葉冬青，高維娟，錢 濤，閆鳳霞，張雅麗，侯志平

隨著現(xiàn)代醫(yī)學(xué)的發(fā)展，人口老齡化進(jìn)程加快，缺血性腦血管病的發(fā)病率逐年升高，而缺血/再灌注損傷(ischemia-reperfusion injury，IRI)是缺血性腦血管病發(fā)病的重要病理生理過程。大腦是對缺血缺氧十分敏感的組織，而海馬則是中樞神經(jīng)系統(tǒng)中對缺氧耐受相對較差的部位，故腦海馬神經(jīng)元常被用來作為缺血缺氧損傷研究的模型［1］。在缺血性腦血管疾病的發(fā)生發(fā)展過程中，細(xì)胞凋亡是神經(jīng)元損傷的發(fā)生機(jī)制之一，其中凋亡相關(guān)基因c-Jun氨基末端激酶3(c-Jun N terminal kinase 3，JNK3)的表達(dá)與神經(jīng)元凋亡關(guān)系十分密切［2］。黃芪注射液為臨床治療缺血性腦血管病的常用藥物，可抑制細(xì)胞凋亡的發(fā)生［3］。本課題組前期實(shí)驗(yàn)證實(shí)，黃芪注射液可抑制全腦缺血/再灌注大鼠海馬神經(jīng)元凋亡，并且對離體培養(yǎng)的缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖大鼠海馬神經(jīng)元凋亡有抑制作用，但是通過哪條信號傳導(dǎo)通路發(fā)揮抑制凋亡作用目前尚不清楚。本研究通過觀察黃芪注射液對缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖大鼠海馬神經(jīng)元凋亡相關(guān)蛋白JNK3及其mRNA表達(dá)的影響，探討黃芪注射液抑制細(xì)胞凋亡的分子機(jī)制。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 SD大鼠，新生(1～2)d，♀♂兼有，二級動(dòng)物，由河北省實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供，合格證號:冀醫(yī)動(dòng)字第702003號。

1.1.2 試劑和儀器 兔抗磷酸化JNK3多克隆抗體購于美國Ebioscience公司;BCA蛋白定量試劑盒購于上海申能博彩生物公司;JNK3 RT-PCR引物是由上海生物工程有限公司設(shè)計(jì)，RT-PCR試劑盒購自大連寶生物公司;多聚賴氨酸、阿糖胞苷購自美國Sigma公司;胎牛血清、馬血清由Hyclone公司生產(chǎn);谷氨酰胺、胰蛋白酶購自華美生物工程公司;DMEM/F12培養(yǎng)基、B27由美國Gibco公司生產(chǎn);NSE免疫組化染色試劑盒購自北京中杉金橋公司;黃芪注射液由成都地奧九泓制藥廠生產(chǎn);其他試劑為國產(chǎn)分析純。主要儀器:HERA cell 150型CO2培養(yǎng)箱由德國Heraeus公司生產(chǎn);LEICA DMIL 090-135.001型倒置顯微鏡由德國Wetzlar GmbH公司生產(chǎn);TDL-40B離心機(jī)由上海安亭科學(xué)儀器制造廠生產(chǎn);DYY-6B型穩(wěn)壓穩(wěn)流電泳儀購自北京六一儀器廠;MK3型酶標(biāo)儀購自上海雷勃公司。

1.2 方法

1.2.1 海馬神經(jīng)細(xì)胞的分離、培養(yǎng)及鑒定 培養(yǎng)方法參照Brewer的方法并做少許改良［4］。取新生24 h內(nèi)的SD大鼠海馬組織，6.25 mmol·L－1的胰蛋白酶消化，馬血清終止消化后將組織塊混合液移入離心管，加 D-Hanks液1 000 r·min－1離心 5 min，去上清后加DMEM/F12溶液7 ml，吹打離散組織，制成細(xì)胞懸液，以200目濾網(wǎng)過濾。取細(xì)胞懸液在100倍倒置顯微鏡下計(jì)數(shù)，以5×108·L－1密度接種在含有種植培養(yǎng)液(DMEM/F12培養(yǎng)基添加0.012 mol·L－1胎牛血清，0.014 mol·L－1馬血清，0.1 g·L－1谷氨酰胺，0.1 U·L－1青霉素和 0.1 g·L－1鏈霉素)的培養(yǎng)皿或培養(yǎng)瓶中。d 2用無血清培養(yǎng)液(DMEM/F12添加0.02 mol·L－1B27)代替種植液。d 4換液時(shí)添加0.005 g·L－1阿糖胞苷以抑制膠質(zhì)細(xì)胞生長，24 h后替換成新鮮無血清培養(yǎng)液。培養(yǎng)8 d后用NSE免疫組化染色法進(jìn)行神經(jīng)元純度鑒定。

1.2.2 缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖細(xì)胞模型的建立與實(shí)驗(yàn)分組 把原代培養(yǎng)8 d的大鼠海馬神經(jīng)元隨機(jī)分為4組:正常對照組、缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖組(模型組)、黃芪注射液組和黃芪溶劑對照組。除正常對照組外均參照 Bossenmeyer等［5］的方法建立缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖細(xì)胞模型:取培養(yǎng)8 d的海馬神經(jīng)元用無糖Earle′s代替培養(yǎng)液，隨即把培養(yǎng)皿(瓶)置于37℃溫箱中的缺氧裝置里，快速通入高純氮?dú)? min，再使氣體勻速緩慢連續(xù)排出。缺氧缺糖30 min后，換正常無血清培養(yǎng)液繼續(xù)在37℃，5%CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。正常對照組正常培養(yǎng)，不進(jìn)行任何處理;黃芪注射液組于缺氧缺糖時(shí)加入黃芪注射液［0.5 g(生藥)·L－1］［6］，直至培養(yǎng)結(jié)束;黃芪溶劑對照組處理方法與黃芪注射液組相同，只是將黃芪注射液換為pH值7.4的等量黃芪溶劑即無菌去離子水。

各組在復(fù)氧復(fù)糖后 0、0.5、2、6、24、72 和 120 h觀察JNK3蛋白及其mRNA的表達(dá)。

1.2.3 蛋白免疫印跡法檢測細(xì)胞內(nèi)JNK3的表達(dá)收集細(xì)胞，提取胞質(zhì)蛋白，用BCA法進(jìn)行蛋白定量。取40 μg樣品，加入蛋白體積1/4的 loading Buffer緩沖液混勻，在100℃沸水中煮7 min，以12%SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳分離，分離的蛋白用半干電轉(zhuǎn)移法轉(zhuǎn)移到PVDF膜上，4℃封閉過夜后加入用封閉液稀釋的兔抗磷酸化JNK3多克隆抗體(1∶200稀釋)室溫放置2 h。洗膜液洗3×10 min，用生物素標(biāo)記的二抗(1∶14 000稀釋)孵育1 h，洗膜液洗后用化學(xué)發(fā)光法顯色，X射線底片曝光。以β-actin為內(nèi)參照。實(shí)驗(yàn)重復(fù)6次，目的條帶為54 ku。用Quantity one軟件對各時(shí)間點(diǎn)蛋白條帶平均光密度值進(jìn)行分析。

1.2.4 酶聯(lián)免疫法檢測缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖海馬神經(jīng)元JNK3的活性 收集細(xì)胞，用細(xì)胞裂解液裂解、震蕩，用1 000×g離心20 min后取上清液，用樣品稀釋液將標(biāo)準(zhǔn)品稀釋，各濃度標(biāo)準(zhǔn)品均以100 μl加入孔中。空白孔加入100 μl樣品稀釋液。將酶標(biāo)板放入37℃溫箱中反應(yīng)120 min。反應(yīng)后棄去液體加入檢測溶液A 工作液100 μl，37℃，60 min溫育后棄去液體，洗板3×2 min，甩干后加入檢測溶液B工作液100 μl，37℃，60 min。甩干后洗板5 ×2 min。甩干后依序加入底物溶液90 μl，37℃避光顯色25 min，終止顯色后用酶聯(lián)儀在450 nm波長測量各加樣孔OD值，實(shí)驗(yàn)重復(fù)6次。

1.2.5 RT-PCR檢測細(xì)胞內(nèi)JNK3 mRNA的表達(dá)收集細(xì)胞，用TRIzol一步法提取RNA，按ExscriptTMRT reagent kit說明逆轉(zhuǎn)錄為cDNA。JNK3 cDNA引物序列上游 5′-CCACGCAGATCAAACAGGA-3′，下游5′-GCCAACCGCTCAGCATAA-3′，擴(kuò)增片段長度為821 bp;內(nèi)參照 β-actin引物序列上游 5′-GGACTTCGAGCAAGAGATGG-3′，下 游 5′-ACATCTGCTGGAAGGTGGAC-3′，擴(kuò)增片段長度為509 bp。按照PCR Amplification kit說明進(jìn)行反應(yīng)，擴(kuò)增條件:95℃預(yù)變性3 min;94℃ 40 s;54℃ 40 s;72℃ 40 s，循環(huán)30次;最后于72℃延伸3 min。用1.5%瓊脂糖凝膠電泳鑒定PCR產(chǎn)物，實(shí)驗(yàn)重復(fù)6次。用凝膠分析軟件Quantity one進(jìn)行定量分析，目的條帶在800 bp。

Tab 1 The effect of astragalus injection on the ratio of mean optic density(MOD)of expression of JNK3 protein and β-actin after hypoxia/hypoglycemia and reoxygenation in hippocampal neurons of rats(±s，n=6)

Tab 1 The effect of astragalus injection on the ratio of mean optic density(MOD)of expression of JNK3 protein and β-actin after hypoxia/hypoglycemia and reoxygenation in hippocampal neurons of rats(±s，n=6)

Normal:Normal control group;Original:Original astragalus injection group;Model:Hypoxia/hypoglycemia and reoxygenation group;Astragalus:Astragalus injection group.*P<0.05 vs normal;#P<0.05 vs model and original

Group The time of hypoxia/hypoglycemia and reoxyge nation 0 h 0.5 h 2 h 6 h 24 h 72 h 120 h Normal 0.448±0.06 0.448±0.06 0.448±0.06 0.448±0.06 0.448±0.06 0.448±0.06 0.448±0.06 Original 0.538±0.07* 0.637±0.05* 0.709±0.05* 0.758±0.09* 0.627±0.09* 0.531±0.06* 0.389±0.11*Model 0.542±0.06* 0.639±0.04* 0.705±0.07* 0.765±0.06* 0.631±0.05* 0.536±0.08* 0.384±0.07*Astragalus 0.442±0.05# 0.526±0.04# 0.59±0.05# 0.658±0.04# 0.561±0.06# 0.478±0.03#0.386±0.03

Tab 2 The effect of astragalus injection on OD value of the activity of JNK3 protein after hypoxia/hypoglycemia and reoxygenation in hippocampal neurons of rats ± s，n=6)

Tab 2 The effect of astragalus injection on OD value of the activity of JNK3 protein after hypoxia/hypoglycemia and reoxygenation in hippocampal neurons of rats ± s，n=6)

Note see Tab 1.*P<0.05 vs normal;#P<0.05 vs model and original

Group The time of hypoxia/hypoglycemia and reoxyge nation 0 h 0.5 h 2 h 6 h 24 h 72 h 120 h Normal 0.368±0.07 0.368±0.07 0.368±0.07 0.368±0.07 0.368±0.07 0.368±0.07 0.368±0.07 Original 0.57±0.08* 0.605±0.04* 0.70±0.04* 0.891±0.07* 0.726±0.03* 0.659±0.03* 0.259±0.09*Model 0.58±0.09* 0.608±0.05* 0.71±0.04* 0.894±0.05* 0.729±0.02* 0.662±0.03* 0.261±0.1*Astragalus 0.466±0.07# 0.501±0.06# 0.628±0.05# 0.759±0.05# 0.642±0.05# 0.605±0.06#0.263±0.12

2 結(jié)果

2.1 海馬神經(jīng)元原代培養(yǎng)形態(tài)和純度 NSE免疫組化染色結(jié)果顯示:無血清培養(yǎng)8 d的海馬神經(jīng)元胞體飽滿，突起明顯、突起末端分支形成神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)，相互支持生長，神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞少見，3個(gè)400倍視野中陽性神經(jīng)細(xì)胞的數(shù)目為68個(gè)，純度為(91.48±0.72)%，見 Fig 1。

Fig 1 Hippocampal neurons stained with NSE(×400)

2.2 黃芪注射液對缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖大鼠海馬神經(jīng)元JNK3蛋白表達(dá)的影響 Western blot實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示:與正常對照組相比，模型組在復(fù)氧復(fù)糖后0、0.5、2、6、24 和 72 h 海馬神經(jīng)元 JNK3 蛋白條帶平均光密度值均增加(P<0.05)，復(fù)氧復(fù)糖120 h JNK3蛋白條帶平均光密度值降低(P<0.05)。與模型組相比，黃芪注射液組除復(fù)氧復(fù)糖120 h外各時(shí)間段JNK3蛋白條帶平均光密度均降低(P<0.05)，而黃芪溶劑對照組則差異無顯著性(P>0.05)，見 Tab 1，F(xiàn)ig 2。

Fig 2 The effect of astragalus injection on expressionof JNK3 protein after hypoxia/hypoglycemia and

2.3 黃芪注射液對缺糖缺氧/復(fù)糖復(fù)氧大鼠海馬神經(jīng)元JNK3活性的影響 ELISA實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示:與正常對照組相比，模型組在復(fù)氧復(fù)糖后0、0.5、2、6、24和72 h海馬神經(jīng)元JNK3蛋白濃度及其活性O(shè)D值均增加(P<0.05)，復(fù)氧復(fù)糖120 h JNK3蛋白濃度及其活性O(shè)D值降低(P<0.05)。與模型組相比，黃芪注射液組除復(fù)氧復(fù)糖120 h外各時(shí)間段JNK3蛋白濃度及其活性O(shè)D值均降低(P<0.05)，而黃芪溶劑對照組則差異無顯著性(P>0.05)。見Tab 2、3。

Tab 3 The effect of astragalus injection on the concentration of JNK3 protein after hypoxia/hypoglycemia andreoxygenation in hippocampal neurons of rats(mg·L －1，n=6)

Tab 4 The effect of astragalus injection on the ratio of mean optic density(MOD)of expression of JNK3 mRNA and β-actin after hypoxia/hypoglycemia and reoxygenation in hippocampal neurons of rats(ˉ±s，n=6)

Tab 4 The effect of astragalus injection on the ratio of mean optic density(MOD)of expression of JNK3 mRNA and β-actin after hypoxia/hypoglycemia and reoxygenation in hippocampal neurons of rats(ˉ±s，n=6)

Note see Tab 1.*P<0.05 vs normal;#P<0.05 vs model and original

Group The time of hypoxia/hypoglycemia and reoxyge nation 0 h 0.5 h 2 h 6 h 24 h 72 h 120 h Normal 0.468±0.04 0.468±0.04 0.468±0.04 0.468±0.04 0.468±0.04 0.468±0.04 0.468±0.04 Original 0.578±0.07* 0.637±0.06* 0.712±0.05* 0.759±0.07* 0.631±0.08* 0.603±0.12* 0.542±0.11*Model 0.586±0.06* 0.642±0.05* 0.702±0.06* 0.767±0.07* 0.638±0.07* 0.596±0.09* 0.539±0.11*Astragalus 0.452±0.05# 0.534±0.03# 0.62±0.03# 0.662±0.05# 0.567±0.07# 0.554±0.07#0.538±0.09

2.4 黃芪注射液對缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖大鼠海馬神經(jīng)元JNK3 mRNA表達(dá)的影響 RT-PCR結(jié)果顯示:與正常對照組相比，模型組大鼠在復(fù)氧復(fù)糖后0、0.5、2、6、24、72 和 120 h 海馬神經(jīng)元 JNK3 mRNA條帶密度均有所增強(qiáng)，其平均光密度值均明顯增加(P<0.05);與模型組相比，黃芪注射液組除復(fù)氧復(fù)糖120 h外各時(shí)間段JNK3 mRNA條帶平均光密度均降低(P<0.05)，而黃芪溶劑對照組則差異無顯著性(P>0.05)，見 Tab 4，F(xiàn)ig 3。

3 討論

Fig 3 The effect of astragalus injection on expression of JNK3mRNA after hypoxia/hypoglycemia and reoxygenation in hippocampal neurons of rats.RT-PCR of JNK3 mRNA

腦血管疾病是臨床常見病，其中缺血性腦血管病占絕大部分［7］。腦缺血后的再灌注損傷是缺血性腦血管病發(fā)病的重要病理生理環(huán)節(jié)，主要通過誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡導(dǎo)致神經(jīng)元死亡［7］。缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖所致的神經(jīng)細(xì)胞損傷是腦缺血/再灌注損傷主要表現(xiàn)形式之一。研究表明［8］，神經(jīng)細(xì)胞缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖后常常發(fā)生細(xì)胞凋亡。

MAPK信號通路是缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖后神經(jīng)元凋亡發(fā)生的重要環(huán)節(jié)，JNK3是引發(fā)MAPK信號通路下游信號及神經(jīng)細(xì)胞凋亡相關(guān)基因表達(dá)的關(guān)鍵，抑制JNK的活性可以抑制神經(jīng)元的凋亡［9］。JNK家族是一類絲氨酸/蘇氨酸激酶，是哺乳動(dòng)物內(nèi)發(fā)現(xiàn)的第三類MAPK(mitogen-activated protein kinases)家族［10］。JNK3是它的一個(gè)亞型，主要表達(dá)于腦組織［11］。在鈣離子超載、氧自由基等應(yīng)激刺激下，表達(dá)于細(xì)胞質(zhì)的JNK3被磷酸化而激活后逐漸轉(zhuǎn)移到細(xì)胞核內(nèi)，調(diào)節(jié)c-jun等凋亡相關(guān)的轉(zhuǎn)錄因子。JNK可調(diào)控ATF2內(nèi)在的組蛋白乙?；D(zhuǎn)移酶活性和泛素介導(dǎo)的AP-1蛋白降解［12］，提高轉(zhuǎn)錄因子的穩(wěn)定性，從而引發(fā)JNK下游底物caspase等的凋亡級聯(lián)反應(yīng)［13］。

中醫(yī)認(rèn)為［14］，黃芪具有補(bǔ)氣生陽、益氣固表、抗毒生肌之功能。藥理學(xué)研究表明［14，15］，黃芪能明顯提高腦缺血/再灌注鼠腦組織內(nèi)超氧化物歧化酶(SOD)、一氧化氮合酶(NOS)和一氧化氮(NO)含量，清除氧自由基，增加微循環(huán)灌注，從而有效對抗腦缺血/再灌注損傷［15］。趙燕玲等［16］研究表明黃芪能減少大鼠腦缺血/再灌注后的神經(jīng)元凋亡。黃芪注射液臨床應(yīng)用廣泛，每1 ml相當(dāng)于生藥2 g，姚晨玲等［17］的研究證明黃芪注射液對體外培養(yǎng)的神經(jīng)細(xì)胞去血清損傷有保護(hù)作用。本實(shí)驗(yàn)前期實(shí)驗(yàn)通過MTT法證實(shí)加入終濃度為0.5 g(生藥)·L－1黃芪注射液對神經(jīng)元的保護(hù)作用最佳［6］。

本實(shí)驗(yàn)以大鼠海馬神經(jīng)元原代培養(yǎng)為基礎(chǔ)，通過對培養(yǎng)細(xì)胞施加缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖因素來模擬腦缺血/再灌注病理生理過程，建立腦缺血/再灌注的細(xì)胞模型，從蛋白和基因水平觀察黃芪注射液對缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖大鼠海馬神經(jīng)元JNK3表達(dá)的影響。實(shí)驗(yàn)證實(shí):缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖組JNK3表達(dá)明顯增強(qiáng)，結(jié)合本課題組前期實(shí)驗(yàn)觀察到缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖可使大鼠海馬神經(jīng)元凋亡現(xiàn)象［6］，推測缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖可通過增加JNK3蛋白及其mRNA表達(dá)而誘發(fā)神經(jīng)元凋亡。黃芪注射液可明顯降低缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖后 0、0.5、2、6、24、72 h 各時(shí)間點(diǎn)JNK3蛋白及其mRNA的平均光密度值(P<0.05)，同時(shí)使其蛋白活性O(shè)D值明顯降低。表明黃芪注射液可抑制缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖大鼠海馬神經(jīng)元凋亡相關(guān)基因JNK3 mRNA表達(dá)，從而抑制JNK3蛋白表達(dá)，降低了JNK3蛋白活性，從而抑制缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖大鼠海馬神經(jīng)元的凋亡。

本實(shí)驗(yàn)觀察到缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖后120 h JNK3的表達(dá)與正常組相比差異無顯著性，推測可能是由于磷酸化的JNK3半衰期為48 h［18］，復(fù)氧復(fù)糖72 h后已表達(dá)的JNK3蛋白開始大量降解造成的。

［1］ Davis R J.Signal transduction by the JNK group of MAP kinases［J］.Cell，2000，103(4):221 －9.

［2］ Sun W，Gould T W，Newbern J，et al.Phosphorylation of c-Jun in avian and mammalian motoneurons in vivo during apoptosis:An early reversible event in the apoptotic cascade［J］.Neuroscience，2005，25(23):5595 －603.

［3］ 劉廣義，付志新，郝娟芝，等.大鼠腦缺血再灌流后 Bcl-2、Caspase-3 mRNA水平表達(dá)與大腦皮質(zhì)及紋狀體區(qū)炎性細(xì)胞浸潤的影響［J］.神經(jīng)疾病與精神衛(wèi)生，2004，4(4):252 －5.

［3］ Liu G Y，F(xiàn)u Z X，Hao J Z，et al.Ischemia and reperfusion in rat brain after Bcl-2，Caspase-3 mRNA expression levels in cerebral cortex and striatum of the impact of inflammatory cell infiltration［J］.Neurol Dis Psychiatr Sanitat，2004，4(4):252 －5.

［4］ Brewer G J，Torricelli J R，Evege E K，et al.Optimized survival of hippocampal neurons in B27-supplemented Neurobasal，a new serum-free medium combination［J］.Neurosci Res，1993，35(5):567－76.

［5］ Bossenmeyer P C，Koziel V，Daval J L.Hypoxia/reoxygenation induce apoptosis through biphasic induction of protein synthesis in cultured rat brain neurons［J］.Neuroscience，2000，95(4):1157 －65.

［6］ 張雅麗，高維娟，閆鳳霞，等.黃芪注射液抑制缺氧缺糖后復(fù)氧復(fù)糖大鼠海馬神經(jīng)細(xì)胞凋亡的研究［J］.中國老年學(xué)雜志，2009，29(7):793 －6.

［6］ Zhang Y L，Gao W J，Yan F X，et al.Astragalus inhibition after oxygen-glucose deprivation and reoxygenation of rat hippocampus complex sugar apoptosis［J］.China Gerontol J，2009，29(7):793－6.

［7］ Gross A.BCL2 proteins:regulators of the mitochondrial apoptotic program［J］.IUBMB Life，2001，52(3 －5):231 －6.

［8］ Raisova M，Hossini A M，Eberle J，et al.The Bax/Bcl-2 ratio determines the susceptibility of human melanoma cells to CD95/Fas2 mediated apoptosis［J］.Curr Biol，2000，10(8):290 －2.

［9］ 方 芳，陳曉春，朱元貴，等.JNK的激活在MPP誘導(dǎo)SHSY5Y細(xì)胞凋亡的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)中的作用［J］.中國病理生理雜志，2003，19(2):198－202.

［9］ Fang F，Chen X C，Zhu Y G，et al.JNK activation in the MPP-induced apoptosis SHSY5Y signal transduction role in the［J］.Chin J Pathophysiol，2003，19(2):198 －202.

［10］Weitzman J B.Quick guide.JNK ［J］.Curr Biol，2000，10(8):R290.

［11］Davis R J.Signal transduction by the JNK group of MAP kinases［J］.Cell，2000，103(1):239 －52.

［12］章 茜，程江濤，王書春，等.MAPKs在睡眠剝奪大鼠海馬神經(jīng)元內(nèi)表達(dá)變化的研究［J］.中國病理生理雜志，2004，20(10):1874－7.

［12］Zhang Q，Cheng J T，Wang S C，et al.The study about the expressional change of MAPKs in hippocampal neurons after deprivation of sleep in rat［J］.Chin J Pathophysiol，2004，20(10):1874 －7.

［13］Bozyczko-Coyne D，O′Kane T M，Wu Z L，et al.CEP-1347/KT-7515，an inhibitor of SAPK/JNK pathway activation，promotes survival and blocks multiple events associated with a beta-induced cortical neuron apoptosis［J］.J Neurochem，2001，77(3):845 －63.

［14］柯 慶，鄧常青.黃芪對沙土鼠腦缺血/再灌注損傷的影響［J］.中國中西醫(yī)結(jié)合急救雜志，2001，3(2):105 －8.

［14］Ke Q，Deng C Q.Astragaloside Gerbils cerebral ischemia-reperfusion injury in rats［J］.Chin J Integ Trad West Med Intens Crit Care，2001，3(2):105 －8.

［15］陳曉春，薛 茜.大鼠腦缺血/再灌注損傷及黃芪對腦細(xì)胞保護(hù)作用的實(shí)驗(yàn)研究［J］.陜西醫(yī)學(xué)雜志，2004，33(11):974 －6.

［15］Chen X C，Xue Q.Rat cerebral ischemia-reperfusion injury and Astragalus on the protection of brain cells in rats［J］.Shanxi Med J，2004，33(11):974 －6.

［16］趙燕玲，王宗仁.黃芪對腦缺血/再灌注后神經(jīng)細(xì)胞凋亡及Bcl-2蛋白表達(dá)的影響［J］.中國臨床康復(fù)，2005，9(33):92－4.

［16］Zhao Y L，Wang Z R.Astragaloside cerebral ischemia and reperfusion on apoptosis and Bcl-2 protein expression［J］.Chin Clin Rehab，2005，9(33):92 －4.

［17］姚晨玲，黃培志，童朝陽，等.黃芪注射液對培養(yǎng)神經(jīng)細(xì)胞損傷的保護(hù)作用［J］.中國臨床醫(yī)學(xué)，2002，9(2):164 －8.

［17］Yao C L，Huang P Z，Tong C Y，et al.Astragalus on cultured nerve cells injury in rat［J］.Chin Clin Med，2002，9(2):164 － 8.

［18］王 寧，薛瑞玲，姚法志，等.JNK3信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路在大鼠腦缺血再灌注損傷中的作用［J］.西安交通大學(xué)學(xué)報(bào)，2007，28(6):617－8.

［18］Wang N，Xue R L，Yao F Z，et al.Effects of JNK signal passway on brain ischemia/reperfusion in rats［J］.J Xian Commun Univ(Med Sci)，2007，28(6):617 －8.