馬關(guān)鵬,周麟筆,2,趙大芹,3*,楊 巍,劉 煉,趙夏云,瞿 飛,王 堃
(1.貴州省園藝研究所,貴州貴陽 550006;2.貴州省農(nóng)科院山茂園藝工程技術(shù)有限公司,貴州貴陽550006;3.貴州省園藝工程技術(shù)研究中心,貴州貴陽550006)
大白菜是起源于我國的大宗型蔬菜,在全國均有較大面積的種植[1-3]。大白菜的株高是重要的農(nóng)藝性狀,關(guān)系到大白菜的株型、產(chǎn)量等性狀,前人研究表明,株高同時受到環(huán)境和基因的影響[4]。分子標記作為一種可以有效提高選育品種的手段,受到較多育種人員的青睞。開發(fā)適合的分子標記對品種選育有事半功倍的效果。分子標記有AFPL 標記、RAPD 標記、SSR 標記、InDel 標記等。前人已有利用不同的標記進行性狀與標記之間的關(guān)聯(lián)開發(fā)[5-6]。高穎等[4]利用SSR 標記通過關(guān)聯(lián)分析發(fā)現(xiàn)與大白菜抽薹開花時間相關(guān)的標記13 個,同時翟文等[5]也發(fā)現(xiàn)與植株葉片形態(tài)、植株形態(tài)等相關(guān)的標記76 個。雖然在白菜類蔬菜已有功能標記的開發(fā),但是受限于群體,標記的通用性不強,實際運用不夠廣泛。利用高密度的SNP構(gòu)建遺傳圖譜雖然可達到較高密度的遺傳圖譜,從而進行QTL 定位開發(fā)分子標記,但是成本較高,開發(fā)較少,大多數(shù)集中在基礎(chǔ)研究領(lǐng)域,因此開發(fā)的標記不一定能被使用。
貴州省園藝研究所大白菜課題組搜集鑒選了大量矮化的大白菜種質(zhì)資源,其中現(xiàn)有較矮化的資源105份,進行分離純化后的資源53 份,使用BC1 不育系進行回交選育的雄性不育系11份,通過小孢子培養(yǎng)獲得的DH 系8份,并且構(gòu)建了誘變純化60 份材料。且前期構(gòu)建的高密度遺傳圖譜進行了株高QTL 的定位,開發(fā)了2 個株高相關(guān)的InDel 標記,為鑒定其在不同的群體中的情況,使用多個群體進行鑒定研究(其中使用的群體包括85 份F2群體、搜集鑒選的105 份、純化材料53 份群體,誘變材料純化60份群體。),以期為提高大白菜的育種效率,降低品種選育的工作量提供科學(xué)依據(jù)。
試驗材料包括由貴州省園藝研究所大白菜課題組搜集的105份材料(未能完全純化)、純化的自交系53 份、經(jīng)過輻射誘變純化自交的材料60 份。自購建的(親本為Gh-4,LL-3)F2代群體85份(表1)。
表1 供試大白菜材料信息
自交系材料經(jīng)催芽后,低溫春化5 d,于2021年6月使用花盆種植于人工氣候室,前20 d 保持8℃,后期23℃,長日照條件(12 h 光照,8 黑暗);自交系、搜集資源及誘變資源材料于2020年10月播種育苗,11月定植于蔬菜試驗地,定植株距18 cm,行距25 cm。F2代材料分別為株高較高材料Gh-4、株高交矮材料LL-3,以Gh-4 為母本,于2019年進行人工雜交后獲得F1代種質(zhì),自交后獲得F2代種子,2020年播種于育苗盤后選擇85 株定植試驗地,播種定植時間、株行距和其他材料相同。
試劑:EDTA、NaCl、CTAB、異戊醇、Tris、乙醇購買自索萊寶公司;RNase、瓊脂糖購買自上海生工公司;PCR 反應(yīng)試劑購買自南京諾唯贊生物科技有限公司的Taq DNA Polymerase 購自南京諾唯贊生物科技有限公司。
儀器:超微量紫外分光光度計,德國Implen。
參考大白菜DUS 測定標準,對大白菜株高展開測量,測定標準為從植株播種開始后的第65 天后,調(diào)查統(tǒng)計株高性狀數(shù)據(jù)進行計算。采用的2 對引物均來自于課題組大白菜基因重測序、進行遺傳圖譜構(gòu)建及株高QTL開發(fā)得到的InDel標記,引物由南京金斯瑞生物科技有限公司合成。
表2 大白菜株高標記引物
采用CTAB 法提取DNA;DNA 提取后使用超微量紫外分光光度計測定濃度。體系如下:ddH2O 13 μL,10 × Taq Buffer(Mg2+plus)2 μL,dNTP Mix(10 mM each)1 μL,Primer1(10 μM)1μL,Primer2(10 μM)1μL,模板DNA 1 μL,Taq DNA Polymerase(5 U/μL)1 μL;反應(yīng)程序95℃預(yù)變性5 min,95℃變性15 s,55℃退火15 s,72℃延伸20 s,72℃徹底延伸5 min。采用瓊脂糖凝膠進行電泳,凝膠成像儀進行觀察分析,觀察條帶的有無,有條帶記為1,無則記為0。
為簡單鑒定分子標記是否可以反應(yīng)株高情況,就PCR 電泳后各份材料的條帶進行統(tǒng)計,并統(tǒng)計材料的株高,使用Microsoft Excel,SPSS19.0進行分析。
從圖1可知,105群體和53自交系的株高分布較為集中,60 誘變系和F2群體的株高分布較寬。表明F2群體、60誘變系的變異較大,群體間株高的差異較大,自交系群體間的差異較小,株高分布相對集中。
圖1 不同群體的株高分布
從表3 可知,在不同群體中,植株株高的差異不一致,由于前期搜集資源時選擇的105份資源屬于相對較矮的種質(zhì),自交系也是在相關(guān)矮化的種質(zhì)里面鑒選出來進行自交純化的,因此105 群體和53 自交系的變異系數(shù)較小,分別為25.24 和22.94,且群體的極差差值也較小。研究的分子標記是根據(jù)F2群體構(gòu)建后的相關(guān)數(shù)據(jù)開發(fā)鑒選的,在選擇親本時是屬于株高差異較大的組合,因此后代中株高差異較大,變異系數(shù)較大,為32.74;誘變純化的60 份材料經(jīng)過栽培驗證,可能是輻射對植株的遺傳物質(zhì)起到了一定的改變,因此在株高的變異范圍也較大,變異系數(shù)為31.63,變異系數(shù)相較于105 群體及53 自交系群體較大,但是變異程度小于F2群體。
表3 大白菜不同群體的株高性狀統(tǒng)計
通過統(tǒng)計分析(表4)發(fā)現(xiàn),試驗進行分子標記的4個群體中,每個群體個體均出現(xiàn)無條帶情況。統(tǒng)計計數(shù)分類表明,在105 群體中,引物1 和引物2 在大部分植株中均未出現(xiàn)標記條帶,只在少數(shù)個體中出現(xiàn)條帶。歸類統(tǒng)計計算平均值顯示,具有條帶的個體平均株高偏矮,但是差異很小,沒有明顯差異。在53群體及60 群體中,平均株高與條帶的有無沒有顯見的趨勢關(guān)系,群體株高之間的平均差異小。在F2群體中,引物1出現(xiàn)條帶的個體平均值比沒有出現(xiàn)的高4.51 cm,引物2 出現(xiàn)條帶的個體平均值比沒有出現(xiàn)的高3.6 cm,有較為相近的差異;進一步分析發(fā)現(xiàn),如果把2 對引物合計在一起計算,2 對引物都出現(xiàn)條帶的植株平均株高比沒有出現(xiàn)條帶的植株高32.39%(8.23 cm),出現(xiàn)一條帶的植株平均株高比未出現(xiàn)條帶的植株高29.59%(7.52 cm)。說明可以使用開發(fā)的2 個株高相關(guān)的InDel標記進行一定范圍的篩選工作。
表4 不同引物在不同群體株高中的標記顯示情況
分子標記已經(jīng)廣泛用于種質(zhì)遺傳資源多樣性等方面的研究[7-8]。但是受限于種質(zhì)資源、開發(fā)成本等條件,廣泛用于性狀的標記較少[9-10]。大多數(shù)標記開發(fā)成本高、復(fù)雜程度高、使用計算統(tǒng)計復(fù)雜阻礙了分子標記的實際應(yīng)用,因此在育種過程中能使用的分子標記較少。研究利用前期開發(fā)的2 個分子標記在不同群體中進行簡單統(tǒng)計分析,目的在于探究鑒定較簡單的統(tǒng)計方法分析分子標記是否可以反應(yīng)標記所代表的性狀。
研究表明,在105、53、60 群體中的InDel標記和株高關(guān)系不明確,分子標記不具鑒定作用;在以Gh-4 為父本的F2群體中,具有雙標記的植株高比不具有雙標記的植株高32.39%(8.23 cm)。開發(fā)的2 個InDel 分子標記可在具有Gh-4 為親本的群體中進行株高的檢驗。
由于開發(fā)的2 個InDel 分子標記是利用F2群體中的一個親本進行的,因此在F2的群體中可以簡單的按照分子標記的有無大致把植株的高矮分成2 個群體,從其中具有2 個標記的群體中鑒選出具有較高株高性狀的植株概率較大,可最大限度的降低投入,提高效率。但在鑒選的過程中也注意到,性狀的表現(xiàn)和環(huán)境的影響較大,不表示具有雙分子標記的植株一定高于沒有標記的植株。且選育品種的過程是多性狀的綜合考量,單獨看一個性狀可能導(dǎo)致其余性狀較差,需要較大的群體數(shù)量保證除去目標性狀外的其他性狀有足夠的變異空間,否則過分依賴于分析標記可能導(dǎo)致選育不到需要的性狀。因此,分子標記的開發(fā)只能減少部分育種工作量,不能代替田間的鑒定。