韓冉,毛鳳鑫,程敦公,李豪圣,劉建軍,曹新有,宋健民,辛明明,郭軍,劉成,劉愛峰
(1.山東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院作物研究所/農(nóng)業(yè)部黃淮北部小麥生物學(xué)與遺傳育種重點實驗室/小麥玉米國家工程實驗室,山東 濟(jì)南 250100;2.中國農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)院,北京 100193)
小麥籽粒淀粉由直鏈淀粉和支鏈淀粉組成,淀粉的合成主要由可溶性淀粉合成酶和顆粒結(jié)合淀粉合成酶負(fù)責(zé)。其中顆粒結(jié)合淀粉合成酶與直鏈淀粉的合成密切相關(guān),該酶又稱Wx蛋白。六倍體普通小麥含有Wx-A1、Wx-B1和Wx-D1三種Wx蛋白亞基,分別由位于染色體7AS、4AL和7DS上的Wx-A1、Wx-B1和Wx-D1基因編碼。同時含有3個Wx蛋白亞基基因的小麥為普通小麥;缺失1或2個Wx蛋白亞基基因的突變體稱為部分糯小麥[1,2];同時缺失3個Wx蛋白亞基基因的突變體稱為糯性小麥[3,4]。糯小麥具有獨(dú)特的高支鏈淀粉和麥谷蛋白,加工特性獨(dú)特,營養(yǎng)品質(zhì)好,是一種新食品開發(fā)的優(yōu)質(zhì)原糧。
糯小麥?zhǔn)且环N新小麥類型,籽粒貯存淀粉中支鏈淀粉含量≥99%。目前,對于糯小麥的研究主要集中于加工品質(zhì)、淀粉結(jié)構(gòu)特征、貯藏淀粉合成機(jī)制等方面[5-8]。雖然六倍體小麥中的3個Wx基因已被克?。?],但這些基因尚不能完全解釋小麥淀粉糯性變異的機(jī)制[10,11]。本研究利用TMT(tandem mass tags)定量蛋白質(zhì)組學(xué)技術(shù),結(jié)合小麥最新基因組(iwgsc_refseqv1.0 2018)注釋信息[12]和UniProt蛋白數(shù)據(jù)庫[13],快速高通量地鑒定2個糯性不同小麥種子中蛋白差異表達(dá)情況,并通過生物信息學(xué)分析方法,對差異表達(dá)蛋白進(jìn)行功能和通路等富集分析,以期挖掘影響籽粒糯性的潛在新基因,為小麥品質(zhì)改良提供理論參考。
全糯性小麥品種濟(jì)糯116(JN116)由山東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院作物研究所培育,其Wx蛋白的Wx-A1、Wx-B1和Wx-D1亞基均為缺失突變型,支鏈淀粉含量接近100%。以非糯性小麥品種濟(jì)麥22(JM22)為對照。供試材料種植于山東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院濟(jì)南試驗基地,收獲后選取飽滿一致的籽粒保存于-80℃?zhèn)溆谩?/p>
1.2.1 種子蛋白提取 稱取適量籽粒樣品至預(yù)冷的研缽中,研磨至粉末,加入4倍體積酚抽提緩沖液(1%蛋白酶抑制劑和2 mmol/L EDTA,10 mmol/L二硫蘇糖醇),超聲裂解。加入等量的Tris平衡酚,5 500×g、4℃離心10 min,加入5倍的0.1 mol/L乙酸銨/甲醇沉淀12 h,分別用甲醇和丙酮進(jìn)行洗滌。用8 mol/L尿素溶解后利用BCA試劑盒測定蛋白濃度。
1.2.2 胰酶酶解 在蛋白溶液中加入二硫蘇糖醇,濃度調(diào)至5 mmol/L,在56℃下放置30 min。加入碘代乙酰胺使其濃度為11 mmol/L,室溫黑暗環(huán)境培養(yǎng)15 min。然后將樣品的尿素濃度稀釋至2 mol/L以下。按照1∶50的質(zhì)量比例(胰蛋白酶∶蛋白)加入胰蛋白酶,37℃消化過夜。然后以1∶100的質(zhì)量比例(胰酶∶蛋白)加入胰蛋白酶并繼續(xù)酶解4 h。
1.2.3 高效液相色譜(HPLC)分級及液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用分析 肽段用高pH反向HPLC分級,然后注入到NSI離子源中進(jìn)行電離,再進(jìn)入Orbitrap Fusion Lumos質(zhì)譜進(jìn)行分析。該試驗由杭州景杰生物科技有限公司完成。
1.3.1 差異蛋白篩選 將各個樣本的相對定量值取log2(以使得數(shù)據(jù)符合正態(tài)分布),然后用雙樣本雙尾t檢驗方法計算兩個樣本中蛋白的差異表達(dá)顯著性(P值)。當(dāng)P<0.05時,以差異表達(dá)倍數(shù)變化超過1.5作為顯著上調(diào)的變化閾值,小于0.67作為顯著下調(diào)的變化閾值。
1.3.2 差異蛋白的注釋及功能分析 利用Uni-Prot-GOA數(shù)據(jù)庫 (http://www.ebi.ac.uk/GOA/)進(jìn)行GO蛋白質(zhì)組注釋。Wolfpsort(https://wolfpsort.hgc.jp/)用于預(yù)測差異表達(dá)蛋白的亞細(xì)胞定位。根據(jù)KEGG網(wǎng)站(http://www.genome.jp/kegg/)分類注釋KEGG通路。采取聚類分析法研究差異蛋白在KEGG通路、蛋白結(jié)構(gòu)域和GO等特定功能上的差異以及關(guān)聯(lián)性[14]。
測序結(jié)果顯示:濟(jì)糯116共獲得5 423個蛋白,濟(jì)麥22共獲得5 417個,根據(jù)蛋白質(zhì)豐度水平差異倍數(shù)為1.5以上且P<0.05的條件對濟(jì)糯116和濟(jì)麥22籽粒質(zhì)譜鑒定獲得的蛋白進(jìn)行篩選,共獲得161個差異表達(dá)蛋白,其中上調(diào)蛋白59個、下調(diào)蛋白102個(圖1)。
圖1 濟(jì)糯116和濟(jì)麥22差異表達(dá)蛋白定量火山圖
對差異蛋白進(jìn)行亞細(xì)胞定位發(fā)現(xiàn),差異蛋白主要集中在葉綠體中,其次為細(xì)胞質(zhì)和細(xì)胞外。細(xì)胞外下調(diào)蛋白數(shù)目(25)遠(yuǎn)大于上調(diào)蛋白數(shù)目(4);在葉綠體、細(xì)胞核、液泡和線粒體中,下調(diào)蛋白的數(shù)目也大于上調(diào)蛋白的數(shù)目(表1)。
表1 差異表達(dá)蛋白的亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)定位分布
對2個小麥品種中鑒定出的161個差異蛋白進(jìn)行GO富集分析,結(jié)果(表2)表明,在生物學(xué)過程中,差異蛋白基因主要富集在代謝過程(metabolic process,56)、細(xì)胞過程(cellular process,44)及單一細(xì)胞生物進(jìn)程(single-organism process,43);單一細(xì)胞生物進(jìn)程、生物調(diào)節(jié)(biological regulation)、對刺激的反應(yīng)(response to stimulus)及定位(localization)中下調(diào)蛋白數(shù)目多于上調(diào)蛋白。在細(xì)胞組成中,差異蛋白基因主要富集在細(xì)胞(cell,29)、細(xì)胞器(organelle,20)中。在分子功能中,差異蛋白基因主要富集在催化活性(catalytic activity,56)和結(jié)合(binding,48)中。在細(xì)胞組成和分子功能中,胞外區(qū)(extracellular region)、分子功能調(diào)節(jié)(molecular function regulator)及營養(yǎng)儲存庫活性(nutrient reservoir activity)中下調(diào)蛋白的數(shù)目遠(yuǎn)大于上調(diào)蛋白,其中營養(yǎng)儲存庫活性的差異蛋白為醇溶蛋白、谷蛋白、燕麥蛋白等種子貯存蛋白(表3)。
表2 差異表達(dá)蛋白在GO二級分類中統(tǒng)計分布
在分子功能中,GO富集分析(圖2)發(fā)現(xiàn)淀粉合成酶活性類[glycogen(starch)synthase activity]的蛋白差異倍數(shù)最大,其次為核糖體RNA N-糖基化酶活性類(rRNA N-glycosylase activity)和RNA糖基化酶活性類(RNA glycosylase activity)蛋白;酶調(diào)控活性類(enzymeregulatoractivity)和分子功能調(diào)控類(molecular function regulator)的蛋白數(shù)目較多,其次為酶抑制活性(enzyme inhibitor activity)、營養(yǎng)儲存庫活性(nutrient reservoir activity)等。
KEGG是連接已知分子間相互作用的信息網(wǎng)絡(luò),如代謝通路、復(fù)合物、生化反應(yīng)等。通過KEGG富集,161個差異蛋白中有36個差異蛋白富集到13個代謝途徑中。顯著富集的有4條代謝途徑(表4),包括核糖體(ribosome)、淀粉和蔗糖代謝(starch and sucrose metabolism)、氮代謝(nitrogen metabolism)和丙氨酸、天冬氨酸和谷氨酸代謝(alanine,aspartate and glutamate metabolism)。其中核糖體代謝途徑中包含10個差異表達(dá)蛋白,這些蛋白均上調(diào)表達(dá);淀粉和蔗糖代謝途徑中有8個差異表達(dá)蛋白,其中6個上調(diào),2個下調(diào);氮代謝途徑中包含3個下調(diào)蛋白;丙氨酸、天冬氨酸和谷氨酸代謝中包含4個下調(diào)蛋白。
表3 營養(yǎng)儲存庫活性類相關(guān)差異表達(dá)蛋白
圖2 差異表達(dá)蛋白在GO功能分類中的分子功能富集分布?xì)馀輬D
對于差異表達(dá)蛋白的結(jié)構(gòu)域進(jìn)行富集分析(圖3)發(fā)現(xiàn),上調(diào)蛋白質(zhì)與淀粉合酶、催化結(jié)構(gòu)域(starch synthase,catalytic domain)、核糖體蛋白L7Ae/L30e/S12e/Gadd45(ribosomal protein L7Ae/L30e/S12e/Gadd45)、50S核糖體蛋白L30e-樣(50S ribosomal protein L30e-like)、糖基轉(zhuǎn)移酶家族1(glycosyltransferase,family 1)有關(guān)。下調(diào)的差異蛋白與雙功能抑制劑/植物脂質(zhì)轉(zhuǎn)移蛋白/種子存儲螺旋結(jié)構(gòu)域(bifunctional inhibitor/plant lipid transfer protein/seed storage helical domain)及雙功能胰蛋白酶/α-淀粉酶抑制劑螺旋結(jié)構(gòu)域(bi-functional trypsin/alpha-amylase inhibitor helical domain)等有關(guān)。
圖3 濟(jì)糯116與濟(jì)麥22差異表達(dá)蛋白的蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)域富集分析
通過KEGG分析發(fā)現(xiàn)淀粉和蔗糖代謝通路(starch and sucrose metabolism)中所涉及到的差異基因有8個,2個為下調(diào)蛋白(圖4綠色部分),其登錄號為A0A1D6BU17和Q9FUU6;6個為上調(diào)蛋白(紅色部分),分別為A0A1D6BW01、A0A341XU21、Q2WGB1、A0A341V6U2、A0A341VM83、A0A1D5U5L3,其中A0A1D6BW01、A0A341XU21和Q2WGB1為淀粉合成酶(starch synthase);A0A341V6U2、A0A341VM83為α-1,4葡聚糖磷酸化酶L同工酶(alpha-1,4 glucanphosphorylase L isozyme);A0A1D5U5L3為1,4-α-葡聚糖分支酶(1,4-alpha-glucan-branching enzyme)(表4)。
種子發(fā)育和成熟的過程也是貯藏物質(zhì)逐漸累積的過程[15]。種子內(nèi)的貯藏物質(zhì)主要是蛋白質(zhì)、脂肪、糖類及其他含氮物。本研究利用TMT技術(shù)對糯性小麥濟(jì)糯116和非糯性小麥濟(jì)麥22的成熟籽粒進(jìn)行蛋白組分析,共獲得161個差異表達(dá)蛋白,其中上調(diào)蛋白59個,下調(diào)蛋白102個。對差異蛋白進(jìn)行亞細(xì)胞定位發(fā)現(xiàn),位于葉綠體的差異蛋白數(shù)目最多。對差異蛋白進(jìn)行功能分析表明,參與淀粉合成的蛋白差異倍數(shù)最大,這與兩個供試品種在淀粉組成上存在較大差異有關(guān)。另外,核糖體代謝途徑及淀粉和蔗糖代謝途徑中的差異蛋白最多,表明除淀粉和蔗糖代謝外,核糖體代謝也可能參與小麥糯性機(jī)制。
貯藏蛋白多存在于胚乳,包括麥谷蛋白、醇溶蛋白、燕麥蛋白、球蛋白等。貯藏蛋白與營養(yǎng)品質(zhì)及食品加工品質(zhì)密切相關(guān)[16]。差異蛋白分析發(fā)現(xiàn)營養(yǎng)儲存庫活性類相關(guān)差異表達(dá)蛋白包含多種貯藏蛋白(表3),其中P10387(高分子量麥谷蛋白亞基DY10)和A0A1D5S346(γ-醇溶蛋白)的表達(dá)量上調(diào),表明濟(jì)糯116籽粒中γ-醇溶蛋白和DY10的蛋白含量高于濟(jì)麥22。但α-醇溶蛋白(A0A0K2QJX7、J7HT09、A0A0E3Z6M6、I0IT52和A0A0E3Z7G8)、燕麥蛋白(A0A1D6DC72和A0A341XLT1)等蛋白的含量低于濟(jì)麥22。
圖4 淀粉合成通路中的差異蛋白
貯藏蛋白的生物合成依賴于氨基酸的合成和氮代謝[17]。谷氨酰胺與谷氨酸是氨基酸生物合成的基礎(chǔ)物質(zhì),而谷氨酰胺合成酶(GS)在銨基轉(zhuǎn)換為谷氨酰胺和谷氨酸的過程中發(fā)揮重要作用[18]。本研究發(fā)現(xiàn)差異蛋白中參與氨基酸代謝和氮代謝的蛋白均下調(diào)表達(dá),且谷氨酰胺合成酶(Q6RUJ0)的表達(dá)量也下調(diào)。這表明在種子成熟后,濟(jì)糯116的貯藏蛋白合成量低于濟(jì)麥22。
在造粉體內(nèi),淀粉的合成是由ADPG焦磷酸化酶(EC 2.7.7.27)、淀粉合成酶(EC 2.4.1.21)、顆粒結(jié)合型淀粉合成酶(EC 2.4.1.242)、淀粉分支酶(EC 2.4.1.18)和淀粉去分支酶(EC 2.4.1.41)等多種酶協(xié)同作用,通過復(fù)雜的途徑完成的[19]。其中淀粉分支酶是引入α-1,6分支鍵的唯一酶,在支鏈淀粉合成中起著重要作用,并與其他淀粉合成酶一起完成對淀粉多聚體的精細(xì)修剪[20]。顆粒結(jié)合型淀粉合成酶(EC 2.4.1.242)與淀粉粒特異性結(jié)合,使合成的直鏈淀粉保持未分支狀態(tài)。本研究對糯性小麥濟(jì)糯116和非糯性小麥濟(jì)麥22蛋白組學(xué)比較發(fā)現(xiàn)淀粉分支酶(EC 2.4.1.18)的量上調(diào),上調(diào)比率為1.810(A0A1D5U5L3);而顆粒結(jié)合型淀粉合成酶的量下調(diào),下調(diào)比率分別為0.229(A0A1D6BU17)和0.308(Q9FUU6)。濟(jì)糯116的Wx蛋白的Wx-A1、Wx-B1、Wx-D1亞基均缺失,這是導(dǎo)致顆粒結(jié)合型淀粉合成酶的量下調(diào)及支鏈淀粉含量上升的主要原因。除此以外,淀粉分支酶量的增加也是導(dǎo)致支鏈淀粉含量增加的一個原因。