劉劍鋒,湯劍明,陽蓮,程建紅,李露,洪莉
骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow mesenchymal stem cells,BMSCs)是一種存在于骨髓結(jié)締組織中的基質(zhì)細(xì)胞,具有廣泛的增殖能力以及多向分化的潛能,是組織修復(fù)方向的研究熱點[1]。目前BMSCs被廣泛用于多種疾病的治療和研究,如心肌梗死[2]、肢體缺血[3]、壓力性尿失禁[4]等。目前,BMSCs提取方法有多種,包括全骨髓差速貼壁法[5]、密度梯度離心法[6]、免疫磁珠分選法[7]等。然而,BMSCs的生長增殖受多種因素的影響,其體外培養(yǎng)條件及方法尚無統(tǒng)一觀點。血清是細(xì)胞培養(yǎng)過程中至關(guān)重要的環(huán)節(jié),當(dāng)下市面上的血清種類多樣,成分、來源不同,使BMSCs的分離培養(yǎng)效果具有差異。本文采用貼壁培養(yǎng)法進(jìn)行C57BL/6小鼠BMSCs的體外分離培養(yǎng),選用配置10%濃度的血清培養(yǎng)基[8-9],并探究在相同實驗條件下含兩種不同品牌胎牛血清(Yeasen血清,Gbico血清)的培養(yǎng)基對BMSCs細(xì)胞數(shù)量、形態(tài)以及生長周期的影響,從而為BMSCs體外分離培養(yǎng)的血清選擇提供更加優(yōu)化的方案,以服務(wù)于臨床和科研。
4~6周SPF級C57BL/6雄性小鼠,體重15~20 g,由武漢大學(xué)實驗動物中心提供,實驗過程中對動物的處置符合動物倫理學(xué)標(biāo)準(zhǔn)。
0.25%胰蛋白酶,磷酸鹽緩沖液(PBS)、胎牛血清(Fetal Bovine Serum,中國,Yeasen公司,貨號:40130es76),DMEM/F12 培養(yǎng)基(Hyclone) 、胎牛血清(Fetal Bovine Serum,美國,Gibco公司,貨號:10099-141),Cell Counting Kit-8(CCK-8) 試劑盒(武漢科瑞生物技術(shù)有限公司),臺盼藍(lán)染液(凱基生物公司),青鏈霉素,兔抗小鼠CD34、44、90及106多克隆抗體(Ⅰ抗,美國Santa Cruz 產(chǎn)品),兔抗小鼠CD34、CD44、CD90、CD106(Ⅰ抗,Abcam公司)。Oricell C57BL/6小鼠BMSCs成骨誘導(dǎo)分化培養(yǎng)基試劑盒(Cyagen公司,貨號:MUBMX-90021),Oricell C57BL/6小鼠BMSCs成脂誘導(dǎo)分化培養(yǎng)基試劑盒(Cyagen公司,貨號:MUBMX-90031)。
培養(yǎng)基配制:Yeasen胎牛血清組:10% Yeasen胎牛血清+89% DMEM/F12+1%青鏈霉素;Gibco胎牛血清組:10% Gibco胎牛血清+89% DMEM/F12+1%青鏈霉素。
超凈工作臺,25 cm2細(xì)胞培養(yǎng)瓶,六孔板,二氧化碳培養(yǎng)箱(中國香港,Healforce),普通倒置顯微鏡、倒置熒光顯微鏡(日本,Olympus),酶標(biāo)儀(美國,Waltham MA),低溫離心機(德國,Eppendorf)。
頸椎脫臼法處死小鼠,酒精浸泡2~3 min后轉(zhuǎn)移至超凈工作臺,組織鑷剝離干凈股骨和脛骨上附著的肌肉等組織(見圖1)放入含10%青鏈霉素的PBS液中清洗3遍,剪去股骨和脛骨的骨骺端,暴露骨髓腔,用10 mL注射器吸取DMEM-12完全培養(yǎng)基沖洗骨髓腔,直至骨髓腔變白。隨后1 000 r/min 離心含有骨髓細(xì)胞的懸液5 min,棄上清液,重懸細(xì)胞沉淀經(jīng)均勻轉(zhuǎn)入25 cm2細(xì)胞培養(yǎng)瓶里,臺盼藍(lán)染色檢測其細(xì)胞活力,放入37℃、5%CO2孵育箱中培養(yǎng)。
本實驗共分為兩組:Yeasen組:含10% Yeasen胎牛血清的DMEM/F12培養(yǎng)基組;Gbico組:含10% Gbico胎牛血清的DMEM/F12培養(yǎng)基組,36 h后首次換液,72 h后半定量換液,隨后每2 d換液1次。
倒置顯微鏡(100×)下,每24 h觀察兩組細(xì)胞培養(yǎng)瓶中原代細(xì)胞的生長情況和形態(tài)特征。
采用第三代細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)實驗,細(xì)胞融合達(dá)80%時傳代至六孔板培養(yǎng)。棄去培養(yǎng)基,取出預(yù)先放置于6孔培養(yǎng)板中爬滿細(xì)胞的蓋玻片,PBS 沖洗3次,每次3 min;40 g/L多聚甲醛固定30 min,PBS 沖洗3次,每次3 min;3 g/L 聚乙二醇辛基苯基醚(Triton-X-100)孵育30 min,PBS 沖洗3次,每次3 min;FBS室溫封閉30 min,棄去,分別加兔抗小鼠CD34、CD44、CD90、CD106(1∶200)一抗4℃過夜,PBS 沖洗3 次,每次 3 min;羊抗兔IgGⅡ抗室溫1 h,PBS 沖洗3次,每次 3 min;熒光倒置顯微鏡(400×)下觀察,并統(tǒng)計陽性細(xì)胞數(shù)。
成骨:取第3代生長良好的細(xì)胞,細(xì)胞生長至70%~80%融合時,用0.25% Trypsin-0.04% EDTA進(jìn)行消化,以2×104/cm2密度均勻鋪至0.1%明膠包被的6孔板中,每孔加入2 mL完全培養(yǎng)基。當(dāng)細(xì)胞融合到60%~70%時,換用2 mL Oricell C57BL/6小鼠BMSCs成骨誘導(dǎo)分化完全培養(yǎng)基,誘導(dǎo)2~4周后,茜素紅染色。
成脂:取第3代生長良好的細(xì)胞,細(xì)胞生長至80%~90%融合時,用0.25% Trypsin-0.04% EDTA進(jìn)行消化,以2×104/cm2密度均勻鋪至6孔板中,每孔加入2 mL完全培養(yǎng)基,當(dāng)細(xì)胞融合到100%時,換用2 mL Oricell C57BL/6小鼠BMSCs成脂誘導(dǎo)分化完全培養(yǎng)基,誘導(dǎo)16~27 d后,油紅O染色。
采用第三代生長狀態(tài)良好的原代細(xì)胞制備成單細(xì)胞懸液,血球計數(shù)板計數(shù),調(diào)整細(xì)胞濃度為1×105個/mL,接種到96孔板,每孔100 μL,每組副孔3 個,放置于 37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)細(xì)胞貼壁0.5 h;棄去上清,每孔加CCK-8 10 uL;在 37℃ CO2培養(yǎng)箱內(nèi)孵育1 h,用酶標(biāo)儀檢測其 450 nm處吸光度。實驗步驟嚴(yán)格按照 CCK-8檢測試劑盒進(jìn)行,重復(fù)4次,求其平均值,連續(xù)檢測8 d,并繪制其細(xì)胞生長曲線。
使用SPSS 22.0統(tǒng)計學(xué)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。計量資料采用單因素方差分析和t檢驗,P<0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
采用倒置顯微鏡分別觀察原代以及傳代后不同時間段(2 d、4 d、6 d)BMSCs的生長情況,結(jié)果顯示,原代剛接種的BMSCs呈圓形,大小不一,懸浮于培養(yǎng)基中。培養(yǎng)2 d后細(xì)胞開始貼壁,貼壁細(xì)胞多呈梭形或多角形,出現(xiàn)成團生長現(xiàn)象。其中,Gbico組細(xì)胞較Yeasen組,成團生長現(xiàn)象更為明顯且細(xì)胞生長密度更大。后在4 d、6 d 的倒置圖像也顯示出,Gbico組細(xì)胞密度明顯高于Yeasen組。詳見圖 2。
圖2 兩種品牌血清培養(yǎng)基培養(yǎng)BMSCs在2 d、4 d、6 d的細(xì)胞形態(tài)(100×)
在熒光倒置顯微鏡(400×)下觀察BMSCs的表面抗原標(biāo)志物CD34、44、90、106的表達(dá)。結(jié)果顯示,在梭形或多角形的P3細(xì)胞的免疫熒光圖像中,CD106、CD90和CD44為陽性表達(dá),CD34為陰性表達(dá),如圖3。
圖3 BMSCs 表面抗原熒光檢測情況(400×)
第3代BMSCs經(jīng)過成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)基的誘導(dǎo),在7 d后可見細(xì)胞形態(tài)發(fā)生變化,誘導(dǎo)21 d時可見多處鈣結(jié)節(jié)沉積,茜素紅染色陽性;成脂誘導(dǎo)第12天,可見多量圓形細(xì)胞,從第12~20天,圓形細(xì)胞內(nèi)部有脂滴形成并逐漸增多,油紅O染色可見密集紅色脂滴,如圖4。
圖4 BMSCs成骨、成脂誘導(dǎo)分化(100×)
通過CCK-8法分別從0 d、2 d、4 d、6 d、8 d測得細(xì)胞生長曲線,從而間接反映小鼠BMSCs的生長趨勢,結(jié)果顯示含10% Gbico血清與10% Yeasen血清的BMSCs都呈增長趨勢,無血清培養(yǎng)基組細(xì)胞未見增長。相較于Yeasen組,Gbico組的BMSCs生長趨勢更為顯著。如圖5。
圖5 小鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞體外培養(yǎng)生長曲線
間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenchymalstemcells,MSCs)是存在于骨髓腔與多個組織器官的成體干細(xì)胞,可以分化為骨、軟骨、脂肪、神經(jīng)等組織,具有多向分化潛能[10-12]。同時,干細(xì)胞療法在多種組織修復(fù)的研究中表現(xiàn)出巨大潛力[13-15]。然而,BMSCs在小鼠骨髓中含量少、存活率低、提取困難,其體外分離培養(yǎng)的難度很大。常用的MSCs體外分離培養(yǎng)方法包括:差速貼壁法、密度梯度離心法、免疫磁珠分選法和細(xì)胞表面標(biāo)志物分選法4種方法[16]。
本次實驗采用差速貼壁法提取小鼠BMSCs,是一種快速、簡單、經(jīng)濟的分選方法,根據(jù)骨髓細(xì)胞群的貼壁能力以及對胰酶的敏感程度不同,在換液以及胰酶消化傳代過程中不斷分離出BMSCs。在體外分離實驗后,通過倒置顯微鏡觀察到了呈梭形或多角形、團狀生長的MCSCs,隨著時間的推移數(shù)量明顯增多。BMSCs的表型具有間充質(zhì)細(xì)胞、上皮細(xì)胞和內(nèi)皮細(xì)胞的特點,一般通過不表達(dá)CD14、CD34等,表達(dá)CD44、CD90、CD106等標(biāo)志,對BMSCs進(jìn)行初步鑒定[17-18]。本實驗通過免疫熒光檢測發(fā)現(xiàn)細(xì)胞群高表達(dá)CD44、CD90、CD106,低表達(dá)CD34。免疫熒光圖片與倒置顯微鏡圖說明了BMSCs的成功分離與增殖。同時,本實驗應(yīng)用BMSCs成骨、成脂分化培養(yǎng)基對BMSCs進(jìn)行定向誘導(dǎo),通過茜素紅染色(+)與油紅染色(+)表明了誘導(dǎo)的成功,進(jìn)一步說明了BMSCs的多向分化能力。
BMSCs對血清、培養(yǎng)基等微環(huán)境敏感,體外培養(yǎng)需要苛刻的環(huán)境條件。目前,市面上的血清種類復(fù)雜、來源多樣、成分不清,對不同細(xì)胞的培養(yǎng)效果差異較大[19]。KuboH等[20]在BMSCs的培育中發(fā)現(xiàn),相較于自體血清,補充普通胎牛血清BMSCs的血小板減少趨勢明顯,更有利于其增殖。本文結(jié)合了以往的大量研究文獻(xiàn),選用了兩種常用的特級胎牛血清:Yeasen胎牛血清和Gbico血清,以10%血清+89%DMEM/F12+1%雙抗比例配置培養(yǎng)基,對兩種培養(yǎng)基進(jìn)行比較,以觀察BMSCs在兩種培養(yǎng)基環(huán)境中的生長狀態(tài)。通過倒置圖片發(fā)現(xiàn),兩種培養(yǎng)基都發(fā)生了BMSCs的生長與增殖。但是,含Gbico血清的培養(yǎng)基相較于含Yeasen胎牛血清的培養(yǎng)基,BMSCs的數(shù)目增多更為明顯。并進(jìn)一步通過CCK-8實驗檢測兩組細(xì)胞以及無血清條件下的BMSCs在0、2、4、6、8d的數(shù)目,繪制了生長曲線,以觀察細(xì)胞活力與生長趨勢。結(jié)果顯示,兩種血清環(huán)境下BMSCs都表現(xiàn)出增長趨勢,其中Gbico血清促進(jìn)效果更加明顯,而Yeasen血清有著更加優(yōu)惠的價格。Gbico胎牛血清來自澳洲,Yeasen胎牛血清選自南美,這兩種特級胎牛血清都有著低含量的內(nèi)毒素與血紅素,為干細(xì)胞培養(yǎng)提供了合適的生長環(huán)境,二者表現(xiàn)上的差異可能與Gbico胎牛血清能夠提供與體內(nèi)更加相似的環(huán)境有關(guān)。關(guān)于造成這一差異的更深層次原因,其血清內(nèi)具體成分以及這些成分與BMSCs的關(guān)系如何,值得進(jìn)一步探究。
本研究從BMSCs的體外分離培養(yǎng)、鑒定、分化等一系列過程進(jìn)行了較為全面的探究??傊?,不同類型的血清確實會影響到BMSCs的體外培養(yǎng)。通過差速貼壁法快速簡便地獲取該細(xì)胞,含10%Yeasen血清與10%Gbico血清的DMEM/F12培養(yǎng)基都適用于該細(xì)胞的體外培養(yǎng)。其中Yeasen血清有著更高的性價比,10%Gbico則在促進(jìn)增殖方面表現(xiàn)更加良好。