梅超 余進(jìn)德 隋文靜 張夢(mèng)秋 楊俊聰 陳玉惠 李靖
摘要:從感石楠葉銹病病菌的球花石楠葉片上獲得的3株重寄生菌SYC4、SYC23和SYC63,為確定其分類地位及在銹菌孢子誘導(dǎo)下菌絲體基因的表達(dá)情況,采用形態(tài)學(xué)特征結(jié)合分子序列分析將菌株鑒定到種,并對(duì)重寄生效果較好的菌株SYC63進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組測(cè)序。結(jié)果表明,經(jīng)鑒定SYC4、SYC23為Cladosporium anthropophilum,SYC63為枝狀枝孢菌(C. cladosporioides)。對(duì)菌株SYC63獲得的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)與不同數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行比對(duì),在Nr數(shù)據(jù)庫(kù)中有11 002個(gè)基因被注釋到,除其他物種外,枝孢菌SYC63與南極枝孢菌(Rachicladosporium antarcticum)有2 130個(gè)基因相似,所占物種匹配最高;在GO數(shù)據(jù)庫(kù)中注釋到8 088個(gè)基因,基因數(shù)量最多的是生物學(xué)過(guò)程,其次是分子功能和細(xì)胞組分。在差異表達(dá)基因中發(fā)現(xiàn),與重寄生相關(guān)的凝集素、絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)信號(hào)通路及抗性次級(jí)代謝物有關(guān)的基因經(jīng)銹菌孢子誘導(dǎo)后顯著上調(diào)表達(dá)。以上研究為重寄生枝孢菌在植物病害的生物防治應(yīng)用中提供了菌株來(lái)源,并為其重寄生機(jī)制的深入研究提供了理論基礎(chǔ)。
關(guān)鍵詞:重寄生;分子鑒定;石楠銹孢銹菌;枝孢菌;轉(zhuǎn)錄組
中圖分類號(hào):S476.1;S182文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A
文章編號(hào):1002-1302(2023)05-0019-11
在自然界中,重寄生(mycoparasitism)在銹病中普遍存在,通過(guò)營(yíng)養(yǎng)關(guān)系使寄主植物、病原菌與重寄生菌形成一條完整的食物鏈[1]。因而利用重寄生菌防治寄主植物的病原菌,是保護(hù)生物多樣性和植物病害生物防治方面的新途徑[2]。目前,已有大量研究利用重寄生菌防治銹病,例如從花棒銹病菌[Uromyces onobrychidis (Desm.) Lev.][3]、樟子松皰銹病病原菌松芍柱銹菌[Cronartium flaccidum (Alb.et Schw.) Wint.][4]、小駁骨銹?。?]和茶藨生柱銹菌(Cronartium ribicola J.C.Fischer)[6]等中分離得到的重寄生菌株在銹病中表現(xiàn)出顯著的抑制作用。
園林綠化樹(shù)種石楠的葉銹病是因石楠銹孢銹菌(Aecidium pourthiaea)[現(xiàn)被更正為文山春孢銹菌(Aecidium wenshanese)]寄生而致病的,其重寄生菌主要包括擬盤多毛孢屬(Pestalotiopsis sp.)、枝孢屬(Cladosporium sp.)、鐮刀菌屬(Fusarium sp.)及木霉屬(Trichoderma sp.)等多種真菌[7-9]。1815年,Link建立和描述了枝孢屬,現(xiàn)在它主要分為三大復(fù)合體,即枝狀枝孢(C. cladosporioides)、多主枝孢(C. herbarum)和球孢枝孢(C. sphaerospermum),已知的枝孢菌有一半以上屬于C. cladosporioides復(fù)合體[10]。高度寄生的枝孢菌形態(tài)特征主要體現(xiàn)在無(wú)性形態(tài)上,由于形態(tài)鑒定是一個(gè)難點(diǎn),但使用形態(tài)及分子聯(lián)合的方法,200個(gè)物種被重新定義,具有較清晰的形態(tài)和系統(tǒng)發(fā)育界限[10]。分子分析已成為鑒定枝孢屬種的有效方法。
近幾年,對(duì)于重寄生作用機(jī)制已經(jīng)從生理生化及分子水平上展開(kāi)了相關(guān)研究。多數(shù)學(xué)者認(rèn)為,重寄生作用機(jī)制主要包括酶和毒素2個(gè)方面,其中酶方面指的是重寄生菌可產(chǎn)生降解寄主真菌細(xì)胞壁的酶,而毒素是重寄生菌與寄主菌相互作用產(chǎn)生的抗菌次級(jí)代謝物,能殺死寄主真菌[7,11-13]。隨著測(cè)序技術(shù)的飛速發(fā)展,基因組、轉(zhuǎn)錄組及代謝組學(xué)測(cè)序等已被廣泛應(yīng)用于對(duì)重寄生菌的研究之中。轉(zhuǎn)錄組是指一個(gè)細(xì)胞在不同生長(zhǎng)時(shí)期或生長(zhǎng)環(huán)境下,自身基因的表達(dá)情況不完全相同,具有特定的時(shí)間性和空間性特征[14]。范海娟通過(guò)不同誘導(dǎo)物對(duì)哈茨木霉ACC30317進(jìn)行誘導(dǎo)并轉(zhuǎn)錄組測(cè)序,分析發(fā)現(xiàn)有311條Unigene基因與重寄生機(jī)制相關(guān),認(rèn)為該菌的生防機(jī)制是以重寄生為主[15]。Reithner等同樣利用轉(zhuǎn)錄組測(cè)序手段,分析發(fā)現(xiàn)重寄生菌木霉IMI206040與立枯絲核菌(Rhizoctonia solani)相互作用后參與細(xì)胞壁降解的各類基因協(xié)同轉(zhuǎn)錄[16]。
實(shí)際上多種重寄生菌,特別是枝孢屬和銹生座孢屬(Tuberculina sp.)的真菌已經(jīng)克服寄主障礙,顯示出寄生物的進(jìn)化,這將有利于生防菌的開(kāi)發(fā)與利用[17]。筆者所在課題組前期從患石楠銹孢銹菌的球花石楠葉片上分離得到3株重寄生菌,其具有破壞銹孢子壁,導(dǎo)致細(xì)胞質(zhì)外溢而使銹孢子死亡的重寄生能力,而對(duì)寄主植物是安全的[7]。對(duì)重寄生效果最好的菌株SYC63進(jìn)行了基因組測(cè)序并初步分析了重寄生機(jī)制,發(fā)現(xiàn)其真菌細(xì)胞壁降解酶類中的幾丁質(zhì)酶(GH18、GH20家族)基因、β-1,3-葡聚糖酶(GH17、GH64和GH81家族)基因在經(jīng)銹菌孢子壁誘導(dǎo)后表達(dá)量顯著上調(diào)[18]。本研究擬將3株枝孢菌鑒定到種,同時(shí)利用課題組前期獲得的枝孢菌SYC63轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)進(jìn)行生物信息學(xué)分析,以期為促進(jìn)枝孢菌SYC63重寄生作用機(jī)制的研究提供理論依據(jù)。
1 材料與方法
1.1 試驗(yàn)材料
試驗(yàn)時(shí)間為2020年9月至2021年12月。試驗(yàn)地點(diǎn)位于云南省西南林業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院。
試驗(yàn)菌株為編號(hào)是SYC4、SYC23和SYC63的3株重寄生菌,于2012年9月分離自患石楠葉銹病的球花石楠葉片上,并保存于4 ℃[7]。
1.2 試驗(yàn)方法
1.2.1 枝孢菌的鑒定
對(duì)分離得到的3株重寄生菌采用PDA培養(yǎng)基[6]進(jìn)行培養(yǎng)。通過(guò)常規(guī)形態(tài)學(xué)方法并結(jié)合分子生物學(xué)方法進(jìn)行重寄生菌的種鑒定。通過(guò)查閱相關(guān)文獻(xiàn)進(jìn)行形態(tài)學(xué)鑒定,主要是記錄菌株培養(yǎng)性狀、分生孢子的形態(tài)及大小等。分子鑒定參照隋國(guó)強(qiáng)等的方法[19],提取菌株DNA,于-20 ℃保存?zhèn)溆谩R訧TS5(5′-GGAAGTAAAAGTCGTAACAAG-3′)/ITS4(5′-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3′)為引物擴(kuò)增內(nèi)轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)基因;以EF-1-F(5′-CATCGAGAAGTTCGAGAAGG-3′)/EF-1-R(5′-TACTTGAAGGAACCCTTACC-3′)為引物擴(kuò)增翻譯延伸因子1-α基因;以ACT-F(5′-ATGTGCAAGGCCGGTTTCGC-3′)/ACT-R(5′-TACGAGTCCTTCTGGCCCAT-3′)為引物擴(kuò)增肌動(dòng)蛋白基因[20-22]。擴(kuò)增產(chǎn)物純化和測(cè)序由生工生物工程(上海)股份有限公司完成。
1.2.2 系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)的構(gòu)建
對(duì)測(cè)序所得的3個(gè)序列在NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中進(jìn)行BLAST搜索,確定最可能的近緣類群。然后進(jìn)行基因序列查找及多序列拼接,再查閱文獻(xiàn)下載已報(bào)道的近緣種基因序列片段,將基因序列數(shù)據(jù)集通過(guò)MAFFT(https://mafft.cbrc.jp/alignment/software/)網(wǎng)站進(jìn)行比對(duì),再利用BioEdit手工編輯并將聯(lián)合基因序列校正,以fasta格式的組合數(shù)據(jù)集在ClustalX中存為nexus格式。利用PAUP4.0b10軟件,輸入程序,以非加權(quán)最大簡(jiǎn)約(MP)法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)[20-21]。最后結(jié)合形態(tài)觀察的菌落形狀、顏色和分生孢子形態(tài)特征等,對(duì)比Bensch等研究[23]中菌株形態(tài)特征,通過(guò)分子鑒定結(jié)合形態(tài)鑒定將3株重寄生菌鑒定到種。
1.2.3 轉(zhuǎn)錄組測(cè)序及分析
在前期研究中參照周航等的銹菌孢子壁誘導(dǎo)方法[24],采集西南林業(yè)大學(xué)樹(shù)木園內(nèi)的石楠葉銹病病菌銹孢子,對(duì)重寄生效果較好的菌株SYC63進(jìn)行誘導(dǎo)后提取菌絲體RNA,檢測(cè)合格的RNA用于文庫(kù)構(gòu)建,利用Illumina平臺(tái)進(jìn)行測(cè)序獲得轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)。將下機(jī)數(shù)據(jù)進(jìn)行過(guò)濾得到整潔數(shù)據(jù)(Clean Data),與指定的參考基因組(枝孢菌SYC63:GCA_022457075.1)進(jìn)行序列比對(duì),得到映射數(shù)據(jù)(Mapped Data),進(jìn)行插入片段長(zhǎng)度檢驗(yàn)、隨機(jī)性檢驗(yàn)等文庫(kù)質(zhì)量評(píng)估;根據(jù)基因在不同樣品中的表達(dá)量進(jìn)行差異表達(dá)分析、差異表達(dá)基因功能注釋和功能富集等表達(dá)水平分析。
2 結(jié)果與分析
2.1 重寄生菌的鑒定
對(duì)分離得到的3株重寄生菌內(nèi)轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)、翻譯延伸因子(EF)-1和肌動(dòng)蛋白(ACT)基因片段進(jìn)行擴(kuò)增并測(cè)序,利用單基因及多基因序列聯(lián)合構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)。用內(nèi)轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)(ITS)序列構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)結(jié)果(圖1)顯示:3株重寄生菌SYC4、SYC23和SYC63聚在同一個(gè)分支上,支持率為66%,其中SYC4和SYC23在分支上的距離相對(duì)較近,SYC63與兩者相距較遠(yuǎn),同時(shí)三者還與枝孢屬的已知物種C. anthropophilum、C. cladosporioides、角枝孢菌(C. angustisporum)、黑星病菌(C. cucumerinum)等聚在一支,不能夠說(shuō)明其親緣關(guān)系,無(wú)法單以此系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)來(lái)作為鑒定種的依據(jù),還需進(jìn)一步證明。
基于3個(gè)基因片段聯(lián)合構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)(圖2)顯示,SYC4與SYC23聚在同一個(gè)分支,支持率為97%,又與C. anthropophilum在同一個(gè)大支上,支持率為100%,表明SYC4與SYC23親緣關(guān)系較近,且兩者與C. anthropophilum的親緣關(guān)系較近;SYC63與C. cladosporioides的2個(gè)菌株(CPC 14021和CPC 14024)在同一個(gè)大分支上,支持率為97%,而C. cladosporioides的2個(gè)菌株又聚在同一支,支持率為96%,說(shuō)明SYC63與 C. cladosporioides 的親緣關(guān)系較近。再根據(jù)菌株的菌落形態(tài)、分生孢子的大小、孢子顏色等形態(tài)特征進(jìn)行對(duì)比,最終鑒定SYC4、SYC23為C. anthropophilum,SYC63為枝狀枝孢霉(C. cladosporioides)。
2.2 轉(zhuǎn)錄組分析
2.2.1 RNA提取與測(cè)序數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)
分別對(duì)對(duì)照組(SYC63-C)和銹孢子壁處理組(SYC63-S)的6個(gè)菌絲體提取RNA進(jìn)行質(zhì)量檢測(cè), 其D260 nm/D280 nm分別為1.76、1.77、1.90、2.19、2.03、2.07,說(shuō)明所提取的RNA純度高,雜質(zhì)污染較少,樣品質(zhì)量能滿足建庫(kù)要求,可進(jìn)行上機(jī)測(cè)序。利用Illumina平臺(tái)對(duì)本研究的6個(gè)樣品進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組測(cè)序,共獲得41.78 GB測(cè)序數(shù)據(jù),各樣品總堿基數(shù)(Clean Reads)均達(dá)到 6.48 GB,Q30堿基百分比在94.18%及以上。分別將各樣品的Clean Reads與枝孢菌SYC3的基因組進(jìn)行序列比對(duì),發(fā)現(xiàn)比對(duì)效率為92.06%~95.93%(表1),說(shuō)明測(cè)序數(shù)據(jù)可靠。
將參考基因組的12 327個(gè)基因比對(duì)到轉(zhuǎn)錄組表達(dá)量中,結(jié)果(表2)顯示,經(jīng)銹孢子壁誘導(dǎo)處理后,有95.80%的基因表達(dá),表達(dá)豐度分布在中高表達(dá)(10 2.2.2 Nr數(shù)據(jù)庫(kù)比對(duì)分析 通過(guò)Nr數(shù)據(jù)庫(kù)比對(duì)注釋,共有11 002個(gè)基因被注釋到,統(tǒng)計(jì)比對(duì)最多的前 9 個(gè)物種,其余劃分到其他(Other)類,物種分布如圖3所示,枝孢菌SYC63與南極枝孢菌(Rachicladosporium antarcticum)的相似基因最多,有2 130個(gè)基因,占19.36%,除其他物種外,所占物種相似性最高;其次與Rachicladosporium sp.有13%的相似基因。此外,與病原真菌Hortaea werneckii、Zasmidium cellare及Venturia nashicola等也有2%~8%[CM(20*2]的相似基因。 值得關(guān)注的是, 有41%的序列屬于其他物種,可能包含了枝孢菌SYC63與大多數(shù)物種不同的、自身特有的基因序列。 2.2.3 KOG數(shù)據(jù)庫(kù)比對(duì)分析 在KOG數(shù)據(jù)庫(kù)中枝孢菌SYC63共比對(duì)到4 948個(gè)基因,占總基因的38.4%,可被劃分到25類相應(yīng)的功能中。由圖4可知,數(shù)量最多的功能類別是一般功能預(yù)測(cè)(general function prediction only),其次是翻譯后修飾,蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)換,伴侶(posttranslational modification,protein turnover,chaperones)441個(gè)基因、碳水化合物的運(yùn)輸和代謝(carbohydrate transport and metabolism)370個(gè)基因及信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)機(jī)制(signal transduction mechanisms)342個(gè)基因。 2.2.4 GO分類 GO數(shù)據(jù)庫(kù)是一個(gè)結(jié)構(gòu)化的標(biāo)準(zhǔn)生物學(xué)注釋系統(tǒng),旨在建立基因及其產(chǎn)物知識(shí)的標(biāo)準(zhǔn)詞匯體系,適用于各個(gè)物種。對(duì)枝孢菌SYC63轉(zhuǎn)錄組進(jìn)行GO功能注釋,共8 088個(gè)基因被注釋到。將基因的功能從細(xì)胞組分、分子功能、生物學(xué)過(guò)程等3個(gè)方面進(jìn)行匯總統(tǒng)計(jì)后,結(jié)果如表3所示。枝孢菌SYC63編碼的基因主要富集在生物調(diào)節(jié)、細(xì)胞過(guò)程和代謝過(guò)程等生物過(guò)程;其次是在催化活性、結(jié)合和轉(zhuǎn)運(yùn)活性等分子功能中;較少的基因被注釋到細(xì)胞組分中的細(xì)胞主體、胞內(nèi)區(qū)和含有蛋白質(zhì)的復(fù)合體。 2.2.5 差異基因篩選與功能注釋 將差異倍數(shù)(fold change)≥2且錯(cuò)誤發(fā)現(xiàn)率(FDR)<0.01作為差異表達(dá)基因(DEGs)篩選標(biāo)準(zhǔn),共得到3 196個(gè)DEGs,其中有1 674個(gè)上調(diào)基因、1 522個(gè)下調(diào)基因。對(duì)差異表達(dá)基因進(jìn)行GO分類注釋,結(jié)果表明注釋數(shù)量最多的生物過(guò)程主要是代謝過(guò)程、細(xì)胞過(guò)程、單一生物體過(guò)程及定位;其次是催化活性、結(jié)合和轉(zhuǎn)運(yùn)活性等分子功能組成;以及膜(membrane)和膜成分(membrane part)等細(xì)胞組分。這與枝孢菌SYC63的GO注釋結(jié)果在整體上是一致的,但經(jīng)銹菌孢子壁誘導(dǎo)后細(xì)胞組分則是富集到細(xì)胞器、膜和膜成分等類別(圖5)。 進(jìn)一步對(duì)1 674個(gè)上調(diào)基因的GO注釋進(jìn)行分析,結(jié)果表明,在生物學(xué)過(guò)程中,主要富集在幾丁質(zhì)生物合成過(guò)程(chitin biosynthetic process)、肌動(dòng)蛋白絲的過(guò)程(actin filament-based process)及肌動(dòng)蛋白絲的調(diào)節(jié)過(guò)程(regulation of actin filament-based process)等; 而細(xì)胞組分主要是膜,比如高爾基體相關(guān)囊泡(Golgi-associated vesicle)、囊泡外套(vesicle coat)、囊泡膜(vesicle membrane)等類型的基因富集;分子功能也顯示基因主要在幾丁質(zhì)合成酶活性(chitin synthase activity)、鐵結(jié)合(ferric iron binding)及氧化還原酶活性(oxidoreductase activity)等的類別富集。 分析差異表達(dá)基因在某一通路上是否發(fā)生顯著差異即為差異表達(dá)基因的通路富集分析,選取顯著性Q值最小的前20個(gè)通路進(jìn)行作圖,結(jié)果如圖6所示,可以看出,差異表達(dá)基因KEGG通路(pathway)數(shù)量最多的是碳水化合物(carbon metabolism),其次是色氨酸代謝(tryptophan metabolism)、纈氨酸、亮氨酸和異亮氨酸的降解(valine,leucine and isoleucine degradation)及氨基酸糖和核苷酸糖的代謝(amino sugar and nucleotide sugar metabolism)。表明經(jīng)銹菌孢子壁誘導(dǎo)后差異基因在碳水化合物代謝途徑存在顯著差異,其可能是枝孢菌SYC63重寄生作用的一個(gè)重要組成部分。 2.2.6 重寄生相關(guān)的差異基因分析 凝集素是一種糖結(jié)合蛋白,可以特異地結(jié)合某種單糖或復(fù)雜的糖鏈結(jié)構(gòu),真菌凝集素是一類主要的凝集素,可以結(jié)合宿主的特定碳水化合物結(jié)構(gòu),起到識(shí)別和黏附的作用,或作為一種毒性因子在真菌對(duì)捕食者和寄生蟲(chóng)的防御中發(fā)揮作用[25]。枝孢菌SYC63基因組編碼14個(gè)凝集素基因,包括10個(gè)蓖麻毒素B類的凝集素、 2個(gè)類似于伴刀豆蛋白的凝集素、1個(gè)甘露糖結(jié)合凝集素和1個(gè)H型凝集素(表4)。在經(jīng)銹菌孢子誘導(dǎo)后,檢測(cè)到5個(gè)凝集素基因上調(diào)表達(dá),其中類似于伴刀豆蛋白的凝集素(g4093、g9203)和甘露糖結(jié)合凝集素(g4694)的基因顯著上調(diào),2個(gè)蓖麻毒素B類的凝集素(g5790、g6964)基因上調(diào)不顯著(圖7)。 其他重寄生或生物防治功能相關(guān)的基因,主要涉及到轉(zhuǎn)錄因子、細(xì)胞壁修復(fù)信號(hào)通路(MAPK singal pathway)及與抗生素代謝產(chǎn)物合成有關(guān)的細(xì)胞色素P450等。枝孢菌SYC63轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)中注釋到了87個(gè)P450基因,此外,還有71個(gè)基因在KEGG pathway中注釋為MAPK信號(hào)途徑(ko04011),在經(jīng)銹孢子誘導(dǎo)后分別檢測(cè)到22及15個(gè)上調(diào)表達(dá)的差異基因,大部分基因都表現(xiàn)出極顯著(P<0.000 1)上調(diào)(圖8)。 3 討論與結(jié)論 枝孢菌具內(nèi)生、人類致病、植物致病、腐生營(yíng)養(yǎng)和極端環(huán)境生長(zhǎng)等多種生態(tài)適應(yīng)性[10]。已知的大多數(shù)枝孢菌物種是與植物相關(guān)的,常在植物葉片上產(chǎn)生危害且形成病斑。利用重寄生菌專性寄生而減少寄主植物受到的傷害特性,防治植物病害是生物防治的新措施[11,26]。近期的研究也表明,枝孢菌分泌的次生代謝產(chǎn)物在提高植物適應(yīng)新生境能力,免受生物和非生物脅迫方面具有保護(hù)作用,因而作為植物生物刺激劑在農(nóng)業(yè)應(yīng)用中具有指導(dǎo)意義[27]。 將分子生物學(xué)的方法用于枝孢菌的分類鑒定,利用多基因復(fù)合序列構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)并結(jié)合形態(tài)學(xué),解決了形態(tài)特征分類上的難題。目前,枝孢屬真菌的物種鑒定主要基于3種遺傳標(biāo)記,即rDNA的內(nèi)部轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)、肌動(dòng)蛋白和翻譯延伸因子(EF-1α)基因的部分片段,前者不能提供良好的物種分辨率,后兩者卻表現(xiàn)出物種間高度的差異[28]。Bensch等利用三者組合對(duì)三大復(fù)合體中的其他類群進(jìn)行了分子系統(tǒng)發(fā)育研究,來(lái)解釋枝孢屬的多樣性和進(jìn)化趨勢(shì)[29]。Iturrieta-González等也利用此系統(tǒng)鑒定了不同環(huán)境來(lái)源中的枝孢菌,并報(bào)道其中發(fā)現(xiàn)的新物種,擴(kuò)大了枝孢菌物種資源[30-31]。此外,也有學(xué)者用ITS和核糖體小亞基(SSU)編碼SSU序列鑒定了香蕉煤污病病原菌為枝狀枝孢霉[32],為枝孢屬的分子鑒定提供了可供選擇的多個(gè)基因片段。 重寄生是微生物微觀世界中一個(gè)重要現(xiàn)象,了解其發(fā)生機(jī)制可以有效提高對(duì)植物病原體的生物防治。在對(duì)廣譜生防真菌木霉的重寄生機(jī)制研究中發(fā)現(xiàn),其主要是通過(guò)分泌一系列胞壁降解酶如葡聚糖酶、幾丁質(zhì)酶和殼聚糖等參與重寄生作用[33]。本研究對(duì)重寄生枝孢菌SYC63利用銹菌孢子壁誘導(dǎo)后進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組測(cè)序,分析發(fā)現(xiàn),其在KOG功能中有370個(gè)基因注釋到碳水化合物的轉(zhuǎn)運(yùn)與代謝,且受銹菌孢子壁的誘導(dǎo)后差異基因的KEGG通路也顯著富集到該方面,說(shuō)明該菌有較好的碳水化合物代謝能力,其可能是重寄生作用中重要的一部分。 研究表明,木霉的重寄生過(guò)程是復(fù)雜的,除胞壁降解酶外,次級(jí)代謝物、轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白、熱激蛋白及效應(yīng)因子等也參與了重寄生過(guò)程[34]。凝集素具有獨(dú)特的識(shí)別和可逆結(jié)合特定碳水化合物配體的能力,無(wú)需任何化學(xué)修飾,這一特征使凝集素有別于其他碳水化合物結(jié)合蛋白和酶[35]。通過(guò)對(duì)輪枝菌凝集素(SRL)及其推定的內(nèi)源性受體的研究結(jié)果表明,細(xì)胞壁相關(guān)的凝集素在真菌發(fā)育過(guò)程中發(fā)揮著重要的生物學(xué)功能[36]。據(jù)報(bào)道,一種具有生物活性的向日葵甘露糖結(jié)合凝集素(Helja)參與了植物對(duì)真菌的識(shí)別和防御,其與真菌孢子表面的相互作用穿透質(zhì)膜,也可內(nèi)化到細(xì)胞內(nèi)誘導(dǎo)氧化應(yīng)激,最終導(dǎo)致細(xì)胞死亡。Del Rio等提出它最初是與真菌細(xì)胞壁碳水化合物相互作用,并進(jìn)一步內(nèi)化,通過(guò)被定位到不同的細(xì)胞器,從而激活與細(xì)胞死亡相關(guān)的信號(hào)通路的抗菌機(jī)制[35]。從Parkia platycephala種子中分離純化得到一個(gè)凝集素PPL2,能水解幾丁質(zhì)中連接 2-乙酰氨基-2-脫氧-β-D-吡喃葡萄糖單元的β-1,4糖苷鍵,通過(guò)N末端測(cè)序、基因克隆全長(zhǎng)及X射線結(jié)晶學(xué)建立三維結(jié)構(gòu),結(jié)果表明,該凝集素與GH18家族的內(nèi)切幾丁質(zhì)酶同源,具有 N-乙酰氨基葡萄糖結(jié)合和幾丁質(zhì)水解酶活性[37]。在本研究中,重寄生枝孢菌SCY63基因組中有14個(gè)凝集素編碼基因,在銹菌孢子誘導(dǎo)后,檢測(cè)到5個(gè)基因上調(diào)表達(dá),其中1個(gè)甘露糖結(jié)合凝集素顯著上調(diào)表達(dá)。推測(cè)在重寄生過(guò)程中其可能與真菌細(xì)胞壁表面的碳水化合物結(jié)合產(chǎn)生間接的影響,從而引起細(xì)胞損傷,造成寄主死亡。 MAPK信號(hào)通路對(duì)細(xì)胞的糖基化狀態(tài)敏感,可調(diào)控胞壁蛋白的表達(dá)并修復(fù)極端環(huán)境下細(xì)胞壁的損傷,保持細(xì)胞壁完整,是脅迫環(huán)境下菌絲體正常生長(zhǎng)的必要信號(hào)途徑,并在生防菌對(duì)病原菌的攻擊以及菌絲形成中起著重要作用[38]。幾丁質(zhì)是許多真菌細(xì)胞壁的主要結(jié)構(gòu)成分,它是由尿苷二磷酸 N-乙酰氨基葡萄糖(UDP-GlcNAc)經(jīng)幾丁質(zhì)合成酶生物合成的,真菌中的細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)通??赡軐?dǎo)致幾丁質(zhì)生物合成途徑的激活[39]。細(xì)胞色素P450可催化某些具有重要生理功能的內(nèi)源性物質(zhì)的生物合成,并在次級(jí)代謝產(chǎn)物的修飾中起重要作用,其含量高表明可能存在更多類型的次級(jí)代謝產(chǎn)物[40]。本研究中,枝孢菌SYC63在經(jīng)銹菌孢子誘導(dǎo)后差異基因中上調(diào)表達(dá)數(shù)量明顯多于下調(diào)表達(dá)基因數(shù)量,進(jìn)一步分析顯示上調(diào)表達(dá)的基因功能主要富集在質(zhì)膜成分和幾丁質(zhì)合成酶活性等功能,同時(shí)MAPK信號(hào)通路基因也顯著上調(diào)表達(dá)。推測(cè)可能是枝孢菌SYC63在接觸病原菌后啟動(dòng)應(yīng)激反應(yīng),調(diào)動(dòng)重寄生功能相關(guān)基因或存在不利環(huán)境相關(guān)基因上調(diào)表達(dá),而MAPK信號(hào)和幾丁質(zhì)合成酶參與合成的幾丁質(zhì)都保持了細(xì)胞壁的完整性,從而有利于寄生菌成功進(jìn)入寄主,完成利于自身的侵染過(guò)程,即重寄生過(guò)程。 本研究利用形態(tài)學(xué)觀察結(jié)合分子鑒定,構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù),最終將SYC4、SYC23鑒定為C. anthropophilum,將SYC63鑒定為C. cladosporioide,明確了菌株分類地位;對(duì)菌株SYC63的轉(zhuǎn)錄組測(cè)序數(shù)據(jù)進(jìn)行了生物信息學(xué)分析,發(fā)現(xiàn)與重寄生相關(guān)的基因受銹菌孢子壁誘導(dǎo)而顯著上調(diào)表達(dá),推測(cè)其可能參與了菌株SYC63重寄生的過(guò)程,為后續(xù)深入研究該菌的重寄生機(jī)制提供了理論基礎(chǔ)與基因數(shù)據(jù)資源。 參考文獻(xiàn): [1]黃麗丹. 茶藨生柱銹重寄生菌(Pestalotiopsis sp.)的生物學(xué)特性及毒素研究[D]. 昆明:西南林學(xué)院,2006. [2]李 利. 白粉菌重寄生真菌的分離鑒定及生物學(xué)特性研究[D]. 楊凌:西北農(nóng)林科技大學(xué),2016. [3]袁秀英,白玉明,袁登勝. 重寄生菌對(duì)花棒銹病的抑制作用[J]. 中國(guó)沙漠,2006,26(6):1020-1023. [4]鄧 勛,張素華,宋小雙,等. 樟子松皰銹病重寄生菌的分離鑒定[J]. 中國(guó)森林病蟲(chóng),2012,31(2):4-6,10. [5]廖詠梅,熊 英,羅蕩平,等. 小駁骨銹病的重寄生現(xiàn)象及重寄生菌鑒定(英文)[J]. 中國(guó)生物防治學(xué)報(bào),2008,24(增刊1):85-89. [6]李 靖,劉風(fēng)路,陳玉惠. 茶麃生柱銹菌重寄生擬盤多毛孢產(chǎn)毒培養(yǎng)條件的篩選[J]. 江西農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2017,39(2):395-401. [7]李夢(mèng)婕,謝 津,李向楠,等. 石楠銹孢銹菌重寄生現(xiàn)象及其重寄生菌的種類鑒定[J]. 東北林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2016,44(5):92-96. [8]蔡 燦,伍建榕. 球花石楠銹病病原物的初步研究[J]. 北方園藝,2008(1):208-210. [9]莊劍云,魏淑霞. 中國(guó)無(wú)性型銹菌新資料 Ⅰ. 春孢子階段的幾個(gè)式樣種[J]. 菌物學(xué)報(bào),2016,35(12):1468-1474. [10]Ma R,Chen Q,F(xiàn)an Y L,et al. Six new soil-inhabiting Cladosporium species from plateaus in China[J]. Mycologia,2017,109(2):244-260. [11]楊艷紅,陳玉惠. 植物病原菌重寄生菌作用機(jī)理的研究進(jìn)展[J]. 西南林學(xué)院學(xué)報(bào),2004,24(2):70-75. [12]尤佳琪,吳明德,李國(guó)慶. 木霉在植物病害生物防治中的應(yīng)用及作用機(jī)制[J]. 中國(guó)生物防治學(xué)報(bào),2019,35(6):966-976. [13]童曉茹,王學(xué)翠,溫學(xué)森,等. 植物葉片真菌病害生物防治的研究進(jìn)展[J]. 山東科學(xué),2008,21(1):41-46. [14]Velculescu V E,Zhang L,Zhou W,et al. Characterization of the yeast transcriptome[J]. Cell,1997,88(2):243-251. [15]范海娟. 哈茨木霉ACCC30371菌株轉(zhuǎn)錄組構(gòu)建及生防相關(guān)基因功能研究[D]. 哈爾濱:東北林業(yè)大學(xué),2013. [16]Reithner B,Ibarra-Laclette E,Mach R L,et al. Identification of mycoparasitism-related genes in Trichoderma atroviride[J]. Applied and Environmental Microbiology,2011,77(13):4361-4370. [17]趙桂華,管 斌,劉國(guó)華. 林木銹病生物防治的研究進(jìn)展[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,38(4):115-116,192. [18]梅 超,范世昌,艾小滿,等. 一株重寄生枝孢菌的基因組測(cè)序及重寄生機(jī)制分析[J]. 微生物學(xué)通報(bào),2022,49(8):3310-3323. [19]隋國(guó)強(qiáng),張登云,孔 磊,等. 石楠銹孢銹菌重寄生菌的鑒定及產(chǎn)毒培養(yǎng)基篩選[J]. 生物技術(shù)通報(bào),2020,36(7):104-111. [20]呂靖雯,劉 蕊,李國(guó)華,等. 柚果面枝孢菌斑點(diǎn)病病原鑒定[J]. 浙江大學(xué)學(xué)報(bào)(農(nóng)業(yè)與生命科學(xué)版),2018,44(6):687-694. [21]Tibpromma S,Mortimer P E,Karunarathna S C,et al. Morphology and multi-gene phylogeny reveal Pestalotiopsis pinicola sp.nov.and a new host record of Cladosporium anthropophilum from edible pine (Pinus armandii) seeds in Yunnan Province,China[J]. Pathogens (Basel,Switzerland),2019,8(4):285. [22]Carbone I,Kohn L M. A method for designing primer sets for speciation studies in filamentous ascomycetes[J]. Mycologia,1999,91(3):553-556. [23]Bensch K,Braun U,Groenewald J Z,et al. The genus Cladosporium[J]. Studies in Mycology,2012,72:1-401. [24]周 航,鮑澤然,施玉玲,等. 4種木霉對(duì)松皰銹病菌細(xì)胞壁的破壞作用[J]. 西南林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)),2017,37(4):120-125. [25]Liu M J,Cheng X W,Wang J C,et al. Structural insights into the fungi-nematodes interaction mediated by fucose-specific lectin AofleA from Arthrobotrys oligospora[J]. International Journal of Biological Macromolecules,2020,164:783-793. [26]陳廣艷.國(guó)內(nèi)研究植物銹菌重寄生菌的現(xiàn)狀[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2006,34(8):1531-1532. [27]Rǎut I,Cǎlin M,Caprǎ L,et al. Cladosporium sp. Isolate as fungal plant growth promoting agent[J]. Agronomy,2021,11(2):392. [28]Torres D E,Rojas-Martínez R I,Zavaleta-Mejía E,et al. Cladosporium cladosporioides and Cladosporium pseudocladosporioides as potential new fungal antagonists of Puccinia horiana Henn.,the causal agent of chrysanthemum white rust[J]. PLoS One,2017,12(1):e0170782. [29]Bensch K,Groenewald J Z,Meijer M,et al. Cladosporium species in indoor environments[J]. Studies in Mycology,2018,89:177-301. [30]Iturrieta-González I,García D,Gené J. Novel species of Cladosporium from environmental sources in Spain[J]. MycoKeys,2021,77:1-25. [31]馬 銳. 土壤枝孢菌的分離鑒定及極端木聚糖酶的功能驗(yàn)證[D]. 北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)大學(xué),2017. [32]楊 迪,杜嬋娟,葉云峰,等. 廣西香蕉煤污病病原菌的分離鑒定及其生物學(xué)特性[J]. 植物病理學(xué)報(bào),2021,51(4):507-514. [33]Naher L,Yusuf U K,Habib S,et al. Mycoparasitism activity of Trichoderma harzianum associated with chitinase expression against Ganoderma boninense[J]. Pakistan Journal of Botany,2018,50(3):1241-1245. [34]趙會(huì)長(zhǎng). 盾殼霉基因組學(xué)及其重寄生機(jī)制研究[D]. 武漢:華中農(nóng)業(yè)大學(xué),2020. [35]Del Rio M,de la Canal L,Pinedo M,et al. Internalization of a sunflower mannose-binding lectin into phytopathogenic fungal cells induces cytotoxicity[J]. Journal of Plant Physiology,2018,221:22-31. [36]Swamy B M,Bhat A G,Hegde G V,et al. Immunolocalization and functional role of Sclerotium rolfsii lectin in development of fungus by interaction with its endogenous receptor[J]. Glycobiology,2004,14(11):951-957. [37]Cavada B S,Moreno F B B,da Rocha B A M,et al. cDNA cloning and 1.75 ?crystal structure determination of PPL2,an endochitinase and N-acetylglucosamine-binding hemagglutinin from Parkia platycephala seeds[J]. The FEBS Journal,2006,273(17):3962-3974. [38]劉 青.哈茨木霉菌拮抗辣椒疫霉的轉(zhuǎn)錄組學(xué)研究[D]. 貴陽(yáng):貴州大學(xué),2019. [39]Obi K,Uda J I,Iwase K,et al. Novel nikkomycin analogues:inhibitors of the fungal cell wall biosynthesis enzyme chitin synthase[J]. Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters,2000,10(13):1451-1454. [40]Cˇrenar B,Petricˇ . Cytochrome P450 enzymes in the fungal kingdom[J]. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Proteins and Proteomics,2011,1814(1):29-35. 收稿日期:2022-03-09 基金項(xiàng)目:云南省農(nóng)業(yè)基礎(chǔ)研究聯(lián)合專項(xiàng)面上項(xiàng)目[編號(hào):2017FG001(-043)];中央引領(lǐng)地方科技發(fā)展專項(xiàng)資金(編號(hào):219001);云南省教育廳科學(xué)研究基金(編號(hào):2021Y270)。 作者簡(jiǎn)介:梅 超(1996—),女,云南昭通人,碩士研究生,主要從事資源微生物的開(kāi)發(fā)與利用研究。E-mail:1498789618@qq.com。 通信作者:李 靖,博士,副教授,碩士生導(dǎo)師,主要從事微生物生理生化研究。E-mail:lijingcas@163.com。