直接的反映[30]。葉片是生物量構(gòu)成器官之一,在脅迫下變化明顯,而葉片干、鮮重與葉面積又存在正相關(guān)關(guān)系,故葉片受害面積的變化可在一定程度上反映整株植物的生物量變化[31]。本研究中,120 mmol·L-1NaCl處理下,異根嫁接苗的葉面積受害率顯著低于自接苗,自接苗低于自根苗。這表明鹽脅迫對(duì)砧木異根嫁接苗生物量的影響小于自根苗和自接苗,嫁接緩解了鹽脅迫對(duì)植物生長(zhǎng)造成的抑制,以及對(duì)葉片造成的傷害。

鹽逆境會(huì)使植物的光合速率下降,葉綠素是表征光合利用率最重要的指標(biāo)之一[32]。本研究中,異根嫁接苗的凈光合速率、葉綠素(a+b)含量的降低幅度顯著低于自根苗和自接苗。COLLA[33]和楊立飛等[34]的研究表明,鹽脅迫下,嫁接黃瓜幼苗的凈光合速率(Pn)和葉綠素含量下降幅度小于自根黃瓜,和本研究結(jié)果一致。表明嫁接緩解了離子對(duì)光合系統(tǒng)造成的傷害,降低了葉綠素的降解,使異根嫁接苗的光合性能高于自接苗和自根苗,從而降低了異根嫁接苗葉片的受害程度。

圖9 嫁接對(duì)菊花‘鐘山嫣紅’在120 mmol·L-1 NaCl脅迫下的下部莖Na+(A)、K+(B)含量及Na+/K+(C)的影響

植物可以通過抗氧化酶系統(tǒng)清除氧自由基,阻止細(xì)胞氧化損傷,達(dá)到在逆境環(huán)境中生存的目的,其中,抗氧化酶主要有超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化物酶(POD)、過氧化氫酶(CAT)[35]。此前有多項(xiàng)研究表明,鹽脅迫下番茄[36]、辣椒[37]和黃瓜[38]嫁接苗的抗氧化酶活性均高于自根苗,表明嫁接對(duì)鹽脅迫下植物的抗氧化系統(tǒng)起到了積極作用。本研究中,異根嫁接苗的SOD活性在對(duì)照條件和NaCl脅迫下均高于自接苗和自根苗,這表明砧穗互作賦予了異根嫁接苗更高的SOD活性,同樣,異根嫁接苗的POD活性在鹽脅迫下高于自根苗和自接苗,但是CAT活性低于自接苗。WANG[39]等在研究抗氧化系統(tǒng)對(duì)不同品種棉花耐鹽性的差異影響時(shí)發(fā)現(xiàn),不同材料在鹽脅迫下會(huì)誘導(dǎo)一種或幾種抗氧化酶,并不是所有的抗氧化酶都會(huì)參與到ROS的清除。因此,本研究中SOD和POD在異根嫁接苗適應(yīng)鹽脅迫的過程中發(fā)揮了重要作用。

在鹽脅迫條件下,細(xì)胞質(zhì)膜首先受到鹽離子脅迫影響而產(chǎn)生脅變,導(dǎo)致質(zhì)膜受傷。同時(shí),鹽分能增加細(xì)胞膜透性,加強(qiáng)脂質(zhì)過氧化作用,最終導(dǎo)致膜系統(tǒng)的破壞[30]。相對(duì)電導(dǎo)率和MDA含量分別是衡量質(zhì)膜透性和質(zhì)膜受害程度的指標(biāo),它們的值越大,質(zhì)膜受到的傷害也越大。本研究中,異根嫁接苗葉片的相對(duì)電導(dǎo)率和MDA含量增加幅度最低,自接苗居中,自根苗最高,表明異根嫁接苗葉片質(zhì)膜受到的傷害小于自接苗,而自接苗小于自根苗。脯氨酸在鹽害條件下的積累起到了胞質(zhì)滲透壓調(diào)節(jié)劑的作用,保護(hù)膜與酶的結(jié)構(gòu),緩解脅迫壓力[40]。本研究各材料的受害程度與脯氨酸含量表現(xiàn)出正相關(guān)的關(guān)系,反映了材料在鹽脅迫下的適應(yīng)性反應(yīng)。

同時(shí),自根嫁接苗的受害程度輕于自根苗,自根苗‘鐘山嫣紅’本身為鹽敏感品種,以其自身作為砧木嫁接形成的嫁接植株耐鹽表現(xiàn)優(yōu)于自根苗,與嫁接傷口形成引發(fā)的“交叉適應(yīng)性”有關(guān)。有研究表明,植物在受重度機(jī)械損傷處理后,SOD、POD、PPO和PAL等保護(hù)酶活性均被誘導(dǎo)增加[41]。本試驗(yàn)中,自接苗的SOD、CAT活性均顯著高于自根苗的活性,也支持了這一觀點(diǎn)。

3.2 嫁接與NaCl脅迫下菊花各部位離子分布的關(guān)系

Munns等[42]提出,增強(qiáng)耐鹽性有兩種途徑,一是降低滲透脅迫對(duì)植株長(zhǎng)勢(shì)的影響,二是通過降低有毒離子的濃度來維持植株長(zhǎng)勢(shì)和功能[43-44]。在鹽脅迫下,Na+大量進(jìn)入細(xì)胞,細(xì)胞內(nèi)Na+增加,而K+外滲,使Na+/K+值增大,從而打破原有的離子平衡,當(dāng)Na+/K+比值增大到閾值時(shí)植物即受害[30]。

本研究中,120 mmol·L-1NaCl脅迫下菊花各部位葉片的Na+含量差異顯著,下部葉片的Na+含量、Na+/K+比值最高,中部和上部葉片的Na+含量接近。鹽脅迫下,異根嫁接苗的接口下部莖(砧木莖)Na+離子含量、Na+/K+比值顯著高于自根苗和自接苗,中部、下部葉片,以及接口上部莖的Na+含量、Na+/K+比值顯著低于自接苗,而自接苗低于自根苗,K+含量高于自根苗和自接苗。這與黃蒿嫁接其他菊花品種的異根嫁接苗接穗各部分Na+含量低于菊花扦插苗的結(jié)果相同[2]。所以,黃蒿砧木對(duì)Na+的富集能力強(qiáng)于菊花莖,阻止了Na+向上的大量運(yùn)輸,使接穗部分的Na+/K+比值降低,這是黃蒿砧木嫁接提高菊花耐鹽性的主要原因;嫁接會(huì)使接穗的導(dǎo)管面積、篩管面積變小,木質(zhì)部生長(zhǎng)減弱[45],推測(cè)嫁接傷口及砧穗愈合會(huì)在一定程度上影響離子的向上運(yùn)輸,使菊花自接苗接口以上部位葉片的Na+含量減少,其受害程度也低于自根苗。

陽(yáng)艷娟等[46]的研究也發(fā)現(xiàn),鹽脅迫下嫁接西瓜苗將Na+更多地集中在根系和砧木莖,阻止了Na+向接穗地上部的大量運(yùn)輸,防止了離子毒害的發(fā)生,增強(qiáng)了嫁接西瓜植株的耐鹽性。耐鹽南瓜砧木嫁接限制了Na+從根部向地上部黃瓜接穗的長(zhǎng)距離運(yùn)輸是嫁接苗耐鹽性提高的原因。COBAN等[47]以耐鹽砧木嫁接鹽敏感番茄,發(fā)現(xiàn)耐鹽砧木嫁接可以減少Na+向葉片的轉(zhuǎn)運(yùn)。HUANG等[48]以耐鹽南瓜為砧木嫁接黃瓜,顯著降低了接穗部分地上部Na+的含量,從而提高了黃瓜的耐鹽性。進(jìn)一步對(duì)根部進(jìn)行X射線微區(qū)分析,結(jié)果表明耐鹽砧木具有限制Na+進(jìn)入接穗木質(zhì)部的能力,避免由于過多的Na+在地上部分積累對(duì)植株造成傷害。嫁接作為一個(gè)特異的研究系統(tǒng)已被廣泛應(yīng)用于物質(zhì)運(yùn)輸和信號(hào)的長(zhǎng)距離傳導(dǎo)機(jī)制等方面的研究[49]。砧木和接穗間物質(zhì)的運(yùn)輸可能是引起嫁接植物性狀改變的原因[50]。孫靜宇[51]通過構(gòu)建南瓜和黃瓜正反嫁接組合闡述了更加有說服力的砧穗互作關(guān)系,發(fā)現(xiàn)以耐鹽南瓜為砧木的嫁接組合可有效限制Na+在地上部的積累,緩解地上部鹽害程度,而以鹽敏感黃瓜為砧木的嫁接組合,則不能限制Na+向地上部運(yùn)輸,表明耐鹽南瓜砧木在嫁接黃瓜耐鹽中的決定作用。進(jìn)一步的研究證實(shí)南瓜的Na+特異轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白基因通過限制Na+向根系木質(zhì)部裝載,減少了Na+向地上部運(yùn)輸,進(jìn)而減少地上部Na+積累,是黃瓜接穗耐鹽性增強(qiáng)的原因。此外,本試驗(yàn)中黃蒿砧木的Na+特異轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白基因是否也在嫁接耐鹽性提高中發(fā)揮了關(guān)鍵作用,有待進(jìn)一步研究。

4 結(jié)論

相對(duì)于‘鐘山嫣紅’菊花的扦插苗,以黃蒿作為砧木、‘鐘山嫣紅’作為接穗進(jìn)行嫁接后的菊花耐鹽性有所提高。主要原因是異種砧木對(duì)Na+的有效截留,運(yùn)輸?shù)健娚芥碳t’莖段、中下部葉片的Na+減少;此外,嫁接切口損傷引發(fā)的“交叉適應(yīng)性”導(dǎo)致了保護(hù)酶活性的升高,這些效應(yīng)的共同作用減弱了鹽脅迫對(duì)異根嫁接苗質(zhì)膜造成的傷害,使葉片的光合速率維持在較高水平,從而在鹽脅迫下保持了較好的生長(zhǎng)狀態(tài)。

[1] 郝洪波. 地被小菊的特點(diǎn)與園林應(yīng)用. 南方農(nóng)業(yè): 園林花卉版, 2007, 1(6): 38-40.

HAO H B. Characteristics and ground application of ground cover chrysanthemum. South China Agriculture, 2007, 1(6): 38-40. (in Chinese)

[2] 房偉民. 嫁接對(duì)菊花抗逆性影響及切花菊栽培技術(shù)研究[D]. 南京: 南京農(nóng)業(yè)大學(xué), 2009.

FANG W M. Effect on abiotic stress tolerance of grafting in chrysanthemum and cultivated techniques for cutting chrysanthemum [D]. Nanjing: Nanjing Agricultural University, 2009. (in Chinese)

[3] Zhang J L, Shi H Z. Physiological and molecular mechanisms of plant salt tolerance. Photosynthesis Research, 2013, 115(1): 1-22.

[4] Munns R, Tester M. Mechanisms of salinity tolerance. Annual Review of Plant Biology, 2008, 59(1): 651-681.

[5] ZHU J K. Plant salt tolerance. Trends in Plant Science, 2001, 6(2): 66-71.

[6] KRONZUCHER H J, BRITTO D T. Sodium transport in plants: Acritical review. New Phytologist, 2011, 189(1): 54-81.

[7] SZABADOS L, SAVOURE A. Proline: A multifunctional amino acid. Trends in Plant Science, 2010, 15(2): 89-97.

[8] 朱士農(nóng), 郭世榮. 嫁接對(duì)鹽脅迫下西瓜植株體內(nèi)Na+和K+含量及其分布的影響. 園藝學(xué)報(bào), 2009, 36(6): 814-820.

ZHU S N, GUO S R. Effects of grafting on K+, Na+contents and distribution of watermelon (Schrad) seedlings under NaCl stress. Acta Horiculture Sinica, 2009, 36(6): 814-820. (in Chinese)

[9] EETAN MARIA T, MARTINEZ-RODRIGUEZ M M, PEREZ- ALFOCEA F, FLOWERS T J, BOLARIN M C. Grafting raises the salt tolerance of tomato through limiting the transport of sodium and chloride to the shoot. Journal of Experimental Botany, 2005, 56(412):703-712.

[10] 雷波. 耐鹽砧木通過調(diào)節(jié)Na+吸收和運(yùn)轉(zhuǎn)提高黃瓜耐鹽性的機(jī)制研究[D]. 武漢: 華中農(nóng)業(yè)大學(xué), 2013.

LEI B. Mechanism of salt tolerant rootstock raise the salt tolerance of cucumber through regulating the uptake transportation of Na+[D]. Wuhan: Huazhong Agricultural University, 2013. (in Chinese)

[11] MARTINEZ-RODRIGUEZ M M, ESTA M T, MOYANO E, GARCIA-ABELLANT J O, FLORES F B, CAMPOS J F, AL- AZZAWI M J, FLOWERS T J, BOLARIN M C. The effectiveness of grafting to improve salt tolerance in tomato when an ‘excluder’ genotype is used as scion. Environmental & Experimental Botany, 2008, 63(1): 392-401.

[12] 楊秀玲. 黃瓜嫁接幼苗耐鹽光合特性和WSC代謝生理調(diào)控研究[D]. 蘭州: 甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué), 2015.

YANG X L. Physiological regulation of salt tolerance on photosynthesis and WSC metabolism in grafted cucumber seedlings [D]. Lanzhou: Gansu Agricultural University, 2015. (in Chinese)

[13] PENELLA C, LANDI M, GUIDI L, NEBAUER S G, SAN BAUTISTA A, REMIRINI D, NALI C, LOPEZ-GALARZA S, CALATAYUD A. 鹽脅迫下耐鹽砧木通過保持光合能力和庫(kù)強(qiáng)提高嫁接辣椒的產(chǎn)量. 劉越, 孔秋生, 譯. 辣椒雜志, 2016, 14(2): 38-50.

PENELLA C, LANDI M, GUIDI L, NEBAUER S G, SAN BAUTISTA A, REMIRINI D, NALI C, LOPEZ-GALARZA S, CALATAYUD A. Salt-tolerant rootstocks increase the yield of grafted peppers by maintaining photosynthetic capacity and storage strength under salt stress. LIU Y, KONG Q S, Trans. Journal of China Capsicum,2016, 14(2): 38-50. (in Chinese)

[14] 高俊杰, 張琳, 秦愛國(guó), 于賢昌. 氯化鈉脅迫下嫁接黃瓜葉片SOD和CAT mRNA基因表達(dá)及其活性. 應(yīng)用生態(tài)學(xué)報(bào), 2008, 19(8): 1754-1758.

GAO J J, ZHANG L, QIN A G, YU X C. Relative expression of SOD and CAT mRNA and activities of SOD and CAT in grafted cucumber leaves under NaCl stress. Chinese Journal of Applied Ecology, 2008, 19(8): 1754-1758. (in Chinese)

[15] 施先鋒. 南瓜砧木嫁接提高西瓜耐冷性的生理機(jī)制及蛋白質(zhì)組學(xué)研究[D]. 武漢: 華中農(nóng)業(yè)大學(xué), 2019.

SHI X F. Physiological mechanism and proteomics research of improved cold tolerance of watermelon seedlings by grafting onto pumpkin rootstock [D]. Wuhan: Huazhong Agricultural University, 2019. (in Chinese)

[16] SHAHID M A, BALAL R M, KHAN N, SIMON-GRAO S, ALFOSEA-SIMON M, CAMARA-ZAPATA J M, MATTSON N S, GARCIA-SANCHEZ F. Rootstocks influence the salt tolerance oftrees by altering the antioxidant defense system, osmolyte concentration, and toxic ion accumulation. Scientia Horticulturae, 2019, 250: 1-11.

[17] 林有潤(rùn). 中國(guó)蒿屬志—中國(guó)蒿屬植物的系統(tǒng)分類、分布和主要經(jīng)濟(jì)用途. 植物研究, 1988, 8(4): 1-61

LIN Y R. The Chinese Artemisia Linn. -The classification, distribution and application ofArtemisia LinnIn China. Bulletin of Botanical Research, 1988, 8(4): 1-61. (in Chinese)

[18] CHEN Y, SUN X Z, ZHENG C S, ZHANG S, YANG J H. Grafting ontoimproves drought tolerance in chrysanthemum by enhancing photosynthetic capacity. Horticultural Plant Journal, 2018, 4(3): 117-125.

[19] ZHANG X Y, SUN X Z, ZHANG S, YANG J H, LIU F F, FAN J. Comprehensive transcriptome analysis of grafting ontoW. to affect the aphid resistance of chrysanthemum (T.). BMC Genomics, 2019, 20(1): 776.

[20] 陳思思. 嫁接緩解菊花連作障礙機(jī)制初探[D]. 南京: 南京農(nóng)業(yè)大學(xué), 2012.

CHEN S S. Effects of grafting on the relieve of continuous cropping obstacles of[D]Nanjing: Nanjing Agricultural University, 2012.

[21] 管志勇, 陳素梅, 王艷艷, 陳發(fā)棣. 菊花近緣種屬植物耐鹽篩選濃度的確定及耐鹽性比較. 生態(tài)學(xué)雜志, 2010, 29(3): 467-472.

GUAN Z Y, CHEN S M, WANG Y Y, CHEN F D. Screening of salt-tolerance concentration and comparison of salt-tolerance for chrysanthemum and its related taxa. Chinese Journal of Ecology, 2010, 29(3): 467-472. (in Chinese)

[22] 柏軍華, 王克如, 初振東, 陳兵, 李少東. 葉面積測(cè)定方法的比較研究. 石河子大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版), 2005, 23(2): 89-91.

BAI J H, WANG K R, CHU Z D, CHEN B, LI S D. Comparative study on the measure methods of the leaf area. Journal of Shihezi University, 2005, 23(2): 89-91. (in Chinese)

[23] 李志丹, 韓瑞宏, 廖桂蘭, 張美華. 植物葉片中葉綠素提取方法的比較研究. 廣東第二師范學(xué)院學(xué)報(bào), 2011, 31(3): 80-83.

LI Z D, HAN R H, LIAO G L, ZHANG M H. A comparative study on the different extraction techniques about chlorophyll concentration of plant leaves. Journal of Guangdong University of Education, 2011, 31(3): 80-83. (in Chinese)

[24] SU L Y, DAI Z W, LI S H, XIN H P. A novel system for evaluating drough-cold tolerance of grapevines using chlorophyll fluorescence. BMC Plant Biology, 2015, 15(1): 82.

[25] 張殿忠, 汪沛洪, 趙會(huì)賢. 測(cè)定小麥葉片游離脯氨酸的方法. 植物生理學(xué)通訊, 1990(4): 62-65.

ZHANG D Z, WANG P H, ZHAO H X. Determination of the content of free proline in wheat leaves. Plant Physiology Communications, 1990(4): 62-65. (in Chinese)

[26] 李合生, 孫群, 趙世杰, 章文華. 植物生理實(shí)驗(yàn)原理與技術(shù). 北京: 高等教育出版社, 2006: 169-170.

LI H S, SUN Q, ZHAO S J, ZHANG W H. Principles and Techniques of Plant Physiological Experiment. Beijing: Higher Education Press, 2006: 169-170. (in Chinese)

[27] 王學(xué)奎. 植物生理生化實(shí)驗(yàn)原理和技術(shù). 北京: 科學(xué)出版社, 2006: 167-168, 172-173.

WANG X K. Principles and Techniques of Plant Physiological Experiment. Beijing: Science Press, 2006: 167-168, 172-173. (in Chinese)

[28] 鄭書華, 蔡萍. 電感耦合等離子質(zhì)譜法測(cè)定茶葉中的多種微量元素. 分析儀器, 2018, 220(5): 40-44.

ZHENG S H, CAI P. Determination of trace elements in tea by ICP-MS. Analytical Instrumentation, 2018, 220(5): 40-44. (in Chinese)

[29] 劉德興, 荊鑫, 焦娟, 魏珉, 隋申利, 趙利華, 李艷瑋, 趙娜, 鞏彪, 史慶華. 嫁接對(duì)番茄產(chǎn)量、品質(zhì)及耐鹽性影響的綜合評(píng)價(jià). 園藝學(xué)報(bào), 2017,44(6): 1094-1104.

LIU D X, JING X, JIAO J,WEI M, SUI S L, ZHAO L H, LI Y W, ZHAO N, GONG B, SHI Q H. Comprehensive evaluation of yield, quality and salt stress tolerance in grafting tomato. Acta Horiculture Sinica, 2017, 44(6): 1094-1104. (in Chinese)

[30] 李彥, 張英鵬, 孫明, 高弼模. 鹽分脅迫對(duì)植物的影響及植物耐鹽機(jī)理研究進(jìn)展. 中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào), 2008, 24(1): 258-263.

LI Y, ZHANG Y P, SUN M, GAO B M. Research advance in the effects of salt stress on plant and the mechanism of plant resistance. Chinese Agricultural Science Bulletin, 2008, 24(1): 258-263. (in Chinese)

[31] 管志勇, 陳發(fā)棣, 滕年軍, 陳素梅, 劉浦生. 5種菊花近緣種屬植物的耐鹽性比較. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué), 2010, 43(4): 787-794.

GUAN Z Y, CHEN F D, TENG N J, CHEN S M, LIU P S. Study on the NaCl tolerance in five plant species fromand its relatives. Scientia Agricultura Sinica, 2010, 43(4): 787-794. (in Chinese)

[32] 張金林, 李惠茹, 郭姝媛, 王鎖民, 施華中, 韓慶慶, 包愛科, 馬清. 高等植物適應(yīng)鹽逆境研究進(jìn)展. 草業(yè)學(xué)報(bào), 2015, 24(12): 220-236.

ZHANG J L, LI H R, GUO S Y, WANG S M, SHI H Z, HAN Q Q, BAO A K, MA Q. Research advances in higher plant adaptation to salt stress. Acta Prataculturae Sinica, 2015, 24(12): 220-236. (in Chinese)

[33] Colla G, Rouphael Y, Rea E, Cardarelli M.Grafting cucumber plants enhance tolerance to sodium chloride and sulfate salinization. Scientia Horticulturae, 2012, 135: 177-185.

[34] 楊立飛, 朱月林, 胡春梅, 劉正魯, 張古文. NaCl脅迫對(duì)嫁接黃瓜膜脂過氧化、滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)含量及光合特性的影響. 西北植物學(xué)報(bào), 2006, 26(6): 1195-1200.

YANG L F, ZHU Y L, HU C M, LIU Z L, ZHANG G W. Effects of NaCl stress on the contents of the substances regulating membrane lipid oxidation and osmosis and photosynthetic characteristics of grafted cucumber. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica, 2006, 26(6): 1195-1200. (in Chinese)

[35] 韓萌. 混合鹽堿脅迫對(duì)7種禾種子萌發(fā)及生理特性的影響[D]. 哈爾濱: 哈爾濱師范大學(xué), 2013.

HAN M. Effects of saline-alkaloid stress on the seed germination and physiological characteristics of seven grass seeds [D]. Harbin: Harbin Normal University, 2013. (in Chinese)

[36] 陳淑芳, 朱月林, 劉友良, 李式軍. NaCl脅迫對(duì)番茄嫁接苗保護(hù)酶活性、滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)含量及光合特性的影響. 園藝學(xué)報(bào), 2005, 32(4): 609-613.

CHEN S F, ZHU Y L, LIU Y L, LI S J. Effects of NaCl stress on activities of protective enzymes, contents of osmotic adjustment substances and photosynthetic characteristics in grafted tomato seedlings. Acta Horiculture Sinica, 2005, 32(4): 609-613. (in Chinese)

[37] LLOPEZ-SERRANO L, CANET-SANCHIS G, SELAK G V, PENELLA C, SAN BAUTISTA A, LOPEZ-CALARZA S, CALATAYUD A. Physiological characterization of a pepper hybrid rootstock designed to cope with salinity stress. Plant Physiology and Biochemistry, 2020, 148: 207-219.

[38] ZHEN A, BIE Z L, HUANG Y, LIU Z X, LI Q. Effects of scion and rootstock genotypes on the anti-oxidant defense systems of grafted cucumber seedlings under NaCl stress. Soil Science and Plant Nutrition, 2010, 56(2): 263-271.

[39] WANG N, QIAO W Q, LIU X H, SHI J B, XU Q H, ZHOU H, YAN G T, HUANG Q. Relative contribution of Na+/K+, homeostasis, photochemical efficiency and antioxidant defense system to differential salt tolerance in cotton (L.) cultivars. Plant Physiology and Biochemistry, 2017, 119: 121-131.

[40] ASHRAF M, FOOLAD M R. Roles of glycine betaine and proline in improving plant abiotic stress resistance. Environmental and Experimental Botany, 2005, 59(2): 206-216.

[41] 楊凡. 硅肥和蟲害及機(jī)械損傷對(duì)油菜抗蟲性的影響[D]. 呼和浩特: 內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué), 2019.

YANG F. Effects of silicon fertilizer, pests and mechanical damage on insect resistance of rape[D]. Hohot: Inner Mongolia Agricultural University, 2019. (in Chinese)

[42] MUNNS R, TESTER M. Mechanisms of salinity tolerance. Annual Review of Plant Biology, 2008, 59(1): 651-681.

[43] BALIBREA M E, DELL'AMICO J, BOLAR IN M C, PEREZ- ALFOCEA F. Carbon partitioning and sucrose metabolism in tomato plants growing under salinity. Physiologia Plantarum, 2000, 110(4): 503-511.

[44] YEO A, FLOWERS T. Plant Solute Transport. Blackwell Publishing Ltd., Oxford, UK, 2007.

[45] 李春燕, 楊廷楨, 王新平, 王淑婷, 王騫, 蔡華成, 杜學(xué)梅, 高敬東, 弓桂花. 蘋果矮化中間砧對(duì)接穗品種枝條輸導(dǎo)組織解剖結(jié)構(gòu)的影響. 西北農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 2019, 28(3): 404-411.

LI C Y, YANG T Z, WANG X P, WANG S T, WANG Q, CAI H C, DU X M, GAO J D, GONG G H. Effect of apple dwarf rootstock on anatomy structure of conducting tissue in branch of scion. Acta Agriculturae Boreali-occidentalis Sinica,2019, 28(3): 404-411. (in Chinese)

[46] 陽(yáng)燕娟, 郭世榮, 于文進(jìn). 嫁接對(duì)鹽脅迫下西瓜幼苗體內(nèi)離子和內(nèi)源激素含量與分布的影響. 西北植物學(xué)報(bào), 2015, 35(3): 80-87.

YANG Y J, GUO S R, YU W J. Effect of rootstock-grafting on the contents and distributions of ions and endogenous hormones in watermelon seedlings under NaCl stress. Acta Botanica Boreali- Occidentalia Sinica, 2015, 35(3): 80-87. (in Chinese)

[47] COBAN A, AKHOUNDNEJAD Y, DERE S, DASGAN H Y. Impact of salt-tolerant rootstock on the enhancement of sensitive tomato plant responses to salinity. Hortscience, 2020, 55(1): 35-39.

[48] HUANG Y, BIE Z L, LIU P Y, NIU M L, ZHEN A, LIU Z X, LEI B, GU D G, LU C, WANG B T. Reciprocal grafting between cucumber and pumpkin demonstrates the roles of the rootstock in the determination of cucumber salt tolerance and sodium accumulation. Scientia Horticulturae, 2013, 149: 47-54.

[49] 王幼群. 植物嫁接系統(tǒng)及其在植物生命科學(xué)研究中的應(yīng)用. 科學(xué)通報(bào), 2011, 56(30): 2478-2485.

WANG Y Q. Plant grafting and its application in biological research. Chinese Science Bulletin, 2011, 56(30): 2478-2485. (in Chinese)

[50] 孫敬爽, 李少峰, 董辰希, 孫長(zhǎng)忠. 嫁接植物體中RNA分子長(zhǎng)距離傳遞研究進(jìn)展. 林業(yè)科學(xué), 2014, 50(11): 158-165.

SUN J S, LI S F, DONG C X, SUN C Z. Research progress and prospect of long distance transmission of RNA molecules in grafted plants. Scientia Silvae Sinicae, 2014, 50(11): 158-165. (in Chinese)

[51] 孫靜宇. 南瓜提高黃瓜嫁接苗耐鹽性的機(jī)理及相關(guān)microRNAs鑒定[D]. 武漢: 華中農(nóng)業(yè)大學(xué), 2019.

SUN J Y. The mechanism ofincreasing salt tolerance of grafted cucumber seedling and identification of related microRNAs [D]. Wuhan: Huazhong Agricultural University, 2019. (in Chinese)

Effects of Rootstock and Scion Interaction on Salt Tolerance of Grafted Chrysanthemum Seedlings

MENG Rui, LIU Ye, ZHAO Shuang, FANG WeiMin, JIANG JiaFu, CHEN SuMei, CHEN FaDi, GUAN ZhiYong

College of Horticulture, Nanjing Agricultural University/State Key Laboratory of Crop Genetics and Germplasm Enhancement/Key Laboratory of Landscaping, Ministry of Agriculture and Rural Affairs, Nanjing 210095

【】The objective of this study is to investigate the effects ofgrafted with chrysanthemum on the salt tolerance and its interaction between the rootstocks and scions. 【】The physiological indexes, including the content of Na+and K+in the leaves and stems of chrysanthemum cutting seedlings Zhongshan Yanhong (self-rooted seedlings), self-root grafted cutting seedlings (self-grafted seedlings) androotstock grafted cutting seedlings (hetero-root grafted seedlings), were measured under 120 mmol·L-1NaCl stress. 【】Under NaCl stress, the damage symptom rate of hetero-root grafted seedling leaves was lower than that of self-rooted and self-grafted seedlings. The relative content of conductivity, malondialdehyde, and proline of hetero-root grafted seedlings were lower than those of self-rooted and self-grafted seedlings, and the content of chlorophyll, superoxide dismutase (SOD), and peroxidase (POD) were higher than self-rooted and self-grafted seedlings. The content of Na+and Na+/K+ratios of the middle and lower leaves of the hetero-root grafted seedlings showed the lowest, followed by the self-grafted seedlings, and the highest index was recorded in the self-rooted seedlings. There was no significant difference in Na+content between the upper leaves of self-grafted seedlings and hetero-root grafted seedlings; the Na+content of the stems above the interface of hetero-root grafted seedlings was significantly lower than that of self-grafted and self-rooted seedlings, while there was no significant difference in the Na+content of the upper stems of self-grafted and self-rooted seedlings; the Na+concentration and Na+/K+ofstem segments below the interface were twice fold than that of the stem segments of chrysanthemum.【】The ion transported from self-grafted seedlings of chrysanthemum to the middle and lower leaves was significantly less than that of self-rooted seedlings. The results indicated that after grafting chrysanthemum withas a rootstock, the higher Na+enrichment capacity of rootstock reduced the accumulation of Na+in the upper part of the grafting interface, while hetero-root grafted seedlings showed stronger photosynthetic performance and antioxidant enzyme activity. Therefore, the improvement of salt tolerance of hetero-root grafted seedlings withas rootstock was the combined effect of rootstock healing leading to the reduction of ions transported upward to the leaves and the accumulation ofrootstock with more Na+on the rootstock.

grafting; chrysanthemum;; physiological index; Na+; K+; salt tolerance

10.3864/j.issn.0578-1752.2021.03.016

2020-05-14;

2020-08-02

國(guó)家重點(diǎn)研發(fā)計(jì)劃(2019YFD1001500)、江蘇省農(nóng)業(yè)科技自主創(chuàng)新資金(CX(18)2020)

孟蕊,E-mail:2017104098@njau.edu.cn。通信作者管志勇,E-mail:guanzhy@njau.edu.cn

(責(zé)任編輯 趙伶俐)

猜你喜歡
根苗耐鹽性嫁接苗
綠豆種質(zhì)資源苗期耐鹽性鑒定及耐鹽種質(zhì)篩選
小麥耐鹽性綜合評(píng)價(jià)方法的研究進(jìn)展
南瓜砧木嫁接對(duì)黃瓜幼苗生長(zhǎng)及鎘積累特性的影響
杉木不同育苗方式苗木生長(zhǎng)比較分析
基于葉綠體DNA條形碼的竹子種屬聚類分析與耐鹽性鑒定
不同類型水稻芽期的耐鹽性差異
嫁接苗回栽裝置的發(fā)展現(xiàn)狀及展望
砧木對(duì)霞多麗和美樂葡萄生長(zhǎng)、果實(shí)產(chǎn)量和品質(zhì)的影響
苗木類型對(duì)造林早期楓香幼樹生長(zhǎng)的影響
多效唑提高西瓜砧木和嫁接苗質(zhì)量
北流市| 富民县| 达尔| 容城县| 格尔木市| 永春县| 九龙坡区| 肥东县| 舞阳县| 共和县| 永康市| 颍上县| 海盐县| 贵港市| 平果县| 浪卡子县| 浮山县| 鄂托克旗| 抚宁县| 西和县| 横山县| 渝北区| 个旧市| 茂名市| 安图县| 门头沟区| 花莲市| 株洲县| 昌平区| 惠州市| 滕州市| 黄骅市| 大邑县| 健康| 通许县| 静乐县| 曲阜市| 桂林市| 嘉禾县| 义马市| 邵阳县|