根管內(nèi)的持續(xù)性感染未得到消除是根管治療失敗的主要原因,主要由糞腸球菌等頑固性致病菌引起
。單獨(dú)使用機(jī)械儀器預(yù)備無(wú)法徹底清理根管系統(tǒng),光動(dòng)力療法(photodynamic therapy,PDT)可殺滅根管內(nèi)細(xì)菌,在根管消毒、輔助控制根管感染中效果較好
。PDT 在根管內(nèi)發(fā)揮殺菌效果,需要激光、光敏劑、氧三個(gè)重要因素共同作用,即光敏劑在根管內(nèi)均勻擴(kuò)散后,通過(guò)激光一定波長(zhǎng)的照射,在氧氣的參與下,產(chǎn)生活性氧和單線態(tài)氧,從而起到殺菌作用
。受自身解剖結(jié)構(gòu)影響,根管內(nèi)部及牙本質(zhì)小管深處不可避免存在氧不足的情況,影響了PDT 治療效果
。常用光敏劑亞甲基藍(lán)(methylene blue,MB)的光照波長(zhǎng)為660 nm,對(duì)糞腸球菌殺菌效果較好,對(duì)MB 配方進(jìn)行改性后可進(jìn)一步提高PDT 殺菌能力,但目前對(duì)釋氧配方光敏劑的研究仍較少
。本研究擬在前期研究的基礎(chǔ)上,通過(guò)構(gòu)建單根管離體前牙糞腸球菌根管感染模型,觀察釋氧MB 配方的PDT 對(duì)根管內(nèi)糞腸球菌的殺菌效果,為臨床應(yīng)用提供參考。
糞腸球菌標(biāo)準(zhǔn)菌株(ATCC29212,ATCC,美國(guó)),腦?心浸液(brain heart infusion,BHI)(海博,中國(guó)),戊二醛溶液(上海生工,中國(guó)),PBS(上海生工,中國(guó)),1%次氯酸鈉(朗力生物,中國(guó)),生理鹽水沖洗液(雙鶴,中國(guó)),MB(Sigma,美國(guó)),全氟十氫化萘(Sigma,美國(guó)),H
O
(遂成,中國(guó)),Triton?X100(上海生工,中國(guó)),N?乙?;?L?色氨酸酰胺(N?acetyl?L?tryptophan amide,NATA)(Sigma,美國(guó)),1,3?二苯基異苯并呋喃(1,3?diphenylisobenzo?furan,DPBF)(Sigma,美國(guó))。
掃描電鏡(S3400,日立,日本),ProTaper 機(jī)用馬達(dá)和銼(登士柏,瑞士),光動(dòng)力口腔治療儀(HHL?1 000,哌威,加拿大),液相色譜儀(LC?20A,島津,日本),分光光度計(jì)(UV?2600,島津,日本)。
1.2.1 分組 參照文獻(xiàn)所述
,分為MB 組和釋氧MB 組,MB 組采用50 μmol/L MB 溶液,釋氧MB 組采用50 μmol/L MB 混合在釋氧乳液中(全氟十氫化萘∶H
O
∶Triton?X100=75∶24.5∶0.5)
。
1.2.2 光氧化活性測(cè)定 濃度為10 μmol/L 的熒光測(cè)定模型底物NATA與不同測(cè)試配方中的50 μmol/L MB 混合(總體積3 mL)。采用660 nm 波長(zhǎng),30 mW功率輻照測(cè)試溶液誘導(dǎo)氧化劑的產(chǎn)生,激光盡量接近測(cè)試液體表面而不接觸。利用液相色譜儀測(cè)量NATA 濃度在290 nm 波長(zhǎng)隨著輻照時(shí)間增加的下降速率,NATA 濃度的下降速率代表了MB 或釋氧MB 的光氧化活性。檢測(cè)間隔為5 min,檢測(cè)20 min。所有實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次。
陳豐連等[31]建立了以高效液相色譜法(HPLC)同時(shí)測(cè)定涼粉草藥材中熊果酸和齊墩果酸含量的方法,該方法簡(jiǎn)單、準(zhǔn)確、可靠。利用該方法可測(cè)定不同采收期、不同產(chǎn)地等不同批次的仙草熊果酸和齊墩果酸含量。冷桂華[32]利用反相高效液相層析法(RP-HPLC)測(cè)定了仙草不同部位的熊果酸和齊墩果酸含量,發(fā)現(xiàn)仙草葉的熊果酸和齊墩果酸含量均高于仙草莖和全仙草的含量;同一部位仙草的熊果酸含量明顯高于齊墩果酸含量,熊果酸含量約為齊墩果酸含量的2.5~2.8倍。
每組根管內(nèi)處理方法及細(xì)菌培養(yǎng)計(jì)數(shù)方法同1.4 所述。實(shí)驗(yàn)及計(jì)算方法參考文獻(xiàn)
。
NATA 濃度的下降速率代表了光氧化活性。10 min(
= 3.570,
= 0.023)、15 min(
= 3.507,
=0.025)、20 min(
= 2.904,
= 0.044)時(shí),釋氧MB 組NATA 濃度的下降速率高于MB 組下降速率(
<0.05)(圖1a)。
取糞腸球菌根管感染的離體牙根30 個(gè),隨機(jī)分為常規(guī)根管治療組、MB?PDT 治療組和釋氧MB?PDT 治療組,每組10 個(gè)離體牙根。同時(shí)另取10 個(gè)離體牙根不做任何處理,獲取根管內(nèi)樣本作為細(xì)菌測(cè)定基線。常規(guī)根管治療組采用1%次氯酸鈉溶液常規(guī)處理根管1 min;MB?PDT 治療組采用1%次氯酸鈉溶液處理根管后,注入50 μmol/L MB 溶液靜置1 min,采用光動(dòng)力治療儀照射1 min(660 nm,30 mW),重復(fù)此步驟1 次;釋氧MB?PDT 治療組采用1%次氯酸鈉溶液處理根管后,注入50 μmol/L MB 釋氧乳化溶液靜置1 min,采用660 nm 激光照射1 min,重復(fù)此步驟1 次。
最好的檢驗(yàn)方法當(dāng)然是試射,但不可能把所有炮彈都拿出去射了,所以存在一個(gè)抽樣檢查的問(wèn)題.類似的問(wèn)題很多,例如,工廠生產(chǎn)的產(chǎn)品在上市之前一般也需要技術(shù)部門(mén)做合格鑒定,工商部門(mén)也會(huì)對(duì)市場(chǎng)上的商品做合格檢查,但由于這些產(chǎn)品都有包裝,一旦打開(kāi),這些產(chǎn)品就不能再賣了,所以不可能將所有產(chǎn)品都拆開(kāi)檢查.即使是不需要損壞產(chǎn)品包裝,也可能由于數(shù)量的龐大,很難對(duì)每件產(chǎn)品都做檢驗(yàn),只能抽取部分產(chǎn)品做鑒定.在此基礎(chǔ)上引入簡(jiǎn)單隨機(jī)抽樣的概念.
利用無(wú)菌紙尖在根管內(nèi)取樣,靜置60 s 后,放入盛有1 mL 無(wú)菌水的無(wú)菌離心管中并充分振蕩10 s。將細(xì)菌樣本在BHI 肉湯培養(yǎng)基中37 ℃下培養(yǎng)。樣本在孵育24 h 后,分別檢測(cè)每個(gè)培養(yǎng)皿上菌落形成情況并進(jìn)行細(xì)菌計(jì)數(shù)。將未處理樣本的細(xì)菌數(shù)作為計(jì)算基線,按下列公式計(jì)算各組細(xì)菌的清除率:
在此種背景下,農(nóng)業(yè)的發(fā)展方式需要轉(zhuǎn)變、要從供給入手改善供給結(jié)構(gòu),這才有了農(nóng)產(chǎn)品供給側(cè)改革。但是在今后的農(nóng)業(yè)建設(shè)與發(fā)展中,供給側(cè)改革要想得到有效的推進(jìn),除了國(guó)家的宏觀調(diào)控之外,農(nóng)民也得轉(zhuǎn)變發(fā)展觀念。通過(guò)施化肥、打農(nóng)藥、單純追求產(chǎn)量增長(zhǎng)的生產(chǎn)方式已經(jīng)不符合時(shí)代的潮流,農(nóng)民還要調(diào)整種植結(jié)構(gòu),多生產(chǎn)綠色有機(jī)食品,滿足消費(fèi)者的需求來(lái)提升經(jīng)濟(jì)效益。
取糞腸球菌根管感染的離體牙根15 個(gè),隨機(jī)分為常規(guī)根管治療組、MB?PDT 治療組和釋氧MB?PDT 治療組,每組5 個(gè)離體牙根,同時(shí)另取5 個(gè)離體牙根不做任何處理,獲取根管內(nèi)不同部位牙本質(zhì)小管內(nèi)樣本作為細(xì)菌測(cè)定基線。將牙根沿牙體長(zhǎng)軸縱向劈開(kāi),將牙根三等份分為根上、根中、根下三段,采用小球鉆(直徑1 mm)在根上、根中、根下三段牙根部位的中心部位獲取深度1 000 μm 的牙本質(zhì)碎屑,為保證每個(gè)部位收集的牙本質(zhì)碎屑盡可能保持一致,應(yīng)在球鉆頭部剛好完全沒(méi)入根管內(nèi)壁時(shí)停止取樣,同時(shí)為了避免產(chǎn)熱過(guò)多,應(yīng)該間斷鉆磨,隨后用無(wú)菌水將碎屑轉(zhuǎn)移到離心管中并充分振蕩10 s。
其中M 為基線細(xì)菌數(shù),N 為處理后的細(xì)菌數(shù)。實(shí)驗(yàn)及計(jì)算方法參考文獻(xiàn)[9]。
糞腸球菌的根管感染模型構(gòu)建參考以往文獻(xiàn)報(bào)道
,具體如下。獲取上海市口腔醫(yī)院口腔頜面外科臨床拔除的63 個(gè)根尖發(fā)育完成、單根管離體牙(審批號(hào):滬口防倫審[2020]014 號(hào)),將牙根表面清理干凈,修整牙體,保留牙根9 mm 的長(zhǎng)度。采用ProTaper 鎳鈦機(jī)械進(jìn)行常規(guī)根管預(yù)備,根管沖洗液交替沖洗根管,沖出碎屑。離體牙根清理完成后,121 ℃高溫高壓消毒20 min,殺滅牙根內(nèi)微生物。隨后,將滅菌后的離體牙根,置于糞腸球菌BHI 肉湯中進(jìn)行培養(yǎng)3 周,細(xì)菌濃度為10
CFU/mL,每3 d 更換1 次培養(yǎng)基。培養(yǎng)3 周后,取其中3 個(gè)樣本,采用高速渦輪手機(jī)沿牙體長(zhǎng)軸縱向磨除溝槽,用骨鑿沿溝槽將牙體縱向劈開(kāi),用2.5%戊二醛固定后,脫水、干燥、噴金,隨后采用掃描電子顯微鏡觀察根管內(nèi)糞腸球菌的分布,確認(rèn)根管感染模型構(gòu)建成功。
1.2.3 單線態(tài)氧產(chǎn)生速率測(cè)量 濃度為100 μmol/L的單線態(tài)氧清除劑DPBF 與不同測(cè)試配方中的50 μmol/L MB 混合(總體積3 mL)。利用光度計(jì)測(cè)定DPBF 濃度在420 nm 波長(zhǎng)隨著輻照時(shí)間增加而降低的速率,分析不同配方MB 單線態(tài)氧產(chǎn)生的速率,檢測(cè)間隔為5 min,檢測(cè)20 min。所有實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次。
那么如何帶動(dòng)那些因病、因殘致貧,或者沒(méi)有勞動(dòng)能力的重點(diǎn)貧困戶實(shí)現(xiàn)脫貧?為解決這一問(wèn)題,石柱縣進(jìn)一步探索了基金收益扶貧模式,即縣財(cái)政通過(guò)整合各類涉農(nóng)資金,建立起1億元的資產(chǎn)收益扶貧專項(xiàng)基金,由縣國(guó)有資產(chǎn)監(jiān)管中心委托興農(nóng)擔(dān)保公司負(fù)責(zé)管理。該基金的申請(qǐng)對(duì)象為農(nóng)民合作社及參與產(chǎn)業(yè)扶貧的各類企業(yè),而收益對(duì)象為重點(diǎn)貧困戶,按照每帶動(dòng)一戶重點(diǎn)貧困戶5萬(wàn)元的標(biāo)準(zhǔn)計(jì)算申請(qǐng)借用額度,借用時(shí)限最長(zhǎng)為5年。
DPBF 濃度的下降速率代表了單線態(tài)氧產(chǎn)生的速率。5 min(
= 6.453,
= 0.003)、10 min(
=9.166,
= 0.001)、15 min(
= 15.600,
<0.001)、20 min(
= 10.180,
= 0.001)時(shí),釋氧MB 組中DPBF 的下降速率高于MB 組中下降速率(
<0.05)(圖1b)。
經(jīng)過(guò)3 周的培養(yǎng),采用掃描電子顯微鏡觀察根管壁表面,可以見(jiàn)到根管表面大量圓形的糞腸球菌附著,并侵入到牙本質(zhì)小管內(nèi)部,說(shuō)明根管感染模型成功建立(圖2)。
當(dāng)代網(wǎng)絡(luò)教學(xué)資源五花八門(mén),為了促進(jìn)網(wǎng)絡(luò)教育的不斷創(chuàng)新和改革,學(xué)校和社會(huì)應(yīng)該做好網(wǎng)絡(luò)教育的先鋒和引路者,教師有責(zé)任將自己的知識(shí)無(wú)償傳授給學(xué)生,為了能讓學(xué)生更好地吸收知識(shí),引導(dǎo)學(xué)生完成自主性學(xué)習(xí),提供給學(xué)生質(zhì)量?jī)?yōu)于市面的以取利為目的的網(wǎng)絡(luò)教學(xué)機(jī)構(gòu)或者教學(xué)平臺(tái),學(xué)校有義務(wù)為教師的網(wǎng)絡(luò)教學(xué)活動(dòng)提供平臺(tái),社會(huì)也同樣有義務(wù)為地方網(wǎng)絡(luò)教育過(guò)程提供支持與相關(guān)所有的服務(wù)。
常規(guī)根管治療組根管內(nèi)糞腸球菌清除率為(90.43±1.43)%,MB?PDT治療組為(95.95±0.77)%,釋氧MB?PDT 治療組為(98.57 ± 1.19)%,三組根管內(nèi)糞腸球菌的清除率差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(
=16.5,
<0.05),釋氧MB?PDT 組糞腸球菌清除率高于MB?PDT 治療組和常規(guī)根管治療組,MB?PDT 治療組高于常規(guī)根管治療組,差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(
<0.05)。
三組根管不同部位(根上、根中、根下段)牙本質(zhì)小管內(nèi)糞腸球菌清除率如表1 所示。根上段,三組清除率差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(
= 33.7,
>0.05);根中段,釋氧MB?PDT 組清除率高于常規(guī)根管治療組,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(
<0.05);根下段,MB?PDT 治療組清除率高于常規(guī)根管治療組,釋氧MB?PDT 組高于常規(guī)根管治療組和MB?PDT 治療組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(
<0.05)。
利用Msatcommander軟件對(duì)廣西地不容的unigene序列進(jìn)行SSR位點(diǎn)搜索。篩選標(biāo)準(zhǔn):?jiǎn)螇A基重復(fù)不予統(tǒng)計(jì),二堿基至少重復(fù)6次、三至四堿基至少重復(fù)5次、五至六堿基至少重復(fù)3次。
糞腸球菌是一種革蘭氏陽(yáng)性兼性厭氧菌,在根管內(nèi)可形成生物膜,在牙本質(zhì)小管內(nèi)的潛行深度可達(dá)1 000 μm,能夠在較為惡劣的條件下生存,可以耐受根管內(nèi)pH 值、溫度和氧張力的巨大變化,具有較強(qiáng)的耐藥性
。由于根管結(jié)構(gòu)的復(fù)雜性以及糞腸球菌的特點(diǎn),常規(guī)根管治療方法仍然存在一定的局限性,無(wú)法完全清除根管內(nèi)的糞腸球菌感染
。PDT 作為一種新型的根管消毒方法,具有諸多優(yōu)點(diǎn)
:可以殺傷病原微生物而不對(duì)正常的人體細(xì)胞產(chǎn)生影響;沒(méi)有激光治療產(chǎn)熱過(guò)多損傷牙周組織的問(wèn)題;光譜殺菌,無(wú)耐藥性;殺菌能力較為安全高效(無(wú)次氯酸鈉的毒性)等。但是根管內(nèi)氧不足的特點(diǎn)大大影響了PDT 的根管消毒能力。改善根管內(nèi)的氧環(huán)境,可以更好提高PDT在根管消毒中的作用。研究發(fā)現(xiàn),利用氧載體混合H
O
釋氧的配方,提高了根管消毒效果
。本研究采用了離體牙糞腸球菌根管感染模型,利用此配方進(jìn)一步研究了PDT 在根管消毒中的作用。
本研究中,釋氧MB 組中的氧化活性及單線態(tài)氧的產(chǎn)生能力均強(qiáng)于MB 組,提示該配方進(jìn)一步改善了反應(yīng)中的內(nèi)在氧環(huán)境,對(duì)后續(xù)PDT 治療中進(jìn)一步提高殺滅微生物的效果具有重要意義,與前期研究結(jié)果一致
。研究發(fā)現(xiàn),PDT 與1%次氯酸鈉聯(lián)用可以起到較好的效果
,同時(shí)重復(fù)兩次PDT 治療的效果要明顯優(yōu)于單次PDT 治療的效果,殺菌率可以有效提高到95%左右
。因而,本研究在應(yīng)用1%次氯酸鈉根管消毒的基礎(chǔ)上,采用了兩次PDT 治療進(jìn)行研究。結(jié)果顯示,MB?PDT 治療組的糞腸球菌清除率(95.95 ± 0.77)%高于常規(guī)根管治療組,釋氧MB?PDT 治療組的糞腸球菌的清除率(98.57±1.19)%得到進(jìn)一步提高;表明改善根管內(nèi)氧環(huán)境后,提高了PDT 治療對(duì)根管內(nèi)糞腸球菌的殺菌能力。
糞腸球菌可以潛伏至牙本質(zhì)小管內(nèi)1 000 μm的深度,常規(guī)根管消毒采用的次氯酸鈉等消毒溶液的滲透能力無(wú)法達(dá)到此深度
,同時(shí)因?yàn)楦芙Y(jié)構(gòu)形態(tài)的復(fù)雜性(如根下段根管分歧、側(cè)枝等),進(jìn)一步影響了根管消毒效果
。PDT 治療中,MB溶液能更好滲透進(jìn)入牙本質(zhì)小管深層
,以及自由氧在根管內(nèi)不同位置充分釋放均是其發(fā)揮消毒作用的關(guān)鍵因素。因而本研究進(jìn)一步研究了釋氧MB 應(yīng)用于PDT 治療在根上、根中、根下不同部位的清除效果差異。結(jié)果顯示,各組根上段糞腸球菌清除率差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;在根中段,釋氧MB?PDT 組的糞腸球菌清除率高于常規(guī)根管治療組,但與MB?PDT 治療組無(wú)明顯差異;在根下段,MB?PDT治療組的糞腸球菌清除率(91.94 ± 2.47)%高于常規(guī)根管治療組(85.44 ± 1.43)%,釋氧MB?PDT 組糞腸球菌清除率(97.87 ± 1.14)%高于MB?PDT 治療組。提示釋氧PDT 主要改善了根下段內(nèi)氧環(huán)境,并進(jìn)一步提高了PDT 對(duì)根管內(nèi)糞腸球菌的輔助清除效果。
綜上,PDT 可以輔助根管治療,提高常規(guī)根管治療中根管內(nèi)糞腸球菌清除率,釋氧PDT 通過(guò)提高根管內(nèi)自由氧的含量,可進(jìn)一步提高PDT 的殺菌能力,且對(duì)于根下段部分效果更加明顯。
[1] 周敏,許來(lái)俊.新型消毒方式對(duì)根管內(nèi)糞腸球菌清除作用的研究進(jìn)展[J].口腔疾病防治,2020,28(9):607?612.doi:10.12016/j.issn.2096?1456.2020.09.011.Zhou M, Xu LJ. Research progress on the effect of new disinfec?tion methods on the clearance of
in the root canal[J]. J Prev Treat Stomatol Dis, 2020, 28(9): 607?612. doi:10.12016/j.issn.2096?1456.2020.09.011.
[2] Prada I, Micó?Mu?oz P, Giner?Lluesma T, et al. Influence of mi?crobiology on endodontic failure. Literature review[J]. Med Oral Patol Oral Cir Bucal, 2019, 24(3): e364?e372. doi: 10.4317/med?oral.22907.
[3] Bordea IR, Hanna R, Chiniforush N, et al. Evaluation of the out?come of various laser therapy applications in root canal disinfec?tion: a systematic review[J]. Photodiagnosis Photodyn Ther, 2020,29:101611.doi:10.1016/j.pdpdt.2019.101611.
[4] Stájer A,Kajári S,Gajdács M,et al.Utility of photodynamic thera?py in dentistry:current concepts[J].Dent J(Basel), 2020,8(2):43.doi:10.3390/dj8020043.
[5] Plotino G,Grande NM,Mercade M.Photodynamic therapy in end?odontics[J]. Int Endod J, 2019, 52(6): 760?774. doi: 10.1111/iej.13057.
[6] Vendramini Y, Salles A. Antimicrobial effect of photodynamic therapy on intracanal biofilm: a systematic review of
stud?ies[J]. Photodiagnosis Photodyn Ther, 2020, 32: 102025. doi: 10.1016/j.pdpdt.2020.102025.
[7] George S, Kishen A. Augmenting the antibiofilm efficacy of ad?vanced noninvasive light activated disinfection with emulsified ox?idizer and oxygen carrier[J]. J Endod, 2008, 34(9): 1119?1123.doi:10.1016/j.joen.2008.06.019.
[8] George S, Photophysical KA. Photochemical, and photobiological characterization of methylene blue formulations for light?activated root canal disinfection[J].J Biomed Opt, 2007,12(3):034029.doi:10.1117/1.2745982.
[9] 陳紅,薛凡,李巧梅,等.Er:YAG 激光聯(lián)合次氯酸鈉對(duì)根管內(nèi)壁糞腸球菌的滅除效果[J]. 口腔疾病防治, 2018, 26(12): 773?778.doi:10.12016/j.issn.2096?1456.2018.12.004.Chen H,Xue F,Li QM,et al.Effect of an Er:YAG laser combined with sodium hypochlorite on the elimination of
in the root canal[J]. J Prev Treat Stomatol Dis, 2018, 26(12):773?778.doi:10.12016/j.issn.2096?1456.2018.12.004.
[10] Stuart CH, Schwartz SA, Beeson TJ, et al.
:its role in root canal therapy failure and current concepts in rether?apy[J]. J Endod, 2006, 32(2): 93?98. doi: 10.1016/j.joen.2005.10.04.
[11] 李美美,黃紋祺,陳柯,等.光動(dòng)力療法應(yīng)用于根管消毒的研究進(jìn)展[J]. 口腔疾病防治, 2020, 28(11): 739?743. doi: 10.12016/j.issn.2096?1456.2020.11.011.Li MM, Huang WQ, Chen K, et al. Advances in the application of photodynamic therapy to root canal disinfection[J]. J Prev Treat Stomatol Dis, 2020, 28(11): 739?743. doi: 10.12016/j.issn.2096?1456.2020.11.011.
[12] Chiniforush N,Pourhajibagher M,Shahabi S,et al.Can antimicro?bial photodynamic therapy (aPDT) enhance the endodontic thera?py?[J]. J Lasers Med Sci, 2016, 7(2): 76?85. doi: 10.15171/jlms.2016.14.
[13] Sarda RA,Shetty RM,Tamrakar A,et al.Antimicrobial efficacy of photodynamic therapy, diodelaser, and sodium hypochlorite and their combinations on endodontic pathogens[J]. Photodiagnosis?Photodyn Ther, 2019, 28: 265?272. doi: 10.1016/j.pdpdt.2019.09.009.
[14] Prazmo EJ.GodlewskaRA,mielczarek AB.Effectiveness of repeat?ed photodynamic therapy in the elimination of intracanal
biofilm: an
study[J]. Lasers Med Sci, 2017,32(3):655?661.doi:10.1007/s10103?017?2164?3.
[15] Anagnostaki E, Mylona V, Parker S, et al. Systematic review on the role of lasers in endodontic therapy: valuable adjunct therapy?[J].Dent J(Basel),2020,8(3):63.doi:10.3390/dj8030063.
[16] Virdee SS,Seymour DW,Farnell D,et al.Efficacy of irrigant acti?vation techniques in removing intracanal smear layer and debris from mature permanent teeth:a systematic review and meta?analy?sis[J].Int Endod J,2018,51(6):605?621.doi:10.1111/iej.12877.