李思媛, 崔玉順, 李新星, 何 佳, 唐紅珍, 楊世林, 高紅偉*
(1.廣西中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院,廣西 南寧 530200;2.廣西優(yōu)勢(shì)中成藥與民族藥開(kāi)發(fā)工程技術(shù)中心,廣西 南寧 530020)
炎癥是對(duì)入侵病原體,受損細(xì)胞和刺激物的自我保護(hù)反應(yīng)[1],實(shí)質(zhì)上也是指機(jī)體與致炎因子進(jìn)行斗爭(zhēng)的反應(yīng),在整個(gè)炎癥過(guò)程中這種斗爭(zhēng)反映會(huì)一直存在于機(jī)體各部分組織和器官,常見(jiàn)的有扁桃體炎、肺炎、肝炎、腎炎等,過(guò)度的炎癥反應(yīng)對(duì)人體產(chǎn)生損傷,嚴(yán)重的會(huì)導(dǎo)致中風(fēng)、風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎、神經(jīng)退行性疾病、心血管疾病等[2]。炎癥根據(jù)其性質(zhì)可分為急性和慢性,當(dāng)機(jī)體受到外來(lái)刺激時(shí)首先會(huì)產(chǎn)生急性炎癥,伴隨著等離子和粒細(xì)胞從血液運(yùn)輸?shù)搅耸軗p組織,然后血管和免疫系統(tǒng)對(duì)受損組織作出免疫應(yīng)答,進(jìn)一步開(kāi)始釋放炎癥介質(zhì),從而誘發(fā)急性炎癥進(jìn)入慢性期[1]。因此,關(guān)于炎癥作用機(jī)制的研究對(duì)其引起相關(guān)疾病的治療具有重要的指導(dǎo)意義。
黃精化學(xué)成分包括皂苷、多糖、黃酮、生物堿等,目前對(duì)多糖的研究最廣泛[3],但鮮有涉及皂苷。以往研究顯示,其他植物皂苷都具有抗炎、抗腫瘤、抗真菌等作用[4-5],其中從黃精中分離出的甾體皂苷可抑制脂多糖誘導(dǎo)的RAW264.7細(xì)胞分泌NO、TNF-α,具有一定的抗炎作用,但該成分對(duì)炎癥反應(yīng)作用的確切藥理機(jī)制尚未見(jiàn)報(bào)道。因此,本實(shí)驗(yàn)以RAW264.7細(xì)胞為對(duì)象,研究黃精皂苷通過(guò)NF-κB/MAPKs信號(hào)通路發(fā)揮體外抗炎作用及其機(jī)制。
1.1 藥材 黃精購(gòu)于廣西臨山殿中草藥種植有限公司,經(jīng)蘇州大學(xué)李笑然教授鑒定為正品。取粗粉100 g,1 L甲醇浸提18 h后于30~40 ℃下超聲1 h,濾過(guò),濾液濃縮至無(wú)醇味,加入適量純水混懸,乙酸乙酯萃取,濃縮萃取液,除去溶劑,即得黃精提取物,黃精皂苷質(zhì)量分?jǐn)?shù)為84%。
1.2 細(xì)胞與試劑 小鼠腹腔巨噬細(xì)胞RAW264.7購(gòu)于中國(guó)科學(xué)院上海細(xì)胞庫(kù)。DMEM培養(yǎng)基(2327860)、胎牛血清(2176404)、PBS(2200918)購(gòu)自美國(guó)Gibco公司;BCA蛋白定量試劑盒(TE266615)購(gòu)自美國(guó)Thermo公司;GAPDH(8884S)、NF-κB/p65(8242S)、iNOS(2977S)、COX-2(4842S)、IKKα(2682S)、IKKβ(8943S)、IκBα(4814S)、p-IKKα/β(2697S)、p-IκBα(2859S)、P-NF-κB/p65(3033S)、p38(9212S)、ERK(4370S)、JNK(9252S)、p-p38(4511S)、p-ERK(4370S)、p-JNK(4668S)抗體購(gòu)自美國(guó)Cell Signaling Technology公司;JC-1線粒體膜電位檢測(cè)試劑盒(100918190307)購(gòu)自北京索萊寶科技有限公司;小鼠TNF-α(M200115-102a)、IL-6(M210125-004a)ELISA試劑盒購(gòu)自欣博盛生物科技有限公司;ROS試劑盒(1630212)購(gòu)自美國(guó)Sigma-Aldrich公司。
2.1 細(xì)胞培養(yǎng)及貯存液配制 RAW264.7細(xì)胞加入含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基,于37 ℃、5% CO2恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng),每1 d傳代1次。黃精皂苷浸膏溶于DMSO配制成20 mg/mL貯存液,避光-20 ℃保存,實(shí)驗(yàn)時(shí)用含1%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基稀釋成相應(yīng)濃度(DMSO終體積分?jǐn)?shù)不超過(guò)0.1%)。
2.2 MTT比色法檢測(cè)細(xì)胞活性 將RAW264.7細(xì)胞按照每孔5×104個(gè)的密度接種于96孔板中過(guò)夜培養(yǎng),待細(xì)胞貼壁后,棄去孔內(nèi)培養(yǎng)基,加入用1%培養(yǎng)基配制好的不同質(zhì)量濃度黃精皂苷(20、40、80、100 μg/mL)藥液,培養(yǎng)細(xì)胞24 h,加入MTT工作液,避光于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中孵育4 h,每孔加入DMSO 100 μL,室溫避光,于搖床上搖晃溶解結(jié)晶,多功能微孔板檢測(cè)儀在570 nm波長(zhǎng)處測(cè)定光密度(OD)值。細(xì)胞存活率=(OD給藥組/OD空白組)×100%
2.3 LPS誘導(dǎo)的RAW264.7細(xì)胞炎癥因子檢測(cè) RAW264.7細(xì)胞以每孔5×104個(gè)的密度接種于96孔板中過(guò)夜培養(yǎng),將細(xì)胞分為空白組、模型組、給藥組,給藥組用不同質(zhì)量濃度黃精皂苷預(yù)處理細(xì)胞1 h,LPS誘導(dǎo)炎癥模型。
2.3.1 上清培養(yǎng)液NO水平 模型組和給藥組給予LPS(終質(zhì)量濃度為1 μg/mL)刺激18 h。各組吸取50 μL上清培養(yǎng)液至96孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,加入50 μL Griess試劑,輕輕搖晃使其充分混勻,在37 ℃下放置反應(yīng)30 min后,多功能微孔板檢測(cè)儀在540 nm波長(zhǎng)處測(cè)定光密度。
2.3.2 上清培養(yǎng)液TNF-α、IL-6水平 模型組和給藥組給予LPS(終質(zhì)量濃度為1 μg/mL)刺激18 h,取上清培養(yǎng)液,按照ELISA試劑盒說(shuō)明書(shū)操作,檢測(cè)黃精皂苷對(duì)TNF-α、IL-6釋放的影響。
2.4 JC-1熒光染色法檢測(cè)胞內(nèi)線粒體膜電位(MMP)水平 LPS(終質(zhì)量濃度為1 μg/mL)誘導(dǎo)8 h,棄去孔中液體,加入含JC-1染色液的培養(yǎng)基,置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)1 h,孵育完成后加入100 μL冰PBS洗滌細(xì)胞,棄去液體后每孔加入100 μL PBS,在熒光顯微鏡下觀察拍照。
2.5 活性氧(ROS)釋放檢測(cè)
2.5.1 流式細(xì)胞儀 將RAW264.7細(xì)胞以每孔1.5×105個(gè)的密度接種于24孔板過(guò)夜培養(yǎng),將細(xì)胞分為空白組、模型組、給藥組,給藥組用黃精皂苷(20、40、80 μg/mL)預(yù)處理1 h后,LPS(終質(zhì)量濃度為1 μg/mL)誘導(dǎo)8 h,將ROS探針DCFH2-DA(10 μg/mL)加入96孔板中,在37 ℃下避光孵育30 min,冰PBS清洗細(xì)胞1次,加入冰胰酶進(jìn)行消化后加入300 μL冰PBS將細(xì)胞沖洗下來(lái),收集到流式管中,上機(jī)檢測(cè)。
水稻紋枯病俗稱“爛腳病”“花腳桿”,苗期至穗期都可發(fā)病。濕度低時(shí)葉鞘中部組織破壞呈半透明狀,邊緣暗褐,發(fā)病嚴(yán)重時(shí)病斑融合形成大病斑,呈不規(guī)則狀云紋斑,致葉片發(fā)黃枯死。葉片上的病斑呈云紋狀,邊緣褪黃,發(fā)病快時(shí)病斑呈污綠色,葉片很快腐爛。莖稈受害癥狀似葉片,后期呈黃褐色,易折。穗頸部受害常不能抽穗,抽穗的秕谷較多,千粒重下降。高溫條件下病斑上產(chǎn)生一層白色粉霉層,即病菌的擔(dān)子和擔(dān)孢子[3]。
2.5.2 ROS試劑盒 RAW264.7細(xì)胞以每孔5×104個(gè)的密度接種于96孔板中過(guò)夜培養(yǎng),將細(xì)胞分為空白組、模型組、給藥組,給藥組用黃精皂苷(20、40、80 μg/mL)預(yù)處理細(xì)胞1 h,LPS(終質(zhì)量濃度為1 μg/mL)誘導(dǎo)8 h,誘導(dǎo)完成后棄去上清液,按照ROS檢測(cè)試劑盒操作步驟進(jìn)行ROS檢測(cè)。
2.6 Western Blot法檢測(cè)炎癥相關(guān)蛋白表達(dá) RAW264.7細(xì)胞以每孔6×105個(gè)的密度接種于6孔板過(guò)夜培養(yǎng),將細(xì)胞分為空白組、模型組、給藥組,給藥組用黃精皂苷(20、40、80 μg/mL)預(yù)處理1 h后,LPS(終質(zhì)量濃度為1 μg/mL)分別誘導(dǎo)8、24 h,從培養(yǎng)箱中取出細(xì)胞置于冰上,棄掉培養(yǎng)基,預(yù)冷的PBS緩沖液洗滌2次,加入適量蛋白裂解液,裂解10 min后細(xì)胞刮將其刮下來(lái)收集于1.5 mL EP管,4 ℃、15 000 r/min離心15 min,取上清,BCA試劑盒檢測(cè)蛋白濃度,酶標(biāo)儀于562 nm波長(zhǎng)處檢測(cè)其光密度,蛋白樣品中加入5×SDS-PAGE Loading buffer,于97 ℃金屬浴中煮沸7 min使蛋白變性,10%SDS-PAGE凝膠電泳并轉(zhuǎn)于PVDF膜上,脫脂奶粉封閉2 h后,分別使用iNOS、COX-2、IKKα、IKKβ、p-IKKα/β、IκBα、p-IκBα,NF-κB/p65、p-p65、ERK、p-ERK、JNK、p-JNK、p38、p-p38、GAPDH的抗體(1∶1 000)于4 ℃孵育過(guò)夜,TBST洗滌3次,二抗在室溫下孵育2 h,TBST洗滌3次,化學(xué)發(fā)光法顯影。
3.1 黃精皂苷對(duì)RAW264.7細(xì)胞活性的影響 RAW264.7細(xì)胞用黃精皂苷藥液處理24 h后,存活率沒(méi)有受到抑制,說(shuō)明黃精皂苷(20、40、80 μg/mL)對(duì)RAW264.7細(xì)胞不具有毒性,見(jiàn)圖1。
注:與空白組比較,#P<0.05。
3.2 黃精皂苷對(duì)LPS誘導(dǎo)的RAW264.7細(xì)胞釋放NO的影響 由圖2可知,與空白組比較,模型組NO水平增加(P<0.01);與模型組比較,黃精皂苷3個(gè)劑量組NO水平減少(P<0.01),表明黃精皂苷對(duì)LPS誘導(dǎo)的RAW264.7細(xì)胞釋放NO具有抑制作用。
注:與空白組比較,##P<0.01;與LPS組比較,**P<0.01。
3.3 黃精皂苷對(duì)LPS誘導(dǎo)的RAW264.7細(xì)胞中IL-6、TNF-α釋放的影響 圖3表明,與空白組比較,模型組IL-6、TNF-α釋放增多(P<0.01);與模型組比較,黃精皂苷40、80 μg/mL組IL-6釋放減少(P<0.05、P<0.01),80 μg/mL組TNF-α釋放減少(P<0.05),說(shuō)明黃精皂苷對(duì)LPS誘導(dǎo)的RAW264.7細(xì)胞中IL-6、TNF-α釋放具有抑制作用。
注:與空白組比較,#P<0.05,##P<0.01;與LPS組比較,*P<0.05,**P<0.01。
3.4 黃精皂苷對(duì)細(xì)胞線粒體膜電位(MMP)的影響 如圖4所示,與空白組比較,模型組中LPS破壞了線粒體膜電位的穩(wěn)定性,JC-1單體(綠色熒光)增加;黃精皂苷預(yù)處理后,JC-1單體降低,聚合體(紅色熒光)增加,表明黃精皂苷可維持線粒體膜電位的穩(wěn)定。
圖4 MMP顯微熒光圖(×10)
3.5 黃精皂苷對(duì)LPS誘導(dǎo)的ROS產(chǎn)生的影響 如圖5所示,模型組ROS生成增加(P<0.01);與模型組比較,黃精皂苷80 μg/mL組ROS產(chǎn)生減少(P<0.05)。ROS試劑盒檢測(cè)結(jié)果顯示,與空白組比較,模型組ROS生成增加(P<0.05);與模型組比較,黃精皂苷3個(gè)劑量組ROS產(chǎn)生有所減少(P<0.05),表明黃精皂苷對(duì)LPS誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞產(chǎn)生的ROS具有抑制作用。
注:A為ROS流式細(xì)胞儀檢測(cè)結(jié)果,B為 ROS試劑盒檢測(cè)結(jié)果。與空白組比較,##P<0.01;與LPS組比較,*P<0.05,**P<0.01。
3.6 黃精皂苷對(duì)LPS誘導(dǎo)的RAW264.7細(xì)胞中iNOS、COX-2表達(dá)的影響 如圖6所示,與空白組比較,模型組iNOS、COX-2的表達(dá)增加(P<0.01);與模型組比較,給藥組iNOS、COX-2表達(dá)減少(P<0.01),表明黃精皂苷對(duì)兩者表達(dá)具有抑制作用。
注:A為iNOS及COX-2蛋白表達(dá)圖,B~C為iNOS及COX-2蛋白相對(duì)表達(dá)量統(tǒng)計(jì)柱狀圖。與空白組比較,##P<0.01;與LPS組比較,**P<0.01。
3.7 黃精皂苷對(duì)LPS誘導(dǎo)的RAW264.7細(xì)胞中NF-κB信號(hào)通路的影響 如圖7所示,1 μg/mL LPS作用于RAW264.7細(xì)胞8 h后,NF-κB p65磷酸化蛋白(p-p65)、IKKα/β磷酸化蛋白(p-IKKα/β)、IκBα磷酸化蛋白(p-IκBα)表達(dá)提高(P<0.01);與模型組比較,不同質(zhì)量濃度黃精皂苷均可以降低磷酸化蛋白的表達(dá)(P<0.01),說(shuō)明黃精皂苷能在一定程度上降低RAW264.7細(xì)胞炎癥模型中NF-κB信號(hào)通路磷酸化蛋白的表達(dá),而且在不同劑量下對(duì)IκBα總蛋白的降解具有抑制作用。
注: A為NF-κB信號(hào)通路蛋白表達(dá)圖,B~D為p-IKKα/β、p-IκBα、p-p65蛋白相對(duì)表達(dá)量統(tǒng)計(jì)柱狀圖。與空白組比較,##P<0.01;與LPS組比較,**P<0.01。
3.8 黃精皂苷對(duì)LPS誘導(dǎo)的RAW264.7細(xì)胞中MAPK信號(hào)通路的影響 如圖8所示,1 μg/mL LPS作用于RAW264.7細(xì)胞8 h后,ERK磷酸化蛋白(p-ERK)、JNK磷酸化蛋白(p-JNK)、p38磷酸化蛋白(p-p38)的表達(dá)提高(P<0.01);與模型組比較,不同質(zhì)量濃度的黃精皂苷均可以降低磷酸化蛋白的表達(dá)(P<0.01),說(shuō)明黃精皂苷能在一定程度上降低RAW264.7炎癥細(xì)胞模型中MAPK信號(hào)通路磷酸化蛋白的表達(dá),從而發(fā)揮抗炎作用。
注:A為MAPK信號(hào)通路蛋白表達(dá)圖,B~D為p-ERK、p-JNK、p-p38蛋白相對(duì)表達(dá)量統(tǒng)計(jì)柱狀圖。與空白組比較,##P<0.01;與LPS組比較,**P<0.01。
小鼠腹腔巨噬細(xì)胞RAW264.7是其機(jī)體抗炎免疫以及防御的主要成員[6],在炎癥過(guò)程中會(huì)分泌炎癥相關(guān)細(xì)胞因子,參與炎癥反應(yīng)[7],常用于細(xì)胞生物學(xué)研究。脂多糖(LPS)是革蘭氏陰性細(xì)菌外膜主要成分之一,多用于建立炎癥模型[8-10]。LPS可以促使很多細(xì)胞模型大量釋放炎癥介質(zhì)及因子如NO,PGE2,IL-6,IL-1β和TNF-α等[10],特別是對(duì)于巨噬細(xì)胞模型。一氧化氮是一種與多種免疫病理變化相關(guān)的反應(yīng)性自由基。經(jīng)LPS刺激,RAW264.7細(xì)胞中的iNOS過(guò)度表達(dá),導(dǎo)致一氧化氮大量產(chǎn)生,從而觸發(fā)多重炎癥病理反應(yīng)。COX-2是COX同工酶中的一種,是介導(dǎo)炎癥的關(guān)鍵酶[1]。過(guò)度分泌的細(xì)胞因子IL-6和TNF-α是重要的炎癥介質(zhì)[11-12]。黃精皂苷抑制LPS誘導(dǎo)的iNOS、COX-2表達(dá),以及亞硝酸鹽,IL-6的產(chǎn)生,其高濃度對(duì)TNF-α的釋放具有抑制作用。LPS刺激巨噬細(xì)胞之后,其產(chǎn)生的活性氧(ROS)顯著增高,線粒體的膜電位也明顯降低[13]。過(guò)多的ROS產(chǎn)生可能會(huì)通過(guò)降低線粒體膜電位從而損傷線粒體,而黃精皂苷對(duì)ROS生成有抑制作用,對(duì)MMP的降低有抑制作用,結(jié)果表明其對(duì)線粒體具有一定的保護(hù)作用。
NF-κB是該家族的核轉(zhuǎn)錄因子,參與細(xì)胞對(duì)細(xì)胞因子等各種外界刺激的響應(yīng),在細(xì)胞的炎癥及免疫應(yīng)答等過(guò)程中起到關(guān)鍵性作用[1,14-17]。NF-κB通過(guò)IKK刺激IκB從而被激活。激活的p65從細(xì)胞質(zhì)中轉(zhuǎn)移到細(xì)胞核,與靶基因的啟動(dòng)子區(qū)域結(jié)合[18],導(dǎo)致一連串促炎性靶因子轉(zhuǎn)錄,其中包括IL-6,TNF-α,iNOS等。黃精皂苷對(duì)LPS誘導(dǎo)的磷酸化的IKKα/β、IκBα和p65蛋白表達(dá)有抑制作用,這表明NF-κB通路可能是它的抗炎作用機(jī)制之一。MAPKs通路調(diào)控從增殖分化到細(xì)胞凋亡等多種過(guò)程[19-20],也積極參與免疫防御和炎癥反應(yīng),該通路主要有ERK、p38和JNK三條途徑[21],特別是p38途徑,是炎性介質(zhì)合成的主要途徑之一,因此被認(rèn)為是抗炎藥物的重要靶點(diǎn)。在LPS刺激的蛋白中,黃精皂苷對(duì)磷酸化的p38MAPK和JNK、ERK蛋白表達(dá)也具有抑制作用,這表明它們也可能參與了黃精皂苷的抗炎作用。
綜上所述,黃精皂苷可以抑制LPS刺激的RAW264.7細(xì)胞產(chǎn)生的炎癥,其作用機(jī)制可能與抑制NF-κB、MAPKs信號(hào)通路有關(guān),更深入的機(jī)制及作用有效成分的確認(rèn),還有待進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)。