王 斌, 林芳柯, 李 丹, 劉嘉鵬, 黃玉吉, 程春振,2
(1.福建農(nóng)林大學(xué)園藝學(xué)院,福建 福州 350002;2.山西農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院,山西 太谷 030801)
香蕉屬于芭蕉科芭蕉屬(Musa)大型草本植物,是世界上馴化最早也是最重要的果樹之一[1-2].我國是重要的香蕉種植國,栽培面積居世界第五,產(chǎn)量居世界第二.然而,我國香蕉主產(chǎn)區(qū)大都地處亞熱帶,不屬于香蕉最適種植區(qū),冬季常有寒潮入侵.2008年,受低溫霜凍天氣的影響,廣西省香蕉的受災(zāi)面積高達(dá)其栽培總面積的97%,苗木和果實(shí)均受到不同程度的凍害,造成了7億多元的經(jīng)濟(jì)損失[3].2016年1月下旬,受極端的雨夾雪、結(jié)冰、冰雹、凍雨等寒凍災(zāi)害天氣的影響,廣西香蕉全產(chǎn)區(qū)均受到了嚴(yán)重的災(zāi)損[4].2020年12月末及2021年1月初的兩次寒潮對我國香蕉主產(chǎn)區(qū)造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失.受惡劣天氣的影響,近些年來我國香蕉的進(jìn)口量呈波動(dòng)式上升趨勢[5],產(chǎn)區(qū)優(yōu)勢未能充分體現(xiàn).因此,提高植株的抗寒性對于香蕉產(chǎn)業(yè)的健康發(fā)展意義重大.
鈣作為一個(gè)主要的第二信使,在抵御逆境脅迫時(shí)可以有效防止膜系統(tǒng)損傷和離子滲漏,有穩(wěn)定膜結(jié)構(gòu)和維持膜完整性的作用.研究表明,外源施用CaCl2能夠有效減輕低溫對香蕉的傷害,減緩葉綠素降解,提高植物抗寒物質(zhì)的含量或活性,提高香蕉的抗寒性[6-8].
印度梨形孢(Piriformosporaindica)是印度學(xué)者Varma et al在印度西部拉賈斯坦邦的塔爾沙漠中發(fā)現(xiàn)的一種類叢枝菌根真菌[9].印度梨形孢宿主范圍廣泛,對宿主植物的促生增抗作用已被廣泛證實(shí)[10-11].印度梨形孢對宿主植物抗寒能力的提高作用也有了一些成功報(bào)道.如:Varma et al[12]研究表明,在低溫環(huán)境下印度梨形孢可以提高12種蔬菜的種子萌發(fā)率,促進(jìn)生物量的積累;Murphy et al[13]研究表明,印度梨形孢定殖可以提高大麥在低溫條件下的產(chǎn)量;Alizadeh et al[14]研究表明,印度梨形孢可以通過影響抗氧化酶活性促進(jìn)綠豆在低溫條件下的生長.與叢枝菌根真菌不同,印度梨形孢還可以定殖在十字花科植物上.有研究指出,印度梨形孢可以通過上調(diào)CBF等冷脅迫響應(yīng)相關(guān)基因的表達(dá)進(jìn)而提高擬南芥的抗寒能力和冷害后的恢復(fù)能力[15].香蕉是印度梨形孢的理想宿主[16-17],有印度梨形孢定殖的香蕉不僅生根和生長情況顯著優(yōu)于無定殖對照,抗熱和抗病能力也顯著提升[18-19].
本研究以冷敏感栽培香蕉種質(zhì)‘天寶蕉’(Musaacuminatecv. ‘Tianbaojiao’)幼苗為材料,研究外源CaCl2噴施和印度梨形孢定殖處理對其抗寒性的影響,旨在為CaCl2和印度梨形孢在香蕉等作物上的抗寒生產(chǎn)應(yīng)用提供參考.
供試印度梨形孢菌株和‘天寶蕉’幼苗均由福建農(nóng)林大學(xué)園藝學(xué)院提供.
經(jīng)過增殖、生根和煉苗后,取長勢相對一致的‘天寶蕉’幼苗移栽入營養(yǎng)土盆缽中,置于人工氣候室培養(yǎng)2個(gè)月后,選取長勢均一、高度約為20 cm的6~7葉期幼苗分成兩組(每組20株),一組接種印度梨形孢,一組不接種.印度梨形孢發(fā)酵液制備參照程春振等[20]的方法,為確保印度梨形孢的定殖,印度梨形孢接種組每間隔3 d澆一次,共澆3次.之后將兩組香蕉苗進(jìn)一步各分為兩組:一組在葉片上噴施2 g·L-1CaCl2溶液至有液滴落下,每隔3 d噴施一次,共噴施6次;另一組噴施無菌水.由此,香蕉苗被分為未做處理的對照組(CK)、噴施CaCl2處理組(T1)、接種印度梨形孢處理組(T2)以及噴施CaCl2和接種印度梨形孢復(fù)合處理組(T3),共4組.最后,將4組香蕉苗再各分成2組,分別置于4和28 ℃光照培養(yǎng)箱中培養(yǎng).每組設(shè)5個(gè)生物重復(fù).培養(yǎng)12 h后觀察和記錄幼苗表型,然后取第2片葉用于生理生化指標(biāo)的測定.
采用電導(dǎo)法[21]測定4和28 ℃培養(yǎng)的香蕉苗第2片葉的電解質(zhì)相對滲透率.使用5 mm直徑的打孔器在葉片上打出15個(gè)葉圓片,放入含有15 mL蒸餾水的試管中,另取一個(gè)試管,加入等量蒸餾水作為空白對照.利用抽氣機(jī)使試管內(nèi)部真空換氣10 min,再置于常溫30 min后測定第1次的電導(dǎo)率(K1),將試管放入沸水中處理10 min后測定第2次的電導(dǎo)率(K2),以未經(jīng)處理的空白對照組的電導(dǎo)率(C)作為本底.電解質(zhì)滲透率/%=(K1-C)/(K2-C)×100.
過氧化氫(H2O2)濃度、丙二醛(malondialdehyde, MDA)濃度和可溶性糖含量采用蘇州科銘生物技術(shù)有限公司生產(chǎn)的試劑盒測定,具體操作按其說明書進(jìn)行.
使用Microsoft Excel 2019軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì),使用SPSS軟件分析各組樣品間各指標(biāo)在0.05水平的差異顯著性.
28 ℃條件下,3種處理方式對香蕉幼苗表型均無顯著影響,而4 ℃處理12 h后4組樣品間表現(xiàn)出明顯的受害癥狀差異(圖1).其中:CK組幼苗受害癥狀最為嚴(yán)重,葉片表現(xiàn)出卷曲萎縮和大面積水漬癥狀;T1、T2和T3組幼苗也出現(xiàn)冷害癥狀,但葉片卷曲程度明顯輕于CK組,水漬程度也更輕.
圖1 28和4 ℃處理12 h后4組‘天寶蕉’幼苗表型Fig.1 Phenotypes of ‘Tianbaojiao’ seedlings after treatments at 28 and 4 ℃ for 12 h
圖2顯示:28 ℃條件下,CK組香蕉葉片的電解質(zhì)滲透率最高,與T1、T2、T3組的差異不顯著;4 ℃條件下,CK、T1、T2和T3組的電解質(zhì)滲透率均升高,分別為28 ℃處理的1.72、1.85、1.68和1.55倍,其中,CK組與T1組的差異顯著(P<0.05);4 ℃條件下,T1組的電解質(zhì)滲透率低于CK組,但未達(dá)到顯著水平(P>0.05),而T2和T3組的電解質(zhì)滲透率顯著低于CK組(P<0.05).
圖3和圖4顯示:28 ℃條件下,T1、T2和T3組香蕉葉片的H2O2和MDA濃度均高于CK組,T1和T3組的H2O2濃度顯著高于CK組(P<0.05),T2和T3組的MDA濃度顯著高于CK組(P<0.05);4 ℃條件下,CK、T1、T2和T3組的H2O2濃度升高,CK、T2和T3組的H2O2濃度顯著高于各自的28 ℃處理組(P<0.05,分別為28 ℃處理組的2.76、1.67和1.33倍),CK和T1組的MDA濃度均顯著升高(P<0.05,分別為28 ℃處理組的2.1和1.32倍),而T2和T3組略有下降(P>0.05,分別為28 ℃處理組的90.32%和93.63%).
圖5顯示:28 ℃條件下,T1、T2和T2組香蕉葉片的可溶性糖含量均顯著高于CK組,分別為CK組的1.3、1.23和1.6倍;相較于28 ℃,4 ℃條件下的CK和T1組的可溶性糖含量均顯著升高(P<0.05,分別為28 ℃處理組的1.72和1.16倍),T2組略有升高(P>0.05,為28 ℃處理組的1.12倍),而T3組顯著下降(P<0.05,為28 ℃處理組的80.92%);4 ℃處理12 h后,T1、T2和T3組的可溶性糖含量均顯著低于CK組(P<0.05,分別為CK組的97.91%、80.4%和75.61%).
逆境條件下,植物細(xì)胞Ca2+濃度會(huì)發(fā)生變化,并由此引發(fā)植物一些特定的生理反應(yīng)以進(jìn)行自我保護(hù)和調(diào)節(jié)[22].張永福等[23]研究表明,25 ℃條件下,20 mmol·L-1CaCl2處理組的假連翹葉片中的H2O2濃度顯著高于未處理的對照組,隨著Ca2+濃度的下降,H2O2濃度也逐漸下降.本研究結(jié)果表明,28 ℃條件下,CaCl2噴施和復(fù)合處理組的香蕉葉片H2O2濃度顯著高于CK組,而單獨(dú)的印度梨形孢處理對其影響不顯著.說明CaCl2在調(diào)節(jié)葉片H2O2濃度方面的作用更顯著.大量研究表明,CaCl2處理可以降低低溫脅迫下植物葉片H2O2濃度.如Wang et al[24]研究表明,10 mmol·L-1CaCl2處理能夠顯著抑制低溫脅迫下結(jié)縷草葉片H2O2濃度;韓曉村[25]研究表明,15 mmol·L-1CaCl2處理可以減少低溫脅迫下西瓜葉片中H2O2的積累.本研究結(jié)果顯示:4 ℃處理后,T1、T2和T3組香蕉葉片H2O2濃度均顯著低于CK組,說明CaCl2和印度梨形孢均可抑制低溫脅迫下香蕉葉片H2O2的積累.
低溫會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞膜透性大幅增大,造成離子大量滲漏,最終導(dǎo)致組織受損或死亡.同時(shí),細(xì)胞膜的損傷會(huì)加劇MDA的積累,對植物造成毒害作用[26].本研究結(jié)果表明:28 ℃條件下,T1、T2和T3組香蕉葉片的MDA濃度顯著高于CK組,這可能與多次噴施CaCl2和接種印度梨形孢對植株造成脅迫有關(guān).王小媚等[27]研究表明,經(jīng)300 mg·L-1CaCl2處理的番木瓜抗寒性最好,減少了低溫脅迫下葉片MDA的積累;楊芮[28]研究表明,印度梨形孢定殖可以減輕低溫脅迫下紅掌細(xì)胞膜受損程度,降低MDA濃度,提高植株耐寒性.本研究結(jié)果表明,低溫處理后,印度梨形孢處理組和復(fù)合處理組香蕉葉片相對電解質(zhì)滲透率均顯著低于CK組和CaCl2噴施處理組,MDA濃度也低于CK組;此外,本研究結(jié)果還表明,低溫處理后的CK組和CaCl2處理組香蕉葉片MDA濃度與28 ℃相比均上升,而印度梨形孢處理組和復(fù)合處理組變化不大.進(jìn)一步說明印度梨形孢能夠增強(qiáng)低溫下細(xì)胞膜的穩(wěn)定性,提高香蕉對低溫的耐受能力.
低溫條件下,植物體內(nèi)的可溶性糖含量增加,進(jìn)而可以提高細(xì)胞液的濃度、減少低溫?fù)p傷[29].研究表明,可溶性糖含量高且隨著溫度下降而變化平穩(wěn)的品種,其抗寒性強(qiáng),反之則抗寒性弱[30].李利蘭[31]指出,CaCl2處理能使低溫下辣椒細(xì)胞內(nèi)可溶性糖含量保持在較高的水平,從而提高其抗寒性;劉雪琳等[32]研究表明,印度梨形孢定殖可以提高逆境脅迫下水稻葉片可溶性糖含量,以維持細(xì)胞的正常代謝.本研究結(jié)果表明:28 ℃條件下,T1、T2和T3組香蕉葉片可溶性糖含量顯著高于CK組;4 ℃處理后,CK、T1和T2組可溶性糖含量均有所升高,T1和T2組的可溶性糖含量上升幅度低于CK組,變化相對平穩(wěn),說明經(jīng)CaCl2和印度梨形孢處理的香蕉,其抗寒性更強(qiáng).值得注意的是:T3組香蕉葉片可溶性糖含量在4 ℃處理后有所下降,這可能與其自身抗寒能力更強(qiáng),12 h的4 ℃低溫處理下不需要大量積累可溶性糖用于降低低溫?fù)p傷有關(guān).
Meents et al[33]研究表明,印度梨形孢與擬南芥根系共生初期,擬南芥細(xì)胞中的Ca2+濃度升高,說明Ca2+可能是印度梨形孢與植物互作的一個(gè)早期信號(hào).本研究結(jié)果表明:CaCl2和印度梨形孢處理均能提高香蕉耐寒性,兩種處理均能顯著降低4 ℃低溫和28 ℃處理下香蕉葉片的相對電解質(zhì)滲透率,顯著提高28 ℃處理下的可溶性糖含量,抑制4 ℃低溫處理下的H2O2濃度、MDA濃度和可溶性糖含量的增加.二者的作用效果也存在一定的差異:印度梨形孢定殖在降低低溫條件下葉片的相對電解質(zhì)滲透率,提高28 ℃條件下MDA濃度等方面的效果優(yōu)于CaCl2處理,CaCl2處理則在調(diào)節(jié)葉片H2O2積累方面的效果更顯著.而二者的復(fù)合處理表現(xiàn)出明顯的協(xié)同作用,對香蕉抗寒能力的促進(jìn)效果優(yōu)于單獨(dú)處理.
綜上可以看出,根系定殖印度梨形孢和葉片噴施CaCl2處理均能提高香蕉的抗寒能力.二者復(fù)合處理的效果最佳,有應(yīng)用于香蕉田間防寒減災(zāi)的潛力.