李殿昊 朱 萍 王夢(mèng)媛 關(guān)樺楠 葉 華
(江蘇科技大學(xué)糧食學(xué)院,江蘇鎮(zhèn)江 212100)
糧食質(zhì)量安全一直是社會(huì)關(guān)注的熱點(diǎn),其中小分子危害物引發(fā)的糧食安全問(wèn)題不容小覷,近年來(lái)食品安全監(jiān)測(cè)發(fā)現(xiàn)的問(wèn)題都離不開(kāi)小分子危害物。如:2021 年12 月,深圳市市場(chǎng)監(jiān)督管理局抽樣發(fā)現(xiàn)“鹽津鋪?zhàn)印焙谔窃捗分秀U含量超標(biāo)、陳克明家用小麥粉中脫氧雪腐鐮刀菌烯醇含量超標(biāo);2022 年4月,陜西省市場(chǎng)監(jiān)督管理局通告稱楊凌居江大潤(rùn)商貿(mào)有限公司銷售的白花生米中黃曲霉毒素B1 含量超標(biāo);等等。小分子危害物含量超標(biāo)給糧食安全和群眾健康帶來(lái)了巨大威脅,加強(qiáng)糧食及其加工產(chǎn)品中小分子危害物快速檢測(cè)意義重大。
一些傳統(tǒng)的檢測(cè)方法如薄層層析法(thin layer chromatography,TLC)[1]、高效液相色譜法(high performance liquid chromatography,HPLC)[2]、高效液相色譜-質(zhì)譜法等儀器法及酶聯(lián)免疫吸附法(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)[3-5]已廣泛應(yīng)用于糧食小分子危害物檢測(cè)。這些檢測(cè)方法靈敏度高,但設(shè)備昂貴、技術(shù)要求高、操作繁瑣、檢測(cè)耗時(shí)長(zhǎng),難以實(shí)現(xiàn)快速檢測(cè)[6,7]。小分子危害物由于分子量小,結(jié)構(gòu)簡(jiǎn)單,通常只有免疫反應(yīng)而沒(méi)有免疫原性,所以并不是每種小分子都能制備抗體[8]。因此,開(kāi)發(fā)新型識(shí)別分子探針,可彌補(bǔ)抗體檢測(cè)方面的不足。
核酸適配體(aptamer)是利用指數(shù)富集配體系統(tǒng)進(jìn)化技術(shù)(systematic evolution of ligands by exponential enrichment)篩選獲得的一段單鏈DNA或RNA 功能核酸序列,其具有制備周期短、無(wú)需動(dòng)物實(shí)驗(yàn)、親和力高、特異性強(qiáng)等優(yōu)點(diǎn),能特異性識(shí)別各種靶標(biāo)[9,10]。作為一種新型分子識(shí)別探針在小分子檢測(cè)方面得到了廣泛的應(yīng)用,先后建立了基于適配體技術(shù)的比色法[11]、熒光法[12]、熒光偏振法[13]、電化學(xué)法[14]等多種檢測(cè)方法。其中熒光偏振法是一種操作簡(jiǎn)單且無(wú)需分離、靈敏度高的均相檢測(cè)方法,和儀器法、免疫分析法相比具有明顯的優(yōu)勢(shì),起初主要應(yīng)用于分子量大的靶標(biāo)檢測(cè),而小分子物質(zhì)由于分子量小,難以引起明顯的熒光偏振信號(hào)變化,而且檢測(cè)限也比較低[15]。為此,人們研究各種策略來(lái)彌補(bǔ)這種方法的不足,已成功將熒光偏振技術(shù)應(yīng)用于小分子目標(biāo)物的檢測(cè)。文中介紹了熒光偏振技術(shù)原理,從直接檢測(cè)法和信號(hào)放大競(jìng)爭(zhēng)檢測(cè)法兩個(gè)方面總結(jié)了其在糧食小分子危害物檢測(cè)應(yīng)用進(jìn)展情況,并對(duì)未來(lái)發(fā)展方向進(jìn)行了展望。
光波可以在光的任一平面上發(fā)生均勻地振動(dòng),當(dāng)光通過(guò)某一平面時(shí),光的振動(dòng)平面就發(fā)生了改變,導(dǎo)致某個(gè)方向的振動(dòng)強(qiáng)于或弱于其他平面,這樣產(chǎn)生的光即偏振光。熒光偏振是由熒光分子與偏振光相結(jié)合的一種技術(shù),由Perrin 在20 世紀(jì)20 年代首次提出。他研究時(shí)發(fā)現(xiàn),當(dāng)溶液中的熒光分子受到偏振光激發(fā)時(shí),熒光分子可產(chǎn)生相應(yīng)的偏振熒光。如果激發(fā)時(shí),熒光分子處于靜止?fàn)顟B(tài),則該熒光分子仍保持原有激發(fā)光的偏振性質(zhì);如果熒光分子處于運(yùn)動(dòng)狀態(tài),即分子不斷發(fā)生翻轉(zhuǎn)或旋轉(zhuǎn),這時(shí)候產(chǎn)生的偏振熒光與原有激發(fā)光可能不在同一個(gè)偏振平面,就產(chǎn)生了不同的偏振性質(zhì)[16]。因此,可以通過(guò)測(cè)量不同方向上的偏振熒光強(qiáng)度來(lái)表達(dá)熒光偏振的大小[17]。在實(shí)際檢測(cè)中,熒光偏振強(qiáng)度可用式(1)進(jìn)行定義。
式中IV和IH式分別表示熒光分子被偏振光激發(fā)后,在垂直和水平方向上的偏振強(qiáng)度。一般來(lái)說(shuō),熒光偏振強(qiáng)度與分子大小、分子旋轉(zhuǎn)或翻轉(zhuǎn)速度、溫度、溶液黏度等因素有關(guān)。熒光偏振強(qiáng)度與各因素之間的關(guān)系可用式(2)表示[18]。
式中P 表示熒光偏振強(qiáng)度,P0表示極限熒光偏振強(qiáng)度,和氣體常數(shù)R 一樣通常是一個(gè)常數(shù),T 是絕對(duì)溫度,V 是摩爾分子體積,t 代表熒光壽命,h 是溶液黏度。
從式(2)可以看出,當(dāng)溶液體系一定時(shí),即溶液黏度不變,在一定溫度下,熒光偏振強(qiáng)度主要取決于熒光分子的體積,分子體積越大,旋轉(zhuǎn)速率越慢,熒光偏振強(qiáng)度P 值越大;反之,熒光偏振強(qiáng)度越小。因此,可以利用這一原理對(duì)目標(biāo)物進(jìn)行定量分析。由于熒光偏振強(qiáng)度是是一個(gè)比值,不受樣品顏色等因素影響[19,20],且無(wú)需分離步驟,操作簡(jiǎn)單,可實(shí)現(xiàn)均相快速檢測(cè),大大提高了檢測(cè)效率,已廣泛應(yīng)用于生物醫(yī)藥、食品安全檢測(cè)等領(lǐng)域[21]。
直接檢測(cè)法是利用標(biāo)記熒光分子的適配體與小分子待測(cè)危害物結(jié)合后引起構(gòu)象改變,從而產(chǎn)生一定的熒光偏振信號(hào)變化,這種檢測(cè)方法無(wú)須引入其他信號(hào)放大因子。如ZHAO 等[22]研究發(fā)現(xiàn),四甲基羅丹明(TMR)熒光基團(tuán)標(biāo)記在適配體不同位置會(huì)引起不同的熒光偏振信號(hào)變化,推測(cè)這可能是由于靶結(jié)合誘導(dǎo)適配體構(gòu)象發(fā)生改變以及TMR 與堿基之間的分子內(nèi)相互作用導(dǎo)致的。因此利用TMR 標(biāo)記的適配體開(kāi)發(fā)了赭曲霉毒素A(Ochratoxin A,OTA)小分子危害物的熒光偏振直接檢測(cè)法。SUN 等[23]則通過(guò)標(biāo)記位點(diǎn)優(yōu)化最終確定了TMR 標(biāo)記在第26 個(gè)堿基T 位置上時(shí),檢測(cè)時(shí)熒光偏振信號(hào)響應(yīng)明顯。他們基于此現(xiàn)象構(gòu)建了T26 標(biāo)記TMR 熒光基團(tuán)成功實(shí)現(xiàn)了黃曲霉毒素B1(Aflatoxin B1,AFB1)的熒光偏振直接檢測(cè)法,結(jié)果顯示,其最低檢測(cè)限可達(dá)2 nM(約0.6 ng/mL)。YU 等[24]利用同樣的原理成功構(gòu)建了Cd2+的熒光偏振直接檢測(cè)方法,其最低檢測(cè)限可達(dá)6.1 nM。這種直接檢測(cè)法需要優(yōu)化設(shè)計(jì)熒光基團(tuán)標(biāo)記位置,前期成本相對(duì)較高,盡管優(yōu)化位點(diǎn)后能產(chǎn)生一定的信號(hào)變化,但是檢測(cè)限不高,且該方法受靶標(biāo)和適配體結(jié)合構(gòu)象變化的影響,并不一定能適應(yīng)于所有待檢測(cè)靶標(biāo),因此在實(shí)際應(yīng)用中具有一定的局限性。
實(shí)際上,基于適配體識(shí)別的熒光偏振技術(shù)檢測(cè)真菌毒素多采用信號(hào)放大競(jìng)爭(zhēng)策略,即引入納米材料[25]、蛋白質(zhì)[26]、酶[27]、核酸[28]等作為質(zhì)量放大因子進(jìn)行熒光信號(hào)放大,從而實(shí)現(xiàn)小分子目標(biāo)物的快速檢測(cè)。
2.2.1 納米材料信號(hào)放大技術(shù)
在熒光偏振適配體傳感器中,納米材料如納米金(AuNPs)、納米銀(AgNPs)、氧化石墨烯納米片(Graphene oxide nanosheets,GOs)等常作為質(zhì)量放大因子提高熒光偏振信號(hào)強(qiáng)度[29]。 如SAMOKHVALOV 等[30]引入納米金作為載體和質(zhì)量放大因子,將其修飾鏈霉親和素后與生物素標(biāo)記的赭曲霉毒素A(OTA)適配體通過(guò)共價(jià)鍵相結(jié)合,利用熒光標(biāo)記的OTA 分子構(gòu)建了一種競(jìng)爭(zhēng)型的熒光偏振適配體生物傳感器,并應(yīng)用于白酒中的OTA 檢測(cè),其檢測(cè)限低至2.3 mg/kg,是沒(méi)有引入AuNPs 作為信號(hào)放大因子時(shí)的25 倍,且檢測(cè)時(shí)間僅需15 min,其檢測(cè)原理如圖1(A)所示;JIANG 等[31]則利用納米銀(AgNPs)作為質(zhì)量放大因子,構(gòu)建了Hg2+的熒光偏振適配體生物傳感器,研究結(jié)果表明,該信號(hào)放大型生物傳感器在10 nM~0.4 mM 濃度范圍內(nèi)具有良好的線性關(guān)系,檢測(cè)限低至6.6 nM。
圖1 基于不同策略放大信號(hào)實(shí)現(xiàn)熒光偏振檢測(cè)小分子靶標(biāo)原理圖
除納米金、納米銀外,氧化石墨烯納米片由于具有吸附單鏈和質(zhì)量放大雙重作用,也常作為納米材料增強(qiáng)熒光偏振信號(hào)。YE 等[32]引入氧化石墨烯作為質(zhì)量放大因子構(gòu)建了一種基于適配體的熒光偏振方法快速檢測(cè)AFB1。他們利用GO 吸附熒光標(biāo)記的AFB1適配體形成大分子的GO/aptamer 復(fù)合物,從而分子旋轉(zhuǎn)速度變慢,產(chǎn)生較大的熒光偏振信號(hào),但目標(biāo)物AFB1出現(xiàn)時(shí),由于適配體的高親和性和特異性,將適配體從GO 表面解離下來(lái)形成AFB1/aptamer 復(fù)合物,分子質(zhì)量變小,分子旋轉(zhuǎn)速度變快,從而使得熒光偏振值降低。根據(jù)熒光偏振信號(hào)前后變化實(shí)現(xiàn)了大米中AFB1檢測(cè)。實(shí)驗(yàn)優(yōu)化結(jié)果表明,其在0.05~5 nM 濃度范圍內(nèi)具有良好的線性關(guān)系,其檢測(cè)限達(dá)0.05 nM。近年來(lái),納米材料被廣泛應(yīng)用于分析檢測(cè)之中,其分子質(zhì)量遠(yuǎn)大于適配體或真菌毒素,同時(shí)由于具有較大的比表面積、熱穩(wěn)定性等特點(diǎn)和優(yōu)勢(shì),是質(zhì)量放大策略的首選放大因子。
2.2.2 蛋白質(zhì)輔助信號(hào)放大技術(shù)
蛋白質(zhì)的分子量或體積相對(duì)于適配體較大,也可以起到熒光偏振信號(hào)放大作用。鏈霉親和素是一種四聚體蛋白,分子量約為66 KDa,常被用來(lái)做熒光偏振輔助放大因子[34,35]。如SAMOKHVALO 等[36]基于鏈霉親和素和生物素標(biāo)記的IgG 單克隆抗體作為熒光偏振信號(hào)放大因子,開(kāi)發(fā)了一種基于適配體識(shí)別的熒光偏振方法檢測(cè)OTA。研究結(jié)果表明,在鏈霉親和素和IgG 的雙重增強(qiáng)作用下,可以在15 min內(nèi)實(shí)現(xiàn)葡萄酒中OTA 納米級(jí)的檢測(cè),檢測(cè)限可達(dá)3.6 nM。
鏈霉親和素本身不僅可以作為分子質(zhì)量放大作用,還可以利用生物素親和素共價(jià)作用連接更大的分子進(jìn)行質(zhì)量放大作用實(shí)現(xiàn)熒光偏振信號(hào)的變化[37]。LI 等[38]則利用抗體偶聯(lián)適配體互補(bǔ)鏈作為質(zhì)量放大因子構(gòu)建了AFB1的熒光偏振檢測(cè)方法。當(dāng)連接有抗體的互補(bǔ)鏈與適配體結(jié)合后,形成的復(fù)合物分子量增大,分子轉(zhuǎn)動(dòng)速度變慢,導(dǎo)致熒光偏振強(qiáng)度增大。但AFB1出現(xiàn)后與適配體競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合形成適配體/靶標(biāo)復(fù)合物,分子量降低,分子轉(zhuǎn)動(dòng)速度加快,熒光偏振信號(hào)降低,檢測(cè)其最低檢測(cè)限可達(dá)25 pM,其原理圖見(jiàn)圖1(B)。
盡管蛋白質(zhì)質(zhì)量放大策略可以提高熒光偏振檢測(cè)的靈敏度,但與納米材料相比,蛋白質(zhì)對(duì)熱不穩(wěn)定,在熒光偏振測(cè)定中具有可變性,并且需要在與生物分子的性質(zhì)和穩(wěn)定性相匹配的實(shí)驗(yàn)條件下才能實(shí)現(xiàn)檢測(cè)。
2.2.3 酶輔助信號(hào)放大技術(shù)
基于酶輔助的熒光偏振信號(hào)放大技術(shù)在小分子目標(biāo)物檢測(cè)中也具有較好的應(yīng)用[39,40]。核酸外切酶(Exo III)是一種能沿3'→5'方向催化DNA 外切而產(chǎn)生5'-磷酸單核苷酸的酶[27]。MA 等[41]利用Exo III這一特點(diǎn),在鏈霉親和素作為熒光偏振信號(hào)放大因子的基礎(chǔ)上,在19 bp 長(zhǎng)熒光標(biāo)記的玉米赤霉烯酮(Zearalenone,ZEN)適配體3'端設(shè)計(jì)了生物素標(biāo)記的locker 序列,構(gòu)建了酶輔助熒光偏振信號(hào)放大技術(shù)實(shí)現(xiàn)了ZEN 的快速、靈敏檢測(cè)。結(jié)果表明在0.01~100 ng/mL 范圍內(nèi)具有良好的線性關(guān)系,檢測(cè)限低至0.004 ng/mL,圖1(C)是其檢測(cè)原理圖。在這項(xiàng)研究中,Exo III 被用于催化降解探針?lè)肿舆M(jìn)行不斷循環(huán),從而顯著提高熒光偏振變化強(qiáng)度。雖然酶可以實(shí)現(xiàn)熒光偏振信號(hào)的放大,但由于酶受溫度和pH 影響較大,容易變性,在復(fù)雜的生物樣品檢測(cè)中難以控制操作[42],限制了該方法的擴(kuò)大應(yīng)用。
2.2.4 核酸輔助信號(hào)放大技術(shù)
而核酸尤其是DNA 性質(zhì)相對(duì)較穩(wěn)定,近年來(lái)常被應(yīng)用開(kāi)發(fā)熒光偏振信號(hào)放大檢測(cè)技術(shù),常見(jiàn)的有核酸雜交互補(bǔ)鏈以及PCR 擴(kuò)增等技術(shù)等[43]。如HONG 等[44]在熒光標(biāo)記的單鏈DNA 上設(shè)計(jì)了線性和發(fā)夾型兩種互補(bǔ)雜交鏈,形成C-Ag+-C 結(jié)構(gòu),從而產(chǎn)生熒光偏振信號(hào)的明顯變化,基于此原理可以實(shí)現(xiàn)Ag+的檢測(cè)(圖1(D))。MA 等[45]以適配體為模板,設(shè)計(jì)了熒光標(biāo)記的正向引物和生物素修飾的反向引物,利用PCR 擴(kuò)增以及生物素-鏈霉親和素共價(jià)作用系統(tǒng)增加適配體模板的分子量,通過(guò)雙重信號(hào)放大作用增強(qiáng)熒光偏振信號(hào),建立了一種新型的熒光偏振適配體生物傳感器,實(shí)現(xiàn)了氯霉素的高靈敏檢測(cè)。研究結(jié)果表明,在0.001~200 nM 濃度范圍內(nèi)具有良好的線性關(guān)系,其檢測(cè)限可低至皮摩爾級(jí),達(dá)到0.5 pM。蜂蜜樣品加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)結(jié)果也顯示了該方法具有較好的回收率和實(shí)際樣品檢測(cè)能力。
基于適配體的熒光偏振檢測(cè)技術(shù)利用了適配體和熒光偏振兩個(gè)方面的優(yōu)勢(shì)。利用熒光偏振技術(shù)檢測(cè)糧食小分子危害物也是一項(xiàng)挑戰(zhàn),學(xué)者們通過(guò)設(shè)計(jì)熒光基團(tuán)在適配體不同位置上標(biāo)記產(chǎn)生熒光偏振信號(hào)響應(yīng)進(jìn)行直接檢測(cè),以及通過(guò)質(zhì)量放大作用進(jìn)行競(jìng)爭(zhēng)檢測(cè),均取得了一定的成果。
在糧食小分子危害物的熒光偏振檢測(cè)方法,今后可在以下方面加強(qiáng)。
(1)設(shè)計(jì)性能更好的適配體識(shí)別分子,提高適配體與靶標(biāo)的親和性和特異性。
(2)基于蛋白質(zhì)、酶等不穩(wěn)定特點(diǎn),納米材料可能是質(zhì)量放大策略首選考慮因素,因此需要開(kāi)發(fā)更多的、性能更穩(wěn)定、操作更方便的納米材料,從而提高熒光偏振信號(hào)的變化強(qiáng)度,以適應(yīng)不同體系的糧食小分子危害物檢測(cè)。
(3)利用熒光偏振無(wú)需分離、快速檢測(cè)的特點(diǎn),開(kāi)發(fā)便攜式熒光偏振生物傳感設(shè)備或系統(tǒng),以適應(yīng)于現(xiàn)場(chǎng)檢查需要,提升糧食中小分子危害物快速檢測(cè)水平。