諸葛麗 蘇冬梅 李 健 楊美娟 劉云霞 李軍祥△
1.北京中醫(yī)藥大學東方醫(yī)院消化內(nèi)科 (北京,100078) 2.北京中醫(yī)藥大學基礎(chǔ)醫(yī)學院人體形態(tài)學系
NASH是非酒精性單純性脂肪肝 (NAFL)向非酒精性脂肪性肝硬化 (NAC)進展過程中的重要環(huán)節(jié),是隱源性肝硬化的重要原因之一[1]。NASH發(fā)病機制不明確,目前國際上公認的為“二次打擊學說”。在NASH發(fā)病的“第二次打擊”中,NF-κB促炎信號傳導通路及PPARr抗炎信號傳導通路的失衡是導致脂肪性炎癥發(fā)生和發(fā)展的重要原因之一[2]。姜黃素是一種多酚類化合物,主要存在于姜科及天南星科植物的根莖中。它是我國常用中藥姜黃、郁金、莪術(shù)、石菖蒲中的主要有效化學成分。研究表明姜黃素可抑制多種原因誘發(fā)的肝臟疾?。?],具有抗纖維化,抗炎以及線粒體保護等作用。目前針對姜黃素干預(yù)NASH的研究較少,且主要集中在療效方面,并沒有進一步探討其作用機制。本文通過建立MCD飲食誘導的小鼠NASH模型,研究并探討中藥單體姜黃素對NASH的炎癥信號傳導通路的調(diào)控作用。
1.1 實驗動物 本實驗選用8~12周齡C57/BL6雄性♂小鼠,體重20±2g,(北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司提供)。實驗動物常規(guī)飼養(yǎng)于北京中醫(yī)藥大學清潔級動物房,12小時光照和黑夜循環(huán),溫度 (22±2)℃,濕度50% ~60%。
1.2 實驗用飼料、藥物、主要試劑及儀器 MCD飼料的配方參考國外文獻[4]。MCS飼料配方[5],即MCD對照飼料,是在MCD飼料配方基礎(chǔ)上,加上膽堿2g/Kg、蛋氨酸3g/Kg。MCD及MCS飼料均由江蘇南通特洛菲飼料有限公司加工制作,為清潔級飼料,4℃低溫保存。姜黃素由西安冠宇生物技術(shù)有限公司提供,98%標準品。姜黃素灌胃用藥劑量按實驗動物與人體體表面積比等效量核算比率,計算出小鼠的等效劑量為1.15g/kg,溶劑選用DMSO。油紅O及HE染色相關(guān)試劑購自美國Sigma公司;ALT、AST試劑盒購自于中生北控科技股份有限公司;TNF-α、IL-4、IL-6試劑盒購自于北京華英生物技術(shù)研究所;PPARγ抗體及 NF-κB抗體購自于 abcam公司。
1.3 模型制備及分組 15只C57/BL6雄性小鼠予普通飼料適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后隨機分成3組,予以造模及藥物干預(yù)。MCS組5只 (即空白對照組),予以MCS飼料喂養(yǎng);MCD組5只(即模型組),予以MCD飼料喂養(yǎng);姜黃素組5只 (姜黃素干預(yù)組),予以MCD飼料喂養(yǎng);實驗動物自由攝食、飲水。
1.4 藥物干預(yù)及取材 造模即日起,姜黃素組予以姜黃素溶液0.1ml/10g灌胃,1次/d,選用DMSO作為溶劑;MCS組和MCD組均予以DMSO,0.1ml/10g灌胃,1次/d,連續(xù)兩周。姜黃素灌胃用藥劑量按實驗動物與人體體表面積比等效量核算比率,計算出小鼠的等效劑量為1.15g/kg。兩周藥物干預(yù)實驗結(jié)束,小鼠禁食水12小時后,稱重;乙醚麻醉;眼靜脈取血,分離血清,-80℃保存;肝臟稱重后部分液氮凍存,部分4%多聚甲醛固定。
1.5 指標檢測
1.5.1 肝組織病理學檢測 小鼠肝組織冰凍切片,行常規(guī)油紅O染色;肝組織石蠟切片,行常規(guī)HE染色。油紅O及HE切片光鏡下評估肝臟脂肪變性和炎癥活動情況。NASH的病理診斷標準采用“亞太地區(qū)非酒精性脂肪性肝病診斷與治療共識”推薦的美國國立衛(wèi)生研究院NASH臨床研究網(wǎng)絡(luò)病理委員會2005年所定指南,根據(jù)其制定的NAFLD活動度積分(NAFLD Activity Score,NAS)進行評估。NAS組織學評分系統(tǒng)對14項病理改變,3項指標進行了半定量評估計分:肝脂肪變 (按發(fā)生脂肪變性實質(zhì)細胞/總細胞數(shù),<5%、5% ~33%、33% ~66%、>66%,分別計0~3分)、小葉內(nèi)炎癥(按無病灶、<2、2~4、>4,分別計0~3分)、肝細胞氣球樣變 (按無、少量氣球樣細胞、較多/顯著氣球樣變,分別計0~2分),其中NAS≥5分者可明確NASH的診斷,NAS<3分則可排除NASH,兩者之間者為NASH可能。油紅O及HE切片使用Olympus攝像系統(tǒng)進行觀察和攝片。
1.5.2 血清生化指標檢測 按照試劑盒提供說明書操作,血清ALT、AST采用全自動生化分析儀進行測定。
1.5.3 血清放射免疫 (Radioimmunoassay,RIA) 檢測 按照試劑盒提供說明書測定血清中TNF-α、IL-4、IL-6水平。
1.5.4 Western blot檢測 肝組織NF-κB、PPARγ 蛋白表達進行了Western blot檢測:肝組織剪碎,置于勻漿器中,按10μl的裂解液/mg組織塊的比例加入單去污劑緩沖裂解液,在勻漿器中進行勻漿,裂解30分鐘后,將裂解液移至1.5ml離心管中,4℃,12000rpm離心5分鐘。取上清置于-20℃保存。配置BSA標準液,混勻后室溫放置兩分鐘,在分光光度計上比色分析,檢測樣品蛋白含量。配置凝膠,上樣,電泳。進行蛋白質(zhì)的電轉(zhuǎn)移與膜的封閉,將濾紙和濾膜在轉(zhuǎn)移緩沖液中浸泡15分鐘,將濾膜放在平皿中,用1×麗春紅溶液于脫色搖床上輕搖,染膜5分鐘左右,然后用雙蒸水洗,將濾膜放在平皿中,封閉液室溫震搖1~2小時或4℃過夜。封閉結(jié)束后,將膜放入一塑料帶中,加入溶有一抗的新鮮配制的封閉液;4℃輕輕振搖兩小時,用封閉液清洗3次,每次10~15分鐘,以除去過量的一抗;將膜轉(zhuǎn)入另一塑料袋中,加入溶于封閉液的二抗;封口后室溫振搖孵育1~2小時;取出濾膜,用TBST漂洗3~5次,每次10~15分鐘,除去未結(jié)合的二抗。進行顯色反應(yīng),凝膠圖像分析。
1.6 統(tǒng)計學方法 所有數(shù)據(jù)均采用mean±SD表示 ,采用SPSS 17.0軟件進行統(tǒng)計,顯著性檢測采用One-way ANOVA,對肝臟的病理學檢查結(jié)果采用等級資料的秩和檢測。統(tǒng)計學顯著性用雙側(cè)檢驗P<0.05。
2.1 肝臟外觀 MCS組小鼠肝臟外觀無腫脹增大,呈深紅色,有光澤,質(zhì)軟富有彈性,邊緣銳利,密度正常 (見插頁圖1A)。MCD組小鼠肝臟體積增大,質(zhì)量增加,呈黃色,薄膜緊張,邊緣鈍,彈性差,可見黃色脂肪斑,密度降低 (見插頁圖1 B)。姜黃素組小鼠肝臟體積及質(zhì)量較MCS組無明顯增加,呈淡紅色,可見組織間充盈淡黃色脂肪斑點,邊緣較鈍,彈性減弱。(見插頁圖1C)。
2.2 肝組織病理檢測結(jié)果 HE染色結(jié)果顯示:MCS組小鼠肝組織肝竇清晰可見,肝索排列整齊,形態(tài)結(jié)構(gòu)均正常 (見插頁圖2A);MCD組小鼠肝組織肝充滿大量大小不一的脂肪空泡,肝細胞結(jié)構(gòu)紊亂呈氣球樣變,炎性細胞浸潤明顯,呈灶狀分布,其中肝細胞損害主要集中在腺泡1區(qū),炎性細胞以單核細胞、淋巴細胞為主 (見插頁圖2B);姜黃素組小鼠肝組織可見少量脂肪空泡,較MCD組比較明顯減少,少部分區(qū)域出現(xiàn)肝索結(jié)構(gòu)紊亂,偶見炎性細胞浸潤 (見插頁圖2C)。油紅O染色結(jié)果顯示:MCS組小鼠肝組織未見紅色脂滴 (見插頁圖2A);MCD組小鼠肝組織可見大量紅色脂滴,部分融合成片,表現(xiàn)為脂滴彌漫浸潤入肝細胞中,肝小葉內(nèi)含脂滴細胞數(shù)/總細胞數(shù)約為20% ~45%(見插頁圖2B);姜黃素組小鼠肝組織可見局部散在紅色脂滴,成小顆粒狀,肝小葉內(nèi)寒脂滴細胞數(shù)/總細胞數(shù)約為0.05% ~7%(見插頁圖2C)。
肝組織病理評分如圖3所示,MCD組肝組織NAS評分較MCS組顯著升高 (P=0.000),總分>5分,符合NASH組織學診斷,模型復(fù)制成功。姜黃素組NAS評分較MCS組升高(P=0.018),與MCD組相比顯著下降,差異具有顯著性意義(P=0.000)。
圖3 各組小鼠肝組織H&E和油紅O染色及病理評分
2.3 血清AST、ALT指標檢測結(jié)果 見表1。如表1所示,與MCS組相比,MCD組血清ALT(P=0.000)與AST(P=0.000)活性顯著增加;黃姜素組與MCS組比較,血清ALT(P=0.002)與AST(P=0.001)升高;黃姜素組血清 ALT水平較MCD組顯著下降 (P=0.000),但與AST兩組間差異無顯著性意義。
表1 各組小鼠血清ALT與AST的檢測結(jié)果比較 (mean±SD,U/L)
2.4 血清TNF-α、IL-6、IL-4檢測結(jié)果比較 見表2。
表2 各組小鼠血清TNF-α水平檢測結(jié)果比較 (mean±SD)
如表2所示,MCD組血清TNF-α水平較MCS組升高 (P=0.000);姜黃素組血清TNF-α水平較MCD組明顯下降 (P=0.000),且與MCS組差異無顯著性意義。MCD組血清IL-6水平較MCS組升高 (P=0.036);姜黃素組血清IL-6水平較MCD組顯著下降 (P=0.000),且較MCS組有所下降 (P=0.028)。血清IL-4水平,3組之間差異無顯著性意義。
2.5 Western blot實驗結(jié)果
2.5.1 NF-κB 實驗結(jié)果 見圖 4。
圖4 各組小鼠肝組織NF-κB的表達
如圖4所示,MCD組小鼠肝組織NF-κB表達較MCS組明顯升高 (P=0.034)。姜黃素組NF-κB表達較MCD組顯著降低 (P=0.029)。
2.5.2 PPAR 檢測結(jié)果 見圖5。
圖5 各組小鼠肝組織的PPARγ表達
如圖5所示,MCD組小鼠肝組織PPARγ表達較MCS組顯著降低 (P=0.001)。姜黃素組PPARγ表達較MCS組顯著降低 (P=0.005),與MCD組比較表達有所升高,但差異無顯著性意義。
為了更明確的針對NASH進行研究,我們選用了MCD飲食誘導的動物模型,該模型是國際上公認的用于研究非酒精性脂肪性肝病 (NAFLD)中炎癥及纖維化的最好動物模型之一[6]。本研究前期試驗針對該模型進行了動態(tài)監(jiān)測,結(jié)果顯示MCD飲食誘導的NASH小鼠模型重復(fù)率高,造模2~3周時模型穩(wěn)定性最好[7]。本研究中動物模型肝臟外觀、病理評分、及血清ALT指標數(shù)據(jù)說明本研究成功復(fù)制了MCD飲食誘導的小鼠NASH模型。
本研究數(shù)據(jù)表明,經(jīng)兩周的干預(yù)性給藥,姜黃素可降低小鼠血清ALT、TNF-α、IL-6水平,明顯改善肝組織炎癥病理,在干預(yù)NASH中起到一定的抗炎作用。針對NASH相關(guān)的炎癥信號傳導通路,我們進行了進一步的研究。
NF-κB是一種具有多項轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)作用的蛋白質(zhì),在炎癥和免疫反應(yīng)中起樞紐作用[8]。NF-κB在肝組織的炎性反應(yīng)、氧化應(yīng)激、肝細胞凋亡和再生中發(fā)揮重要作用[9]。NF-κB具有p50和p65兩個亞基,在靜息細胞中,NF-κB與抑制蛋白單體IκBα和IκBβ以無活性結(jié)合形式存于細胞質(zhì)。NF-κB活化后可誘導其他炎癥介質(zhì)基因表達,增強TNF-α、IL-lβ等細胞因子的基因轉(zhuǎn)錄,使其產(chǎn)生和釋放增多,相關(guān)細胞因子繼而再次激活 NF-κB,導致最初的炎癥信號進一步放大[10]。NF-κB在MCD飲食誘導的動物模型早期即可被激活,在該模型中發(fā)揮關(guān)鍵的促炎作用,促使模型向NASH發(fā)展[11]。
PPARγ作為一種核轉(zhuǎn)錄因子,能與其特異性配體結(jié)合,進而在轉(zhuǎn)錄水平上調(diào)控多種基因表達,參與脂肪細胞分化、糖脂代謝、炎癥與免疫等多種生理性效應(yīng)。有研究表明,PPARγ在脂肪性肝炎中起重要的內(nèi)源性調(diào)節(jié)作用,其可以降低促炎因子TNF-α、IL-6的生成。PPARγ基因缺失的小鼠喂食MCD飼料,與正常小鼠比較,發(fā)展成更嚴重的脂肪性肝炎[12]。PPARγ與配體結(jié)合并使之激活后,與視黃醛X受體α(retinoid X receptor α,RXRα)形成異二聚體,再結(jié)合于特異性DNA序列而使靶基因活化,此序列稱為PPAR特異性反應(yīng)元件 (peroxisome proliferator responsive element,PPRE)[13]。PPRE與NF-κB在脂肪肝和正常肝組織中作用相反,活性表現(xiàn)出抗炎機制,抑制脂肪肝炎癥的發(fā)展。PPARγ的抗炎信號途徑和 NF-κB的促炎信號途徑失衡可能導致脂肪肝炎癥的增加[2]。
本研究western blot試驗顯示,姜黃素可以抑制NF-κB的表達,而對PPARγ表達無明顯作用。由此我們可以得出結(jié)論,在NASH的炎癥信號傳導通路中,姜黃素單向作用于NF-κB的促炎信號傳導途徑,抑制NF-κB的表達,從而減少炎癥因子生成達到干預(yù)NASH的作用。而姜黃素對PPARγ的抗炎信號傳導途徑作用不明顯。姜黃素在NF-κB的信號傳導途徑中的具體作用靶點是我們下一步深入研究的重點。
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