摘""要:植物絡(luò)合素合酶(PCS)是催化植物絡(luò)合素(PC)合成的關(guān)鍵酶,PC可通過絡(luò)合作用減輕重金屬對植物的毒害。土壤重金屬污染增加木薯食用安全風(fēng)險,對木薯絡(luò)合素合酶基因MePCS1進行功能分析,對木薯重金屬減控研究具有重要意義。本研究通過PCR技術(shù)克隆了SC8木薯品種的MePCS1基因的編碼區(qū),全長為1512"bp,共編碼503個氨基酸。蛋白序列分析表明:MePCS1蛋白為親水性蛋白,含有41個磷酸化位點和2個糖基化位點,不含有信號肽。構(gòu)建系統(tǒng)進化樹發(fā)現(xiàn),木薯MePCS1蛋白與橡膠樹的PCS蛋白親緣關(guān)系最近。利用qPCR技術(shù)分析表明,MePCS1基因在莖中表達量最高;在木薯塊根發(fā)育過程中,MePCS1基因在塊根膨大期的表達量最高;鉛(Pb)脅迫誘導(dǎo)MePCS1基因表達。MePCS1基因能提高BY4741酵母對Pb的耐受能力。本研究結(jié)果為進一步解析MePCS1基因功能特性及其對木薯的Pb減控機制提供新的信息。
關(guān)鍵詞:植物絡(luò)合素合酶;重金屬Pb脅迫;酵母表達中圖分類號:S533""""""文獻標(biāo)志碼:A
Cloning,"Expression"Analysis,"and"Functional"Verification"of"the"MePCS1"Gene"in"Cassava
LIANG"Baojuan1,2,3,"GE"Yujian1,2,3,"HOU"Jingyi1,2,"ZHANG"Huimin1,2,3,"REN"Zhixin1,2,3,"GENG"Mengting1,"WANG"Yajie2,3,"GUO"Jianchun2,3*,"YAO"Yuan2,3*
1."College"of"Tropical"Agriculture"and"Forestry,"Hainan"University,"Haikou,"Hainan"570228,"China;"2."Institute"of"Tropical"Bioscience"and"Biotechnology,"Chinese"Academy"of"Tropical"Agricultural"Sciences"/"Key"Laboratory"of"Biology"and"Genetic"Resources"of"Tropical"Crops,"Ministry"of"Agriculture"and"Rural"Affairs"/"Hainan"Institute"for"Tropical"Agricultural"Resources"/"Key"Laboratory"for"Biology"and"Genetic"Resources"of"Tropical"Crops"of"Hainan"Province,"Haikou,"Hainan"571101,"China;"3."Sanya"Research"Institute,"Chinese"Academy"of"Tropical"Agricultural"Sciences"/"National"key"Laboratory"for"Tropical"Crop"Breeding,"Sanya,"Hainan"572000,"China
Abstract:"Phytochelatin"synthase"(PCS)"is"a"key"enzyme"that"catalyzes"the"synthesis"of"phytochelatin"(PC)."PC"can"reduce"the"toxicity"of"heavy"metals"to"plants"through"complexation."Heavy"metal"pollution"in"soil"increases"the"risk"of"cassava"food"safety."It"is"of"great"significance"to"study"the"reduction"and"control"of"heavy"metals"in"cassava"by"analyzing"the"function"of"MePCS1"gene."In"this"study,"the"coding"region"of"MePCS1"gene"in"cassava"variety"SC8"was"cloned"by"PCR."The"full"length"was"1512"bp,"encoding"503"amino"acids."Protein"sequence"analysis"showed"that"MePCS1nbsp;protein"was"a"hydrophilic"protein,"containing"41"phosphorylation"sites"and"2"glycosylation"sites,"without"signal"peptide."The"phylogenetic"tree"showed"that"the"cassava"MePCS1"protein"had"the"closest"relationship"with"the"PCS"protein"of"the"rubber"tree."The"qPCR"analysis"showed"that"the"MePCS1"gene"had"the"highest"expression"level"in"the"stem."During"the"development"of"cassava"roots,"the"expression"level"of"MePCS1"gene"was"the"highest"in"the"root"enlargement"period."Lead"(Pb)"stress"induced"MePCS1"gene"expression."MePCS1"gene"can"improve"the"tolerance"of"BY4741"yeast"to"Pb."The"results"of"this"study"provide"new"information"for"further"analysis"of"the"functional"characteristics"of"the"MePCS1"gene"and"its"mechanism"for"reducing"Pb"in"cassava"tuber"roots.
Keywords:"phytochelatin"synthases;"heavy"metal"Pb"stress;"yeast"expression
DOI:"10.3969/j.issn.1000-2561.2024.11.001
木薯(Manihot"esculenta"Crantz),又稱樹薯、南洋薯、木番薯,為大戟科多年生作物,是世界上10億人口的主要食物[1]。隨著人類工業(yè)化進程的發(fā)展,土壤重金屬污染已經(jīng)成為全球的重大問題,危害著人類的身體健康和作物的糧食安全。木薯作為熱帶地區(qū)重要的經(jīng)濟作物與糧食作物,具有淀粉含量高、耐貧瘠等特點。塊根為木薯淀粉的主要貯藏器官,木薯受到重金屬污染后,金屬離子容易在木薯塊根中積累,導(dǎo)致木薯生長受限,產(chǎn)量降低。因此解析木薯響應(yīng)重金屬關(guān)鍵的基因,減少重金屬在木薯塊根的積累,對創(chuàng)制木薯新種質(zhì)、提高木薯食用的安全性具有十分重要的意義。
植物受到金屬脅迫后,植物絡(luò)合素(phytochelatins,"PC)可與金屬結(jié)合形成較穩(wěn)定的復(fù)合物,減輕金屬的毒害。植物絡(luò)合素的結(jié)構(gòu)一般為(γ-Glu-Cys)n-X(n=2~11,X為Gly、Clu、Cln、Ser和β-Ala的形式存在),以(γ-Glu-Cys)n-Gly的結(jié)構(gòu)較為常見,其中半胱氨酸Cys中(-SH)巰基可以與重金屬結(jié)合具有解毒功能。植物絡(luò)合素合酶(phytochelatin"synthases,"PCS)可催化GSH合成PC。目前對擬南芥[2]、豆類[3]、煙草[4]、水稻[5]的PCS研究較為深入,過表達PCS基因可增強植物對重金屬的耐受性。通過分析不同物種中PCS基因的啟動子,發(fā)現(xiàn)其含有多個順式作用的元件,說明PCS基因的表達受多種因素調(diào)控[6]。如轉(zhuǎn)錄因子MYB40可以誘導(dǎo)AtPCS1的表達,在As2+脅迫條件下擬南芥中AtMYB40被誘導(dǎo)表達,AtMYB40正調(diào)控AtPCS1表達[7];水稻中Hg2+和Pb2+金屬離子可以誘導(dǎo)OsPCS7表達,Cd2+與Zn2+金屬離子可以誘導(dǎo)OsPCS9表達[8];番茄葉片在Pb脅迫下,SlPCS1基因表現(xiàn)出較高的表達水平[9]。
為了研究木薯MePCS1基因在金屬脅迫下的功能,本研究克隆了木薯MePCS1基因,并對其進行生物信息學(xué)分析、基因表達的組織特異性分析、不同發(fā)育時期的塊根表達模式分析、重金屬Pb脅迫條件下的表達分析以及在酵母中的功能驗證分析。為進一步研究MePCS1基因參與金屬Pb脅迫的耐受性,減少重金屬脅迫對木薯的危害提供新的依據(jù)。
1.1""材料
供試材料華南8號木薯(SC8)由中國熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院提供;酵母感受態(tài)BY4741、大腸桿菌感受態(tài)DH5α均購自上海唯地生物技術(shù)有限公司;RNA提取試劑盒購自成都福際生物技術(shù)有限公司;MonScript?"RTIII"Super"Mix"with"dsDNase(Two-Step)反轉(zhuǎn)錄試劑盒購自莫納生物科技有限公司;PrimeSTAR"HS"(Premix)DNA"Polymerase高保真酶購自TaKaRa公司。
1.2""方法
1.2.1""MePCS1基因的克隆""提取SC8木薯總RNA,利用反轉(zhuǎn)錄試劑盒將總RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA。根據(jù)木薯MePCS1基因CDS區(qū)設(shè)計特異性引物(表1),以SC8木薯cDNA為模板,利用PrimeSTAR"HS(Premix)DNA"Polymerase高保真酶擴增MePCS1基因。反應(yīng)體系為:PrimeSTAR"HS(Premix)DNA"Polymerase"25"μL,MePCS1-F/R引物1"μL,cDNA模板2"μL,ddH2O補充至總體積為50"μL。反應(yīng)程序為:94"℃預(yù)變性4"min;98"℃變性20"s,61"℃退火30"s,72"℃延伸1"min"40"s,35個循環(huán)。PCR產(chǎn)物于4"℃下保存。
1.2.2""木薯MePCS1蛋白理化性質(zhì)分析""對MePCS1的蛋白序列進行生物信息學(xué)分析,所用軟件見表2。
1.2.3""MePCS1基因的表達模式分析""以田間種植6個月的SC8木薯塊根、須根、莖、葉柄、成熟葉、嫩葉、頂芽、腋芽等8個組織部位為材料,提取其總RNA,反轉(zhuǎn)錄成cDNA,熒光定量PCR(qRT-PCR)分析MePCS1基因的表達模式?;诒緦嶒炇仪捌诘腟C8木薯塊根形成期(種植后的80"d)、塊根膨大期(種植后的130、180"d)、塊根成熟期(種植后的230、280"d)的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù),對MePCS1基因在塊根不同發(fā)育時期的表達模式進行分析。
利用1.2"mmol/L"Pb(NO3)2處理種植60"d的SC8木薯組培苗移栽幼苗,分別脅迫處理0、3、6、12、24、48"h。提取處理后材料的總RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA,熒光定量PCR(qRT-PCR)分析MePCS1基因的表達模式,反應(yīng)體系和程序參照LU等[10]的方法。使用SPSS"26軟件進行鄧肯單因素多樣本差異顯著性方差分析。
1.2.4""MePCS1基因功能驗證""(1)MePCS1基因酵母表達載體構(gòu)建。以擴增出MePCS1基因PCR產(chǎn)物為模板,根據(jù)pYES2載體多克隆位點與MePCS1基因CDS序列設(shè)計含有同源重組接頭引物PYES2-MePCS1-F/R(表1),通過PCR將重組接頭引入該基因CDS區(qū)的兩端,純化回收目的片段。利用同源重組方法將純化MePCS1目的片段與線性化的酵母表達載體pYES2進行重組,利用pYES2載體檢測引物PYES2-檢測-F/R進行菌液PCR鑒定,選取陽性的大腸菌液進行測序。將測序比對正確的陽性克隆菌液進行擴大培養(yǎng)提取重組質(zhì)粒,新質(zhì)粒命名pYES2-MePCS1。將重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化到酵母感受態(tài)BY4741中,PCR鑒定選出陽性菌斑,用于后續(xù)實驗。
1.2.5""MePCS1基因在酵母中的功能驗證""將含有pYES2-MePCS1酵母菌液與空載pYES2酵母菌液分別在SD-Ura液體培養(yǎng)基中擴大培養(yǎng)后,將初始OD600調(diào)至0.4,并逐級稀釋5個濃度梯度(10–1、10–2、10–3、10–4、10–5);各取4"μL在含有50"mmol/L"Pb2+的SD-Ura(含有2%葡萄糖)固體培養(yǎng)基上進行點板,30"℃倒置培養(yǎng)3"d,觀察含pYES2-MePCS1與空載pYES2酵母菌的生長情況。
2.1""木薯MePCS1基因的克隆
通過Blast搜索木薯基因組數(shù)據(jù)庫,獲得木薯MePCS1基因序列,設(shè)計特異性引物克隆該基因的編碼區(qū)(CDS)。以SC8木薯組培苗的cDNA為模板,PCR擴增獲得預(yù)期大小目的條帶(圖1)。將目的條帶進行Sanger測序,發(fā)現(xiàn)MePCS1基因的CDS序列全長為1512"bp,共編碼503個氨基酸。
2.2""MePCS1蛋白的理化性質(zhì)分析
對木薯MePCS1蛋白的基本理化性質(zhì)分析發(fā)現(xiàn),其原子組成為C2456H3890N670O730S33,理論等電點為6.04,分子質(zhì)量為(Mw)55.54"kDa。該蛋白含有20種氨基酸殘基,Leu(L)的含量最高(58個),占11.5%;Trp(W)的含量最低(8個),占1.6%。在氨基酸正/負總殘基中,帶負電荷殘基(Asp+Glu)總數(shù)為61個,帶正電荷殘基(Arg+Lys)總數(shù)為53個。
MePCS1蛋白的總親疏水性平均值為0.136,推測該蛋白為親水性蛋白。磷酸化位點預(yù)測分析結(jié)果發(fā)現(xiàn),該蛋白含有41個磷酸化位點,其中Ser位點含量較高,為27個。糖基化位點預(yù)測發(fā)現(xiàn),MePCS1蛋白可能含有2個糖基化位點。信號肽分析發(fā)現(xiàn),MePCS1含有信號肽的可能性為0.0021,因此推測該蛋白不含有信號肽。
2.3""系統(tǒng)進化樹分析
為了分析MePCS1蛋白與不同物種的PCS蛋白的親緣關(guān)系,使用DNAMAN軟件分析MePCS1與橡膠樹(Hevea"brasiliensis,"XP_021678313.2)、麻瘋樹(Jatropha"curcas,"XP_012085275.1)、蓖麻(Ricinus"communis,"XP_015581239.2)、烏桕(Triadica"sebifera,nbsp;ARV78463.1)、南歐大戟(Euphorbia"peplus,"WCJ38289.1)、楊柳(Salix"brachista,"kAB5527907.1)、毛楊果(Populus"trichocarpak,"AI5566116.1)、毛白楊(Populus"tomentosa,"kAG6750280.1)、大棗(Ziziphus"jujuba,"XP_015891301.1)、苦楝(Melia"azedarach,"kAJ4726927.1)、柑橘(Citrus"sinensisk,"DO60421.1)、芒果(Mangifera"indica,"XP_044491381.1)、長葉黃麻(Corchorus"olitorius,"OMP11136.1)、傘花草(Herrania"umbratica,"XP_021281249.1)、木槿(Hibiscus"syriacus,"XP_039005780.1)、棉花(Gossypium"barbadense,"kAB2057009.1)等其他16個物種的PCS蛋白序列進行比對,其氨基酸序列一致性為90.1%~"78.9%,其中N端區(qū)域高度保守(圖2)。MePCS1蛋白與橡膠樹PCS蛋白的同源性最高,達到90.1%。使用MEGE軟件進行1000次的統(tǒng)計檢驗,構(gòu)建系統(tǒng)進化樹。結(jié)果表明,木薯MePCS1蛋白與橡膠樹的PCS蛋白親緣關(guān)系較近,其次為麻瘋樹、蓖麻、烏桕等植物,同棉花、木槿等植物的PCS蛋白親緣關(guān)系較遠(圖3)。2.4""MePCS1基因在SC8木薯中的表達模式分析
2.4.1""MePCS1基因在不同組織器官的表達模式分析""采用熒光定量PCR技術(shù)分析MePCS1基因在木薯不同組織中的表達情況。結(jié)果表明,木薯MePCS1基因在莖中的表達量最高,在塊根、須根、葉柄、成熟葉、嫩葉、頂芽、腋芽中的表達量無顯著差異(圖4)。
2.4.2""MePCS1基因塊根發(fā)育不同時期的表達模式分析""基于實驗室前期的塊根發(fā)育不同時期轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù),分析MePCS1基因在塊根中的表達模式。結(jié)果表明,MePCS1基因主要在塊根膨大期(種植后的130、180"d)的表達量最高,在成熟塊根期(種植后的230、280"d)的表達量最低(圖5)。
2.5""MePCS1基因在Pb脅迫條件下表達水平分析
為了探究MePCS1基因表達對Pb脅迫的響應(yīng),本研究采用1.2"mmol/L"Pb(NO3)2"脅迫處理木薯SC8幼苗,并通過熒光定量PCR分析根系中MePCS1基因在處理0、3、6、12、24、48"h時的表達變化。結(jié)果發(fā)現(xiàn),MePCS1基因快速響應(yīng)在Pb2+脅迫,3"h的表達量顯著高于對照組,且在6和12"h的表達量逐步提高,然后24"h和48"h的表達量顯著降低(圖6)。此結(jié)果表明MePCS1基因參與木薯對Pb2+脅迫的響應(yīng)。
2.6""MePCS1基因功能驗證
2.6.1""MePCS1基因的酵母表達載體構(gòu)建""為了驗證MePCS1基因的功能,本研究通過PCR將重組接頭引入該基因編碼區(qū)的兩端(圖7A),并通過同源重組將MePCS1與線性化的酵母表達載體pYES2連接。連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸,菌液PCR篩選
陽性克隆,獲得正確的pYES2-MePCS1質(zhì)粒(圖7B)。將pYES2-MePCS1質(zhì)粒轉(zhuǎn)化BY4741酵母,在SD-Ura固體培養(yǎng)基中培養(yǎng)獲得單菌落后進行酵母菌斑PCR鑒定。結(jié)果發(fā)現(xiàn)PCR擴增獲得與預(yù)期片段大小相同的條帶(約1500"bp),表明pYES2-"MePCS1質(zhì)粒成功轉(zhuǎn)化到BY4741酵母中(圖7C)。
2.6.2""MePCS1基因在酵母中的功能驗證""將含有pYES2-MePCS1、pYES2質(zhì)粒的酵母菌液,梯度稀釋后點在含有Pb2+的SD-Ura(含有2%半乳糖)固體培養(yǎng)基上,分析酵母的生長情況。結(jié)果發(fā)現(xiàn),在不含有Pb2+的培養(yǎng)基上,2種酵母菌的長勢一致,而在含有50"mmol/L"Pb2+的培養(yǎng)基上,含有pYES2-MePCS1的酵母菌株長勢優(yōu)于空載pYES2酵母菌株(圖8)。結(jié)果表明MePCS1基因可提高酵母對Pb2+的抗性。
Pb是一種重金屬污染物,對植物和人體均有嚴(yán)重危害。在植物體內(nèi),Pb可以抑制多種酶的活性,干擾光合作用和水分吸收,導(dǎo)致生長受阻和生理功能紊亂[11]。此外,Pb還可以通過干擾礦質(zhì)營養(yǎng)吸收,影響植物的營養(yǎng)平衡[12]。對人體而言,Pb主要通過食物鏈累積,長期攝入會對中樞神經(jīng)系統(tǒng)產(chǎn)生毒性,特別是對兒童可能導(dǎo)致學(xué)習(xí)障礙和身心活動受限等問題[13]。Pb還可以損害腎臟功能,增加心血管疾病風(fēng)險[14]。PCS1基因是植物體內(nèi)合成植物螯合素的關(guān)鍵酶,在減輕Pb的毒性效應(yīng)方面具有重要作用[15]。本研究克隆了木薯MePCS1基因,基因編碼區(qū)為1512"bp,共編碼503個氨基酸。生物信息學(xué)分析表明,MePCS1蛋白為親水性蛋白,無跨膜結(jié)構(gòu)且不含有信號肽。木薯MePCS1蛋白與橡膠樹、麻風(fēng)樹PCS蛋白的親緣關(guān)系較近,以上3個物種均為大戟科植物。MePCS1基因主要在木薯莖中表達,以及在塊根形成期和塊根膨大期表達。植物受到Pb、Cd等重金屬脅迫時,PCS1基因的表達通常會上調(diào),以增強植物對重金屬的耐受性。Cd脅迫可誘導(dǎo)雀稗PvPCS1和PvPCS2[16]、大麻BnPCS1基因表達上升[17]。藍藻CaPCS基因被AS脅迫誘導(dǎo)[18];馬鈴薯StPCS受重金屬Pb、Cd、Cu、Zn誘導(dǎo)表達[19];Pb脅迫木薯幼苗發(fā)現(xiàn),脅迫6、12"h后MePCS1基因的表達量顯著上升,24"h后表達量降低,表明該基因的表達受Pb脅迫的誘導(dǎo),參與木薯對Pb脅迫的響應(yīng)。
在酵母細胞中進行異源表達是驗證植物重金屬脅迫響應(yīng)相關(guān)基因功能的有效手段。水稻金屬伴侶OsHIPP17、OsHIPP19可增強酵母對Cd的耐受性[20];苦蕎麥FtPCS、FtMTPC2、FtPCSL、FtVCE1a、FtNramp3可增強酵母對Pb的耐受性[21]。本研究將MePCS1基因克隆到pYES2酵母表達載體,并轉(zhuǎn)化到酵母菌株BY4741,分析轉(zhuǎn)基因酵母對Pb脅迫(50"mmol/L)的耐受性。結(jié)果發(fā)現(xiàn)MePCS1基因可提高酵母對金屬Pb的耐受能力,因此推測MePCS1基因可提高木薯對Pb脅迫的抗性。在未來的研究工作中,將利用過量表達和基因編輯技術(shù),進一步鑒定MePCS1基因功能特性,并篩選低Pb積累的木薯新種質(zhì),以提高木薯食用的安全性。
參考文獻
[1]"AMELWORK"A"B,"BAIRU"M"W."Advances"in"genetic"analysis"and"breeding"of"cassava"(Manihot"esculenta"Crantz):"a"review[J]."Plants,"2022,"11(12):"1617.
[2]"VATAMANIUK"O"K,"MARI"S,"LU"Y"P,"REA"P"A."AtPCS1,"a"phytochelatin"synthase"from"Arabidopsis:"isolation"and"in"vitro"reconstitution[J]."Proceedings"of"the"National"Academy"of"Sciences,"1999,"96(12):"7110-7115.
[3]"OVEN"M,"PAGE"J"E,"ZENK"M"H,"KUTCHAN"T"M."Molecular"characterization"of"the"homo-phytochelatin"synthase"of"soybean"Glycine"max:"relation"to"phytochelatin"synthase[J]."Journal"of"Biological"Chemistry,"2002,"277(7):"4747-4754.
[4]"LEE"B"D,"HWANG"S."Tobacco"phytochelatin"synthase"(NtPCS1)"plays"important"roles"in"cadmium"and"arsenic"tolerance"and"in"early"plant"development"in"tobacco[J]."Plant"Biotechnology"Reports,"2015,"9:"107-114.
[5]"POSTRIGAN"B"N,"KNYAZEV"A"V,"KULUEV"B"R,"CHEMERIS"A"V."Effect"of"cadmium"on"promoter"activity"of"rice"phytochelatin"synthase"gene"in"transgenic"tobacco"plants[J]."Russian"Journal"of"Plant"Physiology,"2013,"60:nbsp;701-705.
[9]"KISA"D."Responses"of"phytochelatin"and"proline-related"genes"expression"associated"with"heavy"metal"stress"in"Solanum"lycopersicum[J]."Acta"Botanica"Croatica,"2019,"78(1):"9-16.
[10]"LU"X"H,"WANG"Y"J,"ZHEN"X"H,"YU"H,"PAN"M,"FU"D"Q,"LI"R"M,"LIU"J,"LUO"H"Y,"HU"X"W."Functional"characterization"of"the"MeSSIII-1"Gene"and"its"promoter"from"cassava[J]."International"Journal"of"Molecular"Sciences,"2024,"25(9):"4711.
[11]"KUMAR"A,"PRASAD"M"N"V."Plant-lead"interactions:"transport,"toxicity,"tolerance,"and"detoxification"mechanisms[J]."Ecotoxicology"and"Environmental"Safety,"2018,"166:"401-418.
[12]"ZULFIQAR"U,"FAROOQ"M,"HUSSAIN"S,"MAQSOOD"M,"HUSSAIN"M,"ISHFAQ"M,"ANJUM"M"Z."Lead"toxicity"in"plants:"impacts"and"remediation[J]."Journal"of"Environmental"Management,"2019,"250:"109557.
[13]"KUMAR"A,"KUMAR"A,"MMS"C"P,"CHATURVEDI"A"K,"SHABNAM"A"A,"SUBRAHMANYAM"G,"MONDAL"R,"GUPTA"D"K,"MALYAN"S"K,"KUMAR"S"S,"KHAN"S"A,"YADAV"K"K."Lead"toxicity:"health"hazards,"influence"on"food"chain,"and"sustainable"remediation"approaches[J]."International"Journal"of"Environmental"Research"and"Public"Health,"2020,"17(7):"2179.
[14]"CHEN"Z,"HUO"X,"CHEN"G,"LUO"X,"XU"X."Lead"(Pb)"exposure"and"heart"failure"risk[J]."Environmental"Science"and"Pollution"Research,"2021,"28:"28833-28847.
[15]"SEREGIN"I"V,"KOZHEVNIKOVA"A"D."Phytochelatins:"sulfur-containing"metal"(loid)-chelating"ligands"in"plants[J]."International"Journal"of"Molecular"Sciences,"2023,"24(3):"2430.
[16]"CHEN"Y,"CHEN"C,"TAN"Z,"LIU"J,"ZHUANG"L,"YANG"Z,"HUANG"B."Functional"identification"and"characterization"of"genes"cloned"from"halophyte"seashore"paspalum"conferring"salinity"and"cadmium"tolerance[J]."Frontiers"in"Plant"Science,"2016,"9(7):"102.
[17]"VATAMANIUK"O"K,"MARI"S,"LANG"A,"CHALASANI"S,"DEMKIV"L"O,"REA"P"A."Phytochelatin"synthase,"a"dipeptidyltransferase"that"undergoes"multisite"acylation"with"γ-glutamylcysteine"during"catalysis:"stoichiometric"and"site-directed"mutagenic"analysis"of"Arabidopsis"thaliana"PCS1-catalyzed"phytochelatin"synthesis[J]."Journal"of"Biological"Chemistry,"2004,"279(21):"22449-22460.
[18]"DIAZ"S,"AGUILERA"á,"FIGUERAS"C"G,"FRANCISCO"P,"OLSSON"S,"PUENTE"S"F,"GONZALEZ"P"J"E."Heterologous"expression"of"the"phytochelatin"synthase"CaPCS2"from"Chlamydomonas"acidophila"and"its"effect"on"different"stress"factors"in"Escherichia"coli[J]."International"Journal"of"Environmental"Research"and"Public"Health,"2022,"19(13):"7692.
[19]"楊巾."馬鈴薯StPCS基因的克隆分析及不同重金屬對其表達的影響[D]."成都:"四川農(nóng)業(yè)大學(xué),"2019.YANG"J."Cloning"and"analysis"StPCS"gene"of"potato"(Solanum"tuberosum"L)"and"effects"of"different"heavy"metals"on"its"expression[D]."Chengdu:"Sichuan"Agricultural"University,"2019.
[20]"SHI"Y,"JIANG"W,"LI"M,"JIANG"N,"HUANG"Y,"WANG"M,"DU"Z,"CHEN"J,"LI"J,"WU"L,"ZHONG"M,"YANG"J,"HUANG"J."Metallochaperone"protein"OsHIPP17"regulates"the"absorption"and"translocation"of"cadmium"in"rice"(Oryza"sativa"L.)[J]."International"Journal"of"Biological"Macromolecules,"2023,"245:"125607.
[21]"WANG"L,"ZHENG"B,"YUAN"Y,"XU"Q,"CHEN"P."Transcriptome"profiling"of"Fagopyrum"tataricum"leaves"in"response"to"lead"stress[J]."BMC"Plant"Biology,"2020,"20:"1-14.