【摘 要】目的:研究自主跑步運(yùn)動(dòng)對(duì)APP/PS1雙轉(zhuǎn)基因AD(Alzheimer’s disease,AD)模型小鼠內(nèi)側(cè)前額葉皮質(zhì)(medial prefrontalcortex,mPFC)內(nèi)少突膠質(zhì)細(xì)胞數(shù)量,少突膠質(zhì)細(xì)胞分化、成熟以及髓鞘形成的作用。方法:將10月齡雄性轉(zhuǎn)基因AD模型小鼠隨機(jī)分為AD組和AD跑步(AD+RUN)組,另外將同月齡同窩生野生型小鼠隨機(jī)分為正常(WT)組和正常跑步(WT+RUN)組。其中跑步組于跑步籠內(nèi)給予3個(gè)月自主跑步鍛煉,AD組和WT組不做處理。跑步鍛煉結(jié)束后4組小鼠同時(shí)給予行為學(xué)測(cè)試,用Morris水迷宮檢測(cè)小鼠空間學(xué)習(xí)、記憶能力;用Y迷宮檢測(cè)小鼠工作記憶能力;用新物體識(shí)別實(shí)驗(yàn)檢測(cè)小鼠的認(rèn)知記憶功能;利用無偏體視學(xué)技術(shù)和免疫組化技術(shù)相結(jié)合精確定量小鼠大腦mPFC內(nèi)成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞(CC1+)總數(shù)量;同時(shí)分析小鼠mPFC內(nèi)邊緣皮層、Ⅱ、Ⅲ、Ⅵ、Ⅵ層成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞密度;利用免疫熒光和激光共聚焦顯微鏡分析小鼠mPFC內(nèi)未成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞(PDGFα+/Olig2+)密度、髓鞘標(biāo)志物髓鞘堿性蛋白(myelin basic protein,MBP)熒光強(qiáng)度。結(jié)果:AD+RUN組和WT組在Morris水迷宮、Y迷宮以及新物體識(shí)別實(shí)驗(yàn)中的表現(xiàn)優(yōu)于AD組,AD組mPFC內(nèi)MBP熒光強(qiáng)度明顯低于WT組(Plt;0.05),而AD+RUN組mPFC內(nèi)MBP熒光強(qiáng)度明顯大于AD組(Plt;0.001)。AD+RUN組mPFC內(nèi)CC1+細(xì)胞總數(shù)較AD組明顯增加(Plt;0.05)。AD+RUN組mPFC內(nèi)第Ⅲ層和第Ⅴ層CC1+細(xì)胞密度較AD組明顯增高(Plt;0.05),AD組mPFC內(nèi)第Ⅴ層和第Ⅵ層CC1+細(xì)胞密度較WT組明顯降低(Plt;0.05)。AD組mPFC內(nèi)PDGFα+/Olig2+細(xì)胞密度明顯大于WT組,而AD+RUN組mPFC內(nèi)PDGFα+/Olig2+細(xì)胞密度明顯小于AD組(Plt;0.05)。結(jié)論:自主跑步運(yùn)動(dòng)能促進(jìn)AD小鼠少突膠質(zhì)細(xì)胞分化和髓鞘形成,這可能與運(yùn)動(dòng)能改善APP/PS1轉(zhuǎn)基因AD小鼠的學(xué)習(xí)記憶能力有關(guān)。
【關(guān)鍵詞】阿爾茨海默?。蛔灾髋懿竭\(yùn)動(dòng);內(nèi)側(cè)前額葉皮質(zhì);少突膠質(zhì)細(xì)胞;髓鞘
【中圖分類號(hào)】R361.2 【文獻(xiàn)標(biāo)志碼】A 【收稿日期】2023-10-30
阿爾茨海默病(Alzheimer’s disease,AD)是老年癡呆最主要的發(fā)病類型之一[1-2],目前全世界發(fā)病人數(shù)多達(dá)5 000萬[3],而其中約三分之一病例發(fā)生在中國[4]。自1906年德國精神病學(xué)家阿洛伊斯·阿爾茨海默發(fā)現(xiàn)AD患者以來,多年來科學(xué)家圍繞AD發(fā)病機(jī)制提出了多種學(xué)說,目前普遍認(rèn)為與AD患者腦內(nèi)存在Aβ沉積和異常的磷酸化Tau蛋白、神經(jīng)炎癥等有關(guān)[5-7]。但AD病理變化復(fù)雜多變,圍繞這些學(xué)說所研發(fā)的藥物還未取得明顯治療效果[8-9]。因此找到AD有效的治療靶點(diǎn)仍迫在眉睫。深入探究AD的發(fā)病機(jī)制并以對(duì)AD認(rèn)知功能有改善的非藥物干預(yù)手段為切入點(diǎn)尋找新靶點(diǎn),是行之有效的方法。
近年來,跑步運(yùn)動(dòng)作為一種非藥物干預(yù)手段改善AD癥狀受到廣泛關(guān)注。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn)跑步運(yùn)動(dòng)對(duì)轉(zhuǎn)基因AD小鼠的空間學(xué)習(xí)記憶能力具有積極的改善作用[10-12]。但由于跑步運(yùn)動(dòng)作用廣泛,其改善AD認(rèn)知功能的作用靶點(diǎn)至今仍未完全闡明。
目前,少突膠質(zhì)細(xì)胞(oligodendrocyte,OL)和髓鞘的可塑性在AD發(fā)病機(jī)制逐漸受到重視[13-15]。研究表明,OL減少和髓鞘異常早于Aβ和Tau的病理改變[16],OL的可塑性障礙會(huì)影響小鼠記憶的鞏固[17]。OL是中樞神經(jīng)系統(tǒng)(central nervous system,CNS)形成髓鞘的特有細(xì)胞,其增殖、分化及轉(zhuǎn)化為髓鞘的過程對(duì)損傷髓鞘的再生和可塑性具有至關(guān)重要的影響[18-19]。2020年,Wang F等[20]發(fā)現(xiàn)促進(jìn)OL分化和髓鞘的形成后,能夠恢復(fù)小鼠空間記憶能力。研究報(bào)道也顯示跑步運(yùn)動(dòng)則能夠有效改善AD小鼠海馬內(nèi)有髓神經(jīng)纖維及髓鞘的丟失[10,12]。而跑步運(yùn)動(dòng)對(duì)AD小鼠腦內(nèi)少突膠質(zhì)增殖、分化是否有作用目前還未見報(bào)道。
內(nèi)側(cè)前額葉皮質(zhì)(medial prefrontal cortex,mPFC)作為最高階認(rèn)知功能的中心,其神經(jīng)纖維廣泛投射于與認(rèn)知功能密切相關(guān)的腦區(qū)(丘腦、杏仁核和海馬),也是AD患者大腦病理改變的主要受累區(qū)域之一[21-23]。影像學(xué)發(fā)現(xiàn)在AD 的早期階段,mPFC與其他腦區(qū)連接就已經(jīng)出現(xiàn)異常,其連接改變與認(rèn)知障礙密切相關(guān)[24]。AD患者尸檢結(jié)果及AD動(dòng)物模型研究也發(fā)現(xiàn)顯著的前額葉皮質(zhì)萎縮,以及明顯的執(zhí)行功能障礙[21-23]。2019 年Mathys H 等[13]在Nature 發(fā)表的針對(duì)44例AD患者前額葉皮質(zhì)單細(xì)胞測(cè)序的文章發(fā)現(xiàn),髓鞘形成相關(guān)過程在多種細(xì)胞類型中反復(fù)受到干擾,這表明前額葉皮質(zhì)內(nèi)髓鞘形成在AD病理生理學(xué)中具有關(guān)鍵作用。單核和單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組分析顯示:與正常大腦相比,AD前額葉皮質(zhì)中成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞減少[24]。那么跑步運(yùn)動(dòng)對(duì)AD小鼠mPFC區(qū)內(nèi)OL是否有作用,作用是什么,目前仍不清楚。
因此,本研究選取10 月齡APP/PS1 轉(zhuǎn)基因小鼠,跑步組給予3個(gè)月的自主跑步運(yùn)動(dòng)干預(yù),行為學(xué)結(jié)束后運(yùn)用體視學(xué)、免疫組化、免疫熒光等方法綜合研究跑步鍛煉對(duì)AD小鼠mPFC的OL的作用,為尋找干預(yù)AD的新手段提供新的靶點(diǎn)和切入點(diǎn)。
1 材料與方法
1.1 實(shí)驗(yàn)材料
1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 從南京大學(xué)模式動(dòng)物研究所購買AD(B6C3-Tg [APPswe+,PSEN1dE9+]85Dbo/NJU)小鼠,于重慶醫(yī)科大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心自行繁殖,經(jīng)過鑒定,選取APP和PS1基因均為陽性的雄性小鼠40 只,同窩野生型(APPswe- ,PSEN1dE9-)小鼠40只。本研究符合作者所在單位實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理委員會(huì)所制定的倫理學(xué)標(biāo)準(zhǔn)。
1.1.2 主要試劑和儀器 兔抗髓磷脂堿性蛋白單克隆抗體(rabbit monoclonal [ab218011] to myelin basic protein,MBP),小鼠抗APC 單克隆抗體(mouse monoclonal [ab109186] toanti-adenomatous polyposis coli clone,CC1),兔抗少突膠質(zhì)細(xì)胞轉(zhuǎn)錄因子2 單克隆抗體(rabbit monoclonal [ab109186] tooligodendrocyte transcription factor 2,Olig2),均來自英國Abcam公司,羊抗血小板衍生生長因子抗體(platelet-derived growthfactor receptor α[AF1062],PDGFα)購自美國Ramp;D systems公司,DyLight 488 驢抗羊IgG(HRP Donkey Anti-Goat IgG[A24231]),DyLight 488 驢抗兔lgG(HRP Goat Anti-RabbitIgG[A24221]),DyLight 549羊抗兔lgG(HRP Goat Anti-RabbitIgG[A23320])均購自中國Abbkine 公司,DAB 顯色液、SP-9002試劑盒、免疫組化專用PBS(0.01 mol/L)和枸櫞酸鈉粉來自中國北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司;TritonX-100,Tween-20 均購于美國Sigma 公司;十二水合磷酸氫二鈉(Na2HPO4·12H2O)、蔗糖、多聚甲醛粉脂購于中國成都市科龍化工試劑廠;二甲苯以及75%乙醇購自中國重慶川東化工有限公司化學(xué)試劑廠;蘇木素染液、抗熒光淬滅劑購自中國武漢博士德生物工程有限公司;0.9%氯化鈉注射液來自中國太極西南藥業(yè)股份有限公司;戊巴比妥鈉由德國進(jìn)口;ANY-maze Morris水迷宮分析系統(tǒng)來自美國Stoelting,ChemiDocTouch 成像系統(tǒng)來自美國Bio-rad;金屬浴購自中國杭州奧盛儀器有限公司;微量移液器來自德國Eppendorf公司;熒光顯微器來自日本Nikon instrument;體視學(xué)分析軟件購自美國MBF;超低溫冰箱采購于美國Thermo scientific。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 動(dòng)物分組 將40 只APP/PS1 轉(zhuǎn)基因小鼠隨機(jī)分為AD組(AD,n=20)和AD跑步組(AD+RUN,n=20),40只同窩野生型小鼠隨機(jī)分為正常組(WT,n=20)和正常跑步組(WT+RUN,n=20)。所有小鼠均在重慶醫(yī)科大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心獨(dú)立通氣籠(individually ventilated cage,IVC)系統(tǒng)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物房包間飼養(yǎng)。
1.2.2 動(dòng)物干預(yù)措施 AD+RUN和WT+RUN組給予自主跑步運(yùn)動(dòng)干預(yù),小鼠單獨(dú)飼養(yǎng)于帶有跑輪的鼠籠內(nèi),每周定時(shí)記錄1次跑步路程,淘汰極端值小鼠。AD和WT組老鼠在普通鼠籠單獨(dú)飼養(yǎng),不做任何干預(yù)。各組小鼠飼養(yǎng)在同一環(huán)境3個(gè)月,期間自由進(jìn)食飲水。
1.2.3 Morris水迷宮 Morris水迷宮用于評(píng)估空間學(xué)習(xí)和記憶能力[25]。剔除體弱和跑步量異常小鼠。在1個(gè)裝有混有白色鈦白粉自來水的圓桶(直徑1.5 m,高0.5 m)中,將桶壁分為4個(gè)象限,在每個(gè)象限隨機(jī)選取一個(gè)黑色圖案(★、●、■、?)貼紙作為標(biāo)記。第1天為可見平臺(tái)將平臺(tái)高于水面0.5~1.0 cm。將小鼠單獨(dú)放置于平臺(tái)學(xué)習(xí)15 s后,選取離平臺(tái)最遠(yuǎn)的兩個(gè)象限分別從桶壁放入水中,1 min之內(nèi)小鼠若未找到平臺(tái)則放置平臺(tái)上學(xué)習(xí)15 s后放入鼠籠。第2~6天為隱藏平臺(tái)期,將平臺(tái)置于水平面下0.5~1.0 cm左右,在這5 d中每天隨機(jī)安排4個(gè)象限順序?qū)⑿∈蠓湃胨羞M(jìn)行實(shí)驗(yàn)。自小鼠入水到找到平臺(tái)并停留3 s的時(shí)間記錄下來作為逃避潛伏期,第7天為空間探索實(shí)驗(yàn),撤掉平臺(tái),選取離目標(biāo)平臺(tái)最遠(yuǎn)的2個(gè)象限檢測(cè)小鼠1 min內(nèi)經(jīng)過目標(biāo)平臺(tái)所在位置次數(shù)和目標(biāo)象限內(nèi)的游泳時(shí)間比。用以評(píng)價(jià)小鼠的空間學(xué)習(xí)、記憶能力[25]。
1.2.4 Y迷宮 Y迷宮用于評(píng)估小鼠工作和參考記憶[26]。Y迷宮是一種以自發(fā)交替的模式測(cè)試小鼠工作和參考記憶的行為學(xué)手段,在實(shí)驗(yàn)開始前3 d控制小鼠飲食和體質(zhì)量。Y迷宮包括3個(gè)夾角均為120°的長窄臂(30 cm×10 cm×15 cm)中,固定一端為起始臂。前4 d實(shí)驗(yàn),每天開始前將小鼠背對(duì)通道從起始臂尾端放入Y迷宮中自由探索5 min以適應(yīng)環(huán)境,然后交替在其他兩臂尾端放置少量食物并貼上黑色壁紙。記錄小鼠從進(jìn)入起始臂后首次進(jìn)入正確臂的時(shí)間、進(jìn)入正確臂的次數(shù)和進(jìn)入正確臂花費(fèi)總時(shí)間,循環(huán)5次。最后一天則移除食物,在目標(biāo)臂貼上黑色壁紙,進(jìn)行2次自發(fā)交替實(shí)驗(yàn)。記錄小鼠5 min內(nèi)探索正確臂的時(shí)間和次數(shù)[26]。
1.2.5 新物體識(shí)別實(shí)驗(yàn)(novel object recognition,NOR) 通過記錄小鼠對(duì)新舊物體探索時(shí)間長短的行為學(xué)方法評(píng)價(jià)動(dòng)物的認(rèn)知記憶能力。在竭力排除光、聲音、氣味影響的前提下,小鼠在適應(yīng)白色塑料箱10 min后,箱內(nèi)對(duì)角線固定兩個(gè)相同形狀顏色的物體A,物體距離墻壁約10 cm。小鼠于箱體中間放入箱中,使其熟悉物體A 10 min。然后用30%~40%乙醇擦拭箱壁,消除小鼠糞便和尿液的味道,再放入下1只小鼠繼續(xù)適應(yīng)環(huán)境和物體。1 h后,將箱內(nèi)其中1個(gè)物體A換成與其顏色形狀完全不同的物體B,開始正式測(cè)試。用攝像頭和軟件記錄小鼠5 min內(nèi)探索行為。記下小鼠對(duì)新舊物體探索的時(shí)間和次數(shù)。并根據(jù)公式計(jì)算小鼠認(rèn)知指數(shù)(recognition index,RI):RI=新物體(/ 新物體+舊物體)×100%。
1.2.6 腦組織取材和標(biāo)本制備 每組隨機(jī)選取5只小鼠,記錄每只小鼠的耳標(biāo)號(hào)和體質(zhì)量,用1%現(xiàn)配的戊巴比妥麻醉劑腹腔給藥,麻醉后暴露小鼠心臟,依次用生理鹽水和4%多聚甲醛灌注后,于顱骨中剝離大腦,在4%多聚甲醛中浸泡至少24 h,蔗糖梯度(10%、20%、30%)依次脫水后,隨機(jī)選取一側(cè)大腦用冰凍切片機(jī)以50 μm或30 μm厚度進(jìn)行連續(xù)切片,然后等距抽樣。分別可得5組和8組組織切片,隨后浸泡于75%乙醇中,保存在-20 ℃冰箱以供取用。
1.2.7 免疫組化染色 每只小鼠選取1組50 μm的腦組織切片。PBS(0.01 mol/L)漂洗(10 min×3)后用PBS+T(0.3%Triton+0.1%Tween+PBS溶液配制而成)漂洗(15 min×3),隨后將腦片在室溫避光條件下浸泡于H2O2 20 min 中。PBS+T 漂洗(5 min×2),其后浸泡在枸櫞酸鹽溶液中熱水浴30 min進(jìn)行組織修復(fù);腦片恢復(fù)室溫后于PBS+T 中漂洗(5 min×2),再用0.1%山羊血清和PBS+T溶液配置的封閉液封閉切片,于37 ℃水浴鍋中封閉2 h。然后將切片置于小鼠來源CC1單克隆抗體(1∶1 000)4 ℃環(huán)境中孵育72 h,其間隨時(shí)搖晃切片防止貼壁;隨后將切片于PBS+T 漂洗(10 min×6),浸于羊抗小鼠lgG(SP-9002)(1∶10)溶液中,37 ℃水浴3 h,后于PBS+T漂洗(10 min×6),然后辣根過氧化酶在37 ℃水浴鍋孵育2 h,PBS漂洗(10 min×6),后于DAB避光顯色1~2 min。用大量去離子水洗凈(5 min×6)后,再用PBS漂洗(10 min×6),貼片,蘇木素核染(2 min),PBS洗凈,飽和Na2HPO4返藍(lán)30 s,PBS洗凈,梯度酒精脫水,二甲苯10 min×3;中性樹脂封片過夜。
1.2.8 定量成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞 在10倍物鏡下描繪mPFC邊界,于100倍油鏡下進(jìn)行切片厚度測(cè)量、抽樣,并按照體視學(xué)中體視框的禁線法則(圖1)對(duì)CC1+細(xì)胞進(jìn)行計(jì)數(shù)。根據(jù)光學(xué)分合法公式得到CC1+細(xì)胞總數(shù)[27]:
1.2.9 mPFC分區(qū)和CC1+細(xì)胞密度統(tǒng)計(jì) 在光學(xué)顯微鏡10倍物鏡下描繪mPFC分界,并描繪出mPFC各層的細(xì)胞帶分層(邊緣皮層、Ⅱ?qū)印ⅱ髮?、Ⅴ層、Ⅵ層)。然后?00倍鏡下每層隨機(jī)挑選3~5個(gè)視野,選取細(xì)胞核最清晰的高度進(jìn)行拍照。分別計(jì)算mPFC各層CC1+細(xì)胞密度。
1.2.10 免疫熒光染色并計(jì)數(shù)少突膠質(zhì)細(xì)胞前體細(xì)胞(oligodendrocyteprecursor cell,OPC) 每只小鼠選取1組30 μm的腦組織切片。將腦片于PBS(0.01 mol/L)漂洗(10 min×3);然后置于PBS+T溶液中漂洗(15 min×3);其后將腦片放入枸櫞酸鹽溶液中加熱30 min修復(fù)組織;待組織恢復(fù)室溫后PBS+T漂洗(5 min×2);用驢血清、牛血清,以及PBS+T溶液(1∶200∶1 000)配置的封閉液封閉切片,使用37 ℃水浴鍋封閉2 h。然后浸在羊抗PDGFα單克隆抗體溶液中于4 ℃環(huán)境中孵育48 h,其間隨時(shí)搖晃切片防止貼壁;PBS+T漂洗(10 min×6);驢抗羊(綠)和PBS+T(1:200)配置溶液,在37 ℃的水浴鍋中孵育2 h,此步驟及以后所有步驟均需避光;羊抗小鼠lgG(SP-9002)和PBS+T(1:10)配置溶液,在37 ℃的水浴鍋中孵育2 h;在Olig2和PBS+T(1:200)配置的溶液中,置于4 ℃環(huán)境中孵育48 h,其間隨時(shí)搖晃切片防止貼壁;PBS+T漂洗6次(10 min×6);羊抗兔(紅)和PBS+T(1∶200)配置溶液,在37 ℃的水浴鍋中孵育2 h;PBS+T漂洗(10 min×6);含DAPI 抗熒光淬滅劑封片,4 ℃冰箱避光保存留待觀察。在激光共聚焦顯微鏡下拍攝mPFC區(qū)大圖,利用imagej軟件畫框計(jì)數(shù),計(jì)算mPFC內(nèi)PDGFα+/Olig2+細(xì)胞和Olig2+細(xì)胞密度。
1.2.11 免疫熒光染色和MBP熒光強(qiáng)度 實(shí)驗(yàn)步驟同上,其中一抗為兔抗MBP和PBS+T(1∶5 000)配制而成;二抗為羊抗兔(綠)和PBS+T(1∶200)配制而成。在激光共聚焦顯微鏡下拍攝mPFC區(qū)大圖,利用imagej軟件分析MBP熒光強(qiáng)度值。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法
使用Stata17軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。數(shù)據(jù)均用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(x±s)表示,其中4組小鼠逃避潛伏期組間差異采用重復(fù)測(cè)量方差分析,其余的數(shù)據(jù)經(jīng)過正態(tài)性檢驗(yàn)且滿足方差齊后使用單因素方差分析,滿足正態(tài)分布但方差不齊用Welch’s ANOVA 檢驗(yàn)分析。不滿足正態(tài)分布的數(shù)據(jù)進(jìn)行Box-Cox轉(zhuǎn)換數(shù)據(jù)后滿足正態(tài)分布且滿足方差齊則采用單因素方差分析,轉(zhuǎn)換后仍不滿足正態(tài)分布則采用非參數(shù)檢驗(yàn)分析。檢驗(yàn)水準(zhǔn)α=0.05。
2 結(jié) 果
2.1 自主跑步運(yùn)動(dòng)顯著改善AD小鼠的認(rèn)知功能
2.1.1 Morris 水迷宮結(jié)果 AD 組(50.565±12.162)小鼠水迷宮逃避潛伏期顯著長于WT 組(32.625±16.324)(F=20.800,P=0.000;圖2A),為期3個(gè)月的自主跑步運(yùn)動(dòng)之后,AD+RUN組(38.735±13.906)小鼠水迷宮逃避潛伏期相較于AD 組明顯縮短(P=0.000;圖2A)。AD 組(0.455±0.472)的平均穿臺(tái)次數(shù)相較于WT 組(2.773±0.754)明顯減少,而AD+RUN組穿臺(tái)次數(shù)(2.364±1.164)相較于AD組顯著增多(F=13.910,P=0.000;圖2B)。AD 組小鼠(0.239±0.052)在水迷宮探索目標(biāo)象限游泳時(shí)間比顯著低于WT組(0.346±0.072),AD+RUN 組(0.351±0.102)的目標(biāo)象限游泳時(shí)間比顯著高于AD 組(F=4.080,P=0.023;圖2C)。水迷宮結(jié)果顯示經(jīng)過3個(gè)月的自主跑步運(yùn)動(dòng)之后,APP/PS1模型小鼠的空間學(xué)習(xí)和記憶能力得到了顯著的改善。
2.1.2 Y迷宮實(shí)驗(yàn)結(jié)果 WT組(0.630±0.114)自發(fā)交替實(shí)驗(yàn)準(zhǔn)確率明顯大于AD組(0.417±0.125)(F=9.590,P=0.000;圖2D),AD組小鼠自發(fā)交替實(shí)驗(yàn)進(jìn)入正確臂的準(zhǔn)確率相較于AD+RUN組(0.590±0.103)明顯減?。≒=0.005,圖2D)。Y迷宮結(jié)果顯示經(jīng)過3個(gè)月的自主跑步運(yùn)動(dòng)之后,APP/PS1模型小鼠的工作記憶和學(xué)習(xí)能力得到了顯著的改善。
2.1.3 NOR結(jié)果 WT組M(0.42)RI相較于AD組Md(0.34)顯著增高(χ2=13.925,P=0.000;圖2E);AD組小鼠的RI指數(shù)相較于AD+RUN 組Md(0.38)明顯降低(P=0.014,圖2E)。NOR結(jié)果顯示經(jīng)過3個(gè)月的自主跑步運(yùn)動(dòng)之后,APP/PS1模型小鼠的認(rèn)知記憶能力得到了改善。
行為學(xué)結(jié)果表明為期3個(gè)月自主跑步運(yùn)動(dòng)有助于改善APP/PS1小鼠的認(rèn)知功能。
2.2 自主跑步運(yùn)動(dòng)增加AD小鼠mPFC內(nèi)CC1+細(xì)胞總數(shù),主要增加mPFC內(nèi)第Ⅲ、Ⅴ層CC1+細(xì)胞密度
2.2.1 CC1+細(xì)胞體視學(xué)結(jié)果 對(duì)4組小鼠mPFC采用體視學(xué)方法定量確定統(tǒng)計(jì)CC1+細(xì)胞總數(shù)后發(fā)現(xiàn):與AD組(0.851±1.032×10-7)相比,AD+RUN 組(0.851±4.013×10-7)CC1+細(xì)胞總數(shù)明顯增加(F=5.390,P=0.025;圖3);但與WT組(0.851±4.601×10-7)相比,AD 組CC1+細(xì)胞總數(shù)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.341,圖3)。
2.2.2 mPFC各層CC1+細(xì)胞密度結(jié)果 4組小鼠mPFC分層后,mPFC 邊緣皮層和第Ⅱ?qū)觾?nèi)CC1+細(xì)胞密度分析,AD 組(22.652±5.648,22.651±5.648)與WT 組(34.323±6.499,34.323±6.499)相比,mPFC邊緣皮層和第Ⅱ?qū)觾?nèi)CC1+細(xì)胞密度無明顯差異(F=1.253,P=0.400;F=0.363,P=0.500;圖4A、B),AD 組與AD+RUN 組(48.078±20.698,48.078±20.698)相比,mPFC邊緣皮層和第Ⅱ?qū)觾?nèi)CC1+細(xì)胞密度差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.089、P=0.461,圖4A、B)。
mPFC第Ⅲ層內(nèi)CC1+細(xì)胞密度分析結(jié)果:AD組(37.069±2.375)與WT 組(41.512±1.035)之間CC1+細(xì)胞密度差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=4.562,P=0.365;圖4C),AD+RUN組(52.066±1.876)CC1+細(xì)胞密度相較于AD組明顯增高(P=0.012,圖4C)。
mPFC 第Ⅴ層內(nèi)CC1+細(xì)胞密度分析,AD 組(57.765±6.648)CC1+細(xì)胞密度與WT組(77.336±9.189)相比明顯降低(F=3.689,P=0.028;圖4D),AD組CC1+細(xì)胞平均密度相較于AD+RUN組(76.902±6.402)明顯降低(P=0.030,圖4D)。
對(duì)mPFC第Ⅵ層內(nèi)CC1+細(xì)胞密度分析,AD組(84.248±11.987)CC1+細(xì)胞密度與WT組(115.610±1.852)相比明顯降低(F=2.379,P=0.041;圖4E),AD 組CC1+細(xì)胞密度相較于AD+RUN組(107.118±26.067)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.114,圖4E)。
以上結(jié)果提示與WT組相比,AD組小鼠mPFC內(nèi)總的成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞數(shù)量沒有改變。而自主跑步運(yùn)動(dòng)可顯著增加APP/PS1小鼠mPFC內(nèi)成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞數(shù)量。對(duì)mPFC分層進(jìn)行CC1+細(xì)胞密度統(tǒng)計(jì)后,本課題組發(fā)現(xiàn)與WT組相比,AD組小鼠mPFC內(nèi)Ⅴ、Ⅵ層成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞密度明顯降低,而3個(gè)月的自主跑步運(yùn)動(dòng)可以明顯增加APP/PS1小鼠mPFC內(nèi)第Ⅲ層和第Ⅴ層成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞密度。
2.3 自主跑步運(yùn)動(dòng)對(duì)mPFC內(nèi)PDGFα+和Olig2+細(xì)胞密度的影響
對(duì)4組小鼠mPFC腦區(qū)PDGFα和Olig2的免疫熒光染色(圖5A)并計(jì)算mPFC內(nèi)PDGFα+/Olig2+細(xì)胞和Olig2+細(xì)胞密度,本研究發(fā)現(xiàn):AD組(12.968±1.501)相較于WT組(6.477±1.453)mPFC內(nèi)PDGFα+/Olig2+細(xì)胞密度明顯上升(F=15.800,P=0.005;圖5B),AD 組mPFC 內(nèi)PDGFα+/Olig2+細(xì)胞密度相較于AD+RUN組(5.886±0.537)明顯升高(P=0.003,圖5B)。AD 組(38.250±2.969)小鼠對(duì)比WT 組(37.149±5.060)和AD+RUN組(32.476±3.248)小鼠mPFC中Olig2+細(xì)胞密度均無明顯差異(F=1.940,P=1.000,P=0.547;圖5C)。AD 組(0.342±0.062)小鼠mPFC內(nèi)PDGFα+/Olig2+細(xì)胞與Olig2+細(xì)胞密度比值明顯高于WT 組(0.174±0.025)(F=8.030,P=0.023;圖5D)和AD+RUN組(0.184±0.034)(P=0.032,圖5D)。
2.4 自主跑步運(yùn)動(dòng)明顯增加mPFC內(nèi)MBP熒光強(qiáng)度
對(duì)4組小鼠mPFC進(jìn)行MBP免疫熒光染色(圖6A),結(jié)合Image J軟件定量分析結(jié)果顯示:AD組(15.010±3.795)相較于WT組(36.100±11.618),mPFC內(nèi)MBP熒光強(qiáng)度值明顯降低(F=6.860,P=0.015;圖6B),并且AD組mPFC內(nèi)MBP熒光強(qiáng)度值明顯低于AD+RUN 組(31.611±9.412)(P=0.042,圖6B)。以上結(jié)果表明:AD 組小鼠與WT組相比較,mPFC 內(nèi)MBP表達(dá)量呈明顯降低,表明AD小鼠mPFC區(qū)存在髓鞘的丟失,而自主跑步運(yùn)動(dòng)可明顯延緩AD小鼠大腦mPFC區(qū)髓鞘的丟失。
3 討 論
AD作為一種隨著年齡增加而患病風(fēng)險(xiǎn)直線上升的神經(jīng)退行性疾病,其發(fā)病率呈現(xiàn)逐年上升趨勢(shì)。據(jù)世界衛(wèi)生組織統(tǒng)計(jì),世界上平均每3 s就會(huì)有1人被診斷為癡呆癥[1,3]。研究顯示目前癡呆癥已經(jīng)超過腫瘤,成為全球第5大死因[1,3,5],因此作為癡呆癥的主要類型的AD,不僅能帶走人們的記憶,還是一位致命“殺手”。然而世界衛(wèi)生組織在《降低認(rèn)知衰退和癡呆癥風(fēng)險(xiǎn)指南》也指出保持身體活動(dòng)與大腦健康有關(guān),通過運(yùn)動(dòng)、步行、騎車、做家務(wù)等方式可以降低認(rèn)知衰退風(fēng)險(xiǎn)。跑步運(yùn)動(dòng)多為一種簡(jiǎn)便易行的運(yùn)動(dòng)方式。研究證實(shí)了通過跑步鍛煉對(duì)AD患者和AD模型小鼠的認(rèn)知功能均具有改善作用[10-12],因此提出跑步鍛煉是改善AD認(rèn)知功能障礙的一種有效治療或者預(yù)防手段。而在目前研究中,跑步鍛煉模式上主要是被動(dòng)跑臺(tái)運(yùn)動(dòng)和自主轉(zhuǎn)輪跑步運(yùn)動(dòng)[27-28]。而有研究認(rèn)為自主轉(zhuǎn)輪跑步運(yùn)動(dòng)因?yàn)樾枰軐?shí)驗(yàn)方式影響,小鼠必須在帶有轉(zhuǎn)輪的籠子里單獨(dú)飼養(yǎng),這種獨(dú)居的飼養(yǎng)模式會(huì)給動(dòng)物造成壓力和焦慮感,從而影響跑步運(yùn)動(dòng)對(duì)大腦的保護(hù)作用[29-31]。但是也有研究發(fā)現(xiàn)被動(dòng)跑臺(tái)運(yùn)動(dòng)是利用跑步機(jī)對(duì)小鼠人為地進(jìn)行強(qiáng)迫跑步運(yùn)動(dòng),其間部分可能還會(huì)伴隨電擊,也會(huì)給動(dòng)物造成壓力,從而影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果的準(zhǔn)確性[31]。然而在自然界的野生小鼠中有研究觀察到其會(huì)使用跑輪自發(fā)奔跑[32]。由此有研究認(rèn)為小鼠自主轉(zhuǎn)輪跑步鍛煉方式較被動(dòng)跑臺(tái)鍛煉更接近于自然跑步模式[33]。鑒于此,本研究采用了自主轉(zhuǎn)輪跑步運(yùn)動(dòng)對(duì)10月齡的APP/PS1小鼠進(jìn)行了為期3個(gè)月的跑步干預(yù),在Morris水迷宮實(shí)驗(yàn)中本研究發(fā)現(xiàn)自主跑步運(yùn)動(dòng)確實(shí)改善了AD小鼠的學(xué)習(xí)和記憶能力,甚至在檢測(cè)工作記憶的Y 迷宮中,自主跑步運(yùn)動(dòng)對(duì)AD小鼠也有很明顯的改善作用。因此,本研究進(jìn)一步表明長期的自主跑步運(yùn)動(dòng)確實(shí)對(duì)AD小鼠認(rèn)知功能具有積極的改善作用。
目前尚不清楚自主跑步運(yùn)動(dòng)對(duì)AD小鼠認(rèn)知功能的改善作用的機(jī)制是什么。多項(xiàng)研究表明學(xué)習(xí)和記憶的形成需要髓鞘的形成[14,20,34-35]。Wang F等[20]還發(fā)現(xiàn)在針對(duì)老年小鼠認(rèn)知能力下降的研究中,脫髓鞘和髓鞘的更新減少與空間學(xué)習(xí)和記憶密切相關(guān),使用氯馬斯汀治療促進(jìn)小鼠髓鞘的形成可以改善衰老小鼠的記憶功能。而AD患者和AD動(dòng)物模型小鼠腦內(nèi)均存在廣泛的髓鞘丟失[36],由于脫髓鞘也會(huì)破壞神經(jīng)元傳導(dǎo),甚至導(dǎo)致功能性大腦區(qū)域的破壞和隨之而來的神經(jīng)元的變性丟失[37]。因此AD大腦內(nèi)的髓鞘丟失在AD認(rèn)知功能的改變中具有重要作用。mPFC作為調(diào)控認(rèn)知功能、注意力、情緒等功能的高級(jí)腦區(qū),在記憶的鞏固和檢索中具有重要作用[38]。mPFC腦區(qū)內(nèi)的神經(jīng)纖維廣泛投射于與認(rèn)知功能密切的腦區(qū)(丘腦、杏仁核和海馬),因此其信息傳輸障礙或者鏈接中斷也會(huì)導(dǎo)致認(rèn)知功能下降[23,38]。那么AD小鼠mPFC中髓鞘是否發(fā)生了改變還鮮少有研究。在本研究中,本課題組利用MBP對(duì)髓鞘進(jìn)行免疫熒光染色,觀察mPFC內(nèi)髓鞘的變化。結(jié)果發(fā)現(xiàn)在出現(xiàn)認(rèn)知功能改變的APP/PS1小鼠的mPFC 腦區(qū)內(nèi)MBP 表達(dá)量顯著降低。這與Wang Z等[39]之前發(fā)現(xiàn)的研究相似。而先前的研究表明促進(jìn)AD模型小鼠海馬和皮層內(nèi)髓鞘形成能夠改善AD 模型小鼠的認(rèn)知功能[36]。Chao FL 等[40]和Zhang L等[41]利用體視學(xué)對(duì)APP/PS1小鼠的海馬和白質(zhì)區(qū)域的有髓神經(jīng)纖維進(jìn)行定量分析,發(fā)現(xiàn)4個(gè)月的跑步運(yùn)動(dòng)干預(yù)延緩了AD認(rèn)知功能下降,并增強(qiáng)了AD模型小鼠海馬和白質(zhì)內(nèi)有髓神經(jīng)纖維的體積。然而目前尚沒有證據(jù)表明跑步運(yùn)動(dòng)對(duì)AD模型小鼠mPFC區(qū)域內(nèi)髓鞘的影響。本研究發(fā)現(xiàn)3個(gè)月的自主跑步運(yùn)動(dòng)顯著增強(qiáng)AD小鼠mPFC中髓鞘相關(guān)蛋白MBP免疫熒光的強(qiáng)度,這提示跑步運(yùn)動(dòng)可能促進(jìn)AD小鼠mPFC內(nèi)髓鞘的形成。因此,本課題組推測(cè)跑步運(yùn)動(dòng)對(duì)mPFC髓鞘形成的有益作用可能是其延緩AD小鼠認(rèn)知功能衰退的重要基礎(chǔ)之一。
那么是什么原因?qū)е翧PP/PS1小鼠mPFC髓鞘受損,而跑步運(yùn)動(dòng)改善其髓鞘形成的原因是什么呢?成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞是CNS的髓鞘形成細(xì)胞,對(duì)損傷髓鞘的可塑性和修復(fù)具有重要意義[42]。研究表明OL特別容易受到Aβ的影響從而死亡[43]。本研究通過免疫組化(CC1+)和體視學(xué)相結(jié)合的方式定量了成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞的總數(shù)量,本研究發(fā)現(xiàn)AD組對(duì)比WT組小鼠,mPFC區(qū)域成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞總數(shù)沒有改變。本研究的結(jié)果與Lau SF等[24]的結(jié)果不同。根據(jù)AD患者前額葉皮質(zhì)區(qū)域的單核轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù),發(fā)現(xiàn)了該區(qū)域內(nèi)成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞的減少。而前額葉皮質(zhì)包括mPFC、眶額皮層(orbitofrontal cortex,OFC)、背外側(cè)前額葉皮層(dorsolateral prefrontalcortex,dlPFC)、腹外側(cè)前額葉皮質(zhì)(ventrolateralprefrontal cortex,vlPFC)以及腹側(cè)前額葉皮層(ventralmedial prefrontal cortex,vmPFC)5 個(gè)亞區(qū),每個(gè)亞區(qū)分別行使不同的功能[44-45],因此整體的區(qū)域水平從某種層面來說并不能反映各部分變化的不同。雖然Wu YL等[46]對(duì)APP/PS1海馬內(nèi)成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞數(shù)量定量分析顯示其數(shù)量顯著減少,但是所用動(dòng)物月齡不一致,區(qū)域不一樣,或許導(dǎo)致實(shí)驗(yàn)結(jié)果也不一致。在隨后的實(shí)驗(yàn)中,本課題組對(duì)mPFC區(qū)域進(jìn)行分層測(cè)量,發(fā)現(xiàn)該區(qū)域內(nèi)AD組第V、Ⅵ層成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞密度顯著低于WT組。這提示mPFC成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞的丟失可能主要集中在mPFC的第Ⅴ、Ⅵ層細(xì)胞帶。由于前額葉皮質(zhì)區(qū)域每一層的神經(jīng)元組成類型不同,功能也可能是不同[47]。有研究發(fā)現(xiàn)前額葉皮質(zhì)的認(rèn)知功能與其邊緣下區(qū)(infralimbicprefrontal cortex,IL)第Ⅲ層椎體神經(jīng)元和杏仁核的耦合密不可分[48-49],此外,前額葉皮質(zhì)區(qū)域也會(huì)接受一些其他核團(tuán)的投射。海馬區(qū)域投射范圍限制較大,而mPFC作為接受其投射的重要腦區(qū)之一,來自海馬的纖維投射也主要終止于Ⅲ層,從而影響記憶的加工處理[50]。前額葉皮層第Ⅵ層是丘腦密集反饋投射的起源,Ⅵ層表達(dá)煙堿受體的神經(jīng)元在注意力方面起著至關(guān)重要的作用從而影響執(zhí)行功能的改變[51]??傊琺PFC 內(nèi)不同層次的區(qū)域?qū)φJ(rèn)知的影響并不相同。因此,推測(cè)在不同的疾病模型中,mPFC每一層OL的改變是不一致的。例如針對(duì)精神分裂癥患者的尸檢研究表明,前額葉皮質(zhì)第V層OL密度相較于其他皮層明顯降低[52]。而文獻(xiàn)也指出大腦中的OL對(duì)運(yùn)動(dòng)高度敏感,4周自主轉(zhuǎn)輪運(yùn)動(dòng)會(huì)促進(jìn)青年人前額葉皮質(zhì)內(nèi)OL 的生成[53]。Lou YM等[54]發(fā)現(xiàn)跑步運(yùn)動(dòng)可以顯著增加慢性不可預(yù)測(cè)應(yīng)激大鼠模型中mPFC內(nèi)OL的數(shù)量。在本研究中,發(fā)現(xiàn)3個(gè)月的跑步運(yùn)動(dòng)增加了APP/PS1小鼠mPFC內(nèi)總的成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞數(shù)量,尤其是顯著增加該模型mPFC區(qū)域第Ⅲ層和第Ⅴ層成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞數(shù)量。因此,推測(cè)自主跑步運(yùn)動(dòng)可增加APP/PS1小鼠mPFC 中成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞的數(shù)量,并且這種改變具有區(qū)域異質(zhì)性,主要體現(xiàn)在自主跑步運(yùn)動(dòng)作用于mPFC區(qū)域第Ⅲ層和第Ⅴ層的OL。
此外,OPC作為CNS成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞的前體細(xì)胞,在整個(gè)生物的生命過程中持續(xù)增殖并分化成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞[55],從而促進(jìn)髓鞘的形成[55-56]。研究表明AD患者大腦內(nèi)的髓鞘碎片,可以通過刺激OPCs的增殖、促進(jìn)OPCs向成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞分化,從而進(jìn)行髓鞘的再生及修復(fù)[57-59]。本研究使用免疫熒光雙標(biāo)發(fā)現(xiàn),與WT 組相比,AD 組小鼠mPFC 內(nèi)PDGFα+/Olig2+ 細(xì)胞密度、PDGFα+/Olig2+ 細(xì)胞和Olig2+細(xì)胞密度的比值顯著增加。這表明AD小鼠mPFC內(nèi)的OPCs或許存在增殖。本研究的結(jié)果與Behrendt G等[57]和Ferreira S等[58]的結(jié)果相似,有研究發(fā)現(xiàn)APP/PS1小鼠海馬內(nèi)中存在OPCs的增殖[59-63]。成人腦內(nèi)OPCs 數(shù)量通常情況下會(huì)保持一定的穩(wěn)態(tài),當(dāng)出現(xiàn)髓鞘損傷則會(huì)刺激OPCs進(jìn)一步增殖、分化,從而修復(fù)髓鞘。因此本研究推測(cè)AD小鼠mPFC腦區(qū)內(nèi)同樣存在普遍的OPCs 增殖現(xiàn)象。與此同時(shí),本研究先前的結(jié)果表明雖然OPC增多,但是AD組小鼠mPFC髓鞘并沒有得到修復(fù),結(jié)合OPC到髓鞘的再生過程時(shí)間并不長[60-61],因此本研究推測(cè)AD小鼠從OPC到成熟的少突膠質(zhì)細(xì)胞的分化出現(xiàn)了障礙。本研究同樣也發(fā)現(xiàn)經(jīng)過3個(gè)月的自主跑步運(yùn)動(dòng),AD+RUN組小鼠mPFC內(nèi)在少突膠質(zhì)細(xì)胞系細(xì)胞總數(shù)沒改變的情況下,OPCs密度顯著降低,而成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞顯著增加。因此本研究推測(cè)自主跑步運(yùn)動(dòng)有可能會(huì)促進(jìn)AD小鼠mPFC內(nèi)OPCs向成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞的分化。
綜上所述,本研究結(jié)果表明,為期3個(gè)月的自主跑步運(yùn)動(dòng)可能通過促進(jìn)AD 小鼠mPFC 內(nèi)OPCs 向成熟少突膠質(zhì)細(xì)胞分化,進(jìn)一步促進(jìn)該區(qū)域內(nèi)髓鞘的形成,從而改善APP/PS1轉(zhuǎn)基因小鼠的認(rèn)知功能。本課題組目前的研究結(jié)果,為AD病理進(jìn)程中mPFC的OL和髓鞘的病理變化提供了進(jìn)一步證據(jù),為跑步運(yùn)動(dòng)改善AD認(rèn)知功能提供了結(jié)構(gòu)基礎(chǔ),有望為將來開發(fā)AD新的治療方法提供新靶點(diǎn)和新思路。
參考文獻(xiàn)
[1] Association A. 2012 Alzheimer’s disease facts and figures[J]. Alzheimers
Dement,2012,8(2):131-168.
[2] Silva MVF,Loures CMG,Alves LCV,et al. Alzheimer’s disease:
risk factors and potentially protective measures[J]. J Biomed Sci,2019,
26(1):33.
[3] Serge G,Claire W,Stijn S,et al. World Alzheimer Report 2022:
Life after diagnosis: Navigating treatment,care and support[M]. London,
England: Alzheimer’s Disease International,2022.
[4] Ren RJ,Qi JL,Lin SH,et al. The China alzheimer report 2022[J].
Gen Psychiatr,2022,35(1):e100751.
[5] Thies W,Bleiler L. 2021 Alzheimer’s disease facts and figures[J].
Alzheimer’s amp; dementia:the journal of the Alzheimer’s Association,
2021,17(3):327-406.
[6] Tiwari S,Atluri V,Kaushik A,et al. Alzheimer’s disease:pathogenesis,
diagnostics,and therapeutics[J]. Int J Nanomedicine,2019,14:
5541-5554.
[7] Calsolaro V,Edison P. Neuroinflammation in Alzheimer’s disease:
current evidence and futuredirections[J]. Alzheimers Dement,2016,12
(6):719-732.
[8] van Dyck CH,Swanson CJ,Aisen P,et al. Lecanemab in early Alzheimer’s
disease[J]. N Engl J Med,2023,388(1):9-21.
[9] Dhillon S. Aducanumab:first approval[J]. Drugs,2021,81(12):
1437-1443.
[10] Zhang L,Tang W,Chao FL,et al. Four-month treadmill exercise
prevents the decline in spatial learning and memory abilities and the
loss of spinophilin-immunoreactive puncta in the hippocampus of APP/
PS1 transgenic mice[J]. Neurobiol Dis,2020,136:104723.
[11] Zhu L,F(xiàn)an JH,Chao FL,et al. Running exercise protects
spinophilin-immunoreactive puncta and neurons in the medial prefrontal
cortex of APP/PS1 transgenic mice[J]. J Comp Neurol,2022,530(6):
858-870.
[12] 朱穎瓊. 老年APP/PS1轉(zhuǎn)基因小鼠牙周帶髓神經(jīng)纖維和少突
膠質(zhì)細(xì)胞變化的體視學(xué)研究以及跑步運(yùn)動(dòng)對(duì)其的影響[D]. 重慶:重
慶醫(yī)科大學(xué),2016.
Zhu YQ. Stereological study of the changes of the myelinated nerve
fibers and the oligodendrocytes in the dentate gyrus of the Aged APP/
PS1 transgenetic mice and the effects of running exercise on them[D].
Chongqing:Chongqing Medical University,2016.
[13] Mathys H,Davila-Velderrain J,Peng ZY,et al. Single-cell transcriptomic
analysis of Alzheimer’s disease[J]. Nature,2019,570(7761):
332-337.
[14] Blanchard JW,Akay LA,Davila-Velderrain J,et al. APOE4 impairs
myelination via cholesterol dysregulation in oligodendrocytes[J].
Nature,2022,611(7937):769-779.
[15] Chen WT,Lu A,Craessaerts K,et al. Spatial transcriptomics and
in situ sequencing to study Alzheimer’s disease[J]. Cell,2020,182(4):
976-991.
[16] Desai MK,Sudol KL,Janelsins MC,et al. Triple-transgenic Alzheimer’s
disease mice exhibit region-specific abnormalities in brain
myelination patterns prior to appearance of amyloid and tau pathology
[J]. Glia,2009,57(1):54-65.
[17] Steadman PE,Xia F,Ahmed M,et al. Disruption of oligodendrogenesis
impairs memory consolidation in adult mice[J]. Neuron,2020,
105(1):150-164.
[18] Monje M. Myelin plasticity and nervous system function[J]. Annu
Rev Neurosci,2018,41:61-76.
[19] Stadelmann C,Timmler S,Barrantes-Freer A,et al. Myelin in the
central nervous system:structure,function,and pathology[J]. Physiol
Rev,2019,99(3):1381-1431.
[20] Wang F,Ren SY,Chen JF,et al. Myelin degeneration and diminished
myelin renewal contribute to age-related deficits in memory[J].
Nat Neurosci,2020,23(4):481-486.
[21] Igarashi M,Ma KZ,Gao F,et al. Disturbed choline plasmalogen
and phospholipid fatty acid concentrations in Alzheimer’s disease prefrontal
cortex[J]. J Alzheimers Dis,2011,24(3):507-517.
[22] Woodward MC,Rowe CC,Jones G,et al. Differentiating the frontal
presentation of Alzheimer’s disease with FDG-PET[J]. J Alzheimers
Dis,2015,44(1):233-242.
[23] Jobson DD,Hase Y,Clarkson AN,et al. The role of the medial
prefrontal cortex in cognition,ageing and dementia[J]. Brain Commun,
2021,3(3):fcab125.
[24] Lau SF,Cao H,F(xiàn)u AKY,et al. Single-nucleus transcriptome
analysis reveals dysregulation of angiogenic endothelial cells and neuroprotective
glia in Alzheimer’s disease[J]. Proc Natl Acad Sci U S A,
2020,117(41):25800-25809.
[25] Vorhees CV,Williams MT. Morris water maze:procedures for assessing
spatial and related forms of learning and memory[J]. Nat Protoc,
2006,1(2):848-858.
[26] Kraeuter AK,Guest PC,Sarnyai Z. et al. The Y-maze for assessment
of spatial working and reference memory in mice[J]. Methods Mol
Biol,2019,1916:105-111.
[27] De Miguel Z,Khoury N,Betley MJ. et al. Exercise plasma boosts
memory and dampens brain inflammation via clusterin[J]. Nature,2021,
600(7889):494-499.
[28] Feng S,Wu,CY,Zou P,et al. High-intensity interval training
ameliorates Alzheimer’s disease-like pathology by regulating astrocyte
phenotype-associated AQP4 polarization[J]. Theranostics,2023,13(10):
3434-3450.
[29] Svensson M,Andersson E,Manouchehrian O,et al. Voluntary
running does not reduce neuroinflammation or improve non-cognitive
behavior in the 5xFAD mouse model of Alzheimer’s disease[J]. Scientific
reports,2020,10(1):1346.
[30] Wierczeiko A,Gammel L,Radyushkin K. et al. Voluntary wheel
running did not alter gene expression in 5xfad mice,but in wild-type
animals exclusively after one-day of physical activity[J]. Cells,2021,
10(3):693.
[31] Guo SS,Huang YR,Zhang Y,et al. Impacts of exercise interventions
on different diseases and organ functions in mice[J]. J Sport Health
Sci,2020,9(1):53-73.
[32] Meijer JH,Robbers Y. Wheel running in the wild[J]. Proc Biol
Sci,2014,281(1786):20140210.
[33] De Bono JP,Adlam D,Paterson DJ,et al. Novel quantitative phenotypes
of exercise training in mouse models[J]. Am J Physiol Regul Integr
Comp Physiol,2006,290(4):926-934.
[34] Pan S,Mayoral SR,Choi HS,et al. Preservation of a remote fear
memory requires new myelin formation[J]. Nat Neurosci,2020,23(4):
487-499.
[35] Bonetto G,Belin D,Káradóttir RT. Myelin:a gatekeeper of
activity-dependent circuit plasticity? [J]. Science,2021,374(6569):
eaba6905.
[36] Chen JF,Liu K,Hu B,et al. Enhancing myelin renewal reverses
cognitive dysfunction in a murine model of Alzheimer’s disease[J]. Neuron,
2021,109(14):2292-2307.
[37] Lee Y,Morrison BM,Li Y,et al. Oligodendroglia metabolically
support axons and contribute to neurodegeneration[J]. Nature,2012,
487:443-448.
[38] Euston DR,Gruber AJ,McNaughton BL. The role of medial prefrontal
cortex in memory and decision making[J]. Neuron,2012,76(6):
1057-1070.
[39] Wang Z,Zhang YL,F(xiàn)eng WX,et al. Miconazole promotes cooperative
ability of a mouse model of alzheimer disease[J]. Int J Neuropsychopharmacol,
2022,25(11):951-967.
[40] Chao FL,Zhang L,Zhang Y,et al. Running exercise protects
against myelin breakdown in the absence of neurogenesis in the hippocampus
of AD mice[J]. Brain Res,2018,1684:50-59.
[41] Zhang L,Chao FL,Luo YM,et al. Exercise prevents cognitive
function decline and demyelination in the white matter of APP/PS1
transgenic AD mice[J]. Curr Alzheimer Res,2017,14(6):645-655.
[42] Duncan ID,Radcliff AB,Heidari M,et al. The adult oligodendrocyte
can participate in remyelination[J]. Proc Natl Acad Sci USA,2018,
115(50):11807-11816.
[43] Desai MK,Mastrangelo MA,Ryan DA,et al. Early oligodendrocyte/
myelin pathology in Alzheimer’s disease mice constitutes a novel
therapeutic target[J]. Am J Pathol,2010,177(3):1422-1435.
[44] Gao L,Liu S,Gou LF,et al. Single-neuron projectome of mouse
prefrontal cortex[J]. Nat Neurosci,2022,25(4):515-529.
[45] Dixon ML,Thiruchselvam R,Todd R,et al. Emotion and the prefrontal
cortex:an integrative review[J]. Psychol Bull,2017,143(10):
1033-1081.
[46] Wu YL,Zhang Y,Chao FL,et al. The changes of oligodendrocytes
in the hippocampus of APP/PS1 transgenic mice:a stereological
study[J]. Chin J Neuroanat,2020,36(1):1-8.
[47] Song CH,Jr Moyer JR. Layer- and subregion-specific differences
in the neurophysiological properties of rat medial prefrontal cortex pyramidal
neurons[J]. J Neurophysiol,2018,119(1):177-191.
[48] Murray EA,F(xiàn)ellows LK. Prefrontal cortex interactions with the
amygdala in primates[J]. Neuropsychopharmacology,2022,47(1):163-
179.
[49] Manoocheri K,Carter AG. Rostral and caudal basolateral amygdala
engage distinct circuits in the prelimbic and infralimbic prefrontal
cortex[J]. Elife,2022,11:e82688.
[50] Aggleton JP,Wright NF,Rosene DL,et al. Complementary patterns
of direct amygdala and hippocampal projections to the macaque
prefrontal cortex[J]. Cereb Cortex,2015,25(11):4351-4373.
[51] Proulx E,Piva M,Tian MK,et al. Nicotinic acetylcholine receptors
in attention circuitry:the role of layer Ⅵ neurons of prefrontal cortex
[J]. Cell Mol Life Sci,2014,71(7):1225-1244.
[52] Kolomeets NS,Uranova NA. Reduced number of satellite oligodendrocytes
of pyramidal neurons in layer 5 of the prefrontal cortex in
schizophrenia[J]. Eur Arch Psychiatry Clin Neurosci,2022,272(6):
947-955.
[53] Tomlinson L,Huang PH,Colognato H. Prefrontal cortex NG2 glia
undergo a developmental switch in their responsiveness to exercise[J].
Dev Neurobiol,2018,78(7):687-700.
[54] Luo YM,Xiao Q,Wang J,et al. Running exercise protects oligodendrocytes
in the medial prefrontal cortex in chronic unpredictable
stress rat model[J]. Transl Psychiatry,2019,9(1):322.
[55] Trotter J,Karram K,Nishiyama A. NG2 cells:properties,progeny
and origin[J]. Brain Res Rev,2010,63(1/2):72-82.
[56] Hill RA,Li AM,Grutzendler J. Lifelong cortical myelin plasticity
and age-related degeneration in the live mammalian brain[J]. Nat Neurosci,
2018,21(5):683-695.
[57] Behrendt G,Baer K,Buffo A,et al. Dynamic changes in myelin
aberrations and oligodendrocyte generation in chronic amyloidosis in
mice and men[J]. Glia,2013,61(2):273-286.
[58] Ferreira S,Pitman KA,Wang SW,et al. Amyloidosis is associated
with thicker myelin and increased oligodendrogenesis in the adult
mouse brain[J]. J Neurosci Res,2020,98(10):1905-1932.
[59] Hughes EG,Kang SH,F(xiàn)ukaya M,et al. Oligodendrocyte progenitors
balance growth with self-repulsion to achieve homeostasis in the
adult brain[J]. Nat Neurosci,2013,16(6):668-676.
[60] Ettle B,Reiprich S,Deusser J,et al. Intracellular alphasynuclein
affects early maturation of primary oligodendrocyte progenitor
cells[J]. Mol Cell Neurosci,2014,62:68-78.
[61] Kuhn S,Gritti L,Crooks D,et al. Oligodendrocytes in development,
myelin generation and beyond[J]. Cells,2019,8(11):1424.
[62] Xu JH,Zhang LY,Li MY,et al. TREM2 mediates physical
exercise-promoted neural functional recovery in rats with ischemic
stroke via microglia-promoted white matter repair[J]. J Neuroinflammation,
2023,20(1):50.
[63] Zheng J,Sun X,Ma CL,et al. Voluntary wheel running promotes
myelination in the motor cortex through Wnt signaling in mice[J]. Mol
Brain,2019,12(1):85.
(責(zé)任編輯:周一青)
重慶醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào)2024年8期