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棉花黃萎病發(fā)病和健康植株的根際微生物豐度分析

2024-07-20 00:00:00張德政楊軍柯興盛閆得朋鐘敏聶太禮
南方農(nóng)業(yè)·上旬 2024年5期
關(guān)鍵詞:實(shí)時(shí)熒光定量PCR

摘 要 為了明確根際微生物數(shù)量差異在棉花黃萎病發(fā)病中的作用,大田條件下,在兩塊棉田分別選取中棉所49和魯棉研28兩個(gè)品種,結(jié)合葉片癥狀與維管束癥狀對(duì)黃萎病進(jìn)行分級(jí),以發(fā)病棉花植株和緊鄰的健康植株作為試驗(yàn)材料,各選取30對(duì),采用水篩法檢測(cè)健株與病株之間病原菌的差異,構(gòu)建土壤根際細(xì)菌與真菌的標(biāo)準(zhǔn)樣品,利用實(shí)時(shí)熒光定量PCR的方法定量健株與病株根際總細(xì)菌和總真菌。結(jié)果表明:棉花根際更高的細(xì)菌數(shù)量和更低的真菌數(shù)量對(duì)黃萎病的發(fā)生有明顯的抑制作用,根際真菌數(shù)量的大幅增加與黃萎病的發(fā)生密切相關(guān)。

關(guān)鍵詞 棉花黃萎病;微菌核密度;根際微生物;實(shí)時(shí)熒光定量PCR

中圖分類(lèi)號(hào):S562 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A DOI:10.19415/j.cnki.1673-890x.2024.09.032

棉花黃萎病是由大麗輪枝菌(Verticilliun dahliae Kleb.)引起的一種典型土傳真菌病害,病原菌具有在土壤中存活時(shí)間長(zhǎng)、寄主范圍廣、變異頻繁、侵染過(guò)程復(fù)雜等特性,加之黃萎病抗性種質(zhì)缺乏,增加了病害防治難度[1-2]。根際微生物是指緊密附著在根際土壤中的微生物,主要包括細(xì)菌、真菌等,不僅是土壤的重要組成部分,更參與土壤中幾乎所有已知的生化反應(yīng)過(guò)程,在土壤有機(jī)質(zhì)分解、養(yǎng)分釋放及植物病害防控等方面起著重要作用[3-4]。如果將植株視為超級(jí)微生物,根際微生物的基因組要比植株大得多,也被稱(chēng)為植物的第二基因組[5]。作為土壤生態(tài)系統(tǒng)中最具有生命力的組分,根際微生物與植物相互作用密切,是影響植物健康的重要因素。根際能夠通過(guò)富集一些有益菌群并招募有益的功能細(xì)菌來(lái)保護(hù)植物免受某些病原體侵害,其中土壤細(xì)菌種群多樣性和細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)對(duì)土壤抑制真菌作用有重要影響[6]。此外,細(xì)菌與真菌相對(duì)豐度的變化不僅影響生態(tài)系統(tǒng)中土壤有機(jī)質(zhì)的分解速率和養(yǎng)分利用率,而且與植株罹患病害也有一定的關(guān)系[7]。Shi等研究發(fā)現(xiàn),健康土壤微生物組的特點(diǎn)是具有更高的細(xì)菌多樣性和更復(fù)雜的網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)[8]。

長(zhǎng)期以來(lái),由于傳統(tǒng)培養(yǎng)技術(shù)只能檢測(cè)到微生物種群的小部分,而絕大多數(shù)土壤微生物是不可培養(yǎng)的,結(jié)果很難反映土壤中原始的群落結(jié)構(gòu),導(dǎo)致根際微生物群落結(jié)構(gòu)組成的研究一直受到限制。隨著高通量分子技術(shù)的快速發(fā)展,獲取微生物組成的相對(duì)豐度變得更容易實(shí)現(xiàn),然而相對(duì)豐度的可靠性不足以反映物種豐度的真實(shí)情況[9]。實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)作為一種核酸定量的手段,具有線性關(guān)系好、特異性強(qiáng)、敏感性高和污染少等優(yōu)點(diǎn),在微生物生態(tài)學(xué)中逐漸得到廣泛應(yīng)用,不僅可以對(duì)微生物功能基因拷貝數(shù)進(jìn)行定量,還可以定量細(xì)菌、真菌等微生物類(lèi)群,解析微生物群落結(jié)構(gòu)組成及數(shù)量變化。本研究選取中棉所49、魯棉研28兩個(gè)品種緊鄰的健株與病株,比較在兩個(gè)品種中健康與發(fā)病植株病原菌微菌核數(shù)量差異,以及根際細(xì)菌與真菌豐度的差異,探究根際微生物數(shù)量與棉花黃萎病發(fā)生的相關(guān)性,為科學(xué)合理利用微生態(tài)調(diào)控手段防治棉花黃萎病提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1" 供試材料

1.1.1" 試驗(yàn)地概況

試驗(yàn)于2021年在江西省經(jīng)濟(jì)作物研究所試驗(yàn)基地進(jìn)行(江西九江)。分別在兩塊試驗(yàn)小區(qū)內(nèi)種植中棉所49、魯棉研28號(hào)兩個(gè)品種,小區(qū)面積為6.5 m×15.5 m,田間自然發(fā)病,生產(chǎn)管理措施同常規(guī)棉田。

1.1.2" 棉花黃萎病病情調(diào)查

在棉花黃萎病發(fā)病高峰期,葉片癥狀的調(diào)查參照國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)(NY/T 2952—2016),結(jié)合對(duì)維管束癥狀剖稈調(diào)查,進(jìn)行棉花黃萎病病害分級(jí)。維管束剖稈調(diào)查參照Vallad等[10]的標(biāo)準(zhǔn)(見(jiàn)表1)。不同病級(jí)棉花黃萎病維管束癥狀如圖1所示。

1.1.3" 樣品采集與處理

在兩塊棉田中選擇緊鄰的棉花黃萎病健株與病株,兩個(gè)品種各選取30對(duì)樣品。去除表層2 cm土壤,使用鐵鍬將棉花植株根部全部挖出,盡量保證根系的完整性,每個(gè)樣品單獨(dú)裝入無(wú)菌袋中,置于便攜式冰盒中帶回實(shí)驗(yàn)室。輕輕抖落根系外圍松散土壤,將剪刀在酒精燈火焰附近灼燒滅菌,將植物根部切成約2 cm的小片,在250 mL錐形瓶中加入10 g左右的根際樣品,加入6 mL無(wú)菌1×TE緩沖液,無(wú)菌水補(bǔ)充到200 mL,并在270 rpm下?lián)u1 h(室溫),用紗布過(guò)濾根懸液,在4 ℃下(離心力4 000×g)離心20 min,移去上清液,此步驟重復(fù)3次,將每個(gè)樣品的沉淀重新懸浮在剩余溶液中,轉(zhuǎn)移到2 mL離心管中,在14 000×g下離心20 min,儲(chǔ)存在-80 ℃超低溫冰箱用于后續(xù)DNA的提取和分析。

1.2" 土壤中大麗輪枝菌微菌核密度定量

在棉花植株根圍10 cm處的深耕層,用取土器在植株的四周均勻采取土樣,置于紙袋中,帶回實(shí)驗(yàn)室自然風(fēng)干3周,然后將土壤樣品磨碎,過(guò)0.425 mm篩,稱(chēng)取10 g土樣置于含有200 mL自來(lái)水的三角瓶中,175 rpm條件下震蕩1 h(室溫),在自來(lái)水下用20 μm和150 μm孔徑的篩子過(guò)篩(上面為150 μm,下面為20 μm)沖洗后,將留在20 μm篩網(wǎng)上的殘留物全部轉(zhuǎn)移到三角瓶中,用蒸餾水定容至10 mL,吸取1 mL均勻涂布于微菌核選擇分離培養(yǎng)基上,每個(gè)土樣涂布10皿,置于超凈工作臺(tái)風(fēng)干后,22 ℃下暗培養(yǎng)28 d,自來(lái)水細(xì)水沖洗的同時(shí)用手指輕輕抹掉培養(yǎng)皿表面的土粒,立體顯微鏡下計(jì)數(shù)培養(yǎng)皿上生長(zhǎng)的棉花黃萎病病原菌菌落數(shù),結(jié)果表示為CFU·g-1干土。

1.3" 標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立

1.3.1" 土壤根際微生物基因組DNA提取

120份土壤樣品均采用Power Soil DNA Isolation Kit試劑盒(MoBio, CA, USA)提取土壤基因組總DNA,提取流程按說(shuō)明書(shū)進(jìn)行。經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳法檢測(cè)DNA完整性,紫外分光光度法測(cè)定DNA濃度和純度,-80 ℃保存、備用。

1.3.2" 土壤DNA樣品目的基因擴(kuò)增

以土壤基因組DNA為模板,用Primer Premier 5.0軟件設(shè)計(jì)引物,引物交由華大基因科技股份有限公司合成,細(xì)菌16S rRNA基因擴(kuò)增引物為F515和R806;真菌擴(kuò)增采用引物為ITS1f和5.8s。由于真菌和細(xì)菌擴(kuò)增目的片段大小接近,采用相同的PCR反應(yīng)程序,擴(kuò)增所需要的酶采用Go Taq? Colorless Master Mix(Promega Corporation, Madison, Wisconsin, USA),PCR反應(yīng)混合物的體積為25 μL,包括Premix Go Taq? 12.5 μL,DNA模板1 μL,上游引物(10 μM)1 μL,下游引物(10 μM)1 μL,無(wú)菌雙蒸水10.5 μL。PCR反應(yīng)條件為:95 ℃預(yù)變性2 min,95 ℃變性45 s,根據(jù)引物的Tm值,細(xì)菌55 ℃退火45 s,真菌52 ℃退火45 s,72 ℃延伸30 s,共30個(gè)循環(huán),最后72 ℃延伸7 min(見(jiàn)表2)。

1.3.3" 重組質(zhì)粒的制備與鑒定

將上述PCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行1%瓊脂糖凝膠電泳,經(jīng)San Prep柱式DNA膠回收試劑盒純化后,連接至pEASY-T5 Zero Cloning Kit載體,轉(zhuǎn)化到大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞中,取部分菌液涂板培養(yǎng)過(guò)夜,挑選克隆接種于LB/Amp+的液體培養(yǎng)基中,200 rpm、37 ℃培養(yǎng)6 h左右,采用質(zhì)粒小提試劑盒提取質(zhì)粒,質(zhì)粒送華大基因科技股份有限公司測(cè)序確認(rèn),結(jié)果在Gen Bank上進(jìn)行Blast同源性比對(duì)分析。采用Nanodrop 2000紫外分光光度計(jì)測(cè)定重組質(zhì)粒濃度,利用重組質(zhì)粒的分子質(zhì)量與質(zhì)量濃度,計(jì)算出單位體積質(zhì)粒所含有的拷貝數(shù)濃度:

拷貝數(shù)濃度(copies/μL)=[(6.02×1023)×(質(zhì)粒DNA濃度ng/μL×10-9)]/(660×堿基數(shù))

1.3.4" 實(shí)時(shí)熒光定量PCR反應(yīng)體系的建立及優(yōu)化

將制備好的質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品稀釋到一定濃度,然后進(jìn)行10倍梯度稀釋?zhuān)玫?個(gè)稀釋度的標(biāo)準(zhǔn)模板,作為標(biāo)準(zhǔn)品。細(xì)菌16S rRNA基因的擴(kuò)增反應(yīng)使用Premix Ex TaqTM,真菌ITS區(qū)擴(kuò)增采用TB Green? Premix Ex TaqTM試劑盒,反應(yīng)條件參見(jiàn)表2。將標(biāo)準(zhǔn)樣品和一定質(zhì)量的待測(cè)土壤樣品DNA一起擴(kuò)增,每個(gè)樣品做3個(gè)平行,陰性模板對(duì)照加無(wú)菌雙蒸水,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出樣品中的基因拷貝數(shù),最后以基因copies·ng-1 DNA為單位進(jìn)行分析。

1.4" 數(shù)據(jù)分析

采用Excel、SPSS 17.0、Origin 9.0等軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)計(jì)算、處理和作圖。

2" 結(jié)果與分析

2.1" 標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立

細(xì)菌重組質(zhì)粒的最初質(zhì)量濃度為39.41 ng·μL-1,計(jì)算得質(zhì)粒拷貝數(shù)為8.19×109 copies·μL-1,稀釋到1.00×108 copies·μL-1后,再進(jìn)行10倍梯度稀釋得到濃度為1.00×104 copies·μL-1~1.00×108 copies·μL-1系列稀釋標(biāo)準(zhǔn)品,以檢測(cè)到的各濃度質(zhì)粒的Ct值為縱坐標(biāo),以質(zhì)粒拷貝數(shù)的對(duì)數(shù)值為橫坐標(biāo)做標(biāo)準(zhǔn)曲線,呈良好的線性關(guān)系,檢測(cè)范圍達(dá)到5個(gè)數(shù)量級(jí),回歸方程為y=-3.51x+42.13,相關(guān)系數(shù)R2=0.99,擴(kuò)增效率E=98%(見(jiàn)圖2A)。真菌重組質(zhì)粒的最初質(zhì)量濃度為46.23 ng·μL-1,計(jì)算得質(zhì)??截悢?shù)為9.73×109 copies·μL-1,稀釋到1.00×108 copies·μL-1后,再進(jìn)行10倍梯度稀釋得到濃度為1.00×104 copies·μL-1~1.00×108 copies·μL-1系列稀釋標(biāo)準(zhǔn)品,以檢測(cè)到的各濃度質(zhì)粒的Ct值為縱坐標(biāo),以質(zhì)粒拷貝數(shù)的對(duì)數(shù)值為橫坐標(biāo)做標(biāo)準(zhǔn)曲線,呈良好的線性關(guān)系,檢測(cè)范圍達(dá)到5個(gè)數(shù)量級(jí),回歸方程為y=-3.41x+41.32,相關(guān)系數(shù)R2=0.99,擴(kuò)增效率E=100%(見(jiàn)圖2B)。

2.2" 健康與發(fā)病棉花植株土壤中大麗輪枝菌微菌核數(shù)量

對(duì)來(lái)自2塊棉田的120份樣品進(jìn)行病害調(diào)查,發(fā)現(xiàn)抗病品種中棉所49黃萎病0~3級(jí)分別有30、6、15、9份樣品;耐病棉花品種魯棉研28黃萎病0~3級(jí)分別有30、9、12、9份。對(duì)土壤樣品中微菌核密度檢測(cè)發(fā)現(xiàn),微菌核密度范圍為0.0~40.5個(gè)微菌核·g-1土,大約95%的土樣微菌核密度小于20個(gè)微菌核·g-1土(見(jiàn)圖3)。種植魯棉研28的棉田大部分微菌核密度小于每克土8個(gè)微菌核,中棉所49棉田大部分樣品微菌核密度大于2個(gè)微菌核·g-1土,小于8個(gè)微菌核·g-1土。對(duì)棉花黃萎病不同病級(jí)間微菌核數(shù)量差異(見(jiàn)圖4)分析發(fā)現(xiàn),不同病級(jí)間微菌核數(shù)量差異不顯著,健康與發(fā)病棉花植株土壤微菌核數(shù)量相近,兩個(gè)試驗(yàn)棉田的中棉所49號(hào)和魯棉研28均發(fā)現(xiàn)了一些棉花植株土壤中微菌核數(shù)目較多,但植株仍然保持健康,葉片和維管束都未表現(xiàn)出癥狀。

2.3" 健康與發(fā)病棉株根際土壤中的細(xì)菌和真菌數(shù)量

試驗(yàn)結(jié)果表明,在中棉所49健康植株中根際細(xì)菌拷貝數(shù)的數(shù)值在1.65×107~4.28×107 copies·ng-1DNA之間,發(fā)病植株則在5.50×106~1.32×107 copies·ng-1DNA之間,健康根際細(xì)菌拷貝數(shù)的中位數(shù)達(dá)到3.11×107 copies·ng-1DNA,而病株則為1.76×107 copies·ng-1 DNA,存在顯著性差異(見(jiàn)圖5A);魯棉研28結(jié)果與中棉所49類(lèi)似,魯棉研28健康植株根際土壤中含有的細(xì)菌拷貝數(shù)為1.33×107~3.46×107 copies·ng-1DNA,病株則為4.56×106~1.15×107 copies·ng-1DNA,健康植株根際土壤細(xì)菌拷貝數(shù)中位數(shù)為2.94×107 copies·ng-1 DNA,病株為1.03×107 copies·ng-1DNA,健株較病株有更高的細(xì)菌拷貝數(shù)。

根際真菌數(shù)量恰好與細(xì)菌相反,在中棉所49健康植株根際土壤中真菌拷貝數(shù)范圍在9.01×106~2.53×107 copies·ng-1DNA,病株為1.17×107~3.12×107 copies·ng-1 DNA,健康植株與發(fā)病植株根際土壤真菌拷貝數(shù)的中位數(shù)分別為6.41×106 copies·ng-1DNA和2.48×107 copies·ng-1DNA(見(jiàn)圖5B);魯棉研28中健康植株根際土壤中真菌拷貝數(shù)范圍在3.44×106~9.16×106 copies·ng-1DNA,病株為8.86×106~3.18×107 copies·ng-1DNA,健康與發(fā)病植株的中位數(shù)分別為7.25×106 copies·ng-1DNA和2.27×107 copies·ng-1DNA,病株根際土壤真菌數(shù)量顯著高于健株(見(jiàn)圖5B)。

2.4" 健康與發(fā)病棉株根際土壤中的細(xì)菌與真菌數(shù)量的比值

中棉所49健康植株根際細(xì)菌與真菌的比值始終大于1,范圍在3.11~17.03之間,細(xì)菌數(shù)量遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于真菌數(shù)量(見(jiàn)圖5C);在魯棉研28健康植株中也存在這種規(guī)律,細(xì)菌與真菌的比值大于1,范圍在2.09~7.84之間(見(jiàn)圖5C)。然而在發(fā)病植株中的這個(gè)比值往往小于1,中棉所49的發(fā)病植株根際細(xì)菌與真菌的比值在0.24~0.83之間,魯棉研28發(fā)病植株根際細(xì)菌與真菌的比值在0.23~1.31之間。健康植株根際細(xì)菌數(shù)量占主導(dǎo)地位,是根際真菌的幾倍甚至十幾倍,在大麗輪枝菌侵染植株造成發(fā)病以后,真菌的數(shù)量顯著增加,根際土壤由原來(lái)的 “細(xì)菌型”土壤逐漸向“真菌型”土壤轉(zhuǎn)變,病害發(fā)生越來(lái)越嚴(yán)重。

3" 討論與結(jié)論

3.1" 討論

前人研究表明,微菌核密度與棉花黃萎病的發(fā)生密切相關(guān),微菌核作為棉花黃萎病菌抵抗不良環(huán)境而產(chǎn)生的一種休眠結(jié)構(gòu),由菌絲體變態(tài)形成,在沒(méi)有寄主存在的土壤中微菌核可存活超過(guò)10年,其數(shù)量對(duì)棉花黃萎病的動(dòng)態(tài)發(fā)生、流行起著至關(guān)重要的作用[11]。Ashworth等研究棉花黃萎菌的侵染閾值后指出,土壤中微菌核含有3.5個(gè)·g-1時(shí)就能造成棉株100%感病[12];Wei等研究發(fā)現(xiàn),增加微菌核的密度會(huì)導(dǎo)致黃萎病較高的發(fā)生率[13]。本研究的目的是比較棉花健株與病株之間根際微生物豐度的差異,為了盡量消除土壤中病原菌差異,采用成對(duì)選取相鄰的2株棉花,1株表現(xiàn)健康,1株有明顯的黃萎病癥狀,結(jié)果與預(yù)期一樣,健株與病株土壤中微菌核密度無(wú)顯著差異。

病原菌無(wú)顯著差異,發(fā)病狀況卻明顯不同,之前有研究表明,根際微生物在維持植物健康方面起到了重要作用[14-15]。那么,根際微生物豐度的差異與發(fā)病狀況到底存在何種關(guān)系?本研究發(fā)現(xiàn),在兩個(gè)品種中健株根際細(xì)菌數(shù)量遠(yuǎn)高于病株根際細(xì)菌數(shù)量,根際細(xì)菌數(shù)量與植株的健康呈正相關(guān)。宋旭紅等在對(duì)黃連根腐病的研究中證實(shí),罹患根腐病的黃連植株根際土壤細(xì)菌種群豐富度顯著低于健康黃連土(p<0.05),病株土樣中,細(xì)菌種群豐富度的顯著降低和種群多樣性的降低,有可能是導(dǎo)致黃連根腐病的一個(gè)重要原因[16]。賴(lài)寶春等研究發(fā)現(xiàn),根際土壤中的細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)發(fā)生改變及物種多樣性降低是辣椒枯萎病的一個(gè)重要特征[17]。

本研究表明,棉花黃萎病的發(fā)生總是伴隨根際真菌數(shù)量大幅度增加,且病株根際真菌(F)與細(xì)菌(B)的比值大于1,屬于“真菌型”(B/F?。┩寥溃欢】抵仓曛屑?xì)菌數(shù)量遠(yuǎn)遠(yuǎn)大于病株,屬于“細(xì)菌型”(B/F大)土壤?!凹?xì)菌型”根際土壤對(duì)棉花黃萎病有抑制作用,“真菌型”根際土壤則有利于黃萎病的發(fā)生。Dong等對(duì)三七土傳病害的研究也證明了這一點(diǎn),病害的發(fā)生導(dǎo)致真菌與細(xì)菌的比值呈增加的趨勢(shì)[18]。植物病害的發(fā)生往往伴隨微生物數(shù)量、組成及功能的改變,最終破壞了微生物群落的穩(wěn)定性,所以恢復(fù)健康穩(wěn)定的微生物群落可能比單純控制病原體能更有效地預(yù)防病害的發(fā)生,更高的土壤微生物豐度也能保護(hù)植物免受病原微生物的侵害[19]。提高根際有益微生物數(shù)量并保持其較高的活性從而構(gòu)成更穩(wěn)定的群落結(jié)構(gòu),對(duì)于保持生態(tài)平衡、維持土壤健康、控制棉花黃萎病或許是一個(gè)更有效的手段。

3.2" 結(jié)論

本研究克服了傳統(tǒng)培養(yǎng)方法的局限性,為分析根際微生物群落提供了一種快速、可靠而可重現(xiàn)的方法。利用此技術(shù),通過(guò)對(duì)中棉所49、魯棉研28兩個(gè)品種緊鄰植株間根際細(xì)菌、真菌的絕對(duì)定量結(jié)合對(duì)病原菌微菌核的檢測(cè),明確了健康植株根際屬于“細(xì)菌型”土壤,發(fā)病植株根際屬于“真菌型”土壤,“細(xì)菌型”土壤比“真菌型”土壤對(duì)棉花黃萎病有更大的抑制作用。

參考文獻(xiàn):

[1] KLOSTERMAN S J, ATALLAH Z K, VALLAD G E, et al. Diversity, pathogenicity, and management of Verticillium species[J]. Annual Review of Phytopathology, 2009, 47(1): 39-62.

[2] 張德政. 棉花黃萎病罹病與健康植株根際微生物組分析及生防菌篩選[D].北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院, 2020.

[3] 張愛(ài)民, 梁傳靜, 蓬桂華. 不同藥劑對(duì)辣椒疫病防治效果及根際微生物種群的影響[J]. 南方農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 2021, 52(8): 2211-2219.

[4] FINKEL O M, CASTRILLO G, PAREDES S H, et al. Understanding and exploiting plant beneficial microbes[J]. Current Opinion in Plant Biology, 2017, 38: 155-163.

[5] BERENDSEN R L, PIETERSE C M, BAKKER P A H M. The rhizosphere microbiome and plant health[J]. Trends in Plant Science, 2012, 17(8): 478-486.

[6] 黃穗萍, 金德才, 李其利, 等. 香蕉根際及非根際土壤細(xì)菌群落特征及共性規(guī)律研究[J]. 南方農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 2022, 53(5): 1253-1262.

[7] 沙月霞, 邢敏, 李明洋, 等. 微生物菌劑拌土對(duì)玉米莖基腐病的預(yù)防和促生效果[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學(xué), 2021, 49(4): 141-144,154.

[8] SHI W C, LI M C, WEI G S, et al. The occurrence of potato common scab correlates with the community composition and function of the geocaulosphere soil microbiome[J]. Microbiome, 2019, 7(1):1-18.

[9] WIDDER S, ALLEN R J, PFEIFFER T, et al. Challenges in microbial ecology: building predictive understanding of community function and dynamics[J]. The ISME Journal, 2016, 10(11): 2557-2568.

[10] VALLAD G E, QIN Q M, GRUBE R, et al. Characterization of race-specific interactions among isolates of Verticillium dahliae pathogenic on lettuce[J]. Phytopathology, 2006, 96(12): 1380-1387.

[11] WEI F, FAN R, DONG H T, et al. Threshold microsclerotial inoculum for cotton Verticillium wilt determined through wet-sieving and real-time quantitative PCR[J]. Phytopathology, 2015, 105(2): 220-229.

[12] ASHWORTH L J, WATERS J E, GEORGE A G, et al. Assessment of microsclerotia of Verticillium alboatrum in field soils[J]. Phytopathology, 1972, 62(7): 715.

[13] WEI F, SHANG W J, YANG J R, et al. Spatial pattern of Verticillium dahliae microsclerotia and cotton plants with wilt symptoms in commercial plantations[J]. PLoS One, 2015, 10(7): e0132812.

[14] SANTHANAM R, LUU V T, WEINHOLD A, et al. Native root-associated bacteria rescue a plant from a sudden-wilt disease that emerged during continuous cropping[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2015, 112(36): 5013-5020.

[15] BERENDSEN R L, VISMANS G, YU K, et al. Disease-induced assemblage of a plant-beneficial bacterial consortium[J]. The ISME journal, 2018, 12(6): 1496-1507.

[16] 宋旭紅, 王鈺, 李隆云, 等. 石柱黃連根腐病根際土壤細(xì)菌微生態(tài)研究[J]. 中國(guó)中藥雜志, 2017, 42(7): 1304-1311.

[17] 賴(lài)寶春, 戴瑞卿, 吳振強(qiáng), 等. 辣椒健康植株與患枯萎病植株根際土壤細(xì)菌群落多樣性的比較研究[J].福建農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 2019, 34(9): 1073-1080.

[18] DONG L L, XU J, FENG G Q, et al. Soil bacterial and fungal community dynamics in relation to Panax notoginseng death rate in a continuous cropping system[J]. Scientific Reports, 2016, 6(1):31802.

[19] MALLON C A, ELSAS J D V, SALLES J F. Microbial invasions: the process, patterns, and mechanisms[J]. Trends in Microbiology, 2015, 23(11): 719-729.

(責(zé)任編輯:易" 婧)

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