楊貝貝,曹 棟,耿亞男,聶新艷
(江南大學(xué)食品學(xué)院,食品科學(xué)與技術(shù)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇無錫 214122)
脂質(zhì)體是由脂質(zhì)雙分子層組成,內(nèi)部為水相的閉合囊泡,在模擬生物膜、藥物載體、反應(yīng)微環(huán)境中都有廣泛應(yīng)用。目前,國內(nèi)外制備脂質(zhì)體,大多會添加一定比例的膽固醇改善脂質(zhì)體性質(zhì)。膽固醇可以減慢氧化磷脂的遷移[1],抑制溶血磷脂形成導(dǎo)致的膜滲漏[2]。Smith E A 等[3]研究表明,膽固醇會影響脂質(zhì)體膜的通透性、分子有序性、彈性、取向性、和分子間的空隙大小。膽固醇還可以調(diào)節(jié)脂質(zhì)體膜的流動性,提高脂質(zhì)體的穩(wěn)定性[4]。但高膽固醇會引發(fā)動脈粥樣硬化、冠心病等健康問題,隨著人們對健康食品的要求提高,可能會限制脂質(zhì)體在食品藥品中的應(yīng)用。植物甾醇結(jié)構(gòu)與膽固醇類似,不僅可以影響脂質(zhì)體膜上磷脂分子聚集,調(diào)節(jié)膜對小分子物質(zhì)的通透性[5],改變膜的表面性質(zhì)[6],還可以減小膽固醇的腸道吸收[7]。本文主要通過研究不同甾醇對卵磷脂脂質(zhì)體粒徑大小、粒徑分布、氧化穩(wěn)定性、流動性、雙分子層內(nèi)部分子極性的影響,探討植物甾醇能否替代膽固醇改善脂質(zhì)體的膜性質(zhì),促進(jìn)脂質(zhì)體在實(shí)際工業(yè)生產(chǎn)中的應(yīng)用。
磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉、甲醇、三氯甲烷、無水乙醇、膽固醇、硫代巴比妥酸、三氯乙酸、濃鹽酸 均為分析純,國藥集團(tuán)生產(chǎn);β-谷固醇(>95%)、豆甾醇(>95%) 阿拉丁試劑有限公司;大豆磷脂、大豆植物甾醇 江蘇曼氏生物科技有限公司;芘(99.0%)、1,6-二苯基-1,3,5-己三烯(DPH)Sigma-Aldrich公司。
旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀、XMTE-2000 數(shù)顯恒溫水浴鍋、SHB-IIIA循環(huán)水式多用真空泵 南京予凱儀器設(shè)備有限公司;Mettler AL-204電子精密天平 梅特勒-托利多儀器有限公司;F-7000熒光光譜儀 日本Hitach公司;Zetasizer nano ZS納米粒度儀 英國Malvern公司;KJ-300超聲波發(fā)生器 無錫市科潔超聲電子設(shè)備有限公司;WEZ UV-2010紫外可見分光光度計 尤尼柯儀器有限公司;78 HW-1型恒溫磁力攪拌器 江蘇省金壇市榮華儀器制造有限公司。
1.2.1 脂質(zhì)體制備 取0.02g大豆卵磷脂,分別加入磷脂摩爾質(zhì)量0%、5%、15%、25%、50%的甾醇,溶于30mL氯仿/甲醇(2∶1)混合溶液中,放入玻璃珠,45℃、40r/min旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)1h,在瓶內(nèi)壁形成一層薄膜。然后用5mL磷酸鹽緩沖液(10mol/L,pH7.4)水化脂質(zhì)薄膜,形成5mL粗脂質(zhì)懸浮液,磁力攪拌30min,超聲15min,得到脂質(zhì)體懸濁液。
1.2.2 脂質(zhì)體粒徑大小測定 樣品槽經(jīng)樣品溶液潤洗后,加入脂質(zhì)體懸浮液,用ZS納米粒度儀測定粒徑大小,測量溫度:25℃,分散介質(zhì):H2O,平衡時間:60s。分別測定添加不同比例膽固醇的脂質(zhì)體粒徑大小。
1.2.3 膜抗氧化性測定 取30g三氯乙酸,0.75g硫代巴比妥酸加入到200mL 0.25mol/L的鹽酸溶液中,微熱溶解,然后取5mL混合溶液和1mL的脂質(zhì)體溶液于試管中,水浴 30min,在 5000r/min下離心10min,取上清液在532nm測定吸光度。分別制備摩爾百分比15%的甾醇-脂質(zhì)體,在4℃條件下冷藏,用硫代巴比妥酸法測定不同貯藏時間的吸光值變化。
1.2.4 膜微極性的測定 配制4×10-7mol/L芘的丙酮溶液,取0.1mL的芘溶液于試管中,揮發(fā)丙酮,加入5mL稀釋5倍的不同甾醇-脂質(zhì)體溶液,超聲1h,放置12h,分別在激發(fā)波長338nm,發(fā)射波長373nm,384nm 時測定熒光強(qiáng)度[8]。
1.2.5 膜流動性的測定 用磷酸鹽緩沖液配制2×10-6mol/L的DPH溶液,取1mL DPH溶液加入到5mL稀釋5倍的脂質(zhì)體溶液中,平衡12h,在 λEx=360nm,λEm=430nm時測定熒光強(qiáng)度。按公式P=(F‖-GF⊥)/(F‖+GF⊥)計算偏振度,其中‖代表激發(fā)與發(fā)射偏振器平行,⊥代表激發(fā)與發(fā)射偏振器垂直,G為光柵校正因子。已知偏振度越大,流動性越?。?]。制備摩爾百分比15%的甾醇-脂質(zhì)體,在25℃和55℃下測定偏振度。
不同粒徑大小的脂質(zhì)體應(yīng)用范圍不同,一般情況下粒徑小的脂質(zhì)體穩(wěn)定性較好,但由于體積的減小,其包埋的有效成分也會減少。加入甾醇后,脂質(zhì)體一般會增大,而甾醇與磷脂間的相互作用可以提高脂質(zhì)體的穩(wěn)定性。
2.1.1 膽固醇對脂質(zhì)體粒徑的影響 膽固醇-脂質(zhì)體的粒徑大小和分布結(jié)果分別如圖1、圖2所示。
圖1 膽固醇含量對脂質(zhì)體粒徑大小的影響Fig.1 Effect of different amount of cholesterol on particle size of liposome
圖2 膽固醇-脂質(zhì)體粒徑分布Fig.2 The particle size distribution of cholesterol-liposome
由圖1、圖2可知,未添加膽固醇的脂質(zhì)體,粒徑分布較寬,在10~100nm處有個分布很寬的小峰;添加5%膽固醇時脂質(zhì)體粒徑減小,分布變較均勻,可能是少量的膽固醇加入,減小了磷脂雙分子層之間空隙,從而使得脂質(zhì)體的粒徑略微減小。當(dāng)膽固醇含量提高到15%,脂質(zhì)體粒徑變大,分布更加均勻,這說明膽固醇較均勻地嵌入,利于脂質(zhì)體膜的形成。隨著膽固醇含量進(jìn)一步提高,脂質(zhì)體粒徑繼續(xù)增大,但是分布變的不均勻,說明過多的膽固醇存在又會不均勻地嵌在脂質(zhì)體膜中。
2.1.2 β-谷固醇對脂質(zhì)體粒徑的影響 β-谷甾醇-脂質(zhì)體的粒徑大小和分布結(jié)果分別如圖3、圖4所示。
圖3 β-谷甾醇醇含量對脂質(zhì)體粒徑大小的影響Fig.3 Effect of different amount of β-sitosterol on particle size of liposome
圖4 β-谷甾醇-脂質(zhì)體粒徑分布Fig.4 The particle size distribution of β- sitosterol- liposome
由圖3可知,隨著β-谷甾醇含量的提高,脂質(zhì)體粒徑大小的變化與膽固醇的影響相似,但是β-谷甾醇-脂質(zhì)體的粒徑增大程度比膽固醇-脂質(zhì)體的要小;由圖4可知,β-谷甾醇-脂質(zhì)體多分散指數(shù)更小,分布的更均勻,這可能是由于β-谷甾醇比膽固醇更好的嵌入雙分子層。
2.1.3 豆固醇對脂質(zhì)體粒徑的影響 豆甾醇-脂質(zhì)體的粒徑大小和分布結(jié)果分別如圖5、圖6所示。
圖5 豆甾醇含量對脂質(zhì)體粒徑大小的影響Fig.5 Effect of different amount of stigmasterol on particle size of liposome
圖6 豆甾醇-脂質(zhì)體粒徑分布Fig.6 The particle size distribution of stigmasterol-liposome
由圖5、圖6可知,隨著豆甾醇含量提高,脂質(zhì)體的粒徑逐漸增大,但增大程度比膽固醇與β-谷甾醇的都要高。當(dāng)豆甾醇摩爾百分比0~15%時,脂質(zhì)體分布情況變化不大,但是豆甾醇濃度繼續(xù)增加時,分布變的不均勻,在大于1000nm處也有分布,這可能是由于在脂質(zhì)體的形成過程中,粒徑較大時失去了原有的平衡,從而使得脂質(zhì)體破裂和重組。
2.1.4 大豆植物甾醇對脂質(zhì)體粒徑的影響 大豆植物甾醇-脂質(zhì)體的粒徑大小和分布結(jié)果分別如圖7、圖8所示。
圖7 大豆植物甾醇含量對脂質(zhì)體粒徑大小的影響Fig.7 Effect of different amount of soybean phytosterols on particle size of liposome
圖8 大豆植物甾醇-脂質(zhì)體粒徑分布Fig.8 The particle size distribution of soybean phytosterols-liposome
由圖7、圖8可知,隨著大豆植物甾醇含量提高,脂質(zhì)體粒徑也逐漸增大,但是增大的趨勢相對不明顯。從粒徑分布上看,在高濃度時,大豆植物甾醇-脂質(zhì)體的分布不如β-谷甾醇的均勻,但是比豆甾醇要均勻的多,這是由于大豆植物甾醇中,β-谷甾醇占多數(shù)。
丙二醛(MDA)是多不飽和脂肪酸鏈斷裂形成的產(chǎn)物之一,可以與硫代巴比妥酸發(fā)生成色反應(yīng),在532nm處比色測定,可檢測丙二醛相對含量的變化,從而了解磷脂過氧化的程度[10]。脂質(zhì)體被氧化程度越深,丙二醛含量越高,顏色越深,用紫外分光光度儀在532nm處測量出的吸光值也就越高。結(jié)果如圖9所示。
圖9 貯存時間與氧化程度的關(guān)系Fig.9 The relationship between storage time and the degree of oxidation
由圖9可知,隨著時間增加,吸光度逐漸增大,說明脂質(zhì)體溶液中丙二醛的含量增多,脂質(zhì)體被氧化的程度更深。在10d內(nèi),添加不同甾醇的脂質(zhì)體與空白脂質(zhì)體溶液的氧化程度都不大,這說明脂質(zhì)體膜保持穩(wěn)定,10d后脂質(zhì)體的氧化程度加深,這是由于脂質(zhì)體膜是個不斷運(yùn)動的平衡態(tài)膜,在貯藏過程中,膜上磷脂分子不停交換,導(dǎo)致脂質(zhì)體的聚集沉淀等,從而破壞脂質(zhì)體的穩(wěn)定性。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,添加大豆植物甾醇和β-谷甾醇的脂質(zhì)體,穩(wěn)定性要高于加入豆甾醇和膽固醇的脂質(zhì)體。這是由于添加β-谷甾醇與大豆植物甾醇粒徑分布均勻,脂質(zhì)體溶液更加平衡穩(wěn)定。
芘是一種脂溶性探針,易分配于脂雙層中,在熒光光譜中,熒光強(qiáng)度I1(373nm)與I3(384nm)的比值大小取決于芘所處體系的極性,該值越大表明芘探針?biāo)幬h(huán)境的極性越大[11]。測定不同濃度的甾醇-脂質(zhì)體的熒光強(qiáng)度,微極性結(jié)果如圖10所示。
甾醇與膜結(jié)合時,3β-OH與水相結(jié)合,側(cè)鏈延伸到雙分子層的疏水核心與磷脂分子的脂肪鏈結(jié)合[12]。由圖10可知,加入甾醇,使得膜的微極性逐漸減小,且少量甾醇可較大程度的降低脂質(zhì)體的微極,說明甾醇分子嵌入到磷脂雙分子層中時填充到了磷脂分子的間隙中,避免分子層外部的極性基團(tuán)影響分子層內(nèi)部的微極性。當(dāng)甾醇濃度高時,豆甾醇的微極性比其他甾醇的要大,可能是由于豆甾醇濃度大時容易形成甾醇的富集區(qū),增大分子空隙,所以使得微極性較高。
圖10 不同甾醇與膜微極性關(guān)系Fig.10 Effects of different kind of sterol on membrane micro-polarity
脂質(zhì)體的流動性是脂質(zhì)體的一個重要物理性質(zhì),膜的流動性大,脂質(zhì)體的穩(wěn)定性就小、藥物釋放快[13]。熒光探針DPH是一種疏水性極強(qiáng)的分子,在脂肪酸酰基鏈中排列較好,常平行排列,更容易結(jié)合在雙分子層內(nèi)[14]。DPH在水中的熒光很小,可以忽略[15],其熒光偏振度(P)結(jié)果反映了脂質(zhì)體烴區(qū)的平均活動程度,熒光偏振度越小說明磷脂膜的流動性越大[16]。分別在25℃和55℃下測定甾醇-脂質(zhì)體的偏振度,結(jié)果如表1所示。
表1 不同甾醇-脂質(zhì)體在25和55℃時偏振度Table1 Different polarization degree of sterol-liposome at 25 and 55℃
由表1可知,空白脂質(zhì)體在55℃時的偏振度比在25℃時減小很多,這是由于溫度升高,分子運(yùn)動加快,磷脂分子疏水鏈會有全反式轉(zhuǎn)變?yōu)榕で鷳B(tài),發(fā)生相變,會使得膜分子間距增大,流動性降低。與空白脂質(zhì)體相比,在25℃時,甾醇-脂質(zhì)體偏振度更小,即流動性更大;55℃時,甾醇-脂質(zhì)體的偏振度更大,即流動性較小,說明這幾種甾醇對脂質(zhì)體膜的流動性都有一定的調(diào)節(jié)作用。但是,不同甾醇對膜流動性的調(diào)節(jié)作用大小不同,膽固醇>大豆植物甾醇>β-谷甾醇>豆甾醇,這是由于膽固醇分子在相變溫度以上時,膽固醇、β-谷甾醇彎曲的酰基鏈鏈可更好的填充在磷脂分子中,通過范德華作用,限制磷脂脂肪酸鏈的運(yùn)動。豆甾醇側(cè)鏈在C22和C23之間存在的雙鍵不彎曲,流動性較強(qiáng),在使得豆甾醇對膜流動性的調(diào)劑作用相對較小。
植物甾醇對磷脂脂質(zhì)體膜性質(zhì)的影響與膽固醇類似,雖然膽固醇對脂質(zhì)體膜流動性調(diào)節(jié)作用較強(qiáng),但是β-谷甾醇,大豆植物甾醇調(diào)節(jié)的脂質(zhì)體在粒徑分布及穩(wěn)定性方面更優(yōu),而且膜內(nèi)部的微極性小,分子結(jié)合更緊密,可以有效的降低膜的滲透率。豆甾醇對膜性質(zhì)的影響較小,但是可以跟谷甾醇,菜籽甾醇等發(fā)揮協(xié)同作用改善膜性質(zhì),并可以降低膽固醇的危害。因此用β-谷甾醇,大豆植物甾醇替代膽固醇,既生產(chǎn)更加穩(wěn)定的脂質(zhì)體,又有益于人體健康。
[1]Plochberger B,Stockner T,Chiantia S,et al.Cholesterol slows down the lateral mobility of an oxidized phospholipid in a supported lipid bilayer[J].Langmuir,2010,26(22):17322-17329.
[2]Colles S M,Chisolm G M.Lysophosphatidylcholine-induced cellular injury in cultured fibroblasts involves oxidative events[J].Journal of Lipid Research,2000,41(8):1188-1198.
[3]Smith E A,W Wang,Dea P K.Effects of cholesterol on phospholipid membranes:inhibition of the interdigitated gel phase of F-DPPC and F-DPPC/DPPC[J].Chem Phys Lipids,2012,165(2):151-159.
[4]Halling K K,J Petter Slotte.Membrane properties of plant sterols in phospholipid bilayers as determined by differential scanning calorimetry,resonance energy transfer and detergentinduced solubilization[J].Biochimica et Biophysica Acta,2004,1664(2):161-171.
[5]TakaoY,YamauchiH,ManosroiJ,etal.Molecular interactions between lipids and some steroids in a monolayer and a bilayer.2[J].Langmuir,1995,11(3):912-916.
[6]Hellgren L I,Sandelius A S.The impact of different phytosterols on the molecular dynamics in the hydrophobic/hydrophilic interface phosphatidylcholine-liposomes[J],Physiol Plant,2001,113(1):23-32.
[7]Elke A Trautwein,Guus Duchateau,Yuguang Lin,et al.Proposed mechanisms of cholesterol-lowering action of plant sterols[J].European Journal of Lipid Science and Technology,2003,105(3/4):15.
[8]劉天晴.電容法研究卵磷脂氨基酸H2O膠束和囊泡體系[J].物理化學(xué)學(xué)報,2010,26(2):311-316
[9]Umakoshi H,Suga K,Bui H T,et al.Charged liposome affects the translation and folding steps of in vitro expression of green fluorescent protein[J].J Biosci Bioeng,2009,108(5):450-454.
[10]Marsanasco M,Márquez Andrés L,Wagner Jorge R,et al.Liposomes as vehicles for vitamins E and C:An alternative to fortify orange juice and offer vitamin C protection after heat treatment[J].Food Research International,2011,44(9):3039-3046.
[11]陸國慶,鄭江,鄭新川,等.芘熒光探針法結(jié)合曲線擬合研究膽鹽-磷脂混合納米膠束的聚集行為[J].中國藥業(yè),2011,20(10):21-22.
[12]Hartmann M.Plant sterols and the membrane environment[J].Trends Plant Sci,1998,3(5):170-175.
[13]陸彬.脂質(zhì)體、修飾脂質(zhì)體與改良脂質(zhì)體給藥系統(tǒng)及其進(jìn)展(上)[J].中國藥師,2005,8(5):374-377.
[14]Silva C,Aranda F J,Ortiz A,et al.Molecular aspects of the interaction between plants sterols and DPPC bilayers:an experimental and theoretical approach[J].J Colloid Interface Sci,2011,358(1):192-201.
[15]Shimanouchi T,Ishii H,Yoshimoto N,et al.Calcein permeation across phosphatidylcholine bilayer membrane:effects of membrane fluidity,liposome size,and immobilization[J].Colloids Surf B Biointerfaces,2009,73(1):156-160.
[16]嚴(yán)文偉,費(fèi)然,王文浩,等.大豆甾醇糖苷及兩親性聚乙二醇對陽離子脂質(zhì)體細(xì)胞轉(zhuǎn)染與膜各向異性的影響[J].北京大學(xué)學(xué)報:醫(yī)學(xué)版,2003,35(3):5.