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人硫氧還蛋白基因真核表達(dá)載體的構(gòu)建及其在COS-7細(xì)胞中的表達(dá)

2011-05-29 09:17龔少愚魏慧淵孫茂民江家貴南京中醫(yī)藥大學(xué)無錫附屬醫(yī)院江蘇無錫2400
中國老年學(xué)雜志 2011年16期
關(guān)鍵詞:真核克隆質(zhì)粒

蘇 偉 高 楓 龔少愚 魏慧淵 孫茂民 江家貴 (南京中醫(yī)藥大學(xué)無錫附屬醫(yī)院,江蘇 無錫 2400)

硫氧還蛋白(TRX)是一類分布廣泛的小分子多功能蛋白,在細(xì)胞內(nèi)行使著各種不同的功能〔1〕。TRX與其還原酶及煙酰胺腺嘌呤二核苷酸脫氫酶(NADPH)構(gòu)成的氧化還原系統(tǒng)介導(dǎo)氫的傳遞,亦可單獨(dú)作為蛋白質(zhì)二硫鍵氧化還原發(fā)揮作用,對許多蛋白質(zhì)的功能進(jìn)行調(diào)節(jié)〔2,3〕。TRX有強(qiáng)烈的清除體內(nèi)過氧化物的功能,在機(jī)體抗氧化過程中起著重要的作用〔4,5〕,對防止心腦器官缺血再灌注損傷性有重要作用〔6〕。人TRX(human thioredoxin,hTRX)基因定位于3p12-p11,基因全長13 kb,其保守區(qū)為318 bp,開放閱讀框架編碼了含104個氨基酸組成蛋白質(zhì)〔7,8〕。為探討hTRX基因的生物學(xué)活性及其在內(nèi)皮細(xì)胞氧化應(yīng)激過程中的作用,本文擬克隆并構(gòu)建hTRX的真核表達(dá)載體,為后續(xù)研究的開展提供基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 材料 RNA抽提試劑盒、TaqDNA聚合酶、限制性核酸內(nèi)切酶 EcoR I、BamH I、dNTPs、MgCl2均購自大連寶生物工程公司。逆轉(zhuǎn)錄試劑、pcDNA3.0質(zhì)粒購自上海申能博彩生物科技制品有限公司。DH5α菌株由本室保存,pUCm-T Vector載體試劑盒購自Promega公司。正常人胎肝取自水囊引產(chǎn)之胎兒(4月齡)。中國人民解放軍蘇州100醫(yī)院婦產(chǎn)科。hTRX引物P1:5'-CGGAATTCATGGTGAAGCAGATCGAGAGC-3',P2:5'-CGGGATCCGATTAGACTAATTCATTAATG-3'。上游引物5'端設(shè)有DNA限制酶(EcoRⅠ)酶切位點(diǎn),下游引物:5'端含限制性核酸內(nèi)切酶Ⅰ(BamHⅠ)酶切位點(diǎn)。引物參考GenBank的hTRX基因序列(J04026)設(shè)計(jì),由上海生物工程公司合成。

1.2 方法

1.2.1 RT-PCR擴(kuò)增hTRX cDNA ①取胎兒肝組織約150 mg,參照RNA抽提試劑盒手冊進(jìn)行總RNA的提取。②取3 μl總 RNA,15 mmol/L Oligo(dT)18 加入 2 μl,65℃ 作用5 min;然后加入5×RT緩沖液4μl,10 mmol/L dNTPs 2μl和0.5μl RNA酶抑制劑,1μl逆轉(zhuǎn)錄酶(M-MLV)逆轉(zhuǎn)錄酶,最后加雙蒸水至總體積為20μl,置37℃水浴1 h,90℃處理10 min后,獲得cDNA模板。③ 取 cDNA 模板2μl,P11μl,P21μl,10 mmol/L dNTP 2 μl,10 × Reaction Buffer 5 μl,MgCl23 μl,TaqDNA 聚合酶1 μl,dd H2O 35 μl,擴(kuò)增體積為 50 μl,置 PCR儀中擴(kuò)增。首先94℃ 3 min預(yù)變性,然后進(jìn)行下列循環(huán):94℃45 s,58℃ 45 s,72℃ 1 min,共 32 個循環(huán),最后 72℃ 延伸10 min。PCR產(chǎn)物用1.2%瓊脂糖凝膠電泳檢測。

1.2.2 重組pUCm-T/hTRX質(zhì)粒的構(gòu)建與鑒定 將hTRX cDNA與pUCm-T載體進(jìn)行體外連接(參照Promega公司T載體系統(tǒng)說明書進(jìn)行),然后轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)細(xì)菌,用抗性篩選法挑選陽性菌落并進(jìn)行測序,取測序正確的重組質(zhì)粒進(jìn)行擴(kuò)增。

制備DH5α大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞并轉(zhuǎn)化。過程如下:①取活化的DH5α按1%接種入30 ml LB培養(yǎng)基中振蕩培養(yǎng),至OD值為0.3左右。②倒入50 ml離心管中0℃,10 min。→4℃,5 000 r/min,離心 5 min?!鷹壣锨?,振松菌塊,加入 8 ml 100 mmol/L預(yù)冷 CaCl2,0℃,30 min?!?℃,5 000 r/min,離心5 min?!鷹壣锨?,振松菌塊,加入200μl 100 mmol/L預(yù)冷CaCl2。③按下表進(jìn)行轉(zhuǎn)化:

表1 質(zhì)粒轉(zhuǎn)化及分組

④0℃,30 min。→ 42℃,90 s。→0℃,2 min?!?加37℃預(yù)熱的LB 1 ml?!?7℃,45 min搖動震蕩培養(yǎng)。⑤5 000 r/min,離心5 min,棄上清。留100μl混懸液分別涂布平板,37℃置隔水式恒溫培養(yǎng)箱。⑥待實(shí)驗(yàn)組平板有藍(lán)白菌落生長時,從中挑取白色單菌落接種于5 ml 1%LB中,37℃,震蕩培養(yǎng)過夜。⑦用V-gene公司質(zhì)粒抽提試劑盒提取質(zhì)粒。

1.2.3 hTRX克隆基因序列分析 以陽性克隆重組質(zhì)粒cDNA為模板,選擇T7測序引物,雙脫氧終止法測定克隆基因序列。

1.2.4 pcDNA3.0/hTRX真核重組質(zhì)粒的構(gòu)建 用EcoRⅠ和BamHⅠ雙酶切經(jīng)測序驗(yàn)證的pUCm-T/hTRX質(zhì)粒DNA,回收目的hTRX cDNA基因片段,將其定向克隆至經(jīng)EcoRⅠ和BamHⅠ雙酶切的pcDNA3.0真核表達(dá)質(zhì)粒上,以常規(guī)氯化鈣法轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)細(xì)胞,用PCR和雙酶切分析法鑒定重組子。雙酶切反應(yīng):體系①pMD18-T 10 μl,10 ×Buffer 5 μl,EcoRⅠ 0.9 μl,BamHⅠ 0.7 μl,ddH2O 33.4 μl共 50 μl。②pcDNA3.0 10 μl,10× Buffer 5 μl,EcoR Ⅰ 1.0 μl,BamH Ⅰ 0.8 μl,ddH2O 31.2μl,共50μl。在37℃作用3~5 h,隨后進(jìn)行核酸瓊脂糖電泳,用V-Gene公司膠回收試劑盒分別回收hTRX cDNA片段和pcDNA3.0載體分別經(jīng)EcoRⅠ和BamHⅠ雙酶切后用于連接反應(yīng)?;蛑亟M連接反應(yīng)體系:hTRX cDNA片段3μl,雙酶切的pcDNA3.0 1.5 μl,10 × Buffer 1 μl,T4 DNA 連接酶 0.8 μl,ddH2O 3.7 μl,共10 μl,16℃ ~18℃連接過夜,以備轉(zhuǎn)化。后續(xù)的轉(zhuǎn)化、酶切及PCR鑒定方法同hTRX克隆載體部分相同。

1.2.5 pcDNA3.0-hTRX轉(zhuǎn)染非州青猴腎細(xì)胞(COS-7)細(xì)胞

接種COS-7細(xì)胞于6孔板,3×106個細(xì)胞/孔,37℃,5%CO2條件下孵育18~24 h至60% ~80%融合度,然后用無血清DMEM將上述貼壁COS-7細(xì)胞洗1~2次,加入預(yù)先混合30 min的溶液 A:pcDNA3-ING4 6 μl、DMEM 94 μl;B:Lipofectamine 8 μl、DMEM 92 μl。于37℃、5%CO2條件下孵育5 h,補(bǔ)加1 ml DMEM含20%胎牛血清(FCS)/孔,繼續(xù)孵育18~24 h,換液為DMEM(10%FCS),37℃,5%CO2條件下繼續(xù)培養(yǎng)24~72 h后收集COS-7細(xì)胞(4℃保存?zhèn)溆?,同時以同樣的方法將pcDNA3.0空載體轉(zhuǎn)染的COS-7細(xì)胞作空白對照。

1.2.6 COS-7細(xì)胞中hTRX mRNA的檢測 轉(zhuǎn)染72 h后,分別收集實(shí)驗(yàn)組hTRX基因重組質(zhì)粒和空載體質(zhì)粒轉(zhuǎn)染的COS-7細(xì)胞,Trizol提取細(xì)胞總RNA,以此RNA為模板按常規(guī)法合成cDNA第一鏈,用上述引物的常規(guī)PCR法擴(kuò)增hTRX編碼區(qū)cDNA。具體反應(yīng)條件為 94℃ 30 s,58℃ 30 s,72℃ 1 min,熱循環(huán)32次,最后72℃延伸10 min。產(chǎn)物通過瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行鑒定。

2 結(jié)果

2.1 PCR擴(kuò)增hTRX基因 PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳,顯示為一約335 bp的片段,與理論預(yù)測結(jié)果相符。見圖1。

圖1 RT-PCR擴(kuò)增產(chǎn)物凝膠電泳分析

2.2 重組質(zhì)粒pUCm-T/hTRX的鑒定 pUCm-T/hTRX質(zhì)粒經(jīng)PCR和雙酶(EcoRⅠ、BamHⅠ)切法鑒定均出現(xiàn)335 bp大小的條帶,表明重組載體構(gòu)建正確。見圖2。

2.3 擴(kuò)增hTRX基因測序與分析 測序結(jié)果與已發(fā)表的序列和基因庫數(shù)據(jù)相比完全一致。

2.4 重組真核表達(dá)載體pcDNA3.0/hTRX的鑒定 pcDNA3.0/hTRX經(jīng)PCR和雙酶切(EcoRⅠ、BamHⅠ)鑒定均出現(xiàn)了335 bp大小的條帶,測序結(jié)果同克隆測序結(jié)果,表明真核表達(dá)載體構(gòu)建正確。見圖3。

圖2 重組質(zhì)粒的PCR及酶切鑒定

2.5 hTRX基因在轉(zhuǎn)染COS-7細(xì)胞中的表達(dá)檢測 經(jīng)RT-PCR檢測證實(shí)hTRX基因轉(zhuǎn)染細(xì)胞內(nèi)有hTRX mRNA表達(dá),而轉(zhuǎn)染空白載體pcDNA3.0的細(xì)胞內(nèi)無hTRX mRNA表達(dá)。見圖4。

圖3 重組真核表達(dá)載體的PCR及酶切鑒定

圖4 RT-PCR鑒定hTRX mRNA

3 討論

Wollman等首次從3B6EB病毒轉(zhuǎn)化的人淋巴母細(xì)胞B細(xì)胞(3B6 Human EBV Lymphoblastoid B Cell Line)克隆hTRX基因全長cDNA序列。Kaghad等從λEMBL4嗜菌體人類基因文庫中分離出hTRX全長cDNA片段。hTRX基因長達(dá)13 kb并含有5個外顯子被4個內(nèi)含子分開,編碼12 kD的蛋白質(zhì)。Southern分析表明在人類基因組中存在幾種hTRX基因,但至少其中之一是無活性的假基因〔7〕。同植物和細(xì)菌的 TRX一樣,hTRX具有高度保守的酶活性中心:Trp-Cys-Gly-Pro-Cys?;钚灾行牡亩€基可被可逆的氧化形成二硫鍵,并可通過這個過程來控制靶蛋白中二硫鍵或二巰基的形成,調(diào)控靶蛋白的活性與功能。研究發(fā)現(xiàn),其活性部位CXXC存在于許多具有類似活性的蛋白質(zhì)中〔8,9〕,但是,hTRX與大腸桿菌TRX的活性中心不同,其活性中心還有另外的三個半胱氨酸,該結(jié)構(gòu)賦予hTRX獨(dú)特的生物活性。已證實(shí)成人T白血病細(xì)胞的自分泌生長因子——成人T細(xì)胞衍生因子(ADF)即為hTRX。

因?yàn)閙RNA編碼hTRX在細(xì)胞分裂活躍的組織中高表達(dá),所以,以胎肝細(xì)胞RNA為模板,根據(jù)hTRX基因已知序列設(shè)計(jì)引物,用RT-PCR方法擴(kuò)增出hTRX成熟蛋白基因片段。經(jīng)克隆后測序分析比較,結(jié)果與Gasdaska等從HT 29結(jié)腸癌肉瘤細(xì)胞、Lalop EB病毒轉(zhuǎn)換化的人淋巴母細(xì)胞(Lalop Human EBV Lymphoblastoid Cell Line)和正常人肝組織提取的hTRX cDNA序列完全相同??寺⌒蛄信cGenbank提供的hTRX cDNA序列完全相同。王應(yīng)等通過對從人胚肝細(xì)胞來源的hTRX c DNA序列分析,發(fā)現(xiàn)其只包含了hTRX的第1,2,4,5個外顯子,第3個外顯子(60 bp)被完整地剪切掉,其他核酸序列及另外六種模板來源的hTRX cDNA序列與Genbank提供的相同〔10〕。編碼hTRX成熟蛋白的cDNA基因的克隆成功,為進(jìn)一步研究其功能活性提供了條件。

真核表達(dá)載體是基因轉(zhuǎn)導(dǎo)的理想載體,陽離子脂質(zhì)體介導(dǎo)法又以其轉(zhuǎn)染效率高、無免疫原性、整合和擴(kuò)散性小、操作簡便、容量大而受到國內(nèi)外學(xué)者關(guān)注。本實(shí)驗(yàn)中構(gòu)建了hTRX真核表達(dá)載體,經(jīng)PCR、雙酶切和基因測序結(jié)果均表明重組載體pcDNA3.0/hTRX構(gòu)建正確,為進(jìn)一步研究hTRX基礎(chǔ)。

作為一種真核瞬時表達(dá)系統(tǒng),COS-7細(xì)胞是研究蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)與功能的有利工具,多種載體可在COS-7細(xì)胞中表達(dá)外源基因〔11〕。本文采用成功構(gòu)建的真核表達(dá)載體pcDNA3.0/hTRX轉(zhuǎn)染宿主細(xì)胞系COS-7對hTRX基因的真核表達(dá)進(jìn)行了初步研究。RT-PCR檢測證實(shí)hTRX基因至少在轉(zhuǎn)錄水平上有表達(dá)。為進(jìn)一步pcDNA3.0-hTRX轉(zhuǎn)染內(nèi)皮細(xì)胞,探討hTRX基因的生物學(xué)活性及其在內(nèi)皮細(xì)胞氧化應(yīng)激過程中的作用奠定了基礎(chǔ)。

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