劉 謙,顏 紅
(保定出入境檢驗檢疫局,河北 保定 071051)
近年來,不斷出現(xiàn)的“瘦肉精事件”涉及我國食品安全領(lǐng)域。2011年7月,某地從飼料中檢測出了苯乙醇胺A,為新增的瘦肉精品種。苯乙醇胺與其他瘦肉精品種如萊克多巴胺等相比,同樣可使生豬長速加快、皮紅毛亮、瘦肉率高。人吃了含這種瘦肉精的豬肉后,可誘發(fā)高血壓、心臟病等。
苯乙醇胺A又稱為克倫巴胺,克侖巴胺,學(xué)名為2-4-(4-硝基苯基)丁基-2-羥基氨基-1-甲氧基苯乙醇,是一種人工合成的化學(xué)物質(zhì),被農(nóng)業(yè)部第1519號公告列為禁止在飼料和動物飲水中使用的物質(zhì)。
目前有關(guān)瘦肉精類殘留檢測的研究很多,相關(guān)的檢測標(biāo)準(zhǔn)有農(nóng)業(yè)部1025號公告,1063號公告,GB/T 21981-2008,GB/T 21313-2007等,研究對象有豬肉組織[1],動物尿液[2],豬肝臟和豬肌肉[3],毛發(fā)[4]等,但是關(guān)于動物源性食品中苯乙醇胺A的研究很少。本文建立了動物腸衣中苯乙醇胺A殘留的液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜檢測方法,簡便、快捷,靈敏度和準(zhǔn)確度高,檢測限達(dá)0.2μg/kg。
1.1 儀器與試劑 高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜聯(lián)用儀(HPLC TQD),美國Waters公司。MCX固相萃取柱,60mg/3mL,美國 Waters公司。甲醇、乙腈、甲酸、正己烷為色譜純。氨水為分析純。實驗室用水均使用娃哈哈純凈水。
2.0 mol/L乙酸銨緩沖溶液(pH 值=5.2):稱取77.0g乙酸銨溶解于450mL水中,用乙酸調(diào)節(jié)pH值=5.2后,定容至500mL。氨水-乙腈(5+95):準(zhǔn)確量取5 mL氨水用乙腈定容至100mL。0.1%甲酸/水。β-葡萄糖苷酸酶/芳基硫酸酯酶(β-Glucuronidase/aryl sulfatase)。
1.2 標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制 (1)標(biāo)準(zhǔn)溶液貯備液(400 ng/mL),北京市獸醫(yī)藥品監(jiān)察所贈,-20℃保存。
(2)標(biāo)準(zhǔn)工作溶液的配制:移取儲備液適量,用甲醇稀釋成20ng/mL。密封,4℃冷藏。
1.3 方法
1.3.1 色譜條件 色譜柱為Xbridge C18柱,5μm,2.1mm×150mm;流動相為乙腈-0.1%甲酸水溶液,流速0.3mL/min,梯度洗脫;進(jìn)樣體積10μL;柱溫35℃。
1.3.2 質(zhì)譜條件 離子源ESI(電噴霧離子源);掃描方式正離子掃描;檢測方式MRM(多反應(yīng)監(jiān)測);離子源溫度120℃;霧化氣溫度350℃;毛細(xì)管電壓3.2kV;錐孔電壓20V。
1.3.3 樣品前處理
1.3.3.1 酶解 準(zhǔn)確稱取2g(精確到0.01g)豬腸衣/羊腸衣樣品于50mL具塞離心管內(nèi),加入20.0 mL乙酸銨緩沖溶液(pH值=5.2),β-葡萄糖苷酸酶/芳基硫酸酯酶40μL均質(zhì)混勻1min,渦旋提取5 min,超聲提取2min,37℃下避光水浴振蕩16h。
1.3.3.2 凈化 酶解液冷卻后以大于等于8000 r/min離心10min,將上清液過濾至50mL具塞離心管內(nèi),加入15mL正己烷,用力振搖2min后以大于等于8000r/min離心10min,吸去正己烷層。下層清液做備用液。
MCX固相萃取柱依次用甲醇、水各3mL活化,取備用液全部過柱,過濾液速度小于等于2mL/min,接著依次用水、甲醇各3mL淋洗,5mL氨水-乙腈洗脫并且收集。洗脫液在45℃氮氣吹干。用1 mL的0.1%甲酸/水溶解殘渣,加1mL正己烷用力振搖,下層液體過0.22μm膜過濾,上機測定。
標(biāo)準(zhǔn)品和加標(biāo)樣品特征離子譜圖在上述儀器條件下,保留時間為9.51min,測試結(jié)果見圖1~3。圖1表示的是苯乙醇胺A標(biāo)準(zhǔn)品出峰圖,圖2表示的是苯乙醇胺A標(biāo)準(zhǔn)品提取離子出峰圖,圖3表示的是苯乙醇胺A添加1.25μg/kg出峰圖。可以看到,在相應(yīng)的保留時間內(nèi),空白組織對測試物沒有任何干擾,苯乙醇胺A峰形尖銳而對稱。
2.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制 取空白陰性腸衣樣品,移取一定量標(biāo)準(zhǔn)工作液進(jìn)行添加,使其濃度為0.5、1.5、2.5、4.0ng/mL。經(jīng)樣品處理過程后上機檢測,以苯乙醇胺A特征離子質(zhì)量色譜峰面積為縱坐標(biāo),濃度為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。其相應(yīng)的回歸方程和相關(guān)系數(shù)如下,線性方程為y=142.699x+0.49,相關(guān)系數(shù)r=0.999。
2.2 回收率和精密度測定 稱取空白腸衣2.0g(準(zhǔn)確至0.01g),置于50 mL具塞離心管中,設(shè)0.25μg/kg、0.75μg/kg、1.25μg/kg 3個添加水平,每個濃度做8個平行,按2.3.3項下方法處理,取10μL進(jìn)樣分析,每個濃度重復(fù)進(jìn)樣3次。根據(jù)峰面積計算添加回收率和變異系數(shù)(CV)。添加回收率和變異系數(shù)見表1。
表1 腸衣中苯乙醇胺A添加回收結(jié)果
2.3 靈敏度的測定 按照信噪比S/N=3確定為檢測限(LOD),S/N=10(LOQ)確定為定量限[5]。定量限:取空白豬肌肉組織添加濃度為0.25μg/kg,按照1.3.3項下方法處理后測定,信噪比S/N>10(按噪音基線放大計),表明方法的定量限可至0.25μg/kg。檢測限:取空白豬肌肉組織添加濃度為0.2μg/kg,按照1.3.3項下方法處理后測定,信噪比S/N>3(按噪音基線放大計),表明方法的檢測限可至0.2 μg/kg。
圖3 苯乙醇胺A添加1.25μg/kg的提取離子流圖
3.1 提取溶劑的選擇 苯酚型苯乙胺類藥物的代謝過程比較強[6],蛋白結(jié)合率較高,需要酶解。而苯胺型的克倫特羅的蛋白結(jié)合率低不需要酶解。苯乙醇胺A從結(jié)構(gòu)上看沒有羥基和氨基直接和苯環(huán)相連見圖4,但是為了盡量提高其提取效果,將少量與蛋白結(jié)合的苯乙醇胺A游離出來,因此也采用了乙酸銨提取,β-葡萄糖苷酸酶/芳基硫酸酯酶酶解的過程。
圖4 苯乙醇胺A結(jié)構(gòu)式
3.2 腸衣樣品的處理 腸衣是動物內(nèi)臟中最長的小腸,不同的動物個體基質(zhì)不同,有的豬腸衣帶脂肪多,有的羊腸衣雜質(zhì)含量大,因此選用合適的組織處理方法很重要。冷卻后的酶解液用正己烷萃取,去除樣品中的大部分油脂;儲備液凈化過柱后,再次用正己烷萃取,得到的譜圖背景噪音低,譜圖干凈,效果比較理想。
3.3 基質(zhì)效應(yīng)的影響 基質(zhì)效應(yīng)在檢測過程中是影響很嚴(yán)重的,用流動相來配制標(biāo)準(zhǔn)曲線進(jìn)行定量,與基質(zhì)校準(zhǔn)曲線差異比較大。取2個空白腸衣樣品,分別添加11ng和13ng,經(jīng)酶解凈化后上機檢測,結(jié)果如下。
表2 流動相配制曲線定量結(jié)果和基質(zhì)校準(zhǔn)曲線定量結(jié)果
從檢測結(jié)果可以看出,對同一個樣品來說,基質(zhì)曲線校準(zhǔn)后,檢測值高于流動相曲線定量結(jié)果,這是由基質(zhì)效應(yīng)引起的。ESI源離子化過程在液相中發(fā)生,存在基質(zhì)成分和目標(biāo)組分競爭電離的現(xiàn)象。因此在實際檢測中,一定要用基質(zhì)曲線校準(zhǔn)。
用乙酸銨提取,β-葡萄糖苷酸酶/芳基硫酸酯酶酶解,針對不同的腸衣樣品,利用正己烷萃取,樣品經(jīng)MCX固相萃取柱凈化處理,液相串聯(lián)質(zhì)譜進(jìn)行檢測,回收率和精密度均比較理想。
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