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產(chǎn)芽孢乳酸菌Lsp-1 的抗逆性及產(chǎn)酸產(chǎn)消化酶能力分析

2021-03-11 07:02:28馬林峰武朝霞陳麗琴冀霞張慧琴韓克光古少鵬霍乃蕊
關鍵詞:膽鹽酸乳親本

馬林峰,武朝霞,陳麗琴,冀霞,張慧琴,韓克光,古少鵬,霍乃蕊

(山西農(nóng)業(yè)大學 動物醫(yī)學學院,山西 太谷030801)

畜禽養(yǎng)殖過程中,微生物飼料添加劑具有增強免疫力、抑制病原菌、無殘留、無抗藥性、促生長、安全無副作用等諸多優(yōu)點,逐漸成為抗生素的理想替代[1,2]。利用益生菌是一種經(jīng)濟有效的消炎療法[2~4],近年來主要用于結(jié)腸炎[3,4]、炎性腸?。?,5]等炎性疾病以及過敏性疾?。?~8]的治療。

嗜酸乳桿菌(Lactobacillus acidophilus,L. a)是最常見的一種益生菌[9],自然存在于哺乳動物口腔、腸道和生殖道黏膜表面[10],是我國可用于嬰幼兒食品以及保健食品的菌種,也是農(nóng)業(yè)部規(guī)定的可用于飼料添加的安全菌種。L. a在乳酸菌家族中極受重視,因其耐酸性強,能在其它乳酸菌不能生長的低pH、高膽鹽胃腸環(huán)境中存活而被譽為第三代酸奶發(fā)酵劑菌種[11],通過合成乳酸、抗菌素等發(fā)揮多種益生功能,并在體內(nèi)通過調(diào)節(jié)Treg-Th17 細胞平衡而對T 細胞介導的炎性疾病具有免疫調(diào)節(jié)[8,12]、改善骨質(zhì)的作用[9]。

乳酸菌,即使是嗜酸乳桿菌,在定植腸道之前大部分菌體會失活,而芽孢是抗逆性最強的生命形式,所以產(chǎn)芽孢乳酸菌的分離篩選及育種始終是研究的熱點。細胞融合是一種安全的定向微生物育種方法,將嗜酸乳桿菌與產(chǎn)芽孢菌融合是獲得產(chǎn)芽孢乳桿菌的一條有效途徑,并且融合子將整合兩親本菌株的優(yōu)良性狀。地衣芽孢桿菌(Bacillus licheniformis,B. lich)也是農(nóng)業(yè)部《飼料添加劑品種目錄》規(guī)定的安全菌種,其抗逆性強,并且產(chǎn)消化酶的能力也強,是重要的整腸生菌種,可替代抗生素用于養(yǎng)殖動物腸道疾病的治療。

本研究將探討嗜酸乳桿菌和地衣芽孢桿菌融合形成的芽孢乳桿菌Lsp-1 的耐酸耐膽鹽能力、產(chǎn)酸能力、產(chǎn)丁二酮能力、產(chǎn)蛋白酶和淀粉酶能力以及膽固醇清除能力,探討細胞融合對上述能力的影響,為Lsp-1 在畜牧養(yǎng)殖、疾病治療、微生態(tài)制劑生產(chǎn)、飼料青貯、飼料添加劑、環(huán)境治污、生物有機肥等領域的應用提供理論依據(jù),也為芽孢乳酸菌育種提供新的可行方法。

1 材料和方法

1.1 菌株

芽孢乳桿菌Lsp-1 為遺傳穩(wěn)定的地衣芽孢桿菌和嗜酸乳桿菌的融合子,由山西農(nóng)業(yè)大學動物醫(yī)學學院衛(wèi)檢實驗室專利方法育種而成[13];嗜酸乳桿菌CICC 20248 購自中國工業(yè)微生物菌種保藏管理中心;地衣芽孢桿菌BL20386 無毒菌株從整腸生膠囊中分離純化。

1.2 耐酸耐膽鹽能力測定

取對數(shù)生長期L. a、B. lich和Lsp-1 的菌液各1 mL,離心并洗滌菌體(3 000 r·min-1,5 min),生理鹽水重懸,分成4 等份,每份加入1 mL pH 2.0 的MRS 培養(yǎng)基混勻,第1 份直接活菌計數(shù),其余3 份分別37 ℃靜置培養(yǎng)1.5、2.0、2.5 h 后計數(shù)。計數(shù)時取10-6,10-7,10-8共3 個稀釋度,每個稀釋度3 皿,培養(yǎng)基為pH 6.5 的MRS 固體培養(yǎng)基,37 ℃恒溫培養(yǎng)2 d 后進行菌落計數(shù)。耐膽鹽能力測定操作同上,只是將pH 2.0 的MRS 培養(yǎng)基換成牛膽鹽濃度為0.3%的MRS 培養(yǎng)基。存活率按式(1)計算。

1.3 產(chǎn)乳酸能力分析

取活化好的L. a及Lsp-1 培養(yǎng)液,以5%(V∶V)的接種量接種于10 mL MRS 液體培養(yǎng)基(pH 6.5)的試管中,37 ℃恒溫振蕩培養(yǎng),10 h 時各取一支試管滴加溴甲酚紫指示劑,根據(jù)指示劑變色情況進行定性分析;另每隔12 h 取3 支試管,以NaOH 滴定法測定并按式(2)計算產(chǎn)乳酸量,式中V 表示消耗的氫氧化鈉的體積(mL);90.08 代表乳酸的摩爾質(zhì)量[14]。

1.4 產(chǎn)蛋白酶能力分析

制備粗酶液:將活化的對數(shù)生長期菌液以體積 比3% 接 種 至MRS 改 良 酪 蛋 白 培 養(yǎng) 基 中[14],37 ℃培養(yǎng)16 h 后,離心(4 200 r·min-1,15 min),上清液即胞外粗酶液。制備胞內(nèi)粗酶液時,離心收集菌體并用與原培養(yǎng)液等體積的乙酸-乙酸鈉緩沖液(pH 3.6,測酸性蛋白酶)或磷酸氫二鈉-檸檬酸緩沖液(pH 7.2,測中性蛋白酶)重懸菌體并超聲破碎處理(功率200 W,200 次,每次3 s,間隔3 s),離心收集上清液。

制作酪氨酸標準曲線:配置濃度分別為0、20、40、60、80、100 μg·mL-1的酪氨酸溶液,各取1 mL于6 支試管,每管加入0.4 mol·L-1碳酸鈉5 mL 和2 倍稀釋的福林試劑1 mL,40 ℃發(fā)色20 min 后測OD660值。以各管OD660減去1 號管OD660所得的凈OD660為橫坐標,酪氨酸濃度為縱坐標,制作標準曲線。

酶活測定:取試管2 支,各加粗酶液1 mL,40 ℃預熱2 min,加入預熱的2% 酪蛋白溶液1 mL,40 ℃10 min,立即 加入0.4 mol·L-1三氯乙酸2 mL 終止反應,水浴中保溫20 min,離心取上清,吸取1 mL 分別加入3 支試管,再加入碳酸鈉溶液和福林試劑,操作同標準曲線制作。空白管在加酪蛋白之前先加0.4 mol·L-1三氯乙酸2 mL 酶滅活,其余操作同粗酶液。

在40 ℃下每分鐘水解酪蛋白產(chǎn)生1 μg 酪氨酸所需的酶量,定義為1 個蛋白酶活力單位,按式(3)計算,式中A 為樣品凈OD660值對應標準曲線的酪氨酸微克數(shù);N 為粗酶液稀釋倍數(shù);4 表示4 mL 反應液取出1 mL 測定;10 表示反應10 min。

1.5 產(chǎn)淀粉酶能力分析

各菌株活化后以牙簽點種法接種于淀粉瓊脂平板上,37 ℃培養(yǎng)24 h,用碘熏蒸顯色,測定水解透明圈直徑(H)與菌落直徑(C),計算H·C-1值。

1.6 產(chǎn)丁二酮能力分析

15 μL 丁二酮標準液用蒸餾水定容至500 mL,分別吸取0、2、4、6、8、10 mL 于6 支試管,蒸餾水補足至10 mL,各管吸取5 mL 加入8%三氯乙酸溶液,配置成濃度分別為0、3、6、9、12、15 μL·mL-1的丁二酮溶液。另取6 支試管做空白管,操作同上。每管再加入1%鄰苯二胺溶液0.5 mL,空白管不加,搖勻后黑暗處反應30 min 后,反應管和空白管分別加2.0、2.5、4.0 mol·L-1鹽酸終止反應,以相應的空白管作參比,在波長335 nm 處測吸光度值。以丁二酮濃度為橫坐標,吸光度值為縱坐標制作標準曲線。

各菌株以0.5%接種量接種于MRS 培養(yǎng)12 h后,用三氯乙酸沉淀蛋白,離心取上清,加1%鄰苯二胺避光反應30 min,加4.0 mol·L-1鹽酸終止,紫外分光光度計測定OD335,根據(jù)標準曲線求得丁二酮含量。

1.7 膽固醇清除率測定

分別吸取4 mL 膽固醇濃度分別為0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5 g·L-1的冰乙酸溶液于6 支具塞試管中,加入2 mL 鐵礬顯色液,混勻后于560 nm處測OD 值,繪制膽固醇標準曲線。將各菌株等量接種于含1 g·L-1膽固醇的MRS 培養(yǎng)基中,培養(yǎng)60 h,吸取0.2 mL 加入冰乙酸4.8 mL,室溫孵育10 min,離心取上清,加入2 mL 鐵礬顯色液,立即搖勻冷卻到室溫,測OD560值,根據(jù)標準曲線求得膽固醇含量,按式(4)計算膽固醇清除率,式中A 代表各試驗菌株培養(yǎng)液上清的OD560,B 代表空白對照(未接種培養(yǎng)液)的OD560。

1.8 數(shù)據(jù)統(tǒng)計與分析

數(shù)據(jù)利用SPSS 19.0 軟件進行方差分析,P<0.05 表示差異顯著。

2 結(jié)果與分析

2.1 耐酸耐膽鹽能力

由表1 可見,各菌株的存活率隨著處理時間的延長而降低,培養(yǎng)1.5 h 后,嗜酸乳桿菌、地衣芽孢桿菌和融合子Lsp-1 的存活率分別為6.62%、3.12%和6.15%,可見地衣芽孢桿菌的營養(yǎng)體形式最不耐酸,嗜酸乳桿菌的耐酸能力最強,營養(yǎng)體形式的Lsp-1 的存活率大大高于地衣芽孢桿菌,接近于嗜酸乳桿菌。在選擇性培養(yǎng)基中培養(yǎng)2.0 h和2.5 h 后,Lsp-1 的 存活數(shù)比L.a和B.lich多1 個數(shù)量級,綜合分析,Lsp-1 的耐酸能力比親本菌株的都強。

表1 各菌株在pH=2.0 選擇培養(yǎng)基培養(yǎng)不同時間后的存活數(shù)Table 1 The viable count of bacteria cultured in selective medium(pH=2.0)at different intervals

由表2 可見,各菌株活菌數(shù)的起始數(shù)量級均為108,在含0.3%膽鹽的培養(yǎng)基中處理1.5 h 后,嗜酸乳桿菌的活菌數(shù)降低的最快,數(shù)量級由108降低到106。處理2 h 后,Lsp-1 依然保持在數(shù)量級107,而嗜酸乳桿菌與地衣芽孢桿菌分別降低了3 個和2 個數(shù)量級,處理2.5 h 后,Lsp-1 的存活數(shù)高出兩親本菌株1 到2 個數(shù)量級,說明Lsp-1 的耐膽鹽能力均比兩親本菌株較高。

2.2 產(chǎn)乳酸能力

乳酸是常見的抑菌物質(zhì),具有抑制腸道病原菌生長,促進有益菌增殖的益生作用[15]。由圖1A 可見,Lsp-1 遺傳了地衣芽孢桿菌的芽孢生成能力,可觀察到被孔雀綠綠染的位于菌體中央的芽孢囊和成熟游離的芽孢;圖1B 中,地衣芽孢桿菌(1、2 管)幾乎不變色,Lsp-1(3、4 管)與嗜酸乳桿菌(5、6 管)的培養(yǎng)液使溴甲酚紫明顯變黃。

進一步比較嗜酸乳桿菌和地衣芽孢桿菌的產(chǎn)酸能力,由圖2 可見,在培養(yǎng)前期,Lsp-1 的產(chǎn)酸速率稍低于嗜酸乳桿菌,隨著培養(yǎng)時間的延長,48 h 二者產(chǎn)酸量基本相同,且達到峰值(10.52 g·L-1),說明親本嗜酸乳桿菌的產(chǎn)酸能力經(jīng)過細胞融合后在LSP-1 中沒有丟失或下降。

表2 各菌株在膽鹽濃度0.3%的選擇培養(yǎng)基中培養(yǎng)不同時間后的存活數(shù)Table 2 The viable count of bacteria in selective medium containing 0.3 % bile salt at different intervals

圖1 Lsp-1 孔雀石綠染色鏡檢及三株菌的產(chǎn)酸鑒定Fig.1 Microscopy of Lsp-1 stained by malachite and the acid-producing identification of 3 strains

圖2 嗜酸乳桿菌及產(chǎn)芽孢乳桿菌Lsp-1 的產(chǎn)乳酸曲線Fig.2 Lactic acid-producing curve of L.acidophilus and Lsp-1

2.3 產(chǎn)蛋白酶能力

胞內(nèi)蛋白酶與細胞的催化和調(diào)節(jié)作用有關;胞外蛋白酶則分泌至細胞外作用,降解胞外的氮源或能源物質(zhì)。酸性蛋白酶適合在酸性條件(pH值1.0~5.0)下水解蛋白質(zhì),最適pH 為2.5~5.0;中性蛋白酶的最適作用pH 則介于6.0~7.5。酪氨酸標準曲線回歸方程為Y=94.91X+1.405 9,R2=0.999 3,線性關系良好。由表3 可見,產(chǎn)胞外蛋白酶和胞內(nèi)蛋白酶能力均是:地衣芽孢桿菌>Lsp-1>嗜酸乳桿菌,并且各菌株產(chǎn)胞外中性蛋白酶能力大于產(chǎn)酸性蛋白酶能力,胞內(nèi)酶則相反,各菌株產(chǎn)酸性蛋白酶能力高于產(chǎn)中性蛋白酶能力??梢姡琇sp-1 的產(chǎn)蛋白酶能力介于兩親本菌株之間,各菌株所產(chǎn)胞外酶主要是中性蛋白酶,胞內(nèi)酶主要是酸性蛋白酶。

2.4 產(chǎn)淀粉酶能力

由表4 可見,3 菌株都產(chǎn)淀粉酶,其中地衣芽孢桿菌的透明圈直徑與菌落直徑比最大,嗜酸乳桿菌最小,Lsp-1 介于二者之間(圖3)。

2.5 產(chǎn)丁二酮能力

丁二酮在食品、化工等領域應用廣泛[16],由糖降解產(chǎn)生[17],具有濃郁的奶香風味,是發(fā)酵乳制品重要的特征性風味物質(zhì)。丁二酮質(zhì)量濃度與OD335的線性回歸方程為Y=0.069 5X+0.005 8,R2=0.999 9。在相同培養(yǎng)條件下,培養(yǎng)液中的丁二酮濃度嗜酸乳桿菌為10.25 μg·mg-1,Lsp-1 為8.21 μg·mg-1,地衣芽孢桿菌則沒有檢測到。

2.6 膽固醇清除率

膽固醇標準曲線回歸方程為Y=1.368 8X+0.005 6,R2=0.999 7,線性關系良好,膽固醇含量與吸光度值OD560呈正相關。由圖4 可見,L. a(15.2%)和B. lich(8.9%)均有膽固醇清除能力,但由二者融合所得的Lsp-1,其膽固醇清除能力最高(19.7%),顯著高于兩親本菌株(P<0.05)。

表3 各菌株的胞內(nèi)蛋白酶和胞外蛋白酶產(chǎn)量Table 3 Intracellular and extracellular protease produced by different strains 單位:U·mL-1

表4 融合子及親本菌株的產(chǎn)淀粉酶能力比較Table 4 Amylase-producing ability of parent strains and the fusant

圖3 地衣芽孢桿菌、嗜酸乳桿菌、Lsp-1 產(chǎn)淀粉酶能力比較Fig.3 Comparison of amylase production ability of B.lich,L.a and Lsp-1

圖4 各菌株的膽固醇清除率Fig.4 Cholesterol scavenging rate of each strain

3 討論

原生質(zhì)體融合技術與基因工程技術不同,發(fā)生重組的不是單個基因而是整個基因組,是全基因組水平的分子定向進化,類似于有性繁殖,實現(xiàn)雙親本之間的基因信息交流,是一種快速提高細胞表型的全基因組工程方法[18]。本研究通過原生質(zhì)體融合(細胞融合)賦予嗜酸乳桿菌芽孢生成能力的另一親本菌株——地衣芽孢桿菌,也具有增強機體免疫、維持腸道微生態(tài)環(huán)境、促進動物生長等多種益生功能[19]。地衣芽孢桿菌進入腸道后,通過三重機制抑制病原菌,恢復腸道功能:一是通過生物奪氧,創(chuàng)造對雙歧桿菌、乳酸桿菌等益生菌和正常生理厭氧菌有利的低氧環(huán)境而促進其生長繁殖,并產(chǎn)生乳酸等有機酸類,降低腸道pH,間接抑制其它致病菌生長;二是促進機體產(chǎn)生抗菌物質(zhì),拮抗白色念珠菌(Candida albicans)、葡萄球菌(Staphylococcus)等致病菌的活動;三是通過固本,增強機體的特異性和非特異性免疫,提高養(yǎng)殖動物的抗感染能力。用作飼料添加,對養(yǎng)殖動物腸道細菌感染具有特效,對急性腸炎和急性菌痢療效明顯,使地衣芽孢桿菌自然成為替代抗生素的一種理想選擇,有關Lsp-1 的體內(nèi)外抑菌和動物飼喂試驗將另文報道。

Lsp-1 遺傳了地衣芽孢桿菌的產(chǎn)芽孢能力,賦予其在復雜的胃腸道環(huán)境中可順利到達腸道的能力[15],Lsp-1 芽孢能耐受人工模擬胃液和腸液,在胃液中部分萌發(fā)成營養(yǎng)體形式[20],本研究表明Lsp-1 營養(yǎng)體的耐酸耐膽鹽能力通過細胞融合產(chǎn)生了疊加效應,均高于兩親本菌株,正好為其提供保護,提高過胃能力和存活率,這是任何益生菌或微生態(tài)制劑發(fā)揮作用的先決條件。同時本研究表明Lsp-1 遺傳了嗜酸乳桿菌的產(chǎn)乳酸能力,乳酸是無毒、低成本的多用途化學品,作為添加劑可以控制堆肥過程中的氨氣排放[21]。

產(chǎn)酶性能也是考察優(yōu)良微生態(tài)制劑菌種的一個重要方面,微生物胞外酶可補充動物源性酶的不足[19],降解難以被吸收或利用的大分子物質(zhì),利于提高腸道吸收能力和飼料轉(zhuǎn)化率,促進養(yǎng)殖動物生長,同時對益生菌生長形成正向反饋,建立良性循環(huán)。淀粉酶分解腸道中碳水化合物形成的寡糖,不僅易于吸收,同時也是乳酸菌的促生長因子(益生元)。蛋白酶將蛋白質(zhì)及一些抗營養(yǎng)物質(zhì)水解成肽、氨基酸等小分子物質(zhì),提高了蛋白質(zhì)的可消化性和生物利用度,氨基酸等小分子水解產(chǎn)物又會被微生物吸收利用,促進微生物生長繁殖[22]。腸道環(huán)境適于中性蛋白酶作用,而Lsp-1 主要在腸道定植和發(fā)揮作用,并且Lsp-1 的產(chǎn)中性蛋白酶能力高于產(chǎn)酸性蛋白酶的能力。嗜酸乳桿菌產(chǎn)蛋白酶和淀粉酶的能力較弱,而地衣芽孢桿菌則很強,經(jīng)過融合,Lsp-1 的產(chǎn)蛋白酶能力和產(chǎn)淀粉酶能力均不及親本地衣芽孢桿菌的水平,沒有產(chǎn)生疊加效應。

膽固醇清除能力也是益生菌的益生功能之一,本研究兩親本菌株的膽固醇清除能力在Lsp-1中產(chǎn)生了疊加效應。膽固醇對乳酸菌的生長具有抑制作用[23],Lsp-1 可通過清除周圍環(huán)境中的膽固醇來促進其自身及其它乳酸菌的生長。

4 結(jié)論

嗜酸乳桿菌和地衣芽孢桿菌的融合子Lsp-1兼具了兩親本菌株的優(yōu)良特性,耐酸能力、耐膽鹽能力以及膽固醇清除能力產(chǎn)生了疊加效應而進一步增強,產(chǎn)蛋白酶能力和產(chǎn)淀粉酶能力則介于兩親本菌株之間,產(chǎn)酸能力則與親本菌株嗜酸乳桿菌持平。Lsp-1 用作飼料添加或微生態(tài)制劑制時的高胃腸存活率,為其益生功能的發(fā)揮提供了保障;產(chǎn)消化酶能力可提高飼料利用率,促進動物生長,形成的小分子物質(zhì)也可正反饋作用于益生菌的生長。

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