林曉晴,杜世佳,詹昊霖,黃玉清,陳 忠
基于純化學位移的同核二維正交相敏分解核磁共振波譜
林曉晴,杜世佳,詹昊霖,黃玉清,陳 忠*
廈門大學 電子科學系,福建省等離子體與磁共振研究重點實驗室,福建 廈門 361005
二維分解(2DRES)核磁共振(NMR)波譜是一種簡單且用戶友好的譜圖表達形式,其將偶合常數和化學位移信息分離到兩個正交的頻率維度上.自40年前首次被提出以來,2DRES技術在脈沖序列和方法的改進,以及實際應用的進展方面一直備受關注.本文回顧了新型2DRES脈沖序列,以及用于精確測量同核偶合常數的2D編輯譜的最近進展,特別是基于純化學位移演化機制的正交相敏2DRES譜方法及其應用,并闡述其在克服強偶合效應和磁場不均勻性等方面的能力.
核磁共振;分解譜;相敏;G-SERF;偶合常數;純化學位移
作為一種無損高效檢測技術,核磁共振(Nuclear Magnetic Resonance,NMR)已成為化合物成分分析和結構解析的重要手段,廣泛用于生物、醫(yī)藥、化學等領域[1-8].鑒于1H核的高天然豐度和高檢測靈敏度,1H NMR目前已成為最常用的一種NMR技術.1H NMR波譜能夠提供化學位移、偶合常數、譜峰積分面積和裂分模式等信息,用于物質成分分析和分子結構解析;通過增加維度,還能進行動力學分析.然而由于1H核本身有限的化學位移分布范圍和豐富的偶合裂分,1H NMR譜圖往往會出現譜峰擁擠甚至重疊現象,嚴重阻礙了譜峰的準確歸屬和分析.解決這一問題最直接的方式就是通過提高磁場強度來分散譜峰分布,從而緩解譜圖擁擠情況,但這一方法是基于譜儀硬件的改進和提升,成本較高,并且效果相對有限.另一種行之有效的方式是通過設計特定的脈沖序列來改變譜峰分布或呈現形式,提升譜圖分辨率.
目前,用于改善1H NMR譜峰擁擠的脈沖序列優(yōu)化主要集中于純化學位移方法[9-11],這一方法的原理是消除偶合裂分,將多重譜峰簡化為單峰,從而解決譜峰擁擠的問題.經歷了幾十年的探索和改進,相關的研究者已開發(fā)了多種不同的純化學位移方法.而近期相關的主流技術是將選擇性翻轉模塊與自旋回波模塊相結合,實現偶合演化重聚;再通過干涉圖或實時采樣重構出純化學位移演化的信號;最終經過傅里葉變換得到相敏一維純化學位移譜圖.純化學位移技術能夠大幅提高一維1H NMR譜圖的分辨率,克服譜峰擁擠的問題,實現復雜樣品譜峰的正確歸屬.然而,純化學位移實驗是以犧牲偶合為代價實現,但偶合裂分往往包含偶合常數、偶合關系等有助于結構解析和構象分析的有效信息[2,12-16].如何在獲得純化學位移譜圖的同時,又保留偶合信息,對于1H NMR譜圖在復雜樣品體系的更廣泛應用具有重要意義,非常值得關注和研究.
二維分解(2DRES)譜[17-19]是一種能直觀滿足上述要求的波譜方法,其常用序列如圖1所示.它能夠將化學位移和偶合信息分解到兩個不同維度,在得到純化學位移信息的同時,保留偶合信息,適用于譜峰擁擠嚴重的復雜樣品的分析[20-23].然而,由于2DRES譜間接維的自旋回波演化形式往往會導致譜峰信號的相位扭曲,這一相位扭曲無法通過相位校正來消除,因而只能使用絕對值模式顯示,從而導致譜峰強度失真和譜圖分辨率降低,并造成譜線展寬的問題.特別在復雜樣品檢測時,2DRES譜在絕對值模式下進行45?譜圖旋轉處理后,產生的譜峰變形會影響譜圖分析和偶合常數的精確測量[24].盡管45?譜圖旋轉后的2DRES譜在水平1=0軸上表現出特征對稱性,可通過沿1=0軸的“對稱化數據”操作來去除雜峰,然而其代價是會降低某些信號的強度,同時可能會產生偽峰.如圖2(a)所示的雌二醇的1D1H NMR譜圖中,譜峰嚴重重疊.其2DRES譜[圖2(b)]經過45?譜圖旋轉和“對稱化數據”操作,已將化學位移和偶合信息分解到兩個正交維度.對于不擁擠區(qū)域的信號,如H2.52處譜峰,其化學位移和偶合信息都能得到很好地歸屬和測量.但對于H1.31~1.76的譜峰來說,其信號呈現出譜線展寬、分辨率下降的問題,無法正確獲得所需要的信息.
圖1 2DRESNMR實驗的脈沖序列示意圖
Fig. 1 Pulse sequence diagram of 2DRESNMR experiments
圖2 500 MHz Varian譜儀所采集的雌二醇(溶于DMSO-6,濃度為200 mmol/L)的(a) 1D1H NMR譜和(b) 2DRES譜
Fig. 2 (a)1H NMR and (b) 2D-resolved spectra of 200 mmol/L estradiol (dissolved in DMSO-6) acquired on Varian spectrometer at 500 MHz
針對2DRES譜圖相位扭曲的問題,可利用偽回波加權函數來直接抑制譜圖信號中的色散成分,從而保留吸收線形信號[25],但其代價是信號強度失真.也可以通過不需要傅里葉變換的方法來重建相敏2DRES譜圖,例如正則求解變換[26,27]和濾波對角化[28,29]方法.另一種解決相位扭曲的常用方法是將型和型兩種正交譜圖相結合,從而獲得相敏2DRES譜[30].但2DRES實驗的脈沖序列沒有混頻演化周期,單次實驗不可能通過直接相位循環(huán)設計實現型和型譜的相干轉移路徑切換.現有的解決方法是在2DRES脈沖序列中引入-filter和片層選擇(Zangger-Sterk,ZS)[31]等特殊的脈沖模塊,并進行兩次獨立的實驗,最終獲得純吸收模式的相敏2DRES譜,如Pell-Keeler方法[32]和梯度編碼選擇重聚(Gradient-encoded SElective ReFocusing,G-SERF)方法[33,34].此外,通過引入PSYCHE(Pure Shift Yielded by CHirp Excitation)模塊[35]來替代-filter或ZS模塊的TSE (Triple Spin-Echo)-PSYCHE 2D[36]或PSYCHEDELIC(Pure Shift Yielded by CHirp Excitation to DELiver Individual Couplings)[37],也能獲得純吸收模式的2DRES譜效果.相比于結合-filter和ZS的相敏2DRES譜,使用TSE-PSYCHE-2D和PSYCHEDELIC獲得的2DRES譜具有更高的信噪比.但以上這些相敏RES譜仍需要通過45?譜圖旋轉操作來實現化學位移和偶合信息的分離.作為TSE-PSYCHE 2D的擴展方法,-filter TSE-PSYCHE 2D[24]和PS(pure shift)-TSE-PSYCHE 2D[38]被用于獲取正交模式相敏2DRES譜.這種譜圖模式由Nagayama[39]首次提出,能夠直接分離化學位移和偶合,避免45?譜圖旋轉操作.然而,為了得到純化學位移維度,需要增加一個額外的間接維,因此-filter TSE-PSYCHE 2D和PS-TSE-PSYCHE 2D這兩種方法都不可避免地需要冗長的采樣時間.上述所有相敏2DRES譜均是通過型和型兩次正交譜圖相結合實現的,這就要求兩個獨立實驗的信號峰值強度必須保持一致,以保證色散成分完全消除,然而這一基本要求可能會增加實驗操作的復雜性.
除了相位扭曲,強偶合偽峰也是RES譜存在的固有問題.強偶合偽峰是強偶合自旋體系在自旋回波模塊(1/2-π-1/2)中π脈沖的混合作用下產生的.雖然強偶合效應并非RES譜想要獲取的信息,但它通常與RES譜所期望獲取的信號共享相干轉移路徑,因而不能通過常規(guī)的相位循環(huán)設計來消除.一種基于1周期演化模塊設計的改進型2DRES譜技術可以用來抑制這些強偶合偽峰[40],然而這一方法會增加采樣時間.針對強偶合偽峰非對稱多重結構,一種結合對稱化處理的雙自旋回波2DRES譜方法被提出用于減少這些強偶合偽峰[40].由于一些對稱的頻率無法被移除,因而這一對稱化處理方法往往不適用于復雜樣品體系.此外,在實際2DRES譜應用中,采樣效率也是需要考慮的另一重要因素[41-43].與其他2D NMR實驗相比,常規(guī)的2DRES譜間接維譜寬相對較窄,僅覆蓋了裂分頻率范圍,在采樣效率上具有一定優(yōu)勢.然而,在強偶合體系應用中,往往需要采樣足夠多的間接維演化點數來獲得高分辨率的譜圖,以保證強偶合裂分的精確測量,這就大幅延長了2DRES譜的采樣時間.
針對常規(guī)2DRES譜中所遇到問題,為滿足2DRES譜應用于復雜樣品體系的需求,我們小組基于純化學位移演化模塊和回波鏈采樣模塊,提出了正交相敏2DRES譜方法,包括RASA2D(Rapid Absorption-mode and Strong-coupling Artifact-reduction 2D-resolved spectroscopy)、OPAM-2D(Orthogonal-Pattern Absorption-Mode 2D-resolved spectroscopy)和HR-G-SERF(High-Resolution Gradient-encoded SElective ReFocusing)/AH-G-SERF(Accelerated High-resolution Gradient-encoded SElective ReFocusing).下文我們對這三種正交相敏2DRES譜方法進行回顧,重點闡述其方法原理和應用特性.
RASA2D是一種在高采樣效率前提下,能克服強偶合的正交相敏2DRES譜方法[44],其脈沖序列如圖3所示.該脈沖序列融合了PSYCHE純化學位移模塊和回波鏈采樣模塊,即將一維PSYCHE序列的采樣部分替換成回波鏈采樣模塊,從而得到正交2DRES譜,不需要45?譜圖旋轉操作,即可直接將偶合和化學位移信息分解在兩個正交的維度,相當于每個譜峰的化學位移點在其相應垂直方向上添加了相應的偶合裂分信息.此外,還可通過在第一個非選擇性π/2脈沖前添加一個預飽和壓水(Presat)模塊來實現一些實際應用所需的壓水操作.這里的PSYCHE模塊包含了一個非選擇性π/2激發(fā)脈沖、一個被二等分的間接演化周期1、一個具有相干選擇梯度的非選擇性π/2脈沖和一對具有相干選擇梯度且匹配弱梯度的掃頻Chirp脈沖.回波序列采樣模塊由直接采樣周期2和π脈沖組成,包含奇數和偶數采樣部分,并重復次.RASA2D數據采樣完后,需要經過后續(xù)數據重構和相應相敏處理來最終得到相敏2DRES譜圖.在數據重構過程中,通常只用RASA2D數據的奇數回波采樣部分,先經過數據拼接得到直接維純化學位移數據,接著按照22間接維演化時間間隔,對拼接后的一維純化學位移數據進行排序,最終重構得到2DRES譜數據.這一重構二維數據直接經過二維傅里葉變換即可得到正交2DRES譜,即直接維包含純化學位移信息,而間接維包含偶合信息.但這個二維譜信號在兩個不同維度上均受到相位扭曲的影響,我們設計了特定數據相敏處理操作來獲得最終的相敏2DRES譜,具體流程如圖3(b)所示.首先,傅里葉變換后的原始正交2DRES譜經過1¢維反轉操作,并與原有譜圖進行相加,可直接消除1¢維信號相位扭曲,即消除信號色散部分而保留吸收信號部分;接著,沿著2¢維進行相應相位校正,得到純吸收線形顯示的相敏2DRES譜.
圖3 基于PSYCHE的正交相敏2DRES譜—RASA2D. (a) 脈沖序列,由1D PSYCHE和回波鏈采樣模塊組成.在第一個非選擇性π/2脈沖之前適用了一個預飽和(Presat)模塊進行水峰抑制.長條形脈沖分別代表π/2和π脈沖,兩個帶有斜箭頭的半圓形代表小翻轉角(<< π/2)的掃頻方向相反的脈沖,1和2是相干選擇梯度,3是與掃頻脈沖配合使用的弱梯度,1是間接維演化時間,2是直接維采樣時間,SW1是1對應的譜寬,是相鄰兩個π脈沖之間的間隔.(b)以二維相敏譜中的單峰信號為例展示數據相敏處理流程,包括關于1¢=0軸翻轉原始譜圖后,將其與原始譜圖相加,并將相加后的譜圖沿2¢維進行一維相位校正可得相敏結果(摘自文獻[44])
Fig. 3 PSYCHE based orthogonal-pattern phase-sensitive-resolved spectroscopy, RASA2D. (a) Pulse sequence diagram constituted of 1D PSYCHE and echo-trainacquisition module. A presaturation (Presat) module is adopted before the first nonselective π/2 pulse for water suppression. Vertical bars indicate nonselective π/2 and π pulses, two semicircle shaped pulses with diagonal arrows are frequency-swept chirp pulses with small flip angle? π/2,1and2are coherence selection gradients,3is a weak gradient matching with chirp pulses,1is the indirect evolution period and2is the direct acquisition period, SW1 is the spectral width corresponding to1, andis the time interval between two adjacent π pulses. (b) The procedure of phase-sensitive processing is illustrated using a singlet peak in a 2D phase-sensitive spectrum, including preserving an original spectrum and generating an1¢-reversed spectrum, summing these two spectra, and performing 1D phase correction along the2¢dimension (Excerpted from Ref. [44])
圖4所示為RASA2D方法應用于具有小偶合常數體系和復雜樣品體系的實驗結果[44].使用RASA2D所得到2DRES譜圖中,所有譜峰信號均顯示為吸收線形模式,相比于傳統(tǒng)2DRES譜的絕對值顯示模式,譜圖分辨率提高了2倍.由于采用回波鏈采樣模式,即在回波鏈采樣過程實現偶合演化,RASA2D只需要單次實驗就可以記錄完整偶合演化過程,不需要通過相位循環(huán)設計實現型和型譜的相干轉移路徑切換,避免了冗長間接維點數的遞進演化.因此RASA2D可在偶合維度上實現非常高的分辨率,特別有利于小偶合常數的測量.如圖4左側所示,利用RASA2D得到的2DRES譜可以測量在常規(guī)1D NMR譜無法獲得的偶合常數0.5 Hz和0.8 Hz,其實驗參數設置如下:非選擇性π/2脈沖寬度為12.8 μs;每個Chirp脈沖長度為15 ms;掃頻寬度為10 kHz;翻轉角度為12?;相干選擇梯度1和2的強度分別為0.20 T/m和0.32 T/m,持續(xù)時間為1.5 ms;弱梯度3的強度為0.009 T/m;采樣時間2為11.1 ms;回波鏈采樣模塊的重復次數為80,重建的偶合維度的譜寬為45 Hz(1/(22));間接維譜寬SW1和SW2分別為90 Hz和9 kHz;脈沖重復時間為2.0 s;1增量的數量和實驗累加次數分別為60和2.RASA2D應用于復雜樣品體系時也獨具優(yōu)勢,如圖4右側所示,RASA2D方法用于高分辨檢測復雜的雌二醇樣品時,在直接維顯示了相敏純化學位移譜,在間接維垂直正交顯示與分子結構解析相關的偶合裂分信息.與前一實驗不同的參數設置如下:采樣時間2為10 ms;回波鏈采樣模塊的重復次數為50,重建的偶合維度的譜寬為50 Hz;間接維譜寬SW1和SW2分別設為100 Hz和10 kHz;脈沖重復時間為1.5 s;1增量的數量和實驗累加次數分別設為50和4.
圖4 RASA2DJ方法應用于具有小J偶合常數體系和復雜樣品體系.左側為溶于DMSO-d6的甲基丙烯酸丁酯的1D NMR譜和RASA2DJ譜,RASA2DJ的總采樣時間為4 min;右側為溶于DMSO-d6的雌二醇(部分區(qū)域)的1D NMR譜和RASA2DJ譜,RASA2DJ的總采樣時間為5 min(根據文獻[44]修改)
基于PSYCHE的正交相敏2DRES方法通常僅適用于均勻磁場環(huán)境.然而,NMR實際應用于非均相生物組織和原位電化學體系時,磁場不均勻性往往很難避免,這就導致2DRES譜的譜峰沿化學位移維度不均勻展寬,給化學位移和偶合信息的測量帶來挑戰(zhàn).為消除這種不均勻譜線展寬效應,一系列基于自旋回波相關(spin-echo correlation,SECSY)模塊[45]和分子間多量子相干演化(intermolecular multiple-quantum coherence,iMQCs)[46]的高分辨2DRES方法相繼被提出.雖然這些高分辨方法能應用于不均勻磁場,但它們通常仍無法獲得相敏模式的2DRES譜圖.
基于ZS純化學演化模塊與回波鏈采樣模塊,我們提出了一種稱為OPAM-2D[47]的改進2DRES方法,可用于不均勻磁場環(huán)境下正交相敏2DRES譜的采集,其脈沖序列如圖5所示.圖5(a)是單層激發(fā)版本的OPAM-2D序列;圖5(b)是多層激發(fā)版本的OPAM-2D序列,使用傅里葉相位編碼方法進行多層信號解碼.與RASA2D方法不同的是,OPAM-2D方法將一對掃頻Chirp脈沖換成了一個選擇性π脈沖,由選擇性π脈沖和弱梯度結合使用的模塊實現片層選擇.最終,譜圖上的每個信號都來源于一個與位置相關的特定小體素片層,這是OPAM-2D能夠克服不均勻場的原因之一.另一個原因是這一方法使用了回波鏈采樣模塊,這一模塊能夠重聚在采樣期間的磁場不均勻效應,減少了不均勻磁場對譜圖的影響.圖6為使用常規(guī)2DRES方法與OPAM-2D方法在不均勻磁場環(huán)境下獲得的25 mmol/L溶于DMSO-6的阿奇霉素樣品的譜圖對比[47].由圖6(a)可以看出,由于磁場不均勻效應導致譜線大幅增寬,使用常規(guī)2DRES方法獲得的譜圖幾乎無法提供有用的信息.而使用單層激發(fā)OPAM-2D方法在不均勻場下采集的2DRES譜[圖6(b)]以正交相敏模式顯示,在直接維可獲得純化學位移譜峰信息,而間接維給出偶合信息,該實驗參數設置如下:相干選擇梯度1、2和3的強度為11 G/cm(1 G/cm=10-4T/cm)、11 G/cm和-22 G/cm,持續(xù)時間為1.0 ms;弱梯度z的強度為0.37 G/cm;相干選擇梯度4的強度為0 G/cm;單色π脈沖寬度為13.9 ms;1增量的數量為40;單個回波鏈采樣模塊的采樣時間為10.25 ms;回波鏈采樣模塊的重復次數為50;直接維譜寬SW和間接維譜寬SW1分別設為10 kHz和100 Hz.
圖5 (a)單層激發(fā)和(b)多層激發(fā)的OPAM-2D實驗的脈沖序列示意圖.該序列由純化學位移ZS模塊和回波鏈采樣模塊組成.綠色填充代表π/2和π非選擇性脈沖;紅色填充代表單色π脈沖;黃色填充代表多色π/2和π脈沖;z為與空間選層脈沖相匹配的弱梯度;1、2、3和4是相干選擇路徑梯度;m,n為附加的傅里葉編碼相位;序列的相位為:1(, ?)、2()、3(,,,,-,-,-,-)、rec(,,,);4在回波鏈采樣模塊中,遵循(,,-,-)的相位(摘自文獻[47])
Fig. 5 Pulse sequences for (a) single-band and (b) multi-band OPAM-2Dexperiments. The sequence is constituted of ZS and echo-trainacquisition modules. Green bars denote π/2 and π nonselective pulses, respectively. The red-shaped pulse represents monochromatic π pulse. The yellow-shaped pulses represent polychromatic π/2 and π pulses.zindicates the weak gradient for extracting spatial slice-selective signals;1,2,3,4are used for coherence pathway selection.m,nis the appended Fourier encoding phase. Phase cycling:1(, ?),2(),3(,,,, ?, ?, ?, ?),rec(,,,).4is varied as (,, ?, ?) in the echo-trainacquisition module (Excerpted from Ref. [47])
圖6 在不均勻磁場環(huán)境下獲得的(a)常規(guī)2D JRES譜和(b)單層激發(fā)OPAM-2DJ譜(根據文獻[47]修改)
OPAM-2D方法能夠記錄正交模式2DRES譜,純化學位移和偶合信息分別在正交維上呈現,避免了45?譜圖旋轉.在采樣效率方面,亦能夠在幾分鐘內實現快速2D采樣.同時,得到的OPAM-2D譜圖可以相敏模式顯示,減少的強偶合偽峰帶來的影響.相比于RASA2D方法,OPAM-2D還能克服沿方向的主磁場的不均勻性,從而實現非理想磁場條件下復雜樣品體系偶合信息測量與多重結構的分析,使獲得具有固有磁化率變化的生物組織的檢測分析成為可能.
2DRES譜可用于提取和識別重疊區(qū)域每個質子的多重偶合信息,無需預先獲知質子準確化學位移信息就能實現其偶合常數的測量.然而這一方法只能獲得特定質子的所有偶合信息.為了提取特定相互作用下單個偶合信息,Berger等[48]提出了雙重選擇重聚(SElective ReFocusing,SERF)方法,每次實驗所提取的偶合信息僅限于所選擇的兩個自旋偶合質子之間.若要得到全部的偶合網絡信息,需要重復多次實驗,采樣效率相對較低.此后,G-SERF[49]被提出來用于在一次實驗中得到與選定質子偶合相關的所有偶合信息,大幅度提升了實驗效率.Clean-G-SERF[50]是G-SERF的改進版本,可用于消除軸峰和不需要的偶合信號,簡化偶合網絡信息表達.此外,SECT(SElective Constant-Time)[51,52]方法也可以在高信噪比的情況下顯示出理想的偶合信息.目前,這些SERF方法應用于復雜樣品體系時,能起到簡化譜峰信息、實現特定偶合網絡編輯譜功能的作用.除譜峰擁擠外,空間磁場非均勻變化也是降低2D編輯譜譜圖分辨率、阻礙其應用的另一因素.在液態(tài)均相樣品實驗中,可通過勻場技術來使外部磁場達到均勻狀態(tài).然而,在非均相半固態(tài)樣品應用測量時,例如具有固有磁化率變化的生物組織等,普遍存在難以消除的磁場不均勻性,即使對于均勻樣品,輕微的磁場擾動也能導致譜圖信息模糊,干擾特征譜峰信息識別,尤其是對于復雜樣品體系.理論上,基于G-SERF模塊的方法可以解決沿梯度編碼方向(通常為軸)的磁場空間非均勻變化問題.然而,這些方法在不利磁場條件下的應用都還尚未得到深入研究.
基于此,我們小組提出了可應用于不均勻磁場環(huán)境下獲得高分辨2D-編輯譜的方法,包括基于3D采樣的HR-G-SERF方法和基于2D快速采樣的AH-G-SERF方法,同時解決2D-編輯譜應用中存在的譜峰擁擠和由磁場不均勻性導致的譜圖分辨率下降的問題,而且最終得到的譜圖以正交相敏顯示,避免常規(guī)2D編輯譜所需的45?譜圖旋轉操作[53].圖7(a)為HR-G-SERF脈沖序列,其信號演化隨1增量的變化僅受到所選質子與其偶合核之間的偶合調制作用,從而在1維上揭示了偶合網絡關系.在2維中,純化學位移隨變量2演化消除偶合作用.最終在兩個正交維度(1和2)上得到其偶合信息和純化學位移信息.再將譜圖進行相應相敏處理,即關于1=0軸對稱后與原譜圖相加,即可得到相敏2D-編輯譜.該序列中使用了ZS模塊,能實現小體素片選信號的積分,因而能在一定程度上抑制磁場不均勻性對譜圖的干擾.圖7(b)為AH-G-SERF脈沖序列,由ZS模塊和G-SERF回波鏈模塊組成.通過使用回波鏈,AH-G-SERF將2D-編輯譜實驗中3D采樣壓縮為2D采樣,進一步提高了采樣效率.
上述兩種高分辨2D-編輯譜方法可以在一次實驗中確定與選定質子相關的整個偶合網絡;同時能夠將純吸收模式2D編輯譜變換成正交模式,讓純化學位移沿直接維分布,而偶合信息沿正交間接維分布,便于在擁擠NMR譜中進行偶合網絡信息測量;而且,能夠克服方向磁場不均勻性,可用于非均勻相樣品體系,如生物組織的高分辨檢測[46,54-56].圖8為使用HR-G-SERF方法在均勻和非均勻磁場條件下獲得的250 mmol/L溶于DMSO-6的雌二醇樣品的-編輯譜[53].結果顯示,在均勻場和不均勻場下,復雜樣品的偶合常數都能夠得到精確測量,相應的偶合網絡關系也能夠得到正確歸屬.在3D HR-G-SERF實驗[對應圖8(c)、8(d)、8(f)、8(g)的實驗]中,實驗參數設置如下:相干選擇梯度1、2的強度為3.7 G/cm、7.3 G/cm,持續(xù)時間為0.5 ms;弱梯度z的強度為0.37 G/cm;直接維譜寬SW為5 000 Hz,采樣點數為3 968;對應偶合演化的間接維譜寬SW1設為20 Hz,1增量的數量設為40;對應純化學位移演化的間接維譜寬SW2設為50 Hz,2增量的數量設為25.用于重聚激發(fā)H-9及H-15的選擇性脈沖寬度設為25 ms,與弱梯度z一起的選擇性脈沖寬度設為25 ms;掃描間延遲時間1設為1s;空掃次數設為16;實驗累加次數設為8;總實驗時間約為4 h 30 min.在僅遞增1的HR-G-SERF實驗中,與3D HR-G-SERF實驗不同的實驗參數設置如下:直接維譜寬SW設為10 000 Hz,采樣點數為20 000;對應偶合演化的間接維譜寬SW1設為20 Hz,1增量的數量設為30,總實驗時間為6 min.
圖7 應用于不均勻磁場下的高分辨2D J-編輯譜方法. (a)基于3D采樣的HR-G-SERF實驗序列,相位循環(huán):Φ1 (x, ?x), Φ2 (x), Φ3 (x, x, y, y, ?x, ?x, ?y, ?y), Φrec (x, ?x, ?x, x). (b)基于2D快速采樣的AH-G-SERF實驗序列,由ZS模塊和G-SERF回波鏈模塊組成設計的,相位循環(huán):Φ1=Φ2=Φ3=Φrec=x,Φ4在J編輯回波鏈采樣模塊中以(x, x, x, x, -x, -x, -x, -x)N/2為循環(huán).細綠色長條和粗綠色長條分別表示π/2和π非選擇性脈沖,藍色和紅色填充形狀表示的分別是用于選擇特定質子和空間編碼的π選擇性脈沖;Gz為空間編碼的弱梯度,G1、G2、G3和G4為相干選擇梯度(摘自文獻[53])
圖8 不同磁場環(huán)境下,使用HR-G-SERF方法獲得的雌二醇樣品的高分辨2D J-編輯譜. (a)分子結構信息和所觀察的偶合網絡;(b~d)均勻磁場下的1D NMR譜、激發(fā)H-9及H-15a的2D J-編輯譜;(e~g)不均勻磁場下的1D NMR譜、激發(fā)H-9及H-15a的2D J-編輯譜(根據文獻[53]修改)
2DRES譜可通過分離化學位移和偶合信息,從而解決1D1H NMR譜應用于復雜體系時遇到的譜峰擁擠問題.本文首先回顧了一系列相關的2DRES譜方法,然后針對傳統(tǒng)2DRES譜方法遇到的困境,詳細介紹了三種基于純化學位移的正交相敏2DRES譜的原理和應用.相比于常規(guī)2DRES譜,正交相敏2DRES譜方法表現出如下優(yōu)勢:一方面能夠避免45?譜圖旋轉操作;另一方面譜圖以相敏模式顯示,提高譜圖分辨率;同時,這些方法也能一定程度上避免強偶合偽峰的產生;并且,可應用于非均勻磁場環(huán)境.相關實驗也證明了正交相敏2DRES方法可用于生物組織和復雜樣品體系,以及強偶合體系的偶合信息的準確測量.
但由于純化學位移信號演化本身固有的信號強度低的缺點,上述正交相敏2DRES譜也不可避免地存在信噪比損失的問題.如何在不降低采樣效率的前提下,提高譜圖的靈敏度,將成為擴展其應用范圍的關鍵.另外,數據拼接過程中存在著調制殘留,使得譜圖中也會有偽峰的存在,如何去除正交相敏2DRES譜中的偽峰,也值得研究.對于回波鏈來說,由于只使用了奇數段,所采樣數據只有50%左右的使用率,對于弛豫時間很短的樣品來說,這一方法的使用會受到一定程度限制.以上這些缺陷都可通過優(yōu)化設計脈沖序列,或結合有效的數據后處理方法來進一步解決.
無
[1] DI CARO D, LIGUORI C, PIETROSANTO A, et al. Quality assessment of the inshell hazelnuts based on TD-NMR analysis[J]. IEEE Trans Instrum Meas, 2020, 69(6): 3770-3779.
[2] EVANGELIDIS T, NERLI S, NOVACEK J, et al. Automated NMR resonance assignments and structure determination using a minimal set of 4D spectra[J]. Nature Commun, 2018, 9(1): 1-13.
[3] TOYAMA Y, KANO H, MASE Y, et al. Dynamic regulation of GDP binding to g proteins revealed by magnetic field-dependent NMR relaxation analyses[J]. Nature Commun, 2017, 8(1): 1-15.
[4] HUANG Y Q, ZHAN H L, YOU X Q, et al. A pure shift-based NMR method for transverse relaxation measurements on complex samples[J]. IEEE Trans Instrum Meas, 2020, 69(1): 201-211.
[5] DU G F, LIN J, ZHANG J, et al. Study on shortening the dead time of surface nuclear magnetic resonance instrument using bipolar phase pulses[J]. IEEE Trans Instrum Meas, 2020, 69(4): 1268-1274.
[6] FU R Q, MIAO Y M, QIN H J, et al. Probing hydronium ion histidine NH exchange rate constants in the m2 channel via indirect observation of dipolar-dephased15N signals in magic-angle-spinning NMR[J]. J Amer Chem Soc, 2016, 138(49): 15801-15804.
[7] FRYDMAN L, SCHERF T, LUPULESCU A. The acquisition of multidimensional NMR spectra within a single scan[J]. Proc Nat Acad Sci USA, 2020, 99(25): 15858-15862.
[8] CHEN X L, LV W, SU Q C. Conversion of lignocellulose studied by nuclear magnetic resonance[J]. Chinese J Magn Reson, 2021, 38(2): 277-290.
陳曉麗, 呂微, 蘇秋成, 等. 核磁共振技術在生物質轉化中的應用[J]. 波譜學雜志, 2021, 38(2): 277-290.
[9] ZANGGER K. Pure shift NMR[J]. Prog Nucl Magn Reson Spectrosc, 2015, 86-87: 1-20.
[10] ZHOU Q J, XIANG J F, TANG Y L, et al. Pure shift proton NMR spectroscopy and its application[J]. Chinese J Magn Reson, 2016, 33(3): 502-513.
周秋菊, 向俊峰, 唐亞林, 等. 純位移核磁共振氫譜及其應用[J]. 波譜學雜志, 2016, 33(3): 502-513.
[11] LIN X Q, LI H, ZHAN H L, et al. High-resolution pure shift NMR spectroscopy and its applications[J]. Chinese J Magn Reson, 2019, 36(4): 425-436.
林曉晴, 李弘, 詹昊霖, 等. 高分辨率核磁共振純化學位移譜新方法及其應用[J]. 波譜學雜志, 2019, 36(4): 425-436.
[12] HUNG I, GAN Z H. High-resolution NMR of=3/2 quadrupole nuclei by detection of double-quantum satellite transitions via protons[J]. J Phys Chem Lett, 2020, 11(12): 4734-4740.
[13] BIFULCO G, DAMBRUOSO P, GOMEZ-PALOMA L, et al. Determination of relative configuration in organic compounds by NMR spectroscopy and computational methods[J]. Chem Rev, 2007, 107(9): 3744-3779.
[14] THOMAS W A. Unravelling molecular structure and conformation-the modern role of coupling constants[J]. Prog Nucl Magn Reson Spectrosc, 1997, 30: 183-207.
[15] REIF B, HENNIG M, GRIESINGER C. Direct measurement of angles between bond vectors in high-resolution NMR[J]. Science, 1997, 276(5316): 1230-1233.
[16] LI Y J, YANG H J, LIU J H, et al. Assignments of NMR spectral data of a novel carbazole-triazinoindole based-acylhydrazone derivative[J]. Chinese J Magn Reson, 2020, 37(4): 496-504.
李英俊, 楊鴻境, 劉季紅, 等. 基于咔唑-三嗪并吲哚的-酰腙衍生物的NMR數據歸屬[J]. 波譜學雜志, 2020, 37(4): 496-504.
[17] AUE W P, KARHAN J, ERNST R R. Homonuclear broad band decoupling and two-dimensional-resolved NMR spectroscopy[J]. J Chem Phys, 1976, 64: 4226-4227.
[18] KIKUCHI J, TSUBOI Y, KOMATSU K, et al. Spin couple: development of a web tool for analyzing metabolite mixtures via two-dimensional-resolved NMR database[J]. Anal Chem, 2016, 88(1): 659-665.
[19] LUPULESCU A, AHARON H, FRYDMAN L. Two-dimensional RF pulses: A new approach to selectively exciting-coupled spins in nuclear magnetic resonance[J]. J Chem Phys, 2013, 139(14): 144204.
[20] ESPINDOLA A P D M, CROUCH R, DEBERGH J R, et al. Deconvolution of complex NMR spectra in small molecules by multi frequency homonuclear decoupling (MDEC)[J]. J Amer Chem Soc, 2009, 131(44): 15994-15995.
[21] YILMAZ A, NYBERG N T, JAROSZEWSKI J W. Metabolic profiling based on two-dimensional-resolved1H NMR data and parallel factor analysis[J]. Anal Chem, 2011, 83(21): 8278-8285.
[22] LUDWIG C, VIANT M R. Two-dimensional-resolved NMR spectroscopy: review of a key methodology in the metabolomics toolbox[J]. Phytochem Anal, 2010, 21(1): 22-32.
[23] RACHINENI K, KAKITA V M R, DAYAKA S, et al. Precise determination of enantiomeric excess by a sensitivity enhanced two-dimensional band-selective pure-shift NMR[J]. Anal Chem, 2015, 87(14): 7258-7266.
[24] KIRALY P, FOROOZANDEH M, NILSSON M, et al. Anatomising proton NMR spectra with pure shift 2D-spectroscopy: A cautionary tale[J]. Chem Phys Lett, 2017, 683: 398-403.
[25] BAX A, FREEMAN R, MORRIS G A. A simple method for suppressing dispersion-mode contributions in NMR spectra: The “pseudo echo”[J]. J Magn Reson, 1981, 43(2): 333-338.
[26] ARMSTRONG G S, CHEN J H, CANO K E, et al. Regularized resolvent transform for direct calculation of 45° projections of 2Dspectra[J]. J Magn Reson, 2003, 164(1): 136-144.
[27] CHEN J H, SHAKA A J, MANDELSHTAM V A. RRT: The regularized resolvent transform for high-resolution spectral estimation[J]. J Magn Reson, 2000, 147(1): 129-137.
[28] MANDELSHTAM V A, TAYLOR H S, SHAKA A J. Application of the filter diagonalization method to one- and two-dimensional NMR spectra[J]. J Magn Reson, 1998, 133(2): 304-312.
[29] HU H T, DE ANGELIS A A, MANDELSHTAM V A, et al. The multidimensional filter diagonalization method - II. Application to 2D projections of 2D, 3D, and 4D NMR experiments[J]. J Magn Reson, 2000, 144(2): 357-366.
[30] KEELER J, NEUHAUS D. Comparison and evaluation of methods for two-dimensional NMR spectra with absorption-mode lineshapes[J]. J Magn Reson, 1985, 63(3): 454-472.
[31] ZANGGER K, STERK H. Homonuclear broadband-decoupled NMR spectra[J]. J Magn Reson, 1997, 124(2): 486-489.
[32] PELL A J, KEELER J. Two-dimensional-spectra with absorption-mode lineshapes[J]. J Magn Reson, 2007, 189(2): 293-299.
[33] MISHRA S K, LOKESH N, SURYAPRAKASH N. Clean G-SERF an NMR experiment for the complete eradication of axial peaks and undesired couplings from the complex spectrum[J]. RSC Adv, 2017, 7(2): 735-741.
[34] LOKESH N, CHAUDHARI S R, SURYAPRAKASH N. Quick re-introduction of selective scalar interactions in a pure-shift NMR spectrum[J]. Chem Commun, 2014, 50(98): 15597-15600.
[35] FOROOZANDEH M, ADAMS R W, MEHARRY N J, et al. Ultrahigh-resolution NMR spectroscopy[J]. Angew Chem Int Ed, 2014, 53(27): 6990-6992.
[36] FOROOZANDEH M, ADAMS R W, KIRALY P, et al. Measuring couplings in crowded NMR spectra: pure shift NMR with multiplet analysis[J]. Chem Commun, 2015, 51(84): 15410-15413.
[37] SINNAEVE D, FOROOZANDEH M, NILSSON M, et al. A general method for extracting individual coupling constants from crowded1H NMR spectra [J]. Angew Chem Int Ed, 2016, 55(3): 1090-1093.
[38] SINNAEVE D. Clean pure shift 2D-resolved spectroscopy[J]. Magn Reson Chem, 2018, 56(10): 947–953.
[39] NAGAYAMA K. Spin decoupling in two-dimensional-resolved NMR spectroscopy[J]. J Chem Phys, 1979, 71: 4404–4415.
[40] THRIPPLETON M J. EDDEN R A E, KEELER J. Suppression of strong coupling artefacts in-spectra[J]. J Magn Reson, 2005, 174(1): 97-109.
[41] GAL M, MISHKOVSKY M, FRYDMAN L. Real-time monitoring of chemical transformations by ultrafast 2D NMR spectroscopy[J]. J Amer Chem Soc, 2006,128(3): 951-956.
[42] VIANT M R. Improved methods for the acquisition and interpretation of NMR metabolomic data[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2003, 310(3): 943-948.
[43] TAL A, FRYDMAN L. Single-scan multidimensional magnetic resonance[J]. Prog Nucl Magn Reson Spectrosc, 2010, 57(3): 241-292.
[44] HUANG Y Q, YANG Y, CAI S H. General two-dimensional absorption-mode?resolved NMR spectroscopy[J]. Anal Chem, 2017, 89(23): 12646-12651.
[45] PELUPESSY P, RENNELLA E, BODENHAUSEN G. High-resolution NMR in magnetic fields with unknown spatiotemporal variations[J]. Science, 2009, 324(5935): 1693-1697.
[46] FUGARIU I, BERMEL W, LANE D, et al. In-phase ultra high-resolution inNMR[J]. Angew Chem Int Ed, 2017, 56(22): 6324-6328.
[47] ZHAN H L, HUANG Y Q, CHEN Z. An orthogonal-pattern absorption-mode 2D-resolved NMR spectroscopy for analyses on complex samples[J]. IEEE Trans Instrum Meas, 2021, 70:6004509.
[48] FACKE T, BERGER S. SERF, a new method for H, H spin-coupling measurement in organic chemistry[J]. J Magn Reson Ser A, 1995, 113(1): 114-116.
[49] GIRAUD N, BEGUIN L, COURTIEU J, et al. Nuclear magnetic resonance using a spatial frequency encoding: application to-edited spectroscopy along the sample[J]. Angew Chem Int Ed, 2010, 49(20): 3481-3484.
[50] MISHRA S K, LOKESH N, SURYAPRAKASH N. Clean G-SERF an NMR experiment for the complete eradication of axial peaks and undesired couplings from the complex spectrum[J]. RSC Adv, 2017, 7(2): 735-741.
[51] LIN L J, WEI Z L, LIN Y Q, et al. MeasuringHHvalues with a selective constant-time 2D NMR protocol[J]. J Magn Reson, 2016, 272: 20-24.
[52] CHEN J Y, ZENG Q, LIN Y Q, et al. Simultaneous multi-slice selective constant-time-resolved spectroscopy for measuringvalues[J]. Chinese J Magn Reson, 2019, 36(4): 456-462.
陳金永, 曾慶, 林雁勤, 等. 用于測量偶合常數的同時多層選擇性恒時分解譜的方法[J]. 波譜學雜志, 2019, 36(4): 456-462.
[53] ZHAN H L, HUANG Y Q, WANG X C, et al. Highly efficient determination of complex NMR multiplet structures in inhomogeneous magnetic fields[J]. Anal Chem, 2021, 93: 2419-2423.
[54] PELUPESSY P, RENNELLA E, BODENHAUSEN G. High-resolution NMR in magnetic fields with unknown spatiotemporal variations[J]. Science, 2009, 324(5935): 1693-1697.
[55] GAN Z H, HUNG I, WANG X L, et al. NMR spectroscopy up to 35.2 T using a series-connected hybrid magnet[J]. J Magn Reson, 2017, 284: 125-136.
[56] LAMBERT J, HERGENRODER R, SUTER D, et al. Probing liquid-liquid interfaces with spatially resolved NMR spectroscopy[J]. Angew Chem Int Ed, 2009, 48 (34): 6343-6345.
Two-Dimensional Homonuclear Orthogonal-Pattern Phase-Sensitive-Resolved NMR Spectroscopy Based on Pure Shifts
,,,,CHEN Zhong
Department of Electronic Science, Fujian Provincial Key Laboratory of Plasma and Magnetic Resonance, Xiamen University, Xiamen 361005, China
Two-dimensional-resolved (2DRES) nuclear magnetic resonance (NMR) experiments provide a simple and user-friendly spectral representation, in whichcouplings and chemical shifts are separated into two orthogonal frequency dimensions. The 2DRESexperiments have attracted wide attention in fundamental pulse sequence developments and practical applications, since they were first proposed 40 years ago. In this paper, we review the recent advances in the development of novel 2DRESpulse sequences and 2D-edited methods for accurate measurements ofcoupling, mainly focusing on pure shift based 2D orthogonal-pattern and phase-sensitive 2DRESspectroscopy and their applications in overcoming strong coupling effects and field inhomogeneities.
nuclear magnetic resonance (NMR),-resolved spectroscopy,phase-sensitive,G-SERF,coupling constant, pure shift
O482.53
A
10.11938/cjmr20212929
2021-06-29;
2021-08-10
國家自然科學基金資助項目(U1805261, 22073078, U1632274, 11675135和11761141010).
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