張炎 李睿 李利軍
摘 要:利用C反應(yīng)蛋白(C-reactive protein,CRP)的巰基化適配體修飾金殼磁性顆粒制備了磁性捕獲基底Fe3O4@PEI@Au@Aptamer-SH;以拉曼報(bào)告分子對(duì)巰基苯甲酸(4-MBA)修飾銀納米粒子,并通過(guò)酰胺鍵偶聯(lián)CRP的氨基化適配體,制備了信號(hào)探針Ag@4-MBA@Aptamer-NH2。磁性捕獲基底、抗原CRP以及SERS探針形成三明治夾心復(fù)合物,磁分離富集后,實(shí)現(xiàn)對(duì)CRP的SERS檢測(cè)。在0.1 ng/mL~100 μg/mL濃度范圍,SERS信號(hào)強(qiáng)度(ISERS)與CRP濃度的對(duì)數(shù)值呈良好的線性關(guān)系。對(duì)人血清樣品進(jìn)行加標(biāo)試驗(yàn),回收率為93.1% ~109.6%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為2.71%~4.68%(n = 3)。該SERS-磁性生物傳感器具有制備相對(duì)簡(jiǎn)單、線性范圍寬、特異性強(qiáng)、重現(xiàn)性和穩(wěn)定性好等特點(diǎn),在臨床檢測(cè)診斷方面具有一定的應(yīng)用價(jià)值。
關(guān)鍵詞:C反應(yīng)蛋白(CRP);適配體;SERS;生物傳感器
中圖分類號(hào):TP212.3? ? ? ? ? DOI:10.16375/j.cnki.cn45-1395/t.2022.03.012
0? ? 引言
Tillet和Francis于1930年在部分急性病患者的血清中發(fā)現(xiàn)C反應(yīng)蛋白(C-reactive protein,CRP)。人體血清中CRP是細(xì)菌感染、組織壞死、動(dòng)脈粥樣硬化等疾病的重要標(biāo)志物,是急性炎癥病人血清中可結(jié)合肺炎鏈球菌的莢膜C-多糖蛋白質(zhì)。正常人血清中CRP含量一般不超過(guò)8 μg/mL[1],在感染細(xì)菌、組織嚴(yán)重壞死、動(dòng)脈粥樣硬化后的6~8 h,CRP的濃度開始升高,在24~48 h達(dá)到高峰,高峰值可達(dá)正常值的數(shù)倍或數(shù)百倍[2],在消除感染后,其含量急劇下降,一周內(nèi)可恢復(fù)正常。目前,CRP已經(jīng)作為醫(yī)院急診常規(guī)檢測(cè)項(xiàng)目[3],和血常規(guī)同時(shí)進(jìn)行檢測(cè),是診斷全身細(xì)菌性感染的重要標(biāo)志物[4]。動(dòng)態(tài)觀察CRP有助于在細(xì)菌感染時(shí)合理使用抗生素[5]、對(duì)療效進(jìn)行判斷。
目前,有關(guān)CRP的檢測(cè)方法主要有化學(xué)發(fā)光法[6]、熒光免疫分析法[7-8]、酶聯(lián)免疫分析法[9-10]和電化學(xué)分析法[11]等,這些檢測(cè)方法具有良好的準(zhǔn)確性和重現(xiàn)性,已應(yīng)用于臨床診斷和治療,但存在操作繁瑣、耗時(shí)、成本較高等問(wèn)題。
表面增強(qiáng)拉曼光譜法(surface-enhanced Raman spectroscopy,SERS)因具有靈敏度高、無(wú)損、檢測(cè)快速等優(yōu)點(diǎn)被廣泛應(yīng)用于定性定量分析[12-13]。適配體(Aptamer)作為DNA或RNA單鏈的一小段寡核苷酸序列,與抗體相比,具有穩(wěn)定性好、成本低、容易合成和修飾等優(yōu)點(diǎn)[14-15]。因此,將SERS技術(shù)和適配體結(jié)合,構(gòu)建SERS適配體生物傳感器受到廣泛關(guān)注[16-17]。如Kim等[18]構(gòu)建了一種CRP的SERS適配體生物傳感器,該傳感器將Au-Te納米粒子固定在銦-錫氧化物底物上,然后將巰基化的CRP適配體修飾到底物上,用于CRP的識(shí)別,將多功能的DNA 3WJ與PAuNPs偶聯(lián),并結(jié)合SERS信號(hào)放大技術(shù),實(shí)現(xiàn)對(duì)CRP的檢測(cè)。該策略制備CRP的SERS傳感器在磷酸鹽緩沖液中的檢測(cè)限為2.23 pmol/L,在稀釋的人血清中的檢測(cè)限為3.11 pmol/L。Wu等[8]將固定在磁珠(MBs)上的CRP-Aptamer與AuNPs上的cDNA鏈雜交,形成MB-dsDNA-AuNP夾心結(jié)構(gòu),當(dāng)加入CRP后,由于CRP與適配體之間的強(qiáng)相互作用,導(dǎo)致AuNPs的釋放,實(shí)現(xiàn)對(duì)目標(biāo)物質(zhì)的SERS檢測(cè),該方法的檢測(cè)限為2.71 nmol/L。但上述傳感器的制備較為繁瑣,靈敏度不高。
納米Au修飾的磁性粒子對(duì)復(fù)雜生物體系中的目標(biāo)物質(zhì)不僅具有分離富集的作用,而且還能產(chǎn)生更多的“熱點(diǎn)”,進(jìn)一步增強(qiáng)SERS信號(hào)[19]。聚乙烯亞胺(PEI)呈正電性,易吸附到呈負(fù)電性的磁性Fe3O4納米顆粒表面,形成包覆層,帶正電荷的包覆層容易吸附呈負(fù)電性的金納米粒子,可為制備金殼提供金種子位點(diǎn)[20]。本文在磁性Fe3O4納米顆粒表面包覆PEI,以PEI作為中間夾層制備金殼磁性顆粒,再修飾上巰基化的CRP適配體,作為CRP的磁性捕獲基底;在AgNPs表面修飾4-MBA,再通過(guò)酰胺鍵偶聯(lián)氨基化的CRP適配體作為SERS信號(hào)探針,構(gòu)建了CRP的SERS-磁性適配體傳感器。對(duì)磁性捕獲基底、SERS信號(hào)探針?lè)謩e進(jìn)行了表征,并考察了該傳感器的相關(guān)性能。結(jié)果表明,該生物傳感器具有制作相對(duì)簡(jiǎn)便、重現(xiàn)性好、準(zhǔn)確度高、線性范圍寬等特點(diǎn)。
1? ? 實(shí)驗(yàn)部分
1.1? ?儀器與試劑
實(shí)驗(yàn)儀器及實(shí)驗(yàn)試劑分別如表1和表2所示。
1.2? ? ?SERS探針Ag@4-MBA@CRP-Aptamer的制備
AgNPs的制備參考Wang等[21]的方法。將90 mg AgNO3 溶解于500 mL水中,置于裝有回流裝置的三口燒瓶中,加熱至沸騰,保持沸騰15 min,排出O2,快速加入10 mL 1%的檸檬酸三鈉水溶液,在沸騰條件下反應(yīng)20 min,關(guān)閉加熱開關(guān),余溫反應(yīng)1 h后,4 ℃保存。
取1 mL AgNPs,加入100 μL乙醇溶液(含? ? ? ? ? 1 mmol/L 4-MBA),在室溫下混合超聲30 min。分別用去離子水和無(wú)水乙醇洗滌3次,除去未反應(yīng)的4-MBA,得到4-MBA標(biāo)記的AgNPs(Ag@4-MBA),然后將其重新分散到1 mL PBS(pH 7.4)中。加入NHS(10 μL,100 mmol/L)和EDC(5 μL,100 mmol/L)活化4-MBA的羧基末端。隨后將200 μL 10 μg/mL 的氨基化CRP-Aptamer加入溶液中,在室溫下孵育1 h,通過(guò)酰胺鍵偶聯(lián)4-MBA與CRP-Aptamer。最后加入10 μL 50 g/L BSA,室溫超聲反應(yīng)30 min,阻斷其余活性部位。經(jīng)過(guò)洗滌離心后,得到SERS檢測(cè)探針(Ag@4-MBA@CRP-Aptamer),分散于1 mL PBS中,待用。
1.3? ?磁性捕獲基底Fe3O4@PEI@Au@Aptamer-SH的制備
參照Li等[22]提出的溶劑熱合成法:將2.7 g Fe3O4·6H2O溶于80 mL乙二醇溶液中,磁力攪拌30 min使其完全溶解。稱取5.4 g乙酸鈉和2 g PEG 4000加入上述混合溶液中,繼續(xù)攪拌1 h,使其溶劑完全混合均勻。將混合溶液轉(zhuǎn)移至高壓反應(yīng)釜內(nèi)(聚四氟乙烯內(nèi)膽),并置于210 ℃鼓風(fēng)干燥箱中反應(yīng)12 h,得到的黑色沉淀用去離子水和乙醇分別清洗3次,置于真空干燥箱內(nèi)60 ℃烘干備用。
將20 mg Fe3O4磁性顆粒溶于10 mL去離子水后,超聲10 min使其完全分散。Fe3O4磁性顆粒溶液與PEI溶液(5 mg/mL)按1∶1的體積比混合后超聲30 min。外加磁場(chǎng)富集分離,用去離子水清洗5次,除去多余的PEI,得到Fe3O4@PEI磁性顆粒,分散保存在5 mL去離子水中,待用。
制備膠體金種子:首先配制200 mL氯金酸溶液(0.25 mmol/L),加入2 mL 1%檸檬酸鈉溶液;在劇烈攪拌下,加入6 mL新鮮配置的硼氫化鈉溶液(0.1 mol/L),繼續(xù)攪拌2 h,獲得膠體金種子溶液,避光保存,備用。將5 mL Fe3O4@PEI磁性顆粒投入到100 mL膠體金溶液中,劇烈超聲反應(yīng)0.5 h。外加磁場(chǎng)富集分離,用去離子水洗滌2次,得到Fe3O4@PEI-Au seed微球,用5 mL去離子水重懸,在4 ℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>
將1 mL Fe3O4@PEI@Au seed溶液加入100 mL去離子水中,超聲10 min使其完全分散;向上述溶液中加入200 mg PVP粉末和50 mg鹽酸羥胺,超聲5 min,使加入的固體粉末完全溶解;快速加入150 μL 氯金酸(1%),繼續(xù)超聲反應(yīng)5 min后,外加磁場(chǎng)富集分離,用去離子水清洗3次,除去多余的PVP,得到金殼磁性顆粒Fe3O4@PEI@Au。隨后將200 μL 10 μg/mL的Aptamer-SH加入到溶液中,孵育1 h后,外加磁場(chǎng)富集分離,洗滌去掉沒(méi)有結(jié)合的Aptamer-SH,最后加入10 μL 50 g/L BSA ,室溫超聲反應(yīng)30 min,阻斷其余活性部位。得到磁性捕獲基底Fe3O4@PEI@Au@Aptamer-SH,經(jīng)過(guò)洗滌離心后,再分散于1 mL的PBS中,待用。
1.4? ? 血清樣品及CRP的SERS檢測(cè)
本工作所用血清樣品未經(jīng)任何稀釋。將CRP標(biāo)準(zhǔn)品溶解在PBS(0.1 mol/L,pH 7.4)中配置100 μg/mL的CRP標(biāo)準(zhǔn)溶液;按需要用PBS溶液稀釋至所需的濃度。將不同濃度的CRP樣液加入1 mL Fe3O4@PEI@Au@Aptamer-SH 捕獲基底中,孵育? 1 h后用PBS清洗3次,洗滌掉未結(jié)合的CRP后,用1 mL PBS重懸;再加入1 mL Ag@4-MBA-@Aptamer-NH2 SERS探針,室溫孵育1.5 h,利用外加磁場(chǎng)分離富集夾心復(fù)合物,用PBS緩沖溶液洗滌3次,除去未結(jié)合的SERS探針后,重懸于1 mL PBS中。然后,取不同濃度的夾心復(fù)合物20 μL滴加到玻片上(玻片置于磁鐵上進(jìn)行磁場(chǎng)組裝),自然晾干后,檢測(cè)拉曼信號(hào),每個(gè)樣品采集3次拉曼? 光譜。
2? ? 結(jié)果與討論
2.1? ?CRP檢測(cè)原理
CRP檢測(cè)原理如圖1所示。利用CRP-Aptamer對(duì)CRP的特異性結(jié)合能力,磁性捕獲基底Fe3O4@PEI@Au@Aptamer-SH識(shí)別并捕獲樣液中待測(cè)的抗原CRP,加入拉曼信號(hào)探針Ag@4-MBA@CRP-Aptamer后,與磁性捕獲基底上的CRP結(jié)合,形成磁性捕獲基底、目標(biāo)物質(zhì)和SERS信號(hào)探針的夾心結(jié)構(gòu)復(fù)合物,通過(guò)外加磁場(chǎng)分離富集,洗滌去掉游離的SERS信號(hào)探針,進(jìn)行SERS檢測(cè),SERS信號(hào)強(qiáng)度與一定范圍內(nèi)的CRP濃度的對(duì)數(shù)值呈線性關(guān)系。
引入磁性捕獲基底,可方便地捕獲目標(biāo)物質(zhì),并從復(fù)雜的血清樣液中分離富集目標(biāo)物質(zhì),避免了復(fù)雜的樣品預(yù)處理。拉曼信號(hào)探針Ag@4-MBA-@-Aptamer-NH2中的納米銀對(duì)4-MBA拉曼信號(hào)具有增強(qiáng)作用,磁性捕獲基底Fe3O4 @PEI@Au@Aptamer-SH中金殼也具有拉曼增強(qiáng)效應(yīng),因此,納米銀和金殼對(duì)4-MBA拉曼信號(hào)具有協(xié)同增強(qiáng)效應(yīng),利于提高檢測(cè)靈敏度。
2.2? ? 磁性捕獲基底Fe3O4@PEI@Au的表征
圖2(a)—圖2(d)分別為納米Fe3O4、Fe3O4 @-PEI、Fe3O4@PEI@Au-seed和Fe3O4@PEI@Au的SEM和TEM圖像。由圖2(a)可以看出,納米Fe3O4顆粒具有較好的分散性和均一性;由圖2(b)可明顯觀察到PEI包覆層,親水性的PEI不僅起到保護(hù)層的作用,還可改善磁性顆粒的分散性,避免團(tuán)聚現(xiàn)象;由圖2(c)可以明顯看出,F(xiàn)e3O4@PEI顆粒表面變得粗糙,有小顆粒粘附其表面,說(shuō)明Fe3O4@PEI@Au-seed制備成功;由圖2(d)可看出,粘附在表面的顆粒明顯變大,表明Au種子介導(dǎo)法使還原的Au吸附其表面,證明Au層沉積成功。
圖3(a)表示制備的Fe3O4、Fe3O4@PEI、Fe3O4@PEI@Au-seed、Fe3O4@PEI@Au的磁滯回線,磁化強(qiáng)度分別為81.2 emu/g、 73.1 emu/g、 67.8 emu/g、 52.5 emu/g。由于PEI與AuNPs為非磁性物質(zhì),所以隨著PEI、AuNPs逐層包覆在磁性顆粒的外圍,導(dǎo)致磁力強(qiáng)度逐漸降低[23],但基底(Fe3O4@PEI@Au)仍然具有較強(qiáng)的磁性,所制備的磁性基底可采用外加磁場(chǎng)的方法進(jìn)行磁富集分離。
對(duì)制備的材料進(jìn)行XRD表征,結(jié)果如圖3(b)所示。由圖3(b)可知,F(xiàn)e3O4納米粒子分別在2θ為30.2°、35.5°、43.2°、53.6°、57.1°、62.7°處出現(xiàn)衍射峰,分別對(duì)應(yīng)Fe3O4晶型的(220)、(311)、(400)、(422)、(511)、(440)晶面,與粉末衍射文件數(shù)據(jù)庫(kù)標(biāo)準(zhǔn)卡片一致。Fe3O4@PEI中未見有新的衍射峰出現(xiàn),這是因?yàn)镻EI為有機(jī)聚合物,無(wú)晶型結(jié)構(gòu)。Fe3O4@PEI@Au-seed顯示,在2θ值為38.2°處出現(xiàn)新的衍射峰,對(duì)應(yīng)金的(111)晶面,這與粉末衍射文件數(shù)據(jù)庫(kù)標(biāo)準(zhǔn)卡片一致,說(shuō)明金種子成功地包裹在Fe3O4@PEI的表面。由Fe3O4@PEI@Au可看出,在38.2°處的衍射峰的強(qiáng)度明顯增強(qiáng),表明金種子變大,磁性顆粒包覆了一層金殼。
對(duì)制備的材料進(jìn)行EDS表征,結(jié)果見圖3(c)。Fe3O4@PEI在Fe3O4基礎(chǔ)上出現(xiàn)了N元素,說(shuō)明PEI包覆在Fe3O4顆粒表面;Fe3O4@PEI@Au-seed出現(xiàn)Au元素,表明Fe3O4@PEI表面有Au種子沉積,F(xiàn)e3O4@PEI@Au-seed制備成功;Fe3O4@PEI@Au的Au峰強(qiáng)度明顯增強(qiáng),表明通過(guò)種子介導(dǎo)的金殼包覆成功。圖3(c)中每個(gè)樣品都出現(xiàn)了Cu元素的峰,由于進(jìn)行TEM檢測(cè)時(shí),選擇了銅網(wǎng)作為樣品的載體,出現(xiàn)了Cu信號(hào)。在對(duì)樣品進(jìn)行掃描時(shí),將銅網(wǎng)與樣品視為一個(gè)整體,所以EDS光譜中的Cu信號(hào)來(lái)自于銅網(wǎng)。
2.3? ? SERS探針制備條件的優(yōu)化與表征
2.3.1? ? 4-MBA用量和時(shí)間優(yōu)化
分別將1 mmol/L不同體積(50 μL、100 μL、150 μL、200 μL、250 μL、300 μL)的4-MBA加入1 mL AgNPs溶液中,在室溫下孵育30 min后,各取20 μL于載玻片上進(jìn)行SERS檢測(cè)。結(jié)果如圖4(a)所示,隨著4-MBA用量的增加,SERS信號(hào)強(qiáng)度逐漸增強(qiáng),4-MBA用量為200 μL時(shí)SERS信號(hào)強(qiáng)度最大;當(dāng)超過(guò)200 μL時(shí),SERS強(qiáng)度呈下降趨勢(shì)。因此,4-MBA的較佳用量為200 μL,用于后續(xù)的試驗(yàn)。為優(yōu)化4-MBA與AgNPs的孵育時(shí)間,將200 μL的1 mmol/L 4-MBA與AgNPs溶液孵育不同的時(shí)間(15 min、30 min、45 min、 60 min、75 min、90 min)后進(jìn)行SERS檢測(cè),結(jié)果如圖4(b)所示,隨著時(shí)間的不斷推移,在60 min時(shí),1 598 cm-1 處的SERS信號(hào)強(qiáng)度達(dá)到最高值;超過(guò)60 min后,SERS信號(hào)強(qiáng)度呈下降趨勢(shì)。因此,確定60 min為最佳反應(yīng)時(shí)間,用于后續(xù)的試驗(yàn)。
2.3.2? ? AgNPs@4-MBA與Aptamer-NH2的用量以及反應(yīng)時(shí)間的優(yōu)化
為了優(yōu)化AgNPs@4-MBA與Aptamer-NH2的用量及反應(yīng)時(shí)間,首先將NHS(10 μL,0.1 mol/L)和EDC(5 μL,0.1 mol/L)加入AgNPs@4-MBA溶液中,并在等體積的AgNPs@4-MBA溶液中加入不同體積(50 μL、100 μL、150 μL、200 μL、250 μL、300 μL)的Aptamer-NH2(10 μg/mL),孵育30 min。AgNPs@4-MBA上的4-MBA的羧酸經(jīng)過(guò)活化后與適配體上的氨基形成酰胺鍵,通過(guò)偶聯(lián)形成SERS探針AgNPs@4-MBA@Aptamer-NH2。如圖5(a)所示,當(dāng)Aptamer-NH2的體積從50 μL增加到200 μL時(shí),1 598 cm-1處的SERS信號(hào)不斷增強(qiáng);當(dāng)體積超過(guò)200 μL時(shí),SERS強(qiáng)度呈下降趨勢(shì)。因此,? ? 200 μL為Aptamer-NH2的最佳用量。SERS信號(hào)強(qiáng)度還與Aptamer-NH2、AgNPs@4-MBA兩者孵育的時(shí)間有關(guān),為此將200 μL Aptamer-NH2加入同體積的AgNPs@4-MBA溶液混合,反應(yīng)不同的時(shí)間(15 min、30 min、45 min、60 min、75 min、90 min)后檢測(cè)SERS信號(hào),結(jié)果如圖 5(b)所示,SERS信號(hào)強(qiáng)度在15~60 min逐漸增強(qiáng),超過(guò)60 min時(shí),其強(qiáng)度又逐漸降低。因此,確定最佳反應(yīng)時(shí)間為? ? 60 min。
2.3.3? ? SERS探針的表征
圖6(a)為AgNPs的掃描電鏡和透射電鏡圖像。結(jié)果顯示,制備的AgNPs具有良好的分散性和均一性。圖6(b)分別為AgNPs、Ag@4-MBA、Ag@4-MBA@Aptamer-NH2的紫外可見吸收光譜圖,由圖可知,AgNPs在413 nm處有一個(gè)較強(qiáng)的吸收峰,是AgNPs的等離子共振吸收峰(SPR);Ag@? ? ? ? ?4-MBA的SPR吸收峰紅移至430 nm處,表明通過(guò)Ag-S鍵4-MBA修飾在AgNPs的表面上;Ag@ 4-MBA@Aptamer-NH2的SPR吸收峰紅移至440 nm,表明適配體成功結(jié)合到AgNPs的表面。
2.4? ?CRP標(biāo)準(zhǔn)溶液的定量檢測(cè)
CRP標(biāo)準(zhǔn)溶液檢測(cè)結(jié)果如圖7所示。圖7(a)標(biāo)出的1 598 cm-1、1 089 cm-1 2個(gè)峰位置是4-MBA的2個(gè)主峰,選擇1 598 cm-1進(jìn)行定量分析是因?yàn)? ? ?4-MBA在1 598 cm-1的拉曼峰強(qiáng)度高于1 089 cm-1處的拉曼峰強(qiáng)度,有利于靈敏度的提高。對(duì)不同濃度的CRP標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行分析檢測(cè),在0.1 ng/mL ~ 100 μg/mL范圍內(nèi),隨著CRP濃度的不斷增大,在1 598 cm-1處的SERS信號(hào)強(qiáng)度逐漸增強(qiáng),SERS信號(hào)強(qiáng)度與濃度的對(duì)數(shù)值呈現(xiàn)良好的線性關(guān)系(圖7(b)),線性方程為ISERS = 629.06x+650.5,相關(guān)系數(shù)R2 = 0.954。R2 = 0.954對(duì)于SERS技術(shù)是可以接受的,如文獻(xiàn)[13]設(shè)計(jì)的SERS傳感器,用于CRP定量檢測(cè),其R2 = 0.891 3;Anh[24]設(shè)計(jì)的SERS傳感器用于CRP的定量分析,R2 = 0.97。比較近幾年CRP的定量檢測(cè)方法,結(jié)果如表3所示。由表3可知,本法具有較強(qiáng)的特異性,同時(shí)線性范圍寬、穩(wěn)定性好、檢測(cè)限低。
2.5? ?SERS-磁性適配體傳感器性能的研究
考察傳感器的選擇性和特異性。分別對(duì)100 μL 10 μg/mL的C反應(yīng)蛋白(CRP)、牛血清白蛋白(BSA)、羧酸酯酶(hCE)、免疫球蛋白G(IgG)、甲胎蛋白(AFP)、癌胚抗原(CEA)以及100 μL PBS溶液進(jìn)行SERS檢測(cè),結(jié)果如圖8(a)、圖8(b)所示。除CRP以外的干擾物均產(chǎn)生相應(yīng)的SERS信號(hào),但信號(hào)較弱;目標(biāo)物質(zhì)CRP所產(chǎn)生的SERS信號(hào)最強(qiáng),遠(yuǎn)大于其他物質(zhì)的信號(hào),表明傳感器對(duì)CRP具有較好的選擇性和特異性。
考察傳感器檢測(cè)的重復(fù)性和均一性。對(duì)1 μg/mL CRP標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行檢測(cè),采集同一點(diǎn)的SERS信號(hào)10次,匯總其SERS光譜圖如圖9(a)所示。經(jīng)過(guò)多次對(duì)同一點(diǎn)的激光照射,其1 598 cm-1處的SERS峰強(qiáng)度略微有所下降,其相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD為7.51%(n =10)。對(duì)100 ng/mL CRP的標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行檢測(cè),采集10次不同點(diǎn)的SERS信號(hào),匯總其SERS光譜圖如圖9(b)所示,其相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD為6.43%(n =10)。綜上所述,傳感器的SERS信號(hào)具有較好的重復(fù)性和均一性。
該傳感器對(duì)實(shí)際血清樣進(jìn)行檢測(cè),并進(jìn)行加標(biāo)試驗(yàn),結(jié)果如圖10所示。由圖10可知,隨著加標(biāo)量的增加,其SERS強(qiáng)度也逐漸增強(qiáng)。加標(biāo)前,檢測(cè)100 μL正常人血清,以1 598 cm-1處拉曼峰強(qiáng)度和標(biāo)準(zhǔn)曲線擬合方程計(jì)算出血清中CRP的含量為0.773 ng/mL,這與健康人血清中CRP含量相符[29]。以100 μL不同質(zhì)量濃度CRP(0.773 ng/mL、3.865 ng/mL、77.300 ng/mL)進(jìn)行加標(biāo)試驗(yàn),結(jié)果如表4所示。由表4可知,回收率為93.1% ~109.6%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD≤ 2.39%(n = 3)。結(jié)果證明傳感器具有較好的準(zhǔn)確性,可用于實(shí)際血清中CRP的檢測(cè)。
考察傳感器的穩(wěn)定性。對(duì)10 μg/mL CRP的標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行檢測(cè),將制備好的磁性基底和SERS探針置于4 ℃條件下,分別放置1 d、3 d、5 d、7 d、10 d后,進(jìn)行SERS檢測(cè)(n = 3),檢測(cè)結(jié)果如圖11所示。由圖11可知,樣品放置的時(shí)間越長(zhǎng),SERS信號(hào)強(qiáng)度有逐漸降低的趨勢(shì),超過(guò)7 d后,SERS強(qiáng)度下降明顯,表明該傳感器穩(wěn)定時(shí)間在7 d以內(nèi)。
3? ? 結(jié)論
本文分別制備了磁性捕獲基底Fe3O4 @P EI@Au@Aptamer-SH和信號(hào)探針Ag@4-MBA @Aptamer-NH2,成功地構(gòu)建了CRP的SERS-磁性適配體傳感器。對(duì)人血清樣進(jìn)行檢測(cè)和加標(biāo)試驗(yàn),取得了令人滿意的結(jié)果。該傳感器具有制備相對(duì)簡(jiǎn)單、特異性強(qiáng)、線性范圍寬、準(zhǔn)確度高、重現(xiàn)性好等優(yōu)點(diǎn)。通過(guò)改變適配體,該方法也可用于構(gòu)建其他蛋白質(zhì)的SERS傳感器,因此,具有一定的普? ?適性。
參考文獻(xiàn)
[1]? ? ?唐銘擎,毛旭華,龔易昕悅,等.C反應(yīng)球蛋白分析方法的研究進(jìn)展[J].分析化學(xué),2020,48(9): 1121-1130.
[2]? ? ANSAR W,GHOSH S. C-reactive protein and the biology of disease[J]. Immunologic Research,2013,56(1):131-142.
[3]? ? ?楊芳誼,湯水平.新生兒醫(yī)院感染敗血癥病原菌特點(diǎn)及PCT、WBC和CRP表達(dá)的臨床意義探討[J].貴州醫(yī)藥,2021,45(12):1878-1879.
[4]? ? ?CHEN Y T,SHEN J R,YANG H,et al. Serum procalcitonin and C-reactive protein levels as diagnostic markers for distinguishing bacterial infections from lupus flares in systemic lupus erythematosus: a systematic review and meta-analysis[J]. International Immunopharmacology,2021,101(B):108304.
[5]? ? ?REYNOLDS I S,BOLAND M R,REILLY F,et al. C-reactive protein as a predictor of anastomotic leak in the first week after anterior resection for rectal cancer.[J]. Colorectal Disease: the Official Journal of the Association of Coloproctology of Great Britain and Ireland,2017,19(9): 812-818.
[6]? ? ?MIAO W,BARD A J. Electrogenerated chemiluminescence. 80. C-reactive protein determination at high amplification with [Ru(bpy)3]2+-containing microspheres[J]. Analytical Chemistry,2004,76(23):7109-7113.
[7]? ? ?HEO Y,LEE S,LEE S W,et al. Single C-reactive protein molecule detection on a gold-nanopatterned chip based on total internal reflection fluorescence[J]. Bulletin of the Korean Chemical Society,2013,34(9):2725-2730.
[8]? ? ?WU B,CHEN N,WANG Q,et al. A simple label-free aptamer-based method for C-reactive protein detection[J]. Analytical Methods,2016,8(21):4177-4180.
[9]? ? ?SHIELDS M J,SIEGEL J N,CLARK C R,et al. An appraisal of polystyrene-(ELISA) and nitrocellulose-based (ELIFA) enzyme immunoassay systems using monoclonal antibodies reactive toward antigenically distinct forms of human C-reactive protein[J]. Journal of Immunological Methods,1991,141(2):253-261.
[10]? ?MARTINEZ J A,COLL J M. Preliminary clinical studies of C-reactive protein quantified by enzyme-linked immunoassay[J]. Clinical Chemistry,1987,33(12):2185-2190.
[11]? ?WANG X,ZHANG J,ZHENG Z,et al. Label-free detection of C-reactive protein using ZnO tetrapods modified quartz crystal microbalance system[J]. Sensor Letters,2013,11(9):1617-1621.
[12]? ?SUN Y,SHI L,MI L,et al. Recent progress of SERS optical nanosensors for miRNA analysis[J].Journal of Materials Chemistry B,2020,8(24):5178-5183.
[13]? ?KIM J,SIM K,CHA S,et al. Single-particle analysis on plasmonic nanogap systems for quantitative SERS[J]. Journal of Raman Spectroscopy,2021,52(2):375-385.
[14]? ?LI X,F(xiàn)IGG C A,WANG R,et al. Cross-linked aptamer-lipid micelles for excellent stability and specificity in target-cell recognition[J]. Angewandte Chemie,2018,57(36):11589-11593.
[15]? ?ZHANG Q,QIU H,TANG F,et al. Aptamer-based dry-reagent strip biosensor for detection of small molecule ATP[J]. Chemistry Letters,2016,45(3):289-290.
[16]? ?MUHAMMAD M,HUANG Q. A review of aptamer-based SERS biosensors:design strategies and applications[J]. Talanta,2021,227:122188.
[17]? ?AMBARTSUMYAN O,GRIBANYOV D,KUKUSH-KIN V,et al. SERS-based biosensors for virus determination with oligonucleotides as recognition elements[J]. International Journal of Molecular Sciences,2020, 21(9):3373-3373.
[18]? ?KIM S M,KIM J,YIM G,et al. Fabrication of a surface-enhanced Raman spectroscopy-based analytical method consisting of multifunctional DNA three-way junction-conjugated porous gold nanoparticles and Au-Te nanoworm for C-reactive protein detection[J]. Analytical and Bioanalytical Chemistry,2022,414(10):3197-3204.
[19]? ?YUAN H,LIU Y,F(xiàn)ALES A M,et al. Quantitative surface-enhanced resonant Raman scattering multiplexing of biocompatible gold nanostars for in vitro and ex vivo detection[J]. Analytical Chemistry,2013,85(1): 208-212.
[20]? ?LIU T,LI D,YANG D,et al. An improved seed-mediated growth method to coat complete silver shells onto silica spheres for surface-enhanced Raman scattering[J]. Colloids and Surfaces A-Physicochemical and Engineering Aspects,2011,387(1-3):17-22.
[21]? ?WANG Z Y,LI W,ZHOU Z Q,et al. Experimental indication of chemical effects in surface enhanced hyper Rayleigh scattering using dye-adsorbed Ag nanoparticles[J]. Optical Materials,2011,33(6):920-923.
[22]? ?DENG H,LI X,PENG Q,et al. Monodisperse magnetic single-crystal ferrite microspheres[J]. Angewandte Chemie,2005,44(18):2782-2785.
[23]? ?LEI L,KE Y,ZHANG Z,et al. Facile methods for synthesis of core-shell structured and heterostructured Fe3O4@Au nanocomposites[J]. Applied Surface Science,2012,258(22):8521-8526.
[24]? ? ANH H N,YESOL S,SANG J S,et al. Development of SERS substrate using phage-based magnetic template for triplex assay in sepsis diagnosis[J]. Biosensors and Bioelectronics,2016,85:522-528.
[25]? ?YANG X S,LIU X X,GU B,et al. Quantitative and simultaneous detection of two inflammation biomarkers via a fluorescent lateral flow immunoassay using dual-color SiO2@QD nanotags[J]. Mikrochimica Acta,2020,187(10):570-570.
[26]? ?LI M,XIA X J,MENG S,et al. An electrochemical immunosensor coupling a bamboo-like carbon nanostructure substrate with toluidine blue-functionalized Cu(ii)-MOFs as signal probes for a C-reactive protein assay[J]. RSC Advances,2021,11(12):6699-6708.
[27]? ?RUSSELL S M, DE LA RICA R. Paper transducers to detect plasmon variations in colorimetric nanoparticle biosensors[J]. Sensors and Actuators:B. Chemical,2018,270:327-332.
[28]? ?LIU X,YANG X,LI K,et al. Fe3O4@Au SERS tags-based lateral flow assay for simultaneous detection of serum amyloid A and C-reactive protein in unprocessed blood sample[J]. Sensors and Actuators B:Chemical,2020,320:128350.
[29]? ?馬小星.血清降鈣素原和超敏C反應(yīng)蛋白水平的變化與炎癥性皮膚病伴細(xì)菌感染的相關(guān)性[J]. 中國(guó)現(xiàn)代醫(yī)生,2020,58(34):126-128.
DNA aptamer-based SERS magnetic biosensor for C-reactive protein
ZHANG Yan1,2, LI Rui1,2, LI Lijun*1,2
(1.Guangxi Key Laboratory of Green Processing of Sugar Resources (Guangxi University of Science and
Technology), Liuzhou 545006, China; 2. School of Biological and Chemical Engineering, Guangxi University
of Science and Technology, Liuzhou 545006, China)
Abstract: A magnetic capture substrate Fe3O4@PEI@Au@Aptamer-SH was prepared by modifying gold-shell magnetic particles with the sulfhydrylated aptamer of C-reactive protein (CRP); a SERS probe Ag@4-MBA@Aptamer-NH2 was prepared by modifying silver nanoparticles with the Raman reporter molecule p-mercaptobenzoic acid (4-MBA) and coupling the aminated aptamer of CRP by amide bond. The magnetic capture substrate, the antigen CRP and the SERS probe formed a sandwich