方 典,梁 歡,王佳慧,汪敬業(yè),李正紅,高 琴
腦卒中病人數(shù)正在逐年上漲,其嚴重的后遺癥極大地影響了病人的生存質(zhì)量[1]。缺血性腦卒中相對于腦出血發(fā)病率更高,在臨床上也更為常見[2]。腦卒中常見的治療方法是通過溶栓或機械再通來恢復(fù)腦部的血流供應(yīng),這也是拯救有活力的腦細胞的第一步,但疏通血管、恢復(fù)血流后可能會加重之前缺血的損傷,稱為腦缺血再灌注損傷(ischemia and reperfusion injury,I/R)[3]。腦卒中發(fā)生時伴有炎癥產(chǎn)生,炎癥反應(yīng)亦會加速腦卒中的進展。
核苷酸結(jié)合寡聚化結(jié)構(gòu)域受體蛋白3(NLRP3)炎癥小體是介導(dǎo)缺血/再灌注后炎癥反應(yīng)的重要靶向蛋白[4]。NLRP3屬于NLRs家族蛋白,在小膠質(zhì)細胞、星形膠質(zhì)細胞、神經(jīng)元細胞、內(nèi)皮細胞等神經(jīng)元細胞內(nèi)存在不同程度表達[5-7],能夠被高糖、高脂、炎癥因子、氧化應(yīng)激等致病要素所激活,NLRP3被激活后與caspase-1前體和凋亡相關(guān)斑點樣蛋白共同構(gòu)成了炎癥小體,隨后被活化切割的caspase-1會招募活化更多的白細胞介素-1β(IL-1β)和IL-18[8],進一步加重了炎癥反應(yīng)[9]。乙醛脫氫酶2(ALDH2)作為線粒體中的關(guān)鍵酶蛋白[10],具有清除4-羥基壬烯醛(4-HNE)的作用,同時ALDH2可抑制NLRP3炎癥小體的生成[11]。有研究[12]發(fā)現(xiàn),ALDH2的活性下降后,大鼠的神經(jīng)功能受損,腦梗死面積增加,加重了缺血再灌注對腦神經(jīng)的損傷。ALDH2過表達可以減輕心肌細胞纖維化,減少炎癥因子的生成,從而對心肌起到保護作用[13]。通過激活A(yù)LDH2在腦神經(jīng)元中的表達是否可抑制神經(jīng)元炎癥反應(yīng)發(fā)揮保護作用,目前相關(guān)報道較少。Bax介導(dǎo)的細胞色素c釋放抑制劑(Bax channel blocker,Bcb)通過調(diào)控Bax通道抑制細胞色素c從線粒體釋放,常作為凋亡抑制劑用于減輕細胞凋亡的發(fā)生[14-15]。抑制線粒體細胞色素c釋放是否可通過調(diào)控炎癥反應(yīng)改變I/R,Bcb是否可調(diào)控腦組織ALDH2的表達目前鮮見報道。
本研究擬通過給予Bcb和ALDH2激動劑,觀察此法干預(yù)對大鼠全腦I/R產(chǎn)生的作用,分析線粒體色素c釋放抑制劑在調(diào)控線粒體ALDH2和炎癥反應(yīng)中發(fā)揮的保護作用?,F(xiàn)作報道。
1.1 材料 雄性SD大鼠體質(zhì)量280~320 g,購于濟南鵬悅實驗動物繁育有限公司,動物許可證號SCXK(魯)20190003。大鼠分籠飼養(yǎng),室溫控制在(25±1)℃,保持環(huán)境整潔,空氣相對濕潤,光線可自動控制,12 h明暗交替,給予充足的飲食、飲水。
1.2 藥品與試劑 ALDH2激動劑Alda-1及Bcb均購于APEX BIO。NLRP3抗體購于Affinity公司,4-HNE和ALDH2抗體購于Abcam公司;IL-1β和IL-18抗體購于R&D System公司。
1.3 大鼠全腦I/R模型建立及分組 參照Pulsinelli的四血管阻斷法[16-17]模擬全腦缺血再灌注情況造模。大鼠于造模前12 h禁止進食和飲水,準(zhǔn)備造模所需手術(shù)器械,腹腔注射10%的水合氯醛,麻醉成功后將大鼠固定于立體定位儀上,頭部無偏移,剃毛消毒,確定位置在背后頸部做正中切口,玻璃分針分離第一頸椎,確定橫突翼后,找到雙側(cè)橫突孔位置,將加溫至灼熱的電烙鐵頭(直徑0.5 mm)與切面成45°插入翼狀孔,深度為2~3 mm,電凝雙側(cè)椎動脈5 s,以造成永久性閉塞。用手術(shù)線縫合,消毒。取下大鼠以仰臥位放置,剃毛消毒,在頸部正中做切口,分離雙側(cè)頸總動脈,埋線后縫合切口。結(jié)束后將大鼠放置于恒溫箱恢復(fù)24 h。次日用棉球蘸取少許異氟烷,于密封箱內(nèi)進行麻醉,仰臥位打開頸部切口,用動脈夾夾閉雙側(cè)頸動脈實施大鼠的全腦缺血,在20 min后取下動脈夾恢復(fù)腦部血流供應(yīng)。術(shù)中大鼠的肛溫控制在(37±0.5)℃。大鼠腦缺血成功的標(biāo)準(zhǔn)是瞳孔放大、發(fā)白,四肢伸直無蘇醒表現(xiàn)。術(shù)中癲癇發(fā)作、狀況不良的大鼠去除。
將大鼠共分4組,每組12只。假手術(shù)組(Sham組):大鼠封閉椎動脈,不夾閉雙側(cè)頸動脈,缺血前1 h側(cè)腦室注射6 μL 0.9%氯化鈉溶液;缺血再灌注組(I/R組):缺血前1 h側(cè)腦室注射6 μL 0.9%氯化鈉溶液,缺血20 min后恢復(fù)腦部血流供應(yīng);Alda-1+I/R組:缺血前1 h給予6 mL Alda-1(10 mg/mL)[18]側(cè)腦室注射,全腦缺血20 min后恢復(fù)腦血流;Bcb+I/R組:缺血前1 h給予6 μL Bcb(20 mg/mL)側(cè)腦室注射,全腦缺血20 min后恢復(fù)腦血流。采用側(cè)腦室給藥觀察藥物對大鼠腦I/R的影響。通過腦立體定位儀,固定大鼠,剃去毛發(fā)后在頭頂正中做切口暴露顱骨確定好前囟位置。在前囟后側(cè)0.92 mm,右側(cè)1.5 mm用小型顱骨鉆鉆孔,微量進針器進針深3.5 mm。相應(yīng)組別大鼠于缺血前1 h側(cè)腦室分別注射相關(guān)藥物,注射速度0.5 μL/min。注射完畢后停針5 min后將進針器緩慢拔出,縫合切口。
1.4 石蠟切片制備及HE染色 每組選取8只大鼠,7 d后,4%水合氯醛麻醉,昏迷后固定好大鼠四肢,剪開胸腔暴露心臟,將灌注針插入大鼠左心室,注入200 mL PBS溶液灌流直至大鼠眼球發(fā)白,再用200 mL 4%多聚甲醛灌流至大鼠四肢僵硬后,斷頭取腦,取視交叉后1~5 mm的冠狀切片,取下的新鮮腦組織用組織固定液固定,48 h后梯度乙醇脫水,后放入透明劑二甲苯中透明,石蠟包埋,將組織蠟塊放入切片機上,在海馬平面行連續(xù)冠狀切片,厚度約3 mm,在蠟塊上做好編號。HE染色后的切片置于光學(xué)顯微鏡下觀察并計數(shù)海馬CA1區(qū)每毫米長度內(nèi)存活的神經(jīng)元數(shù)量,計算存活神經(jīng)元與總細胞的比例。
1.5 免疫組織化學(xué)檢測海馬CA1區(qū)NLRP3和ALDH2蛋白表達 取I/R 7 d的石蠟標(biāo)本,脫蠟后再放入不同濃度乙醇中水化每次10 min,清水沖洗5 min,PBS沖洗后,80%甲醇孵育10 min,枸櫞酸緩沖液在微波爐里加熱至沸騰后將玻片放入10 min,等待自然冷卻后PBS沖洗,重復(fù)一次待到冷卻到室溫。PBS沖洗2次,每次5 min。加入血清封閉液,室溫孵育20 min后分別滴加一抗:NLRP3(1∶50~1∶200)和ALDH2(1∶50~1∶100),室溫靜置1 h后PBS沖洗3次,每次5 min。滴加二抗,PBS溶液沖洗3次,每次10 min,DAB顯色10 min,在顯微鏡下觀察確保染色成功后,雙蒸水沖洗10 min終止反應(yīng),蘇木精復(fù)染,流水沖洗10~15 min,最后用二甲苯脫蠟,中性樹脂封片。用CaseViewer2.4軟件打開后選取大鼠的海馬區(qū)域200倍成像,保證背景一致無偏差。成像完成后使用Image-Pro Plus 6.0軟件進行分析,統(tǒng)一以像素面積pixel作為標(biāo)準(zhǔn)單位,分別測量每張切片中3個視野陽性的累積吸光度值。
1.6 Western blotting檢測相關(guān)蛋白表達 取每組4只大鼠的腦組織,大鼠在I/R 48 h后麻醉斷頭,放在冰面上快速分離海馬CA1區(qū),剪刀剪碎組織后加入適量的組織蛋白裂解液及適量PMSF蛋白酶抑制劑,后用勻漿器冰上研磨,冰上靜置30 min后4 ℃ 14 000 g離心15 min后吸取上清液,提好的組織蛋白分裝標(biāo)記放入-80 ℃保存。采取BCA蛋白測定試劑盒來檢測細胞總蛋白濃度。十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳分離蛋白,轉(zhuǎn)膜,封閉結(jié)束后加入一抗稀釋液ALDH2(1∶6 000)、4-HNE(1∶3 000)、NLRP3(1∶500)、IL-1β(1∶1 000)、IL-18(1∶1 000),4 ℃條件下孵育24 h,加入TBST清洗3次,每次10 min,加入二抗稀釋液(1∶5 000),室溫孵育1 h,加入TBST清洗 3次,每次10 min。滴加ECL化學(xué)發(fā)光級,曝光,顯影,用Image J軟件分析各條帶灰度值。
1.7 統(tǒng)計學(xué)方法 采用單因素方差分析和q檢驗。
2.1 Alda-1及Bcb對大鼠腦I/R后海馬CA1區(qū)神經(jīng)元的影響 HE染色結(jié)果表明,Sham組大鼠海馬CA1區(qū)神經(jīng)元排列整齊,細胞核為圓形或橢圓形。核膜核仁結(jié)構(gòu)完整,明顯,細胞質(zhì)體積較小,呈淡紅色。與Sham組比較,I/R組再灌注7 d后,神經(jīng)元細胞排列散亂,細胞核固縮深染,海馬CA1區(qū)界限不明顯,神經(jīng)元的存活率明顯下降(見圖1)。與I/R組比較,Alda-1+I/R組、Bcb+I/R組海馬CA1區(qū)神經(jīng)元存活率提高(P<0.01)(見表1)。
表1 各組大鼠腦I/R后海馬CA1區(qū)神經(jīng)元存活率的比較
2.2 免疫組織化學(xué)海馬CA1區(qū)NLRP3和ALDH2蛋白變化比較 與Sham組比較,I/R組7 d后,海馬CA1區(qū)組織中NLRP3棕黃色陽性染色明顯加深,ALDH2棕黃色陽性染色明顯減弱,提示NLRP3蛋白表達增加,ALDH2蛋白表達下降(見圖2)。與I/R組比較,Alda-1+I/R組、Bcb+I/R組海馬CA1區(qū)組織中NLRP3蛋白表達下降,ALDH2蛋白表達增加(P<0.01)(見表2)。
2.3 Western blotting顯示炎癥小體相關(guān)蛋白變化 Western blotting結(jié)果顯示,與Sham組對比,腦I/R 48 h后海馬CA1區(qū)NLRP3、IL-1β、IL-18蛋白表達增加(P<0.01);與I/R組相比,Alda-1+I/R組、Bcb+I/R組的海馬CA1區(qū)NLRP3、IL-1β、IL-18蛋白表達減少(P<0.01),提示激動ALDH2、抑制線粒體細胞色素c釋放均可引起NLRP3炎癥小體和相繼的炎癥反應(yīng)減輕(見圖3、表3)。
表2 各組大鼠腦I/R后海馬CA1區(qū)NLRP3和ALDH2蛋白吸光度變化的比較
腦I/R是一個常見的器官血流中斷后再灌注的損傷過程[19]。缺氧條件下,海馬組織是腦缺血缺氧易損傷區(qū)域[20]。本研究中,腦缺血再灌注7 d的HE染色結(jié)果顯示,海馬CA1區(qū)的神經(jīng)元死亡的細胞明顯增多,提示全腦I/R會導(dǎo)致海馬CA1區(qū)神經(jīng)元發(fā)生損傷。
近年來,越來越多的證據(jù)表明炎癥小體的激活可能導(dǎo)致腦缺血期間神經(jīng)元死亡[21]。研究[22]發(fā)現(xiàn),NLRP3炎癥小體激活介導(dǎo)的神經(jīng)炎癥與神經(jīng)系統(tǒng)的疾病存在一定的關(guān)聯(lián),當(dāng)NLRP3炎癥小體被激活后,活化的caspase-1會導(dǎo)致促炎性細胞因子IL-1β、IL-18的激活,進一步損傷組織器官。本研究中,我們觀察到在大鼠全腦I/R 48 h后,海馬CA1區(qū)組織中炎癥小體相關(guān)蛋白NLRP3及下游的IL-1β及IL-18蛋白表達增多,進一步采用免疫組織化學(xué)觀察到腦I/R 7 d后海馬CA1區(qū)NLRP3的陽性染色增多,提示全腦I/R后NLRP3持續(xù)存在。
表3 各組大鼠腦I/R后海馬CA1區(qū)炎癥小體相關(guān)蛋白灰度值比較
線粒體膜脂質(zhì)參與維持線粒體膜的完整及保障線粒體的正常功能,而活性氧的產(chǎn)生主要也是來源于線粒體[23]。在大鼠局灶性腦I/R損傷模型中,Alda-1處理后可抑制I/R導(dǎo)的腦細胞凋亡的發(fā)生及4-HNE、MDA水平的升高[24]。此外,在本研究中,我們發(fā)現(xiàn)在全腦I/R 48 h過后大鼠海馬CA1區(qū)組織中ALDH2蛋白表達降低的同時4-HNE蛋白表達增加,提示全腦I/R引起的細胞損傷還可能與ALDH2減少、醛類代謝產(chǎn)物4-HNE增加等有關(guān)。
有研究[25]發(fā)現(xiàn),在短暫性腦缺血再灌注模型中,通過Bcb的干預(yù)可減輕缺血再灌注過程中對腦細胞的損傷,減少Ca2+堆積、抑制活性氧的生成。我們選擇Bcb以及激動ALDH2的Alda-1分析對腦缺血再灌注的影響及分析相互聯(lián)系。HE染色結(jié)果顯示通過Alda-1激動ALDH2及Bcb均明顯提高了海馬CA1區(qū)的細胞存活率。Western blotting結(jié)果表明,Alda-1和Bcb顯著上調(diào)了大鼠海馬CA1區(qū)細胞內(nèi)ALDH2蛋白水平,降低了4-HNE、NLRP3及炎癥相關(guān)因子IL-1β、IL-18的蛋白水平,提示激動ALDH2和抑制細胞色素c均可通過抑制炎癥反應(yīng)而發(fā)揮保護作用。
本研究中我們還觀察到,Bcb能促進ALDH2的表達、抑制炎癥小體關(guān)鍵蛋白NLRP3的生成和炎癥因子的釋放,而激動ALDH2亦能抑制NLRP3的表達,提示Bcb可能通過促進ALDH2的表達減少NLRP3的釋放,減輕炎癥反應(yīng)發(fā)揮保護作用,其相關(guān)的機制需要我們進一步深入探索。
綜上所述,Bcb可能通過增加ALDH2的表達、抑制NLRP3的生成減輕全腦I/R中炎癥反應(yīng)而發(fā)揮保護作用。