林萍 王明元 李雨晴 劉建福, 張華英 林思鍛
摘 ?要:尖孢鐮刀菌(Fusarium oxysporum f. sp. Cubense, Foc)引起的香蕉枯萎病是我國香蕉的主要病害之一,嚴重影響香蕉的產量和品質。TGA防御反應基因在香蕉應對尖孢鐮刀菌脅迫的應答轉錄調控過程中至關重要。本研究以擬南芥TGA轉錄因子家族成員蛋白為查詢序列,在香蕉基因組數據庫中Blast篩選出TGA轉錄因子家族成員,并對該家族成員進行生物信息學分析。共鑒定得到9個香蕉TGA家族成員,分別命名為MaTGA1~MaTGA9;香蕉TGA家族蛋白富含酸性氨基酸,大部分蛋白以α螺旋為主;亞細胞定位主要在細胞核內。進化樹分析表明,香蕉MaTGA轉錄因子家族的9個成員可分為Class Ⅰ和Class Ⅱ兩類,基因結構及功能結構域的分布情況也呈現(xiàn)出高度一致。進一步通過RT-qPCR分析發(fā)現(xiàn),MaTGA2、MaTGA3和MaTGA8在香蕉枯萎病菌侵染后的‘威廉斯(易感?。┘啊咸禳S(抗?。┲芯@著下調表達,MaTGA1、MaTGA6、MaTGA7和MaTGA9均呈現(xiàn)先下降后上升的趨勢;然而MaTGA4和MaTGA5僅在‘威廉斯中上調表達,以上結果表明MaTGA2、MaTGA3和MaTGA8在香蕉抗枯萎病中發(fā)揮重要的生物學功能。本研究結果為香蕉TGA轉錄因子功能挖掘奠定理論基礎。
關鍵詞:香蕉;TGA轉錄因子;生物信息學分析;基因表達分析
Abstract: Banana fusarium wilt, caused by Fusarium oxysporum f. sp. Cubense (Foc), is one of the major diseases in banana-producing areas in China, seriously affects the yield and quality of bananas. The transcription and its regulation of the TGA defense response gene is a crucial role in banana responses to the challenge of Fusarium oxysporum stress. In this study, using the TGA transcription factor family members protein sequences from Arabidopsis as the query, the banana TGA transcription factor family members were blasted in the banana genome database and analyzed using bioinformatics analysis. A total of 9 family members were identified, named as MaTGA1~ MaTGA9. TGA family proteins of banana was rich in acidic amino acids, and most of the proteins were alpha helices. The subcellular location was mainly in the nucleus. The nine MaTGA transcription factor members could be classified into two groups, Class Ⅰ and Class Ⅱ, by phylogenetic tree analysis. The distribution of gene structure and functional domains also showed a high degree of consistency. The RT-qPCR analysis showed that MaTGA2, MaTGA3, and MaTGA8 were significantly down-regulated both in Williams (susceptible) and Nantianhuang (disease-resistant) after Foc infection, and the gene espression of MaTGA1, MaTGA6, MaTGA7 and MaTGA9 declined first and then rose, however MaTGA4 and MaTGA5 were only up-regulated in William, indicating that MaTGA2, MaTGA3, and MaTGA8 played important biological functions in banana resistance to wilt. The results of this study would lay a theoretical foundation for the function excavation of banana TGA transcription factors.
Keywords: banana (Musa spp.); TGA transcription factor; gioinformatic analysis; gene expression analysis
香蕉(Musa spp.)與柑橘、葡萄、蘋果共同被聯(lián)合國糧農組織列為世界四大水果。但近年來,香蕉枯萎病在世界大部分的種植區(qū)域爆發(fā),導致香蕉種植面積急劇減少,香蕉市場受到嚴重打擊[1-2],因此探究香蕉枯萎病防御反應的分子機理對于枯萎病的防治意義重大。
TGA轉錄因子是bZIP(basic leucine zipper,bZIP)家族的D亞族[3],能夠特異性識別并結合TGACG為核心的激活序列(activation sequence, as-1),調節(jié)下游靶標基因的表達,在調節(jié)植株抗性及花器官發(fā)育中發(fā)揮著重要作用[4]。研究表明as-1是PR-1中啟動子的順式作用元件,而水楊酸(salicylic acid, SA)介導的信號轉導途徑中病程相關基因NPR1可以增強TGA與PR的結合,提高植物抗病能力[5]。因此植物受到病害時SA積累,NPR1解聚成單體在細胞核內與TGA因子相互作用,促進PR基因的表達,提高植物的抗病性[6-7]。
自TGA轉錄因子首次在煙草發(fā)現(xiàn)后,擬南芥中分離鑒定出10個TGA轉錄因子,可分為5類:第Ⅰ類AtTGA1和AtTGA4、第Ⅱ類AtTGA2、AtTGA5、AtTGA6、第Ⅲ類AtTGA3和AtTGA7、第Ⅳ類AtTGA9和AtTGA10、第Ⅴ類AtPAN[8]。其中AtTGA1-AtTGA7基因廣泛參與植物抗病反應引起的基礎抗性和系統(tǒng)獲得抗性(Systemic Acquired Resistance, SAR)[9-10]。隨后,在水稻[11]、蘋果[12]、小麥[13]等多種植物中發(fā)現(xiàn)TGA轉錄因子家族。研究發(fā)現(xiàn)蘋果中MdTGA2.1、水稻中rTGA2.1、rTGA2.2、rTGA2.3、煙草中TGA2.2等轉錄因子均能與擬南芥中的NPR1相互作用,說明不同物種TGA成員均能夠啟動植物抗病性[14]。到目前為止,香蕉中TGA轉錄因子家族的研究尚未見報道。因此,本研究基于香蕉基因組數據庫,通過生物信息學技術系統(tǒng)分析香蕉TGA轉錄因子家族成員,并進一步研究其在枯萎病菌脅迫下的表達分析,為闡明TGA轉錄因子參與香蕉枯萎病防御反應的分子機理提供理論依據,為植物的抗性育種提供技術支撐。
1 ?材料與方法
1.1 ?香蕉TGA轉錄因子家族序列檢索
以擬南芥TGA轉錄因子成員蛋白序列為查詢序列,在香蕉基因組數據庫(https://banana-genome- hub.southgreen.fr/)中進行Blastp同源序列比對,E值≤1×10–5。搜索并獲得香蕉所有TGA轉錄因子的相關序列,以進行后續(xù)生物信息學分析。
1.2 ?香蕉TGA轉錄因子生物信息學分析
使用在線軟件ExPASy(https://web.expasy.org/ protparam/),分析所有成員基因所編碼蛋白質的基本特性;運用Gene Structure Display Server(GSDS)網站(http://gsds. cbi.pku.edu.cn/)分析成員基因內含子/外顯子數量分布;采用鄰接法通過MEGA 7軟件構建所有成員基因種內進化樹;利用SMART網站(http://smart.embl- heidelberg.de/)進行蛋白質結構預測;利用PRABI網站中SOPMA(https://npsa-prabi.ibcp.fr/cgi- bin/secpred_sopma.pl)分析蛋白質二級結構,包括α螺旋、延伸鏈、β折疊和無規(guī)卷曲;利用SWISS-MODEL網站(https://swissmodel.expasy.org/)進行蛋白三維結構同源建模分析;采用在線網站(http://www. cbs.dtu.dk/services/SignalP/)預測成員的蛋白信號肽;使用在線網站(http://www. cbs.dtu.dk/services/ TMHMM/)預測成員跨膜結構;以在線網站MBC(https://cello.life.nctu.edu.tw/)對所有成員基因進行亞細胞定位預測。
1.3 ?香蕉TGA蛋白系統(tǒng)發(fā)育樹構建及多序列比對
使用在線Phytozome(https://phytozome.jgi. doe.gov/pz/portal.html)網站,以TGA為關鍵詞搜索其他物種的TGA蛋白,下載不同植物所有TGA家族成員的氨基酸序列。與水稻和擬南芥的TGA轉錄因子家族進行多序列比對,通過MEGA 7.0構建系統(tǒng)進化樹,采用鄰接法在默認參數下生成系統(tǒng)發(fā)育樹[15]。
1.4 ?香蕉‘威廉斯和‘南天黃TGA轉錄因子表達分析
易感香蕉枯萎病品種‘威廉斯和抗香蕉枯萎病品種‘南天黃由廣州石生源生物科技發(fā)展有限公司提供。選取健康、長勢一致的香蕉苗,采用蘸根接菌法將抗、感病品種的香蕉苗植株根系分別浸泡在配制好的Fusarium oxysporum f. sp. Cubense race 4(Foc TR4)孢子懸浮液(1×106孢子/mL)中2?h。取樣時間為接種Foc TR4后0、2、4、6?d,每個時間點分別取3株香蕉根系混合,迅速置于液氮中,–80?℃保存。
利用天根多糖多酚植物總RNA提取試劑盒提取上述香蕉根系樣品的總RNA,通過RNA的完整性、純度及濃度檢測后,將質量符合要求的RNA利用PrimeScriptTMⅡ 1st Strand cDNA Synthesis Kit(Takara)試劑盒逆轉錄合成cDNA。最后利用Primer Primer 5.0軟件設計定量引物,以香蕉Actin基因為內參(引物序列如表1),反應程序為95?℃ 30?s;95?℃ 5?s,55?℃ 30?s,72?℃ 30?s,40個循環(huán),每個反應重復3次。
1.5 ?數據處理
所有試驗數據由Excel 2010軟件和SPSS 24.0軟件進行統(tǒng)計分析,對同一處理隨時間變化的差異性采用LSD(Least Significant Difference)多重比較分析,利用Excel 2010軟件繪圖。
2 ?結果與分析
2.1 ?香蕉TGA轉錄因子家族成員的鑒定與分析
本研究使用擬南芥TGA轉錄因子家族的序列作為參照序列,在香蕉中共鑒定得到9個TGA轉錄因子家族成員(表2)。9個TGA基因主要定位在香蕉的Chr.02、Chr.03、Chr.04、Chr.05、Chr.07、Chr.08和Chr.11染色體上,將它們命名為MaTGA1~MaTGA9。香蕉MaTGA轉錄因子的氨基酸殘基數在261~499 aa之間,分子質量(MW)在29.60~54.93?kD之間;蛋白等電點(pI)為5.22~8.87之間,7個成員在酸性范圍內,表明該家族蛋白富含酸性氨基酸。利用MBC分析預測香蕉MaTGA轉錄因子家族成員蛋白的亞細胞定位,發(fā)現(xiàn)MaTGA5定位于細胞外,其余MaTGA成員定位于細胞核。
MaTGA轉錄因子家族成員種內進化樹結果將轉錄因子分為2大類(圖1)。GSDS分析基因結構結果顯示,MaTGA1~MaTGA9中MaTGA3、MaTGA5不含有內含子;MaTGA6、MaTGA7成員含有7個內含子,MaTGA4含有8個內含子,MaTGA8含有10個內含子;MaTGA1、MaTGA2、MaTGA9成員含有11個內含子(圖2)。
通過SMART網站對香蕉的TGA轉錄因子家族蛋白功能結構域進行分析,發(fā)現(xiàn)香蕉MaTGA成員蛋白均具有DOG1結構域,該結構域包括TGA蛋白和PERIANTHIA蛋白;MaTGA3和MaTGA5蛋白中無bZIP結構域,其余成員都含有bZIP結構域,bZIP結構域中包含介導序列特異性DNA結合的堿性區(qū)域和二聚化所需的亮氨酸拉鏈區(qū)域的蛋白質(圖3)。
運用SOPMA進行蛋白二級結構預測,結果顯示MaTGA家族主要由α螺旋、延伸鏈、β折疊和無規(guī)卷曲組成(圖4)。
2.2 ?多序列比對及種間進化樹分析
將擬南芥(10個)AtTGA家族成員、水稻(15個)OsbZIP家族成員和香蕉(9個)MaTGA家族成員蛋白構建進化樹,發(fā)現(xiàn)香蕉MaTGA家族種間進化樹可分為Class Ⅰ、Class Ⅱ 2類(圖5)。Class Ⅰ分為a、b兩個亞支,Class Ⅰa中有4個香蕉TGA成員(MaTGA1、MaTGA2、MaTGA8、MaTGA9)、6個擬南芥TGA成員和13個水稻TGA成員;Class Ⅰb中有3個香蕉TGA成員(MaTGA4、MaTGA6、MaTGA7)、4個擬南芥TGA成員和2個水稻TGA成員;Class Ⅱ亞支有MaTGA3、MaTGA5兩個成員,該亞支與水稻和擬南芥沒有同源基因。比較三個物種的遺傳關系,發(fā)現(xiàn)香蕉TGA轉錄因子與同為單子葉植物的水稻TGA轉錄因子遺傳關系更為相近。
多序列比對結果顯示,TGA轉錄因子家族中重要的bZIP和DOG1結構域、氨基酸殘基在不同物種間高度保守(圖6)。其中bZIP結構域,一部分由14個氨基酸殘基組成保守的DNA結合位點,即堿性區(qū)域,該區(qū)域C-端具有核定位信號(nuclear localization signals,NLS);一部分是參與形成二聚體的亮氨酸拉鏈區(qū)域,其N-末端的堿性區(qū)域與堿性區(qū)域緊密結合。
2.3 ?TGA轉錄因子家族成員在香蕉‘威廉斯及‘南天黃表達分析
為確定香蕉中TGA轉錄因子家族成員是否參與Foc TR4的脅迫,利用RT-qPCR檢測香蕉感、抗病品種在Foc TR4侵染不同時間后TGA轉錄因子家族成員的表達情況。結果表明,接種Foc TR4后,在感、抗病兩個香蕉品種中MaTGA2、MaTGA3及MaTGA8表達量顯著下調,而MaTGA4和MaTGA5在易感品種被誘導上調表達(圖7)。其中MaTGA4在威廉斯中的表達量呈上調趨勢,4 d時表達量最高,是0 d時(CK)的2.5倍。MaTGA5同MaTGA4,在易感品種威廉斯侵染Foc TR4 6 d時達最高,為0 d時(CK)表達量的3.7倍。感、抗品香蕉品種中的MaTGA2、MaTGA3及MaTGA8在Foc TR4侵染下被迅速誘導下調表達,與0?d時相比,表達量受到嚴重抑制。而MaTGA1、MaTGA6、MaTGA7及MaTGA9在感、抗病香蕉品種呈先降后上升的趨勢(圖7)。因此推測MaTGA2、MaTGA3及MaTGA8是介導香蕉抗枯萎病的關鍵基因。
3 ?討論
轉錄因子是與轉錄機制的其他成分相互作用的DNA結合蛋白,以募集或阻止RNA聚合酶進入基因啟動子[16],在某些情況下,轉錄因子可以調節(jié)多個基因的表達[17]。據報道研究最多的WRKY轉錄因子和MYB轉錄因子家族參與植物對病原體的防御[18-19]。此外,一些研究報道了含有堿性亮氨酸拉鏈結構域(bZIP)的轉錄因子,在植物中,調節(jié)基因以響應非生物脅迫,種子成熟,花朵發(fā)育和病原體防御[20]。本文利用擬南芥TGA轉錄因子,首次在全基因組水平對香蕉TGA轉錄因子家族成員進行鑒定,獲得9個TGA轉錄因子成員。蛋白理化性質表明香蕉TGA蛋白富含酸性氨基酸。蛋白結構預測和序列比對發(fā)現(xiàn),MaTGA蛋白中DOG1結構域和bZIP結構域高度保守。研究表明,bZIP結構域中堿性區(qū)域通過固定的核定位信號結構N-X7-R/K-X9與DNA結合,從而決定DNA的特異性以及核定位作用[21];對MaTGA蛋白進行二級結構預測,分析表明所有蛋白均具有α螺旋、延伸鏈、β折疊和無規(guī)卷曲結構,且以α螺旋為主,三級結構同源建模發(fā)現(xiàn)與bZIP典型三維結構相似[22]。亞細胞定位發(fā)現(xiàn)香蕉TGA轉錄因子主要在細胞核內,與其他植物TGA轉錄因子所報道的一致[23-24],說明香蕉TGA轉錄因子在細胞核內發(fā)揮作用。
香蕉MaTGA轉錄因子家族在進化上分為ClassⅠ和ClassⅡ兩類,與基因結構及DOG1和bZIP結構域的分布高度一致,通過香蕉與擬南芥和水稻TGA蛋白進化關系遠近,推測香蕉TGA轉錄因子家族基因的生物學特性和功能。其中ClassⅠ分為a、b兩個小亞組,ClassⅠa分支中香蕉MaTGA1、MaTGA2、MaTGA8、MaTGA9成員與擬南芥AtTGA2、AtTGA5、AtTGA6、AtTGA9、AtTGA 10、AtPAN成員為同一分支。研究發(fā)現(xiàn)擬南芥中AtTGA2、AtTGA5、AtTGA6任一基因缺失,僅3個基因同時缺失則不誘導防御相關PR1基因表達,說明AtTGA2、AtTGA5、AtTGA6參與植物的抗性[10];AtTGA9、AtTGA10、AtPAN三個基因突變導致擬南芥花表型改變[25-26];因此,推測ClassⅠa分支的MaTGA1、MaTGA2、MaTGA8、MaTGA9轉錄因子依賴于NPR1抗病信號轉導途徑提高植物抗病性,且與植物花器官發(fā)育有關。ClassⅠb分支中香蕉MaTGA4、MaTGA6、MaTGA7成員與擬南芥AtTGA1、AtTGA3、AtTGA4、AtTGA7成員為同一分支。AtTGA4與乙烯反應因子(ERF)相互作用,進一步調控植物抗病反應[27];AtTGA3與ARR2相互作用并在細胞分裂素(CTK)作用下與PR1啟動子結合提高植物抗病性[28];推測該分支上的MaTGA4、MaTGA6、MaTGA7轉錄因子既可依賴NPR1信號轉導途徑又依賴其他抗病信號轉導途徑來調節(jié)植物抗病性。
越來越多的研究發(fā)現(xiàn),TGA轉錄因子在植物生物脅迫和非生物脅迫反應中起重要作用[29-30]。草莓[31]中的FaTGA在白粉病侵染過程中,通過SA信號途徑響應植物抗病;小麥[13]中TaTGA1對白粉菌脅迫亦有響應;黃瓜[32]中CsbZIP120遺傳轉化至擬南芥,過表達株系對灰霉菌抗性增強。本研究對香蕉TGA轉錄因子成員在感、抗病品種上的生物脅迫基因表達分析發(fā)現(xiàn),接種Foc TR4后,不同時間下MaTGA轉錄因子成員在感、抗病香蕉品種的誘導表達響應程度不同,表達差異明顯,如MaTGA4和MaTGA5,在威廉斯中被誘導上調表達,MaTGA2、MaTGA3及MaTGA8,在感、抗香蕉品種中相對表達量被下調最明顯。表明MaTGA2、MaTGA3及MaTGA8可能參與香蕉抗枯萎病過程,且在抗病過程中可能具有重要的負調控作用。本課題組將進一步深入挖掘關鍵TGA轉錄因子在香蕉枯萎病防御反應過程的分子機制,為香蕉枯萎病的防治提供理論依據。
參考文獻
Karangwa P, Blomme G, Beed F, et al. The distribution and incidence of banana Fusarium wilt in subsistence farming systems in east and central Africa[J]. Crop Protection, 2016(84): 132-140.
Damodaran T, Mishra V K, Jha S K, et al. First report of Fusarium wilt in banana caused by Fusarium oxysporum f. sp. cubense tropical race 4 in India[J]. Plant Disease, 2019, 103(5): 1022-1023.
Droge-Laser W, Sonek B L, Snel B, et al. The Arabidopsis bZIP transcription factor family-an update[J]. Current Opinion in Plant Biology, 2018(45): 36-49.
田 ?義, 張彩霞, 康國棟, 等. 植物TGA轉錄因子研究進展[J]. 中國農業(yè)科學, 2016, 49(4): 632-642.
Johnson C, Boden E, Arias J. Salicylic acid and NPR1 induce the recruitment of trans-activating TGA factors to a defense gene promoter in Arabidopsis[J]. Plant Cell, 2003, 15(8): 1846-1858.
Fu Z Q, Dong X. Systemic acquired resistance: turning local infection into global defense[J]. Annual Review of Plant Biology, 2013(64): 839-863.
Wither J, Dong X. Posttranslational modifications of NPR1: a single protein playing multiple roles in plant immunity and physiology[J]. Plos Pathogens, 2016, 12(8): 1005707.
Kesarwani M, Yoo J, Dong X. Genetic interaction of TGA transcription factors in the regulation of pathogenesis-related genes and disease resistance in Arabidopsis[J]. Plant Physiology, 2007, 144(1): 336-346.
Gatz C. From Pioneers to team players: TGA transcription factors provide a molecular link between different stress pathways[J]. Molecular Plant-Microbe Interactions, 2013, 26(2): 151-159.
Zhang Y, Tessaro M J, Lassner M, et al. Knockout analysis of Arabidopsis transcription factors TGA2, TGA5, and TGA6 reveals their redundant and essential roles in systemic acquired resistance[J]. The Plant Cell, 2003, 15(11): 2647-2653.
連梓伊, 楊郁文, 陳天子, 等. 水稻rTGA4轉錄因子的啟動子特征分析[J]. 華北農學報, 2013, 28(4): 1-6.
田 ?義. 蘋果抗病相關基因MdTGA2.1、MdAP2D4與Md AP2D19的克隆與分析[D]. 泰安: 山東農業(yè)大學, 3013.
徐仲陽, 張 ?宏, 莫啟波, 等. 小麥響應白粉病菌轉錄因子TaTGA1的表達分析[J]. 植物病理學報, 2018, 48(6): 766-777.
Chern M S, Fitzgerald H A, Yadav R C, et al. Evidence for a disease-resistance pathway in rice similar to the NPR1-mediated signaling pathway in Arabidopsis[J]. The Plant Journal, 2001, 27(2): 101-113.
Tamura K, Stecher G, Peterson D, et al. MEGA6: molecular evolutionary genetics analysis version 6.0[J]. Molecular Biology and Evolution, 2013, 30(12): 2725-2729.
Udvardi M K, Kakar K, Wandrey M, et al. Legume transcription factors: Global regulators of plant development and response to the environment[J].?Plant Physiology,?2007,?144(2): 538-549.
Liao Y, Zou H F, Wei W, et al. Soybean GmbZIP44, GmbZIP62 and GmbZIP78 genes function as negative regulator of ABA signaling and confer salt and freezing tolerance in transgenic Arabidopsis[J]. Planta, 2008, 228(2): 225-240.
Ng D W K, Abeysinghe J K, Kamal M. Regulating the regulators: The control of transcription factors in plant defense Signaling[J]. International Journal of Molecular Sciences, 2018, 19(12): 3737.
Choi N, Im J H,?Lee E, et al.?WRKY10 transcriptional regulatory cascades in rice are involved in basal defense and Xa1-mediated resistance [J]. Journal of Experimental Botany,?2020,?71(12): 3735-3748.
Li F, Liu J X, Guo X H, et al. Genome-wide survey, characterization, and expression analysis of bZIP transcription factors in Chenopodium quinoa[J]. MBC Plant Biology, 2020, 20(1): 216-546.
李紅麗. 大豆轉錄因子GmTGA基因的克隆及抗逆功能分析[D]. 長春: 吉林農業(yè)大學, 2019.
Marc J, Bernd W, Wolfgang D L, et al. bZIP transcription factors in Arabidopsis[J]. Trends in Plant Science, ?2002, 7(3): 106-111.
Zhang Y, Zhang G, Xia N, et al. Cloning and characterization of a bZIP transcription factor gene in wheat and its expression in response to stripe rust pathogen infection and abiotic stresses[J].Physiological and Molecular Plant Pathology, 2009, 73(4): 88-94.
Li B, Liu Y, Cui X Y, et al. Genome-Wide characterization and expression analysis of soybean TGA transcription factors identi?ed a novel TGA gene involved in drought and salt tolerance[J]. Frontiers in Plant Science, 2019(10): 549.
Hepworth S R, Zhang Y, Mc Kim S, et al. BLADE- ON-PETIOLE-dependent signaling controls leaf and floral patterning in Arabidopsis[J]. The Plant Cell, 2005, 17(5): 1434-1448.
Murmu J, Bush M J, DeLong C, et al. Arabidopsis basic leucine-zipper transcription factors TGA9 and TGA10 interact with floral glutaredoxins ROXY1and ROXY2 and are redundantly required for another development[J]. Plant Physiology, 2010, 154(3): 1492-1504.
Shearer H L, Cheng Y T, Wang L, et al. Arabidopsis clade I TGA transcription factors regulate plant defenses in an NPR1-independent fashion[J]. Molecular Plant-Microbe Interactions, 2012, 25(11): 1459-1468.
Choi J, Huh S U, Kojima M. The Cytokinin-activated transcription factor ARR2 promotes plant immunity via TGA3/NPR1-dependent salicylic acid signaling in Arabidopsis[J]. Developmental Cell, 2010, 19(2): 284-295.
Gatz C. From pioneers to team players: TGA transcription factors provide a molecular link between different stress pathways[J]. Molecular Plant-Microbe Interactions, 2013, 26(2): 151-159.
Wang Y, Salasini B C, Khan M, et al. Clade I TGA bZIP transcription factors mediate BLADE-ON-PETIOLE-de pendent regulation of development[J]. Plant Physiology, 2019, 180(6): 937-951.
Feng J, Cheng Y, Zheng C X. Expression patterns of octoploid strawberry TGA genes reveal a potential role in response to Podosphaera aphanis infection[J]. Plant Biotechnology Reports, 2020, 14(1): 55-67.
馮 ?琴. 黃瓜bZIP轉錄因子D亞族成員的表達分析及CsbZIP120的功能初步分析[D]. 楊凌: 西北農林科技大學, 2019.
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