国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

PEDV G2 突變株動(dòng)力學(xué)特征比較研究

2024-06-05 00:00:00趙勇趙文昌唐弢

摘要:[目的]本研究旨在通過(guò)對(duì)豬流行性腹瀉病毒(PEDV)經(jīng)連續(xù)傳代后的毒株(PEDV-BJ-150)進(jìn)行全面研究,探究其生物學(xué)特性、遺傳變異、致病能力和細(xì)胞適應(yīng)性,以評(píng)估其作為潛在減毒疫苗株的潛力。[方法]通過(guò)對(duì)PEDV-BJ-150 和原始PEDV-BJ-01 毒株進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)、動(dòng)物感染試驗(yàn)和基因組測(cè)序,評(píng)估其在不同細(xì)胞系中的增殖能力、病毒滴度、致病性以及基因組的核苷酸序列變異并利用動(dòng)物模型評(píng)估其感染特性和病理變化。[結(jié)果]PEDV-BJ-150 經(jīng)連續(xù)傳代后在Vero-M 細(xì)胞中表現(xiàn)出更高的增殖能力和滴度,尤其在懸浮適應(yīng)株Vero-M 和貼壁適應(yīng)株Vero-M 中表現(xiàn)出顯著的滴度差異。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示其在體內(nèi)感染后的致病性降低,尤其在肺部未檢測(cè)到病毒存在,鼻翼和小腸部位顯示更高的病毒滴度。此外,基因組測(cè)序結(jié)果表明PEDV-BJ-150 的S 蛋白存在多個(gè)位置的氨基酸突變,可能影響其細(xì)胞嗜性和致病能力。[結(jié)論]本研究發(fā)現(xiàn)經(jīng)連續(xù)傳代的PEDV-BJ-150 在體內(nèi)表現(xiàn)出的毒力和致病能力明顯降低,表明其有作為減毒疫苗株的潛力。特別是S 蛋白中的連續(xù)性氨基酸缺失可能導(dǎo)致病毒致病性降低,這為疫苗研發(fā)提供了新的思路。此外,研究發(fā)現(xiàn)不同組織對(duì)PEDV 的感染特性不同,這對(duì)于深入了解病毒傳播機(jī)制具有重要意義。本研究的創(chuàng)新之處在于發(fā)現(xiàn)了PEDV 經(jīng)連續(xù)傳代后的致病性變化和S 蛋白突變對(duì)病毒特性的影響,為病毒進(jìn)化和疫苗設(shè)計(jì)提供了新的見(jiàn)解。這項(xiàng)研究為了解PEDV 的病毒學(xué)特性和毒力變化提供了重要線索,對(duì)于病毒疫苗研發(fā)和應(yīng)對(duì)疫情具有潛在的應(yīng)用前景。

關(guān)鍵詞:豬流行腹瀉病毒; 減毒突變株; 動(dòng)力學(xué)特征; 基因組分析

中圖分類號(hào):S855.3 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):1671-8151(2024)02-0080-10

豬流行性腹瀉(PED)是豬急性和高度傳染性的腸道疾病,其由豬流行性腹瀉病毒(PEDV)引起,其廣泛傳播嚴(yán)重影響著全球養(yǎng)豬業(yè)的經(jīng)濟(jì)利益[1-2]。該疾病的主要特征包括乳豬出現(xiàn)嘔吐、腹瀉、脫水、食欲不振、體重下降以及高死亡率[2-4]。盡管臨床上大部分豬流行性腹瀉病毒感染多出現(xiàn)在夏季和冬季,但偶爾也可能在春季發(fā)生[5]。值得注意的是,在仔豬中發(fā)生的豬流行性腹瀉病毒感染常伴有極高的死亡率[6-7]。

PEDV 屬于Nidovirales 目、冠狀病毒科和Al?pha 冠狀病毒屬,為一種單股正鏈RNA 病毒[8]。PEDV 的基因組長(zhǎng)度約為28 kb 核苷酸(nts),在其兩端具有5 ′-帽和3 ′-聚腺苷尾;其基因組還包括5 ′和3 ′非翻譯區(qū)域(UTR),至少有7 個(gè)開(kāi)放閱讀框(ORF1a、ORF1b 和ORF2-6)[9-11]。ORF1a 和ORF1b 分別編碼復(fù)制酶多蛋白1a 和1ab,這些蛋白經(jīng)病毒蛋白酶自體蛋白水解形成16 種非結(jié)構(gòu)蛋白(Nspl-16),這些酶參與病毒RNA 的轉(zhuǎn)錄和復(fù)制[12-13]。而ORF2-6 主要編碼4 種結(jié)構(gòu)蛋白(刺突蛋白(S)、膜蛋白(M)、包膜蛋白(E)和核衣殼蛋白(N),以及輔助蛋白ORF3;這些蛋白在基因組中按照以下順序排列:5 ′-ORF(la/lb)-S-ORF3-EM-N-3 ′[13-15]。

1978 年,于比利時(shí)首次發(fā)現(xiàn)PEDV 毒株CV777[16-17]。2010 年11 月,中國(guó)境內(nèi)發(fā)現(xiàn)1 種高致病性PEDV 毒株,在隨后幾個(gè)月內(nèi)快速傳播至全國(guó)各地[3, 18]。這一變種隨后在美國(guó)被發(fā)現(xiàn),并傳播至加拿大、墨西哥等地,同時(shí)迅速在亞洲多個(gè)國(guó)家傳播,給這些地區(qū)造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失[19-21]。

疫苗接種被認(rèn)為是預(yù)防豬場(chǎng)PEDV 感染的有效方法[22]。針對(duì)經(jīng)典PEDV 毒株,如CV777、DR13 和KPEDV-9,已開(kāi)發(fā)出多種減毒活化和滅活疫苗,并在許多國(guó)家成功上市。然而,在病毒快速傳播的過(guò)程中,毒株不斷變異,導(dǎo)致疫苗株與流行株之間存在抗原和遺傳差異[23-25]。因此,迫切需要開(kāi)發(fā)針對(duì)新變異株的新型PEDV 疫苗。

本研究通過(guò)將分離的PEDV G2 毒株在Vero-M 細(xì)胞中進(jìn)行連續(xù)傳代,獲得了1 株突變毒株,并確定了該毒株在不同細(xì)胞系中的生物學(xué)特性。此外,使用5 日齡的仔豬評(píng)估了這些毒株的致病性。隨后利用二代測(cè)序技術(shù)對(duì)經(jīng)過(guò)連續(xù)傳代后的PEDV-BJ-01 株進(jìn)行了全基因組序列測(cè)定。最終,我們獲得了1 株安全的減毒PEDV 毒株,旨在為制備減毒疫苗提供新的理論依據(jù)。

1 材料和方法

1. 1 細(xì)胞和病毒培養(yǎng)

懸浮適應(yīng)株Vero-M 在VP-SFM AGT?培養(yǎng)基中培養(yǎng);懸浮適應(yīng)株ST 在DMEM/F12 培養(yǎng)基中培養(yǎng),并在37 ℃、5% CO2、140 r·min-1 的細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。貼壁適應(yīng)株Vero-M 和貼壁細(xì)胞株ST,在補(bǔ)充有7% 胎牛血清的低葡萄糖的Dul?becco 改良杜爾貝科培養(yǎng)基(DMEM)中培養(yǎng),37 ℃、5% CO2 的生長(zhǎng)培養(yǎng)基中培養(yǎng)。以上細(xì)胞均由本實(shí)驗(yàn)室保存。

PEDV G2 毒株P(guān)EDV-BJ-01 之前由本實(shí)驗(yàn)室于病料組織中分離,測(cè)序比對(duì)后確定為FJzz1 毒株(GenBank:MK288006)。將分離獲得的FJzz1毒株接種在單層Vero-M 細(xì)胞上,連續(xù)傳代3 次。當(dāng)發(fā)現(xiàn)明顯的細(xì)胞病變時(shí)收集細(xì)胞培養(yǎng)液上清液,并將其命名為PEDV-BJ-01。隨后在Vero-M細(xì)胞上盲傳150 代,收集盲傳后病毒液。收集病毒儲(chǔ)液,分裝儲(chǔ)存在?80 ℃冰箱中,將該毒株命名為PEDV-BJ-150。

針對(duì)PEDV N 基因設(shè)計(jì)如下引物,

正向引物PED-N-F(5 ′-TGCGGTTCTCACAGATAGTG)和反向引物PED-N-R(5 ′-AAGTCGCTAGAAAAACACTCAGTAAT)。

將以上引物用于RT-PCR。檢測(cè)病毒是否存在,并在確認(rèn)后測(cè)定收集到的病毒液的病毒滴度。

1. 2 PEDV 毒株在Vero-M 細(xì)胞中的連續(xù)傳代

將Vero-M 細(xì)胞在T25 細(xì)胞培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)至60%~70% 匯合度。將PEDV 毒株原液稀釋在含有10 g·mL-1胰蛋白酶的2 mL 無(wú)血清DMEM 培養(yǎng)基中,隨后使用磷酸鹽緩沖鹽水(PBS)沖洗2 次單層培養(yǎng)的Vero-M 細(xì)胞。將病毒液感染Vero-M細(xì)胞,病毒感染復(fù)數(shù)(MOI)為0. 01,每隔15 min 震蕩混勻,孵育1 h 后,棄去病毒溶液,使用PBS 洗滌細(xì)胞培養(yǎng)瓶2 次,加入含有5 g·mL-1 胰蛋白酶的DMEM 培養(yǎng)基5 mL。隨后置于37℃、5% CO2 的細(xì)胞培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng),當(dāng)細(xì)胞產(chǎn)生可見(jiàn)細(xì)胞病變效應(yīng)(CPE)時(shí),凍融裂解感染的細(xì)胞,并在4 ℃下以3000×g 離心1 min 以收獲培養(yǎng)液上清。然后將收集的病毒液以同樣的方式繼續(xù)接種Vero-M細(xì)胞,直到第150 次傳代結(jié)束。

1. 3 PEDV 復(fù)制動(dòng)力學(xué)測(cè)定

使用含有10 μg·mL-1 胰蛋白酶的懸浮細(xì)胞培養(yǎng)基將懸浮適應(yīng)株Vero-M 和懸浮適應(yīng)株ST 傳代至無(wú)菌細(xì)胞搖瓶中,細(xì)胞密度105 Cells·mL-1,體積30 mL。以病毒感染復(fù)數(shù)(MOI)為0. 01 分別接種2 種病毒。放置于140 r·min-1、37 ℃、5% CO2 溫箱中培養(yǎng),分別于病毒感染后24、48、72、96 h 共4 個(gè)時(shí)間點(diǎn)收取細(xì)胞培養(yǎng)上清液,測(cè)定病毒滴度。

將貼壁Vero-M、ST 細(xì)胞均勻鋪至48 孔細(xì)胞培養(yǎng)板中。待細(xì)胞長(zhǎng)至70%~80% 匯合度時(shí),以多重感染復(fù)數(shù)(MOI)為0. 01 分別接種2 種病毒。

將病毒和細(xì)胞在37 ℃、5% CO2 的溫箱中吸附1 h后,棄去病毒液,每孔加入500 μL 無(wú)菌PBS 清洗2 次,每孔加入含有10 μg·mL-1 胰蛋白酶的DMEM 培養(yǎng)基250 μL。

將感染后的細(xì)胞放置于37 ℃、5% CO2溫箱培養(yǎng),分別于感染后24、48、72 和96 h,收取細(xì)胞上清液,分別測(cè)定細(xì)胞培養(yǎng)上清液中的病毒滴度。期間,觀察致細(xì)胞病變效應(yīng)(CPE)。

1. 4 病毒滴度與拷貝數(shù)的測(cè)定

取正常培養(yǎng)的Vero-M 細(xì)胞,將細(xì)胞按適當(dāng)比例稀釋后均勻鋪至96 孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,待細(xì)胞貼壁生長(zhǎng)至匯合度約為70%~80% 左右時(shí)接種病毒。將上述收取的病毒液(細(xì)胞培養(yǎng)上清液)使用含有10 μg·mL-1 胰蛋白酶的接毒培養(yǎng)液作連續(xù)10倍的梯度稀釋,從10-1~10-9 連續(xù)9 個(gè)稀釋度,每組重復(fù)6 次試驗(yàn)。將稀釋好的病毒接種到9 6 孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,每1 稀釋度接種1 縱排,共9 孔,每孔接種1 0 0 μL。并設(shè)正常細(xì)胞對(duì)照。接毒48 h 后觀察細(xì)胞病變情況并記錄結(jié)果。按Reed-Muench 法計(jì)算結(jié)果。

通過(guò)RT-qPCR 分析病毒顆粒釋放,使用RNA 病毒試劑盒提取細(xì)胞培養(yǎng)上清液中的病毒RNA,使用逆轉(zhuǎn)錄酶逆轉(zhuǎn)錄后進(jìn)行實(shí)時(shí)定量聚合酶鏈反應(yīng)(RT-qPCR)分析。使用靶向PEDV N基因的RT-qPCR 測(cè)定培養(yǎng)液上清中的病毒載量。PEDV 正向引物PEDN-F (5 ′-CGCAAAGACTGAACCCACTAAC-3 ′) ,反向引物PEDN-R(5 ′-TTGCCTCTGTTGTGTTACTTGGAGAT-3 ′)和PEDV 探針(FAM-TGYYACCAYYACCACACGACTCCTGC-BHQ3) , QuantStudio ? Real-Time PCR 軟件用于數(shù)據(jù)采集和分析。

1. 5 基因組測(cè)序與遺傳變異分析

使用RNAsimple 總RNA 提取試劑盒(DP419)提取,然后使用HiScript II 1st StrandcDNA Synthesis Kit 反轉(zhuǎn)錄試劑盒逆轉(zhuǎn)錄成cDNA。以該cDNA 為模板和16 對(duì)重疊的引物進(jìn)行PCR 驗(yàn)證(補(bǔ)充表S1)。PEDV-BJ-150 變異株的基因組序列采用二代測(cè)序技術(shù)測(cè)定。病毒S 蛋白的氨基酸序列使用MegAlign(DNAStar Laser?gene)中的Clustal W 方法進(jìn)行比對(duì)。比對(duì)完成后通過(guò)手動(dòng)鑒定基因組序列上的不同毒株之間核苷酸/aa 變化的位置。如前所述。利用MEGA 7. 0將基于PEDV-BJ-150 毒株S 基因的和GenBank中提供的另外50 個(gè)具有完整S 基因序列的參考毒株,采用鄰域連接法(NJ)構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)。

1. 6 毒株的致病性評(píng)價(jià)

選取15 頭體重相仿的5 d 齡仔豬,隨機(jī)分配為3 組,分為A 組、B 組和C 組。每組飼養(yǎng)在1 個(gè)單獨(dú)的房間。A 組和B 組的試驗(yàn)動(dòng)物分別滴鼻感染PEDV-BJ-01 毒株和PEDV-BJ-150 毒株,劑量為104 TCID50。C 組給予等量生理鹽水滴鼻。

在試驗(yàn)過(guò)程中,每天監(jiān)測(cè)和記錄臨床癥狀,包括精神狀況和體重的變化。病毒感染后第3 和5天對(duì)試驗(yàn)動(dòng)物實(shí)行安樂(lè)死,收集鼻甲骨、肺部、小腸樣品。將部分收集樣品低溫研磨后12 000 r·min-1 離心,檢測(cè)組織上清液的病毒滴度含量。

1. 7 組織病理學(xué)和HE 染色分析

在實(shí)驗(yàn)中,首先收集小腸腸段并將其在10%福爾馬林中室溫固定36 h。隨后,制備石蠟包埋的組織樣本,完成后進(jìn)行切割、脫蠟、再水化處理。最后,采用標(biāo)準(zhǔn)的蘇木精和伊紅(Hamp;E)染色方法對(duì)樣本進(jìn)行染色,然后進(jìn)行掃描切片分析[26]。這些步驟用于準(zhǔn)備和分析小腸腸段的組織樣本。

1. 8 統(tǒng)計(jì)分析

所有實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)均使用Origin2018 統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行分析。使用t 檢驗(yàn)評(píng)估統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性,當(dāng)Plt;0. 05 時(shí),認(rèn)為差異是顯著的。

2 結(jié)果與分析

2. 1 PEDV-BJ-150 毒株在連續(xù)傳代后的生物學(xué)特性

將PEDV-BJ-01 毒株和PEDV-BJ-150 毒株分別以多重感染復(fù)數(shù)(MOI)0. 01 接種懸浮適應(yīng)株Vero-M、貼壁適應(yīng)株Vero-M、懸浮適應(yīng)株ST、貼壁細(xì)胞株ST 共4 種細(xì)胞。定時(shí)取樣以分析體外連續(xù)傳代過(guò)程后其生物學(xué)特性的變化。

結(jié)果如圖1 所示,當(dāng)不同的細(xì)胞系感染2 種毒株時(shí),2 株毒株沒(méi)有呈現(xiàn)顯著的拷貝數(shù)差異,僅在感染后的部分時(shí)間點(diǎn)呈現(xiàn)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。隨后基于病毒滴度(TCID50)的多步生長(zhǎng)動(dòng)力曲線如圖2 所示。當(dāng)細(xì)胞感染兩種毒株后,懸浮適應(yīng)株Vero-M、貼壁適應(yīng)株Vero-M、懸浮適應(yīng)株ST 在感染后的各個(gè)時(shí)間點(diǎn)均發(fā)現(xiàn)明顯的病毒滴度差異。在ST 貼壁細(xì)胞系中2 株毒株的病毒滴度差異較小。2 株毒株在懸浮適應(yīng)株Vero-M 和貼壁適應(yīng)株Vero-M 中病毒滴度差異最高。病毒滴度的最大差距約為103。

PEDV-BJ-150 和PEDV-BJ-01 毒株在懸浮適應(yīng)株ST 中滴度差異較小,病毒滴度的最大差距約102 左右。而在貼壁細(xì)胞株ST 中病毒滴度差異相較于其它3 株細(xì)胞系,其各個(gè)時(shí)間點(diǎn)的病毒滴度的差距最小。

總之,這些結(jié)果表明PEDV-BJ-150 毒株相比PEDV-BJ-01 毒株在懸浮適應(yīng)株Vero-M、貼壁適應(yīng)株Vero-M 中的敏感性和適應(yīng)性在體外連續(xù)傳代過(guò)程中明顯更強(qiáng)。并且PEDV-BJ-150 毒株對(duì)于懸浮培養(yǎng)的細(xì)胞系敏感程度更高。

2. 2 PEDV-BJ-150 的遺傳變異分析

為了進(jìn)一步分析突變株病毒的遺傳變異,在MegAlign 軟件中使用Clustal W 對(duì)這些變異的全基因組序列進(jìn)行了比對(duì)。結(jié)果如圖3 表明,相較于PEDV-BJ-01,PEDV-BJ-150 變異株在S 蛋白上有14 個(gè)位置的氨基酸發(fā)生改變。在其它結(jié)構(gòu)蛋白和非結(jié)構(gòu)蛋白部分也有不同程度的突變。PEDVBJ-150 突變株中S 蛋白的氨基酸變化分散在S1和S2 亞基中。

為了探究PEDV-BJ-150 變異株在連續(xù)傳代過(guò)程后的氨基酸變異,構(gòu)建了PEDV-BJ-01 和PEDV-BJ-150 中翻譯出的S 糖蛋白氨基酸的序列比對(duì)。如圖4 顯示,在體外連續(xù)傳代后,高傳代PEDV-BJ-150 突變株在S1-NTD 區(qū)域表現(xiàn)出特

征性的連續(xù)aa 缺失(55I56G57E → 55△56△57△)這與Chen 等[27]的研究結(jié)果相似。并且在144-145處也發(fā)現(xiàn)了氨基酸的缺失(144T145G→144△145△)。在877-878 位氨基酸也發(fā)現(xiàn)了相應(yīng)的改變(877V878L→877R878R)。

在其它位置14、223、265、490、710、773、820、1120、1212、1338、1353 也發(fā)現(xiàn)了氨基酸的突變,但這些變化對(duì)于病毒的增殖和致病能力的影響仍有待研究。

此外,基于PEDV-BJ-150 突變株的S 基因和另外50 個(gè)參考毒株構(gòu)建了系統(tǒng)發(fā)育樹(shù),GenBank中提供了完整的基因序列。系統(tǒng)發(fā)育分析表明,PEDV-BJ-150 毒株和50 株參考菌株形成2 個(gè)基因型:G1 基因型主要包含CV777 和DR13 等經(jīng)典菌株,而G2 基因型包含PEDV-BJ-150 株和其它變異大流行菌株。

2. 3 感染PEDV 突變毒株仔豬的臨床體征

為了評(píng)估PEDV-BJ-150 變異毒株的毒力是否發(fā)生變化,并分析突變毒株與原始毒株在5 d 齡仔豬體內(nèi)的致病能力,分別接種了這2 株毒株到試驗(yàn)組A 和試驗(yàn)組B 中,并監(jiān)測(cè)了仔豬每日的體重變化。在接種前,3 組動(dòng)物的體重差異沒(méi)有達(dá)到統(tǒng)計(jì)學(xué)上的顯著性。但在病毒接種后,A 組的仔豬體重增長(zhǎng)速度較慢。相比之下,B 組的大多數(shù)動(dòng)物保持了相對(duì)穩(wěn)定的體重,盡管與對(duì)照組相比仍然存在一定程度的下降。整個(gè)試驗(yàn)過(guò)程中,未觀察到任何仔豬死亡的情況。正如圖5A 所示,PEDVBJ-150 株對(duì)仔豬體重的影響較PEDV-BJ-01 株更小。這些結(jié)果表明,PEDV-BJ-150 株在5 d 齡仔豬中具有一定毒性,但在體外連續(xù)傳代后,其致病能力明顯減弱。

2. 4 腸道和肺部不同病毒株的病毒滴度

2 株毒株感染實(shí)驗(yàn)動(dòng)物后,對(duì)收集的樣本檢測(cè)病毒滴度,如圖5B 和5C 顯示,PEDV-BJ-150 與PEDV-BJ-01 在鼻甲骨和小腸組織感染第3 天和第5 天存在一定的滴度差異。而在肺部組織樣本2株毒株在不同時(shí)間點(diǎn)均沒(méi)有檢測(cè)病毒滴度的存在。當(dāng)感染3 d 后,PEDV-BJ-150 株在小腸部位的滴度約為105. 4TCID50,相應(yīng)PEDV-BJ-01 株滴度約為103. 5TCID50,二者統(tǒng)計(jì)學(xué)差異顯著。而在感染第5 天,2 株毒株的病毒滴度均有不同程度的下降,二者差異約為10 倍。而在鼻翼部位,感染3d 后,兩株毒株的病毒滴度沒(méi)有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。有趣的是,當(dāng)感染第5 天后,2 株毒株的病毒滴度在鼻翼部位產(chǎn)生了統(tǒng)計(jì)學(xué)差異,2 株毒株產(chǎn)生了約10 倍的滴度差異。這可能是由于2 株毒株在不同感染部位滴度衰減速度不同導(dǎo)致的。當(dāng)對(duì)肺部樣本的病毒滴度進(jìn)行測(cè)定時(shí),發(fā)現(xiàn)在感染后3 d 和5 d,2 株病毒均沒(méi)有檢測(cè)到病毒滴度。

這些結(jié)果表明,雖然實(shí)驗(yàn)采取滴鼻感染兩株毒株,但肺部沒(méi)有檢測(cè)到病毒滴度的存在。這些結(jié)果表明,PEDV-BJ-150 株在仔豬體內(nèi)的增殖能力高于PEDV-BJ-01 株;并且滴鼻也是PEDV 的一種有效感染方式。

2. 5 感染PEDV-BJ-150 變異株的仔豬組織病理學(xué)病變

進(jìn)行病理學(xué)和組織學(xué)檢查,系統(tǒng)、直觀地評(píng)價(jià)經(jīng)過(guò)連續(xù)傳代后的PEDV-BJ-01 和PEDV-BJ-150 毒株的致病性。如圖6 所示,2 株毒株感染均引起小腸的病理變化。其特征是腸壁變薄,腸腔內(nèi)有淡黃色液體存在。相比之下,PEDV-BJ-01感染組相比PEDV-BJ-150 毒株顯示出更強(qiáng)的病理變化。HE 染色顯示,PEDV-BJ-01 感染組在小腸段引起較為嚴(yán)重的組織病理學(xué)病變,其特征是腸黏膜結(jié)構(gòu)崩解,溶解消失,僅殘留結(jié)締組織和壞死的細(xì)胞碎片,黏膜下水腫。在PEDV-BJ-150 感染組中,小腸也檢測(cè)到了組織病理學(xué)病變,但其病變程度略低于PEDV-BJ-01 感染組,其特征為腸黏膜固有層水腫,伴有少量炎細(xì)胞浸潤(rùn),黏膜上皮細(xì)胞排列整齊,未見(jiàn)變性,壞死等變化。對(duì)照組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的腸黏膜上皮細(xì)胞排列整齊,未見(jiàn)變性,壞死等變化,黏膜下層及肌層均未見(jiàn)明顯異常變化。

綜上所述,經(jīng)過(guò)連續(xù)傳代后的PEDV-BJ-150毒株的致病性低于PEDV-BJ-01。

3 討論

PEDV 的爆發(fā)給全世界的養(yǎng)豬業(yè)造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失。目前,疫苗接種是應(yīng)對(duì)病毒傳播的有效方法,然而由于PEDV 在傳播過(guò)程中極易發(fā)生氨基酸突變,造成經(jīng)典減毒疫苗不能提供有效的免疫保護(hù)[28-29]。因此,必須加快對(duì)該病毒流行毒株的研究進(jìn)度,以制備新的減毒疫苗株。在世界各地,許多研究人員通過(guò)在Vero 細(xì)胞中連續(xù)傳代經(jīng)典PEDV 毒株,從而人為產(chǎn)生減毒疫苗株[30-32]。在本研究中,原始的PEDV 毒株在經(jīng)過(guò)連續(xù)傳代后發(fā)生大量突變,尤其在其S 蛋白基因中有14 個(gè)位置的氨基酸發(fā)生了改變,這些位置氨基酸的改變可能導(dǎo)致病毒滴度和致病能力發(fā)生了明顯改變。與最初分離的PEDV-BJ-01 毒株相比,經(jīng)過(guò)連續(xù)傳代的PEDV-BJ-150 毒株在懸浮適應(yīng)株Vero-M、貼壁適應(yīng)株Vero-M 和懸浮適應(yīng)株ST 中有著滴度差異,滴度差異在102~103 左右(圖2)。并且研究顯示,PEDV-BJ-150 毒株在Vero-M 細(xì)胞中有著更為迅速的擴(kuò)增能力,更快的達(dá)到病毒滴度的峰值。

之后,為了評(píng)估經(jīng)過(guò)連續(xù)傳代后的PEDV 在體內(nèi)的致病能力和毒力,分別將PEDV-BJ-01 和PEDV-BJ-150 毒株感染仔豬。結(jié)果顯示PEDVBJ-150 毒株對(duì)于體重的影響能力弱于PEDV-BJ-01 毒株(圖5A)。其次,通過(guò)測(cè)定PEDV-BJ-150和PEDV-BJ-01 毒株在鼻翼、肺部和小腸的滴度。結(jié)果顯示,PEDV-BJ-150 毒株在鼻翼和小腸部位有著更高的病毒滴度(圖5B 和5C),而在肺部,均沒(méi)有檢測(cè)到病毒的存在。

另一方面結(jié)果顯示,接種PEDV-BJ-150 毒株的臨床體征和組織病理學(xué)病變程度較輕,表明PEDV-BJ-150 毒株在體內(nèi)的致病能力更弱(圖6)。

因此,根據(jù)試驗(yàn)結(jié)果認(rèn)為通過(guò)在細(xì)胞上對(duì)PEDV 的連續(xù)傳代,導(dǎo)致了PEDV-BJ-150 毒株在Vero-M 細(xì)胞系上的增殖能力和病毒滴度有著明顯提高,并且能夠降低PEDV 在體內(nèi)感染后的嚴(yán)重程度和病毒致病力。

對(duì)PEDV-BJ-01 和PEDV-BJ-150 毒株的全部基因組進(jìn)行了測(cè)序,以進(jìn)一步評(píng)估毒力變化。測(cè)序結(jié)果顯示在其S 蛋白的多個(gè)位置發(fā)生了氨基酸的改變,這些位置的改變可能共同改變了PEDV 的細(xì)胞嗜性和毒力[27,33]。在毒株S 蛋白的其它位置發(fā)生的氨基酸的改變對(duì)于毒株的影響還需驗(yàn)證。總的來(lái)說(shuō),這些結(jié)果表明,PEDV 毒株的細(xì)胞嗜性和毒力是基因組中多個(gè)核苷酸突變組合的結(jié)果,并且可以通過(guò)多種分子機(jī)制發(fā)生。

PEDV 的S 蛋白一直被視為病毒變異的標(biāo)志[34-35]。S 蛋白在接受免疫壓力時(shí)很容易變異。S蛋白中的突變(包括缺失和/或插入)可能會(huì)改變冠狀病毒的致病性和組織嗜性[36-38]。與PEDVBJ-01 毒株相比,PEDV-BJ-150 毒株的S 基因中發(fā)生了大量的核苷酸突變和缺失。我們發(fā)現(xiàn)PEDV-BJ-150 毒株的S 蛋白序列中存在3 個(gè)位置的特征性氨基酸突變(圖4)(55I56G57E→55△56△ 57 △ ,144T145G→144 △ 145 △ 和877V878L→877R878R),懷疑S 基因的這些突變可能與病毒致病性有關(guān)。

之前的研究稱,口服途徑為PEDV 的主要感染途徑[39-40]。病毒可以通過(guò)口腔直接進(jìn)入腸道,腸道蛋白酶可能幫助病毒在腸道釋放[41]。最近的一項(xiàng)研究表明,PEDV 病毒可以被鼻上皮細(xì)胞的DC細(xì)胞識(shí)別和呈遞,然后輸送到頸部淋巴結(jié)的CD3T細(xì)胞,通過(guò)血液和淋巴循環(huán)到達(dá)腸道,感染腸上皮細(xì)胞[41-42]。本試驗(yàn)通過(guò)將PEDV 滴鼻感染5 d 齡仔豬,但在感染后測(cè)定試驗(yàn)動(dòng)物各部位的病毒滴度時(shí),未在肺部檢測(cè)到病毒滴度的存在,而在腸道等部位檢測(cè)到了病毒的存在。這印證了之前的結(jié)論,鼻部也可以作為PEDV 的感染途徑,也印證了PEDV 對(duì)于不同組織有著不同的嗜性,但具體的分子機(jī)制尚未闡明[43-45]。

在這項(xiàng)研究中,PEDV-BJ-150 毒株在Vero-M 和ST 細(xì)胞中傳代時(shí)表現(xiàn)出不同的滴度變化情況。這一結(jié)果表明,PEDV 病毒的細(xì)胞適應(yīng)性在不同的細(xì)胞系中存在差異,并且顯示出懸浮適應(yīng)細(xì)胞株對(duì)于毒株的敏感程度更高。對(duì)于經(jīng)過(guò)連續(xù)傳代的PEDV 在不同細(xì)胞系中的細(xì)胞嗜性,這種不同敏感程度的機(jī)制尚不清楚,還需要進(jìn)一步實(shí)驗(yàn)來(lái)驗(yàn)證PEDV 病毒核苷酸序列改變對(duì)細(xì)胞嗜性的影響。

總的來(lái)說(shuō),本研究報(bào)告了PEDV 病毒經(jīng)過(guò)連續(xù)傳代后,毒力和致病能力都發(fā)生了明顯的改變。通過(guò)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)得出結(jié)論,經(jīng)過(guò)連續(xù)傳代后的PEDV-BJ-150 毒株是安全的,并且有可能作為制備減毒疫苗的候選毒株。

4 結(jié)論

綜上所述,在本項(xiàng)研究中通過(guò)對(duì)毒株在Vero-M 細(xì)胞中連續(xù)傳代后獲得了一株細(xì)胞適應(yīng)性更好、滴度更高的PEDV 減毒毒株。并且在感染懸浮適應(yīng)株的細(xì)胞系后病毒毒價(jià)更高。我們的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,PEDV-BJ-150 毒株的致病性降低,感染該毒株后,所有試驗(yàn)動(dòng)物均沒(méi)有死亡。并且說(shuō)明滴鼻感染可能也是PEDV 的一種感染方式。此外,全基因組分析的結(jié)果顯示PEDV-BJ-150 毒株中的氨基酸突變,這可能有助于病毒毒力減弱。因此,減毒菌株可能適用于疫苗制備。

補(bǔ)充表S1 見(jiàn)知網(wǎng)。

參考文獻(xiàn)

[1]Lee C. Porcine epidemic diarrhea virus: An emerging and reemerging

epizootic swine virus[J]. Virology Journal, 2015,

12:193.

[2]Li W T, Li H, Liu Y B, et al. New variants of porcine

epidemic diarrhea virus,China,2011[J]. Emerging Infectious

Diseases, 2012, 18(8):1350-1353.

[3]Liu Q, Wang H Y. Porcine enteric coronaviruses: an updated

overview of the pathogenesis, prevalence, and diagnosis[J].

Veterinary Research Communications,2021, 45(2-3):75-86.

[4]Liu X S, Lin C M, Annamalai T, et al. Determination of the

infectious titer and virulence of an original US porcine epidemic

diarrhea virus PC22A strain[J]. Veterinary Research, 2015,

46:109.

[5]Song D, Park B. Porcine epidemic diarrhoea virus: a

comprehensive review of molecular epidemiology, diagnosis,

and vaccines[J]. Virus Genes, 2012, 44(2):167-175.

[6]Weiss S, Witkowski P T, Auste B, et al. Hantavirus in bat,

Sierra Leone[J].Emerging Infectious Diseases, 2012, 18(1):

159-161.

[7]Zhang L P, Liu X S, Zhang Q L, et al. Biological

characterization and pathogenicity of a newly isolated Chinese

highly virulent genotype GIIa porcine epidemic diarrhea virus

strain[J].Archives of Virology, 2019, 164(5):1287-1295

[8]Bosch B J, van der Zee R, de Haan C A M, et al. The

coronavirus spike protein is a class I virus fusion protein:

structural and functional characterization of the fusion core

complex[J].Journal of Virology,2003, 77(16):8801-8811.

[9]Deng F, Ye G, Liu Q Q, et al. Identification and comparison of

receptor binding characteristics of the spike protein of two

porcine epidemic diarrhea virus strains [J]. Viruses,2016,

8(3):55.

[10]Kirchdoerfer R N, Bhandari M, Martini O, et al. Structure

and immune recognition of the porcine epidemic diarrhea virus

spike protein[J]. Structure ,2021, 29(4):385-392.

[11]Li W T, van Kuppeveld F J M, He, Q G, et al. Cellular entry

of the porcine epidemic diarrhea virus[J]. Virus Research

2016, 226:117-127.

[12]Shi W, Fan W L, Bai J, et al. TMPRSS2 and MSPL

facilitate trypsin-independent porcine epidemic diarrhea virus

replication in vero cells[J]. Viruses, 2017, 9(5):114.

[13]Shirato K, Matsuyama S, Ujike M, et al. Role of proteases in

the release of porcine epidemic diarrhea virus from infected cells

[J].Journal of Virology,2011, 85(15):7872-7880.

[14]Turlewicz-Podbielska H, Pomorska-Mol M. Porcine

coronaviruses: overview of the state of the art[J]. Virologica

Sinica, 2021, 36(5):833-851.

[15]Wicht O, Li W T, Willems L, et al. Proteolytic activation of

the porcine epidemic diarrhea coronavirus spike fusion protein

by trypsin in cell culture[J]. Journal of Virology, 2014, 88

(14):7952-7961.

[16]Chen F Z, Zhu Y X, Wu M Z, et al. Comparative genomic

analysis of classical and variant virulent parental/attenuated

strains of porcine epidemic diarrhea virus[J].Viruses, 2015, 7

(10):5525-5538.

[17]Chen P F, Wang K, Hou Y X, et al. Genetic evolution

analysis and pathogenicity assessment of porcine epidemic

diarrhea virus strains circulating in part of China during 2011-

2017 [J] . Infection,Genetics and Evolution:Journal of

Molecular Epidemiology and Evolutionary Genetics in

Infectious Diseases,2019, 69:153-165.

[18]Huang Y W, Dickerman A. W, Pineyro P, et al. Origin,

evolution, and genotyping of emergent porcine epidemic

diarrhea virus strains in the United States[J]. mBio, 2013, 4

(5):e00737-e00713.

[19]Su Y F, Hou Y X, Prarat M, et al. New variants of porcine

epidemic diarrhea virus with large deletions in the spike

protein, identified in the United States, 2016-2017[J] .

Archives of Virology, 2018, 163(9):2485-2489.

[20]Vlasova A N, Marthaler D, Wang Q H, et al. Distinct

characteristics and complex evolution of PEDV strains, North

America, May 2013-February 2014[J]. Emerging Infectious

Diseases, 2014, 20(10):1620-1628.

[21]Wang P, Zhu J Y, Liu X Z, et al. Isolation and recombinant

analysis of variants of porcine epidemic diarrhea virus strains

from Beijing, China[J].Virus Disease, 2019, 30(2): 294-301.

[22]Chattha K S, Roth J A, Saif L J. Strategies for design and

application of enteric viral vaccines[J]. Annual Review of

Animal Biosciences, 2015,3:375-395.

[23]Crawford K, Lager K M, Kulshreshtha V, et al. Status of

vaccines for porcine epidemic diarrhea virus in the United

States and Canada[J].Virus Research, 2016, 226:108-116.

[24]Hou Y X, Wang Q H. Emerging highly virulent porcine

epidemic diarrhea virus: molecular mechanisms of attenuation

and rational design of live attenuated vaccines [J] .

International Journal of Molecular Sciences, 2019, 20(21):

5478.

[25]Jang G, Won H, Lee D U, et al. Assessment of the safety and

efficacy of an attenuated live vaccine based on highly virulent

genotype 2b porcine epidemic diarrhea virus in nursing piglets

[J].Veterinary Microbiology, 2019, 231:120-128.

[26]Jung K, Wang Q H, Scheuer K A, et al. Pathology of US

porcine epidemic diarrhea virus strain PC21A in gnotobiotic

pigs[J]. Emerging Infectious Diseases, 2014, 20(4) :

662-665.

[27]Chen P F, Zhao X W, Zhou S T, et al. A virulent PEDV

strain FJzz1 with genomic mutations and deletions at the high

passage level was attenuated in piglets via serial passage in vitro

[J].Virologica Sinica, 2021, 36(5):1052-1065.

[28]Niu X Y, Wang Q H. Prevention and control of porcine

epidemic diarrhea: the development of recombination-resistant

live attenuated vaccines[J].Viruses, 2022, 14(6):1317.

[29]Zuniga S, Pascual-Iglesias A, Sanchez C. M, et al. Virulence

factors in porcine coronaviruses and vaccine design[J]. Virus

Research, 2016, 226:142-151.

[30]Wu Y, Li W, Zhou Q F, et al. Characterization and

pathogenicity of Vero cell-attenuated porcine epidemic diarrhea

virus CT strain[J].Virology Journal, 2019, 16(1):121.

[31]Lin C. M, Saif L. J, Marthaler D,et al. Evolution,

antigenicity and pathogenicity of global porcine epidemic

diarrhea virus strains[J]. Virus Research, 2016, 226:20-39.

[32]Lin C. M, Hou Y X, Marthaler D. G, et al. Attenuation of an

original US porcine epidemic diarrhea virus strain PC22A via

serial cell culture passage[J] . Veterinary Microbiology,

2017, 201:62-71.

[33]Tao J, Li B Q, Cheng J H , et al. Preparation and

characterization of an attenuated porcine epidemic diarrhea

virus strain by serial passaging[J].Archives of Virology, 2018,

163(11):2997-3004.

[34]Suzuki T, Terada Y, Enjuanes L, et al. S1 subunit of spike

protein from a current highly virulent porcine epidemic diarrhea

virus is an important determinant of virulence in piglets[J].

Viruses, 2018, 10(9):467.

[35]Sato T, Takeyama N, Katsumata A, et al. Mutations in the

spike gene of porcine epidemic diarrhea virus associated with

growth adaptation in vitro and attenuation of virulence in vivo

[J]. Virus Genes, 2011, 43(1):2-78.

[36]Oka T, Saif L. J, Marthaler D, et al. Cell culture isolation and

sequence analysis of genetically diverse US porcine epidemic

diarrhea virus strains including a novel strain with a large

deletion in the spike gene[J]. Veterinary Microbiology, 2014,

173( 3-4):258-269.

[37]Hou Y X, Meulia T, Gao X, et al. Deletion of both the

tyrosine-based endocytosis signal and the endoplasmic

reticulum retrieval signal in the cytoplasmic tail of spike protein

attenuates porcine epidemic diarrhea virus in pigs[J].Journal of

Virology, 2019, 93(2):e01758-e01718.

[38]Hou Y X, Lin C M, Yokoyama M, et al. Deletion of a 197-

amino-acid region in the N-terminal domain of spike protein

attenuates porcine epidemic diarrhea virus in piglets[J].Journal

of Virology, 2017, 91(14):e00227-e00217.

[39]Alonso C, Goede D P, Morrison R. B, et al. Evidence of

infectivity of airborne porcine epidemic diarrhea virus and

detection of airborne viral RNA at long distances from infected

herds[J].Veterinary Research, 2014, 45(1): 73.

[40]Gao Q, Zhao S S, Qin T, et al. Effects of inactivated porcine

epidemic diarrhea virus on porcine monocyte-derived dendritic

cells and intestinal dendritic cells[J]. Research in Veterinary

Science, 2016, 106:149-158.

[41]Li Y C, Wu Q X, Huang L L, et al. An alternative pathway of

enteric PEDV dissemination from nasal cavity to intestinal

mucosa in swine[J]]. Nature Communications, 2018, 9(1):

3811.

[42]Niederwerder M C, Nietfeld J. C, Bai J F, et al. Tissue

localization, shedding, virus carriage, antibody response, and

aerosol transmission of Porcine epidemic diarrhea virus

following inoculation of 4-week-old feeder pigs[J]. Journal of

Veterinary Diagnostic Investigation,2016, 28(6):671-678.

[43]Hou W, Kang W J, Li Y Y, et al. Dynamic dissection of

dynein and kinesin-1 cooperatively mediated intercellular

transport of porcine epidemic diarrhea coronavirus along

microtubule using single virus tracking[J].Virulence, 2021, 12

(1):615-629.

[44]Liu C, Tang J, Ma Y M, et al. Receptor usage and cell entry

of porcine epidemic diarrhea coronavirus [J]. Journal of

Virology, 2015, 89(11):6121-6125.

[45]Luo X L, Guo L J, Zhang J, et al. Tight Junction Protein

Occludin Is a Porcine Epidemic Diarrhea Virus Entry Factor

[J].Journal of Virology, 2017, 91(10):e00202-e00217.

(編輯:呂俊俐)

内丘县| 宿松县| 辉南县| 阳谷县| 安仁县| 军事| 叙永县| 远安县| 阿荣旗| 许昌市| 贺兰县| 洱源县| 上蔡县| 凤山市| 长治市| 瓦房店市| 岳阳市| 万源市| 易门县| 酒泉市| 长治市| 师宗县| 黔西县| 上虞市| 北京市| 伊吾县| 龙山县| 阜新市| 大邑县| 公安县| 北京市| 上高县| 法库县| 焦作市| 宾川县| 贵德县| 广西| 崇州市| 宁阳县| 齐齐哈尔市| 乐业县|