王傳鋒 米青婕 皮志媛
摘要選取2種豬繁殖與呼吸綜合征抗體ELISA檢測試劑盒進行符合率、敏感性(Dse)、特異性(Dsp)、批內重復性(Re)比較分析,以期了解國產(chǎn)試劑盒與進口試劑盒在試驗結果上的差異性。結果顯示:通過對45份臨床樣品進行檢測發(fā)現(xiàn)金諾試劑盒檢測敏感性(Dse)為84%,檢測特異性(Dsp)為100%,2種試劑盒總符合率為91.11%。該研究結果為實驗室檢測豬繁殖與呼吸綜合征抗體提供了試劑盒選用參考。
關鍵詞豬繁殖與呼吸綜合征;抗體檢測;ELISA;Kappa檢驗;比較
中圖分類號S 85文獻標識碼A
文章編號0517-6611(2023)24-0078-04
doi:10.3969/j.issn.0517-6611.2023.24.017
Comparative Analysis of Two Kinds of Antibody ELISA Kit for Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome
WANG Chuanfeng,MI Qingjie,PI Zhiyuan
(Yili Vocational and Technical College,Yining,Xinjiang 835000)
AbstractTwo kinds of ELISA Kit for porcine reproductive and respiratory syndrome antibody were selected to compare the coincidence rate,sensitivity (Dse),specificity (Dsp) and inbatch repeatability (Re),in order to understand the differences of experimental results between domestic and imported kits. The results showed that the detection sensitivity (Dse) and detection specificity (Dsp) of Jinnuo kit to 45 clinical samples were 84% and 100%,respectively. The total coincidence rate of the two kinds of kits was 91.11%. The study results provided references for the selection of laboratory kits for the detection of antibodies to porcine reproductive and respiratory syndrome.
Key wordsPorcine reproductive and respiratory syndrome;Antibody detection;ELISA;Kappa test;Comparison
豬繁殖與呼吸綜合征(PRRS)是由豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)引起的一種接觸性傳染病。臨床表現(xiàn)主要以母豬出現(xiàn)流產(chǎn)、早產(chǎn)、死胎等現(xiàn)象,仔豬出現(xiàn)呼吸極度困難、咳嗽等癥狀[1]。豬繁殖與呼吸綜合征的傳播速度極快,特別是在發(fā)達國家豬群密集,更容易被傳染[2]。
近年來,隨著我國生豬存欄量的日益增加,加上交通運輸業(yè)的蓬勃發(fā)展,生豬的流通日趨快捷,這都為豬繁殖與呼吸綜合征的傳播與流行提供了便利條件,同時也給動物疫病防控工作提出了新的挑戰(zhàn)。豬繁殖與呼吸綜合征的流行不僅會給養(yǎng)豬業(yè)帶來巨大的經(jīng)濟損失,而且會對人類健康和生態(tài)環(huán)境產(chǎn)生潛在威脅[3]。
借助科學的動物疫病實驗室檢測技術,定期監(jiān)測疫病是防控 PRRS的最有效措施。酶聯(lián)免疫吸附測定(ELISA) 是目前應用最普遍的一種血清學實驗室檢測技術,被廣泛應用于疫病抗體水平的檢測[4],具有靈敏性高、特異性強、重復性好、操作簡便等特點。目前,市場上已開發(fā)多種檢測PRRSV的商品化 ELSIA 試劑盒,但大部分都缺乏科學、規(guī)范的評價[5]。為篩選適用于實驗室檢測的試劑盒,該研究根據(jù)《傳染病診斷方法的驗證原則》[6] 以及《出入境動物檢疫診斷試劑盒質量評價規(guī)程》[7] 的要求,對國產(chǎn)和進口PRRS抗體 ELISA 試劑盒進行符合率、敏感性、特異性、批內重復性比較分析,以期為ELISA試劑盒的選用提供參考。
1材料與方法
1.1材料
1.1.1試劑。
1.1.1.1金標試劑盒。進口豬繁殖與呼吸綜合征病毒抗體檢測試劑盒(IDEXX Q161)。
1.1.1.2參比試劑盒。國產(chǎn)豬繁殖與呼吸綜合征抗體ELISA試劑盒(金諾試劑盒 20210510)。
1.1.2樣品。
1.1.2.1病原血清。PRRSV血清:強陽性血清12份,弱陽性血清13份,陰性血清20份。
1.1.2.2特異性驗證用血清。PRRSV病原抗體陰性且其他病原抗體陽性血清10份:PCV2 2份,PEDV 2份,PRV gE 2份,Mhp 2份,CSFV 2份。
1.1.3儀器與設備。酶標儀(深圳雷杜RT-6000)、96孔自動洗板機(山東博科BK-9622)、微量移液器(德國Eppendorf)、電熱恒溫培養(yǎng)箱(天津泰斯特DH124D)。
1.2試驗方法
1.2.1符合率的測定。按照 ELISA 試劑盒的操作說明書對45份臨床樣品進行檢測,以IDEXX試劑盒檢測結果為金標準,按照《傳染病診斷方法的驗證原則》[6]中規(guī)定的方法對檢測結果進行統(tǒng)計,分別計算金諾試劑盒的檢測敏感性(Dse)和檢測特異性(Dsp)。采用Kappa統(tǒng)計學方法,計算金諾試劑盒檢測結果的Kappa值,從而評價檢測結果的符合率。當Kappa值為0.81~1,說明2種試劑盒完全符合;當Kappa值為0.61~0.80,說明2種試劑盒檢測結果高度符合;當Kappa值為0.41~0.60,說明2種試劑盒檢測結果中度符合;當Kappa值為0.21~0.40,說明2種試劑盒檢測結果比較符合;當0 檢測敏感性(Dse)=a/(a+c)×100% 檢測特異性(Dsp)=d/(b+d)×100% Po=(a+d)/(a+b+c+d) Pe=[(a+c)/(a+b+c+d)]×[(a+b)/(a+b+c+d)]+[(b+d)/ (a+b+c+d)]×[(c+d)/(a+b+c+d)] Kappa=(Po-Pe)/(1-Pe) Kappa值應大于等于0.6,Kappa值越接近1.0,符合率越高。 1.2.2敏感性檢測。 將不同來源的強陽性血清2份,弱陽性血清1份,進行1×、2×、4×、8×、16×、32×、64×、128×倍比稀釋后,再用不同試劑盒進行檢測。每個血清、每個稀釋度進行單孔檢測。根據(jù)檢測結果,比較2種試劑盒檢測抗體的最低檢測限,比較2種試劑盒的檢測敏感性。 1.2.3特異性檢測。 選取常見豬病各病原(PEDV、CSFV、PCV2、PRV gE、Mhp)抗體陽性血清10份,每份血清樣品做單孔檢測,根據(jù)檢測結果,判定試劑盒是否與其他病原標準陽性血清有交叉反應。 1.2.4批內重復性的測定。選取豬繁殖與呼吸綜合征病毒抗體陽性血清6份、陰性血清2份,共8份樣品進行檢測,每個試劑盒每個樣品做單孔檢測,重復同一批次的3次檢測。根據(jù)檢測結果的S/P值,分別計算2種試劑盒S/P值的變異系數(shù)。 2結果與分析 2.1檢測敏感性、特異性及符合率選擇采集不同時期的血清,通過對45份臨床樣品進行檢測,2種試劑盒PRRSV抗體檢測結果見表2,金諾試劑盒與IDEXX試劑盒的比較見表3。由表2~3可知,與IDEXX試劑盒相比,金諾試劑盒檢測敏感性(Dse)為84%,檢測特異性(Dsp)為100%;2種試劑盒總符合率為91.11%,Po=0.911 1,Pe=0.496,Kappa =0.824,說明2種試劑盒檢測完全符合。 2.2敏感性分析 根據(jù)表2檢測結果,選取不同S/P值的3份陽性血清進行1×、2×、4×、8×、16×、32×、64×、128×倍比稀釋。選擇2種試劑盒進行檢測,比較2種試劑盒的檢測敏感性。結果顯示:2種試劑盒的抗體檢測結果與稀釋度成正比,詳見表4。 強陽性血清樣品(血清編號532)IDEXX和金諾試劑盒的最高稀釋倍數(shù)分別為64×和32×;陽性血清樣品(血清編號518)IDEXX和金諾試劑盒的最高稀釋倍數(shù)分別為4×和1×;弱陽性血清樣品(血清編號576)IDEXX和金諾試劑盒的最高稀釋倍數(shù)分別為2×和未檢出;IDEXX試劑盒的檢測敏感性高于金諾試劑盒(表5)。 2.3特異性分析 用2種試劑盒對PEDV、CSFV、PCV2、PRV gE、Mhp病原共10份陽性血清進行檢測,每種病原各2份血清。結果顯示:PRRSV抗體全部呈陰性,均無交叉反應,說明金諾試劑盒和IDEXX試劑盒特異性良好,具體見表6。 2.4批內重復性分析 用相同批次的IDEXX試劑盒和金諾試劑盒對6份豬繁殖與呼吸綜合征病毒抗體陽性血清和2份陰性血清(血清編號分別為811和111)進行3次重復檢測。結果顯示:2種試劑盒重復性較好,陰性血液樣本S/P值均小于0.4。每種試劑盒進行3次重復檢測,陽性血清樣品S/P值整體一致(圖1)。 陽性樣品的IDEXX試劑盒和金諾試劑盒3次檢測的S/P值變異系數(shù)平均值分別為13.05%和15.85%,說明IDEXX試劑盒批內重復性均較好,金諾試劑盒批內重復性不如IDEXX試劑盒(表7)。 3討論 目前商品化檢測試劑盒眾多,但質量評估方法并不完善,只能在使用時通過主觀判斷或者簡單的數(shù)據(jù)對比來評估試劑盒的檢測效果[8]。阮周曦等[9]利用4種ELISA試劑盒開展豬繁殖與呼吸綜合征抗體水平監(jiān)測和免疫效果評估,結果顯示4種試劑盒的Kappa值均大于0.90,但不同試劑盒的檢測時長有差異,在檢測工作中應根據(jù)具體情況合理選擇試劑盒。 該試驗檢測結果表明,從敏感性來看,與金諾試劑盒相比,IDEXX試劑盒更加靈敏,金諾試劑盒檢測敏感性(Dse)為84%,檢測特異性(Dsp)為100%,特異性良好;總符合率為91.11%,Po=0.911 1,Pe=0.496,Kappa =0.824,說明2種試劑盒特異性高度一致,IDEXX試劑盒敏感性高于金諾試劑盒。 多年來,ELISA檢測方法被廣泛應用于實驗室的多種檢測項目[10]。能否刺激機體產(chǎn)生有效的免疫保護都需要進行免疫效果的評估,采取積極有效的評估方法對于檢驗豬場的疫苗免疫效果十分重要。實驗室可從檢測目的、檢測成本及試劑盒操作流程簡化程度等方面綜合考慮,選擇相應的試劑盒。該試驗旨在了解2種PRRSV抗體檢測試劑盒的檢測效果,為從事相關檢測工作的科研人員提供數(shù)據(jù)支持和理論依據(jù),從而更好地為臨床檢測工作服務。 參考文獻 [1]馬思續(xù),崔春曉,張留君,等.不同包被抗原檢測 PRRS 抗體間接 ELISA 方法的建立[J].中國獸醫(yī)學報,2018,38(6):1082-1087. [2] 佟秀英,陳國峰.豬繁殖與呼吸綜合征免疫學分析[J].中國畜牧業(yè),2023(14):50-51. [3] 吳君英,韋林.規(guī)模化豬場豬繁殖與呼吸綜合征的診斷與防控[J].北方牧業(yè),2023(6):39-40. [4] 官家明,施開創(chuàng),陳漢忠,等.豬繁殖與呼吸綜合征病毒檢測技術研究進展[J].動物醫(yī)學進展,2013,34(8):88-92. [5] 李乃果,賈松濤.不同進口藍耳病病原抗體 ELISA 檢測試劑盒比較及應用淺析[J]. 中國豬業(yè),2019,14(5):82-84. [6] OIE.Principles and methods of validation of diagnostic assays for infectious diseases[M]//World Organisation for Animal Health.Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals.Paris:OIE,2013. [7] 中華人民共和國國家質量監(jiān)督檢驗檢疫總局. 出入境動物檢疫診斷試劑盒質量評價規(guī)程:SN/T 2435—2010[S].北京:中國標準出版社,2010. [8] 高登軍,劉國民,陳廣林,等.不同品牌試劑盒檢測豬口蹄疫O型、A型抗體水平對比評估[J].獸醫(yī)導刊,2023(1):35-37. [9] 阮周曦,楊俊興,黃韞,等.4種檢測豬繁殖與呼吸綜合征抗體間接ELISA試劑盒的比較[J].中國口岸科學技術,2020(6):40-45. [10] 李燕紅,王敏,夏曉.ELISA檢測過程中影響因素及應對策略[J].人人健康,2019(22):250-251.