謝寧寧,陳小娥,方旭波,余 輝
(浙江海洋學院食品與藥學院、醫(yī)學院,浙江舟山 316004)
近年來,抗氧化劑在國內(nèi)外發(fā)展很快,用途也越來越廣。1956年HARMAN[1]提出了衰老的自由基理論(free radical theory of aging)之后,越來越多的人認識到人體內(nèi)氧化產(chǎn)生的自由基與人的衰老和許多疾病有關(guān)。因此,許多抗氧化劑被用作功能因子開發(fā),應用于保健食品及醫(yī)藥等行業(yè)。另外,抗氧化劑能延緩含脂肪食物的腐敗變質(zhì),它也被運用于食品保鮮儲藏工業(yè)。
抗氧化劑的種類很多,其中已經(jīng)被廣泛使用的多為化學合成類抗氧化劑,由于其具有毒、副作用,各國政府紛紛對其強制規(guī)定了ADI值,控制其添加量[2]。1991年P(guān)ROKORNY[3]提出,一些抗氧化肽和蛋白水解產(chǎn)物能降低自動氧化速率和脂肪的過氧化物含量,之后,尋找和制備高活性的蛋白源抗氧化劑,成為新的研究焦點。
在水產(chǎn)品加工工業(yè)中,不可避免地產(chǎn)生了許多廢棄低值蛋白,采用生物酶工程和發(fā)酵工程等手段,它們可以作為制備抗氧化肽的優(yōu)良備選原料。同時,開發(fā)利用水產(chǎn)副產(chǎn)物中蛋白資源,有利于提高水產(chǎn)品的經(jīng)濟附加值,降低環(huán)境污染。已經(jīng)有許多研究者從多種水產(chǎn)品中制備出具有抗氧化性的活性肽,本文將針對這方面的研究與進展進行綜述。
很多證據(jù)顯示,活性氧(ROS)和自由基在許多退行性疾病如癌癥、動脈硬化及糖尿病等中起重要作用[4],它們的形成是呼吸過程中不可避免的。這些自由基非常地不穩(wěn)定,它們能迅速地同機體中的其它基團或物質(zhì)發(fā)生反應,導致細胞或組織的氧化損傷。生物機體依靠多種由酶系(SOD、GSH-Px、CAT、GST等)和非酶系(葡萄糖、維生素、氨基酸類等)物質(zhì)組成的抗氧化體系,對抗活性氧及自由基。但是,這些防御體系并不能阻止所有氧化損傷。生物體通過補充含有抗氧化物質(zhì)的成分,可以有效地減少氧化損傷對機體的危害。同樣,在食品工業(yè)中,由于脂質(zhì)過氧化,導致食品產(chǎn)生異味、發(fā)臭和潛在的毒性物質(zhì)等不良后果,容易造成不少經(jīng)濟損失[5]。通過在食品中添加抗氧化劑,可以有效地對抗脂質(zhì)過氧化,防止食物腐敗變質(zhì),避免浪費。
許多研究者對魚類、甲殼類、軟體動物進行了抗氧化活性的研究。AMAROWICZ和SHAHIDI[6]通過分離毛鱗魚Mallotus villosus蛋白水解液,得到一種在β-胡蘿卜素-亞油酸模型體系內(nèi)具有穩(wěn)定抗氧化活性的組分。SACHINDRA和BHASKAR[7]采用乳酸發(fā)酵蝦Penaeus mondon的廢棄物,制得的產(chǎn)物含有低分子量的蛋白類物質(zhì),并且其具有清除多種自由基和促滅單線態(tài)氧形成的作用。BINSAN等[8]以不同比例混合的去離子水和乙醇為介質(zhì),對白蝦Litopenaeus vannamei頭胸部提取出的抗氧化肽的活性和穩(wěn)定性進行了研究。QIAN等[9]通過消化牡蠣Crassostrea gigas蛋白,獲得一種由13個氨基酸殘基組成的抗氧化肽段。
3.1.1 蛋白酶水解法
通過酶水解蛋白制備抗氧化肽是目前普遍采用的一種方法。酶促水解反應具有條件溫和、易于控制,專一性較強、副反應產(chǎn)物少等優(yōu)點。目前報道中許多水產(chǎn)品抗氧化肽的制備就是采用蛋白酶水解的方法。其中,由于底物的不同,制備抗氧化肽所選用的蛋白酶也不同。表1列舉了部分研究者制備水產(chǎn)品抗氧化肽所選用的酶。
表1 制備水產(chǎn)抗氧化肽選擇用酶Tab.1 The selection of proteolytic enzymes to prepare aquatic antioxidant peptides
另外,除采用外源蛋白酶外,有學者利用魚類含有的內(nèi)源性蛋白酶,制備出水產(chǎn)抗氧化肽。SAMARANAYAKA和CHAN[19]利用太平洋鱈魚Merluccius productus肉中感染寄生蟲Kudoa paniformis產(chǎn)生的蛋白酶水解活性,制備鱈魚肉抗氧化肽,其中E-1h FPH組分在亞油酸自氧化體系中的抗氧化活性高于BHA和α-生育酚。JE等[20]采用自制的“鮐魚腸天然酶(MICE)”水解狹鱈Theragra chalcogramma魚排蛋白,魚排蛋白水解產(chǎn)物(APH)被分成5種分子量大小不同的組分,其中分子量最小的APH-V組分具有最高的抗氧化活性,通過純化之后的多肽樣品濃度為53.6 μmol/L時,羥自由基清除率為35%。
3.1.2 發(fā)酵法
許多水產(chǎn)品經(jīng)發(fā)酵后,在微生物和內(nèi)源酶的作用下,有機物質(zhì)轉(zhuǎn)變成了小分子物質(zhì)如肽類、氨基酸類和其它含氮化合物。其中的多肽和氨基酸不僅對發(fā)酵產(chǎn)物的風味起重要貢獻,而且對產(chǎn)品的抗氧化功效起到貢獻作用。發(fā)酵法與酶解法相比,能將微生物產(chǎn)酶和酶水解兩步合一,省去酶的分離和提純步驟,減少生產(chǎn)工序,降低成本。
RAJAPAKSE等[21]通過分離純化紫貽貝Mytilus edulis發(fā)酵液,制備出具有重復序列“HFGBPFH”的多肽,經(jīng)檢測其具有較高的自由基清除能力、Fe2+螯合能力及提高氧化損傷細胞成活率的作用。PERALTA等[22]研究了菲律賓傳統(tǒng)食鹽發(fā)酵的蝦Acetes spp醬的抗氧化性,結(jié)果證明通過適當延長發(fā)酵時間,在有效地增加自由氨基酸含量的同時,也提高了蝦醬的抗氧化能力。
從目前報道的水產(chǎn)品抗氧化肽來看,分子量多集中在1 000 Da左右,氨基酸殘基的數(shù)目一般在20個以內(nèi),而且,在抗氧化肽粗品中,肽的種類較多,活性肽組分對外界環(huán)境條件也比較敏感,因此,分離純化較困難,通常采用單一的分離純化手段不能達到理想的分離效果。目前,普遍采用多種分離技術(shù)聯(lián)用的手段。一般的分離純化流程如圖1所示。
圖1 分離純化流程圖Fig.1 The flow chart of isolation and purification
超濾(UF)是膜分離技術(shù)的一種,實踐證明膜技術(shù)具有耗能低、設(shè)備小、操作管理方便和質(zhì)量好等優(yōu)點。近年來,超濾技術(shù)已經(jīng)被應用于水產(chǎn)品抗氧化肽的分離純化。MENDIS等[13]采用10 kDa,5 kDa和3 kDa 3種膜截留魷魚皮明膠水解產(chǎn)物,初步篩選出小于3 kDa分子量的抗氧化活性最強組分。
離子交換色譜(IEC)是多肽分離純化過程中經(jīng)常采用的方法,它是以離子交換劑為固定相,根據(jù)流動相中組分離子與交換劑上平衡離子進行可逆交換時,結(jié)合力大小差異而進行分離的一種層析方法。很多的研究者采用SP-Sephadex C-25陽離子交換色譜分離水產(chǎn)品抗氧化活性組分。如狹鱈Theragra chalcogramma魚排[20]、巨魷魚Dosidicus gigas肉[14]超濾活性組分等。
凝膠層析(GC)又稱凝膠排阻色譜、分子篩層析和凝膠過濾等,是利用分子大小和形狀差異進行分離的一種溫和、高效的方法。Sephadex G-25凝膠柱層析是分離小分子量水產(chǎn)抗氧化肽采用的最多的一種,如乳酸發(fā)酵蝦Penaeus mondon廢棄物[7]。另外,有學者采用Superdex Peptide10/300 GL凝膠柱純化牛蛙Rana catesbeiana Shaw[12]皮和草魚Ctenopharyngodon idellus[15]水解物。
為了獲得活性最高的多肽純化物,通常采用高效液相色譜(HPLC)法進行分離純化驗證。高效液相色譜是近年來肽的分離純化中廣泛應用的技術(shù),主要用于10 kDa以下的極性小分子肽的分離純化。RAJAPAKSE等[21]采用nucleosil 100-7 C18 HPLC柱和Zorbax SB C18 HPLC柱兩步分離,制得962 Da的活性最高抗氧化肽純品。KIM等[16]將離子交換層析后的活性最高組分進一步經(jīng)HPLC分離,分別采用了1次Capcell Pak C18UG-120柱和2次Synchropak RPP-100 RP-HPLC analytical柱,制得抗氧化肽純品。對最終制得的高純度抗氧化肽,通常采用質(zhì)譜(CM)進行分子量的測定,推測其氨基酸序列。
評估水產(chǎn)抗氧化肽的活性,一般采用自由基清除能力、抗脂質(zhì)自氧化能力、金屬離子螯合能力、協(xié)同抗氧化能力等多種評價方法進行體外活性實驗評估。經(jīng)篩選出的具有抗氧化活性的物質(zhì)可通過體內(nèi)試驗進一步檢驗評估。
自由基是指一類可以獨立存在的含有未配對電子的物質(zhì),包括分子、原子、原子團或離子。主要包括超氧陰離子(O2-·)、過氧化氫(H2O2)、羥自由基(OH·)、單線態(tài)氧(1O2)等,這些自由基具有不穩(wěn)定性和高反應性??寡趸瘎┛梢杂行У貙⑿孤┏鰜淼?、多余的活性氧等清除掉,從而保護細胞、組織免遭氧化損傷。
目前抗氧化肽的自由基清除效果,普遍采用自由基清除率來表示。二苯代苦味酰肼自由基 (1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,簡稱DPPH)是一種較穩(wěn)定的自由基。當有自由基清除劑存在時,DPPH自由基的單電子被分配而使其顏色變淺,利用分光光度法可以檢測自由基清除情況,從而評價樣品抗氧化能力。羥自由基是化學性質(zhì)最活潑的活性氧自由基,它帶有1個不成對的電子,是對人體毒性最大的自由基,它反應速度極快,可以與活細胞中的大分子如蛋白和DNA發(fā)生反應而造成損害[23]。因此,較多的研究者選用以上2種自由基的清除率來評估水產(chǎn)蛋白水解產(chǎn)物的抗氧化性。
除此之外,超氧陰離子自由基[24]、過氧化氫自由基[25]等的清除率也被一些學者作為綜合評價水產(chǎn)多肽抗氧化能力的選擇方法。
脂類的自氧化是造成食品質(zhì)量下降最主要的化學因素之一。尤其是富含不飽和脂肪酸的食品,很容易氧化生成過氧化脂質(zhì),再經(jīng)過分解、聚合等反應產(chǎn)生腐敗直至出現(xiàn)毒性。另一方面,在生物體內(nèi),癌癥的發(fā)生以及衰老也都與體內(nèi)脂肪的氧化有關(guān)。因此,脂類常作為被氧化的底物用來檢測樣品的抗氧化能力。
水產(chǎn)抗氧化肽抑制脂質(zhì)自氧化的效果,一般采用以亞油酸為氧化底物的亞油酸模型系統(tǒng)。亞油酸通過吸收空氣中的氧進行自動氧化反應,產(chǎn)生脂肪酸氫過氧化物。水產(chǎn)抗氧化肽的添加,可以抑制自氧化反應。通過比較兩種情況下的氫過氧化物的含量,來評估抑制脂類自氧化的效果。很多報道均采用硫氰酸鐵法[26]檢測氫過氧化物的含量。該法的原理是亞鐵離子可被氫過氧化物氧化成高鐵離子,其反應為Fe2++2H++O→Fe3++H2O,然后加入硫氰酸銨與Fe3+形成紅色的絡合物,其在540 nm處有強吸收值,通過比色即可測出氫過氧化物的含量。
過渡態(tài)金屬離子如Fe2+和Cu2+能催化不飽和脂質(zhì)氧化過程中自由基的形成[27],而水解產(chǎn)生的多肽的羧酸基團和氨基基團具有金屬離子螯合能力,因此,能夠削弱脂質(zhì)的氧化。由于水解過程中多肽的斷裂,導致了肽片段濃度的增加,從而有助于清除羥自由基中的金屬離子,產(chǎn)生抗氧化性。
DONG等[10]研究了鰱魚蛋白水解物的金屬離子螯合活性。隨著水解時間的增加,水解產(chǎn)物的螯合活性增強。其中,在任何時間段時,堿性蛋白酶的水解產(chǎn)物的活性均比風味蛋白酶高。經(jīng)堿性蛋白酶水解6 h的水解物的金屬離子螯合活性最高,達92.97%。并且螯合活性和水解度(DH)之間存在線性關(guān)系。結(jié)果證明低分子量的水解產(chǎn)物具有較高的金屬離子螯合活性。
在水產(chǎn)品水解物中也有協(xié)同抗氧化活性肽的報道。這類抗氧化肽本身的抗氧化能力比較低,但是在與其它一些抗氧化劑同時使用時,具有很強的抗氧化效果。JE等[20]研究了狹鱈魚排的水解產(chǎn)物,經(jīng)超濾膜過濾后的5種組分中,僅APH-Ι無協(xié)同抗氧化性,其它組分在亞油酸模型系統(tǒng)中均具有同α-生育酚的協(xié)同抗氧化性。
最近幾年,越來越多的研究者采用細胞損傷模型評估抗氧化活性。氧化作用在細胞的損傷死亡中扮演重要角色,通過添加抗氧化劑對抗細胞中產(chǎn)生的氧化作用,能夠提高細胞的成活率。MENDIS等[13]通過建立人工培養(yǎng)的人類肺臟纖維細胞模型,采用MTT法,檢測t-BHP介導的氧化損傷細胞的成活率,結(jié)果顯示,在與天然抗氧化劑α-生育酚相比時,魷魚皮明膠多肽能顯著提高細胞成活率。
通過體內(nèi)實驗驗證樣品的抗氧化性,是活性評估中最重要的一環(huán)。通常將受試物連續(xù)飼喂大鼠或小鼠1-3月,然后處死,測定其血或組織(如肝、腦)中MDA、單胺氧化酶(MAO-B)及抗氧化酶SOD、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)及過氧化氫酶(CAT),同對照組比較,若 MDV、MAO-B 降低,SOD、GSH-Px、CAT 等升高,則說明受試物具有抗氧化能力。
林琳和李八方[28]研究了具有清除自由基作用的魷魚多肽的體內(nèi)抗氧化活性。采用D-半乳糖致衰的小鼠模型,結(jié)果表明分子量小于2 kDa的多肽組分,能夠提高小鼠血液及皮膚中SOD和GSH-Px的活力,降低MDA含量,并提高小鼠皮膚中Hyp的含量。
通過水解制備出的抗氧化肽的活性與底物原料、酶的種類、酶解溫度、酶解時間、酶的加入量、pH、以及酶解產(chǎn)物的水解度(DH)等許多因素有關(guān)。
KLOMPONG等[18]采用堿性蛋白酶和風味蛋白酶水解黃斑紋鲹魚蛋白制得2種水解產(chǎn)物分別為HA和HF。采用不同的酶,活性宜有變化。當水解度增加時,HA的DPPH自由基清除活性和還原能力增強,HF并無此現(xiàn)象。HA和HF的金屬離子螯合能力均隨著水解度的增加而增強。并且,在相同的水解度時,HF的金屬離子螯合能力通常比HA高。在低水解度(DH=5%)時,HA的DPPH自由基清除活性較好,同時,在高的水解度(DH=25%)時,HF的還原能力較好。也有研究者研究了堿性蛋白酶處理的鰱魚蛋白水解產(chǎn)物,羥自由基清除活性和亞油酸過氧化抑制率分別在水解時間為1.5 h和2.0 h時達到最大值,證明鰱魚水解蛋白抗氧化能力是與水解度和水解時間相關(guān)[10]。
表2 水產(chǎn)抗氧化肽的序列結(jié)構(gòu)及分子量Tab.2 The peptide sequence and molecular weight of aquatic antioxidant peptides
抗氧化肽的功能特性較多地受分子結(jié)構(gòu)和分子量的影響[29,30]。MURASE等[31]認為,抗氧化肽的疏水性增強了它的抗氧化性和乳化效果,并且,這類多肽在同非肽類抗氧化劑協(xié)同時具有比較強的協(xié)同效果。CHEN等[32]認為組氨酸含量較高的多肽,具有金屬離子螯合作用。另外,一些其它的氨基酸,比如,組氨酸、脯氨酸、丙氨酸和亮氨酸,被報道對自由基清除有貢獻作用[33]。SUETSUNA等[30]報道了亮氨酸出現(xiàn)在C端具有抗氧化性,并認為在多肽結(jié)構(gòu)中芳香族氨基酸的酚羥基基團能夠作為有效的電子供體。MENDISA等[13]報道了魷魚皮明膠抗氧化肽P1和P2的抗氧化性來源于序列中富含間隔的“親水-疏水”序列,同時,由于分子量較低,P1比P2具有更高的抗氧化特性。表2為部分水產(chǎn)抗氧化肽的序列結(jié)構(gòu)及分子量。
另外,除以上兩方面外,抗氧化肽所處的pH、溫度等外界條件同樣影響活性的發(fā)揮。BISAN等[8]研究表明,白蝦抗氧化肽,在pH 2~11,溫度為25~100℃范圍內(nèi),F(xiàn)ARP、TBARS和DPPH 3種活性仍然高于80%?;钚噪脑?00℃加熱30 min時,3種活性稍微降低,30~120 min時,3種活性維持在80%左右,120~150 min時,DPPH活性稍微降低。
我國是水產(chǎn)品加工大國,每年都會產(chǎn)生大量的低值水產(chǎn)品下腳料蛋白資源,開發(fā)利用水產(chǎn)抗氧化肽將具有不菲的經(jīng)濟效益和社會意義。水產(chǎn)抗氧化肽能有效地清除體內(nèi)的活性氧自由基,保護細胞和線粒體的正常結(jié)構(gòu)和功能,同時防止食品脂質(zhì)過氧化變質(zhì),在醫(yī)藥和食品領(lǐng)域具有廣泛的應用前景。但水產(chǎn)抗氧化肽的研究中仍有不少問題需要解決。第一、有關(guān)抗氧化能力的測定方法很多,但是通用的方法很少,使得各種實驗缺乏可比性,需統(tǒng)一抗氧化能力測定標準;第二、水產(chǎn)抗氧化肽單一組分和不同組分協(xié)同作用的機制等還有待深入研究;第三、有關(guān)水產(chǎn)抗氧化肽的活性研究大多缺乏臨床試驗,體內(nèi)抗氧化機理還需要進一步深入研究;第四、對于水產(chǎn)抗氧化肽在濃縮干燥過程中的活性損失,還缺乏系統(tǒng)性的深入研究;第五、在抗氧化肽分離純化的研究中,鹽的存在一定程度上會影響抗氧化活性的測定,但是脫鹽問題一直沒能得到很好的解決;第六、目前的分離純化手段很難純化得到分子量很小、由2~3個氨基酸組成的肽段,這也是大多數(shù)研究報道所得到的抗氧化肽分子量都大于500 Da的原因之一。
[1]HARMAN D.Aging:a theory based on free radical and radiation chemistry[J].Journal of gerontology,1956,11(3):298-300.
[2]GB 2760-1996食品添加劑使用衛(wèi)生標準[S].
[3]PROKORNY J.Natural antioxidants for food use[J].Trends Food Sci Technol,1991,2(9):223-227.
[4]BECKMAN K B,AMES B N.The free radical theory of aging matures[J].Physiological Reviews,1998,78(2):547-581.
[5]MAILLARD M N,SOUM M H,BOIVIN P,et al.Antioxidant activity of barley and malt:Relationship with phenolic content[J].Food Science and Technology,1996,29(3):238-244.
[6]AMAROWICZ R,SHAHIDI F.Antioxidant activity of peptide fractions of capelin protein hydrolysates[J].Food Chemistry,1997,58(4):355-359.
[7]SACHINDRA N M,BHASKAR N.In vitro antioxidant activity of liquor from fermented shrimp biowaste[J].Bioresour Technol,2008,99(18):9 013-9 016.
[8]BINSAN W,BENJAKUL S,VISESSANGUAN W,et al.Antioxidative activity of Mungoong,an extract paste,from the cephalothorax of white shrimp(Litopenaeus vannamei)[J].Food Chemistry,2008,106(1):185-193.
[9]QIAN Z J,JUNG W K,BYUN H G,et al.Protective effect of an antioxidative peptide purified from gastrointestinal digests of oyster,Crassostrea gigas against free radical induced DNA damage[J].Bioresource Technology,2008,99(9):3 365-3 371.
[10]DONG S Y,ZENG M Y,WANG D F,et al.Antioxidant and biochemical properties of protein hydrolysates prepared from silver carp(Hypophthalmichthys molitrix)[J].Food Chemistry,2008,107(4):1 485-1 493.
[11]YANG J L,HO H Y,CHU Y J,et al.Characteristic and antioxidant activity of retorted gelatin hydrolysates from cobia(Rachycentron canadum)skin[J].Food Chemistry,2008,110(1):128-136.
[12]QIAN Z J,JUNG W K,KIM S K,et al.Free radical scavenging activity of a novel antioxidative peptide purified from hydrolysate of bullfrog skin,Rana catesbeiana Shaw[J].Bioresource Technology,2008,99(6):1 690-1 698.
[13]MENDIS E,RAJAPAKSE N,BYUN H G,et al.Investigation of jumbo squid(Dosidicus gigas)skin gelatin peptides for their in vitro antioxidant effects[J].Life Sciences,2005,77(17):2 166-2 178.
[14]RAJAPAKSE N,MENDIS E,BYUN H,et al.Purification and in vitro antioxidative effects of giant squid muscle peptides on free radical-mediated oxidative systems[J].The Journal of Nutritional Biochemistry,2005,16(9):562-569.
[15]REN J Y,ZHAO M M,SHI J,et al.Purification and identification of antioxidant peptides from grass carp muscle hydrolysates by consecutive chromatography and electro spray ionization-mass spectrometry[J].Food Chemistry,2008,108(2):727-736.
[16]KIM S,JE J,KIM S.Purification and characterization of antioxidant peptide from hoki(Johnius belengerii)frame protein by gastrointestinal digestion[J].The Journal of Nutritional Biochemistry,2006,18(1):31-38.
[17]JE Y J,QIAN Z J,BYUN H G,et al.Purification and characterization of an antioxidant peptide obtained from tuna backbone protein by enzymatic hydrolysis[J].Process Biochemistry,2007,42(5):840-846.
[18]KLOMPONG V,BENJAKUL S,KANTACHOTE D,et al.Antioxidative activity and functional properties of protein hydrolysate of yellow stripe trevally(Selaroides leptolepis)as influenced by the degree of hydrolysis and enzyme type[J].Food Chemistry,2007,102(4):1 317-1 327.
[19]SAMARANAYAKAA A G P,CHAN E C Y L.Autolysis-assisted production of fish protein hydrolysates with antioxidant properties from Pacific hake(Merluccius productus)[J].Food Chemistry,2008,107(2):768-776.
[20]JE J Y,PARK P J,KIM S K.Antioxidant activity of a peptide isolated from Alaska Pollack(Theragra chalcogramma)frame protein hydrolysate[J].Food Research International,2005,38(1):45-50.
[21]RAJAPAKSE N,MENDIS E,JUNG W K,et al.Purification of a radical scavenging peptide from fermented mussel sauce and its antioxidant properties[J].Food Research International,2005,38(2):175-182.
[22]PERALTE E M,HATATE H,KAWABE D,et al.Improving antioxidant activity and nutritional components of Philippine saltfermented shrimp paste through prolonged fermentation[J].Food Chemistry,2008,111(1):72-77.
[23]CACCIUTTOLO M A,TRINH L,LUMPKIN J A,et al.Hyperoxia induces DNA damage in mammalian cells[J].Free Radic Biol Med,1993,14(3):267-276.
[24]GUO Q,ZHAO B,SHEN S,et al.ESR study on the structure-antioxidant activity relationship of tea catechins and their epimers[J].Biochimica et Biophysica Acta(BBA)-General Subjects,1999,1 427(1):13-23.
[25]HIRAMOTO K,JOHKOH H,SAKO K I,et al.DNA breaking activity of the carbon-centered radical generated from 2,2-azobis-(2-amidinopropane)-hydrochloride(AAPH)[J].Free Radic Res,1993,19(5):323-332.
[26]OSAWA T,NAMIKI M.Natural antioxidants isolated from eucalyptus leaf waxes[J].Journal of Agriculture and Food Chemistry,1985,33(3):777-780.
[27]STOHS S J,BAGEHI D.Oxidative mechanisms in the toxicity of metal ions[J].Free Radical Biology and Medicine,1995,18(2):321-336.
[28]林 琳,李八方.魷魚皮膠原蛋白水解肽抗氧化活性研究[J].中國海洋藥物雜志,2006,25(4):48-51.
[29]JEON Y J,BYUN H G,KIM S K.Improvement of functional properties of cod frame protein hydrolysates using ultra filtration membranes[J].Process Biochemistry,1999,35(5):471-478.
[30]SUETSUNA K,UKEDA H,OCHI H.Isolation and characterization of free radical scavenging activities peptides derived from casein[J].Journal of Nutritional Biochemistry,2000,11(3):128-131.
[31]MURASE H,NAGAO A,TERAO J.Antioxidant and emulsifying activity of N-(long-chain-acyl)histidine and N-(longchainacyl)carmnosine[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,1993,41(3):1 601-1 604.
[32]CHEN H M,MURAMOTO K,YAMAUCHI F,et al.Antioxidative properties of histidine-containing peptides designed from peptide fragments found in the digests of a soybean protein[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,1998,46(1):49-53.
[33]KIM S K,KIM Y T,BYUN H G,et al.Isolation and characterization of antioxidative peptides from gelatin hydrolysate of Alaska Pollack skin[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,2001,49(4):1 984-1 989.