国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

對(duì)乙酰氨基酚肝毒性機(jī)制與防治研究新進(jìn)展

2014-01-27 17:53:09潘家琪宋丹軍李鵬旭劉愛明
關(guān)鍵詞:過氧化亞硝酸鹽肝細(xì)胞

潘家琪,宋丹軍,李鵬旭,劉愛明

(寧波大學(xué)醫(yī)學(xué)院生理藥理學(xué)系,浙江寧波 315211)

對(duì)乙酰氨基酚(N-acetyl-para-aminophenol,APAP)(撲熱息痛)是臨床最常用的解熱鎮(zhèn)痛抗炎藥,也是臨床引起肝毒性的最常見的藥物[1]。長期或過量使用APAP易導(dǎo)致急性肝功能衰竭。因此,APAP肝損傷受到廣泛關(guān)注。近10年來,人們對(duì)APAP肝毒性發(fā)生過程中的細(xì)胞內(nèi)分子事件有了更多的認(rèn)識(shí),炎癥細(xì)胞和炎癥因子在APAP肝毒性中也發(fā)揮重要作用。許多單體化合物和天然提取物對(duì)APAP肝毒性具有對(duì)抗作用。

1 APAP肝損傷的細(xì)胞內(nèi)分子事件

1.1 APAP肝毒性的代謝激活和啟動(dòng)

APAP經(jīng)吸收進(jìn)入體內(nèi)后,90%APAP與葡萄糖醛酸或硫酸結(jié)合后排泄,其余5% ~10%通過細(xì)胞色素 P450(cytochrome P450,CYP)系統(tǒng),特別是 CYP2E1代謝產(chǎn)生 N-乙?;?對(duì)-苯醌亞胺(n-acetyl-para-benzoquinone imine,NAPQI),該毒性代謝物由谷胱甘肽(glutathione,GSH)解毒[2]。新的研究技術(shù)發(fā)現(xiàn)了其下游的代謝物,包括S(5-乙酰氨基-2-羥苯基)β-巰基丙酮酸、3,3-二聚APAP和苯并噻嗪化合物等[3]。一旦肝細(xì)胞內(nèi)GSH被耗竭,NAPQI與蛋白質(zhì)的巰基可發(fā)生反應(yīng)形成APAP蛋白質(zhì)加合物;蛋白質(zhì)加合物的形成是關(guān)鍵性啟動(dòng)事件,它的進(jìn)一步傳播和放大才導(dǎo)致肝毒性[4]。

1.2 線粒體氧化應(yīng)激與細(xì)胞損傷的擴(kuò)布

APAP過量與線粒體呼吸抑制、肝ATP耗竭及線粒體氧化應(yīng)激有關(guān)[5]。盡管APAP過量導(dǎo)致活性氧的形成增加,但脂質(zhì)過氧化作用并不被認(rèn)為是細(xì)胞損傷的關(guān)聯(lián)機(jī)制[6]。相對(duì)而言,壞死肝細(xì)胞中硝基酪氨酸蛋白加合物染色呈陽性,提示過氧化亞硝酸鹽的形成[7]。APAP過量使用后,誘導(dǎo)型一氧化氮合酶(inducible nitric oxide synthase,iNOS)會(huì)產(chǎn)生一些NO,這些NO與過氧化物快速反應(yīng)形成過氧化亞硝酸鹽。由于超氧負(fù)離子不易透過生物膜,過氧化亞硝酸鹽形成主要發(fā)生在線粒體中。雖然GSH可有效清除過氧化亞硝酸鹽,但APAP暴露后胞漿內(nèi)和線粒體內(nèi)的GSH會(huì)大量消耗,肝細(xì)胞將不受保護(hù)。過氧化亞硝酸鹽與蛋白質(zhì)反應(yīng),致線粒體中的酪氨酸硝基化[8]。活性氧和過氧化亞硝酸鹽至少部分參與對(duì)線粒體DNA的損傷和線粒體膜孔的開放,從而觸發(fā)線粒體膜電位崩潰,誘導(dǎo)細(xì)胞壞死;迅速恢復(fù)線粒體GSH水平,過氧化亞硝酸鹽就會(huì)被有效清除,并減輕細(xì)胞損傷[9]。這些數(shù)據(jù)表明,過氧化亞硝酸鹽確實(shí)是APAP肝毒性的關(guān)鍵性介質(zhì)。

1.3 核DNA斷裂與APAP的肝毒性

除了線粒體功能障礙外,DNA斷裂繼發(fā)核溶解是APAP誘導(dǎo)的肝損傷機(jī)制中另一早期現(xiàn)象。DNA斷裂由瓊脂糖凝膠電泳實(shí)驗(yàn)首次發(fā)現(xiàn),隨后用TUNEL等方法證實(shí)[10-12]。由于 APAP 并不引起胱天蛋白酶酶系的活化,前述DNA斷裂并不等同于細(xì)胞凋亡中的DNA斷裂;它們的著色模式和碎片大小等有根本的差異。雖然核酸內(nèi)切酶抑制劑的細(xì)胞保護(hù)作用表明毒性過程中DNA斷裂,但多聚腺苷二磷酸核糖聚合酶〔poly(ADP-ribose)polymerase,PARP〕并沒有參與。PARP過度激活導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)NAD+和ATP耗竭,從而啟動(dòng)細(xì)胞壞死。然而,在 APAP肝毒性期間,PARP激活多發(fā)生在APAP給藥后6~12 h之間,此時(shí)細(xì)胞已經(jīng)處在壞死過程中。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),與PARP野生型小鼠相比,APAP 肝毒性在 PARP-/-小鼠表現(xiàn)加重[13],表明PARP在APAP肝毒性中確實(shí)發(fā)揮了重要作用。

最近研究表明,氧化應(yīng)激/過氧亞硝酸鹽介導(dǎo)的線粒體功能障礙導(dǎo)致核DNA斷裂[8]。APAP過量早期,Bcl-2家族成員 Bax易位到線粒體;在Bax-/-小鼠中,線粒體氧化應(yīng)激水平變化不大,但細(xì)胞色素c從線粒體膜間的釋放被延遲,DNA斷裂和肝損傷也被延遲。后期的毒性損傷和DNA斷裂在野生型小鼠和Bax-/-小鼠之間無區(qū)別。上述結(jié)果表明,Bax易位觸發(fā)線粒體蛋白質(zhì)的提前釋放,這可能會(huì)促使核DNA斷裂,但后期過氧化亞硝酸鹽損傷發(fā)生時(shí),Bax的影響就會(huì)降低。

1.4 c-Jun N 端激酶(c-Jun N-terminal kinase,JNK)信號(hào)通路與APAP肝毒性

APAP 5,10 和 20 mmol·L-1與人原代肝細(xì)胞孵育,3 h內(nèi)細(xì)胞內(nèi)GSH迅速衰竭,同時(shí)導(dǎo)致早期APAP蛋白質(zhì)加合物形成和線粒體功能障礙;24 h后肝細(xì)胞開始濃度依賴性地壞死。此外,APAP還時(shí)間依賴性地觸發(fā)JNK在細(xì)胞質(zhì)中的活化,使磷酸化的JNK易位至線粒體。APAP干預(yù)后,用JNK抑制劑SP600125處理3 h可降低JNK活性,并顯著減少細(xì)胞死亡[14]。別嘌醇預(yù)處理小鼠可以有效地防治APAP的肝毒性,提前1和18 h給予別嘌醇,給予APAP后早期(2 h)JNK均被激活;提前18 h給予別嘌醇,給予APAP 6 h后JNK激活減弱;表明后期JNK的活化對(duì)毒性更為關(guān)鍵[15]。上述研究表明,APAP過量后JNK信號(hào)通路在肝損傷過程中發(fā)揮關(guān)鍵作用,提示JNK信號(hào)通路可能為潛在的臨床毒性防治的靶點(diǎn)。

1.5 肝細(xì)胞代謝功能的變化

基于高分辨率核磁共振技術(shù)的代謝組學(xué)研究表明,APAP 500 mg·kg-1導(dǎo)致小鼠線粒體的三羧酸循環(huán)無法利用丙酮酸鹽,同時(shí)肝線粒體中脂肪酸β氧化作用減弱[16]。在另一項(xiàng)基于液質(zhì)聯(lián)用技術(shù)的代謝組學(xué)研究中,APAP 400 mg·kg-1通過CYP2E1介導(dǎo)的代謝活化和氧化應(yīng)激可導(dǎo)致脂肪酸氧化作用的不可逆抑制,表現(xiàn)為長鏈脂肪酸代謝物及其代謝基因表達(dá)水平的變化[17]。在APAP誘導(dǎo)肝毒性期間,過氧化物酶體增殖物激活受體α的靶基因誘導(dǎo)編碼線粒體UCP2防止活性氧產(chǎn)生增多,同時(shí)提示UCP2的誘導(dǎo)也可能是脂肪酸β-氧化過程中對(duì)線粒體保護(hù)的重要機(jī)制[18]。上述結(jié)果表明,線粒體β氧化功能損傷是高劑量APAP肝毒性發(fā)生過程中的重要環(huán)節(jié)。

2 APAP引起肝損傷期間的炎癥反應(yīng)

APAP導(dǎo)致肝細(xì)胞腫脹死亡,這包括最初12 h內(nèi)巨噬細(xì)胞和淋巴細(xì)胞的激活,中性粒細(xì)胞(4~24 h)和單核細(xì)胞(24~48 h)在肝內(nèi)的募集。在APAP的肝毒性期間,通常認(rèn)為廣泛的無菌性炎癥是有益的,被激活的炎癥細(xì)胞不僅參與去除壞死的細(xì)胞碎片,還可以限制促炎介質(zhì)的形成和作用,同時(shí)促進(jìn)組織修復(fù)[19]。

2.1 Kupffer細(xì)胞和巨噬細(xì)胞對(duì)APAP肝毒性的作用

大鼠給予 APAP 1200 mg·kg-1后,Kupffer細(xì)胞被激活,單核細(xì)胞在24 h內(nèi)募集進(jìn)入肝;使用外源藥物滅活巨噬細(xì)胞能夠減輕肝損傷[20],該保護(hù)作用在小鼠APAP毒性模型中也有報(bào)道。氯化釓等滅活Kupffer細(xì)胞主要通過降低活性氧實(shí)現(xiàn)[21]。然而,這種解釋也存在一些問題,首先,大多數(shù)活躍的Kupffer細(xì)胞都位于門靜脈周圍區(qū)域,遠(yuǎn)離小葉中心過氧化亞硝酸鹽形成的位置和肝損傷的位置[22]。其次,參與巨噬細(xì)胞中過氧化物產(chǎn)生的糖蛋白gp91phox缺陷的小鼠和野生型小鼠中,肝損傷和氧化應(yīng)激水平相似[23-25]。因此,雖然 Kupffer細(xì)胞在APAP肝毒性中發(fā)揮了重要作用,但尚不能肯定它就是APAP肝毒性時(shí)氧化應(yīng)激和過氧化亞硝酸鹽的來源。

2.2 炎癥介質(zhì)對(duì)APAP肝毒性的作用

在Kupffer細(xì)胞耗竭的小鼠中APAP誘導(dǎo)的肝損傷加重,這與白細(xì)胞介素10(interleukin-10,IL-10)和IL-6的衰減有關(guān)[23]。APAP肝毒性中,IL-6促進(jìn)肝細(xì)胞再生,而IL-10則限制炎癥因子腫瘤壞死因子 α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)和 IL-1 的形成。這些炎癥因子促進(jìn)iNOS表達(dá),增加過氧化亞硝酸鹽的形成,加重肝損傷。IL-10-/-小鼠中致炎細(xì)胞因子形成增加,iNOS表達(dá)增加和細(xì)胞損傷加重等結(jié)果支持了上述結(jié)論[26]。本課題組最近研究發(fā)現(xiàn),小鼠經(jīng)APAP誘導(dǎo)肝毒性后,陽性對(duì)照組IL-6顯著升高,信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)蛋白和轉(zhuǎn)錄活化蛋白3(signal transducerand activator oftranscription 3,STAT3)被激活,其下游靶基因細(xì)胞因子信號(hào)抑制因 子 3(suppressorofcytokinesignaling 3,SOCS3)等表達(dá)增加,表明IL-6-STAT3-SOCS3炎癥信號(hào)通路參與了APAP肝毒性的發(fā)生(待發(fā)表)。

APAP過量使用后4~24 h,致炎細(xì)胞因子TNF-α和 IL-1產(chǎn)生,拮抗 TNF-α或 IL-1能減弱APAP誘導(dǎo)的肝損傷[25]。據(jù)報(bào)道,在TNFⅠ型受體基因敲除(TNFR1-/-)小鼠中也表現(xiàn)類似的保護(hù)作用。因此,這些細(xì)胞因子的促損傷作用被認(rèn)為與iNOS的誘導(dǎo)和其他炎癥介質(zhì)的形成有關(guān);但也有報(bào)道APAP使用后8 h內(nèi)TNF-/-小鼠和野生小鼠肝損傷程度相似[28];另一項(xiàng)研究中,APAP 300 mg·kg-1導(dǎo)致TNFR1-/-小鼠較野生型更嚴(yán)重的肝毒性,磷酸肌醇3激酶的活化被延緩6~12 h[29]。因此,APAP引起組織損傷時(shí)TNF-α通過TNFR1發(fā)射信號(hào)在調(diào)節(jié)肝細(xì)胞增殖中非常重要。

誘導(dǎo)型熱激蛋白(heat shock protein,HSP)如HSP70能有效地對(duì)抗APAP誘導(dǎo)的肝損傷。APAP誘導(dǎo)環(huán)氧合酶2(cyclooxygenase-2,COX-2)增加前列腺素形成。COX-2-/-小鼠或用COX-2抑制劑處理的動(dòng)物對(duì)APAP更敏感,且增加的肝損傷與HSP誘導(dǎo)缺損有關(guān)。相反,在APAP使用后,巨噬細(xì)胞移動(dòng)抑制因子缺陷(MIF-/-)小鼠僅有輕微的損傷,這與HSP大幅增加相關(guān)[30]。

干擾素 γ(interferon-γ,IFN-γ)是病理生理過程中另一個(gè)炎癥介質(zhì)。APAP導(dǎo)致IFN-γ大量形成,在 IFN-γ-/-小鼠中 APAP 肝損傷減輕,中和IFN-γ能減少細(xì)胞因子、趨化因子和NO的形成,減少白細(xì)胞浸潤。然而,目前仍不清楚其參與保護(hù)作用的機(jī)制。由于自然殺傷細(xì)胞是IFN-γ的主要來源,在自然殺傷細(xì)胞和自然殺傷T細(xì)胞缺陷的動(dòng)物中也觀察到類似的保護(hù)作用[31]。但這些研究中炎癥組織損傷的機(jī)制仍不清楚。

2.3 APAP肝損傷中的組織再生

肝細(xì)胞損傷會(huì)觸發(fā)組織再生;在臨床和實(shí)驗(yàn)研究中,再生反應(yīng)初期可以限制整體上的損傷和預(yù)防肝衰竭。TNF-α是毒性肝損傷和APAP肝毒性時(shí)誘導(dǎo)肝細(xì)胞再生的重要介質(zhì),TNF-α同時(shí)能刺激IL-6的形成[32]。IL-6可促進(jìn)再生和誘導(dǎo)保護(hù)性HSP的表達(dá)。該信號(hào)機(jī)制涉及磷酸肌醇3激酶和Akt的激活,從而使STAT3活化;SOCS3過表達(dá)可以加劇APAP肝毒性,STAT1激活增強(qiáng),STAT3激活下降,同時(shí) IFN-γ 和 TNF-α 升高[33]。在體內(nèi)和體外培養(yǎng)肝細(xì)胞中,APAP過量使用后,中性粒細(xì)胞激活的活化肽78、IFN-γ誘導(dǎo)蛋白10和IL-8等均促進(jìn)肝組織再生,且效果顯著[34-35]。雖然這些趨化因子能有效地減少后續(xù)損傷,但具體的分子機(jī)制還有待研究。

2.4 中性粒細(xì)胞在APAP肝毒性中的作用

中性粒細(xì)胞在APAP肝毒性中的作用仍然有爭議。APAP給藥后4~24 h,大量中性粒細(xì)胞募集至肝;中和中性粒細(xì)胞上β2整合素并不能防止APAP所致的肝損傷。很多研究并不支持中性粒細(xì)胞在APAP肝毒性機(jī)制中的作用,反而提示中性粒細(xì)胞參與去除受損細(xì)胞或細(xì)胞碎片[36]。也有些研究間接提示,中性粒細(xì)胞可能參與了APAP誘導(dǎo)的肝毒性;IFN-γ-/-小鼠和自然殺傷細(xì)胞和自然殺傷T細(xì)胞耗竭的小鼠中APAP肝毒性減輕,中性粒細(xì)胞減少[31,37]。目前的實(shí)驗(yàn)證據(jù)并不支持中性粒細(xì)胞在APAP肝毒性病理生理過程中的細(xì)胞毒性效應(yīng)。

3 APAP肝毒性的防治策略

3.1 基于對(duì)抗 APAP毒性代謝物通路的肝毒性防治

NAPQI是 APAP產(chǎn)生毒性主要中間體。C57BL/6小鼠中,吲哚衍生物 NecroX-7降低APAP誘導(dǎo)的JNK磷酸化和3-硝基酪氨酸的形成;也可直接結(jié)合NAPQI減少APAP引起的肝損傷。與N-乙酰半胱氨酸(N-acetylcysteine,NAC)相比,NecroX-7顯示了更強(qiáng)的預(yù)防和療效作用[38]。

GSH前體NAC提前給藥保護(hù)APAP肝毒性是通過提高清除 NAPQI進(jìn)行的。小鼠給予 APAP(300 mg·kg-1)1.5 h之后使用 GSH 和 NAC 干預(yù),活性氧和過氧化亞硝酸鹽水平明顯減少,且GSH(-82%)的保護(hù)作用強(qiáng)于NAC(-46%);而增加NAC的劑量可以達(dá)到與GSH相當(dāng)?shù)谋Wo(hù)作用,說明NAC的保護(hù)作用中除了供應(yīng)GSH的合成需要,多余的NAC參與恢復(fù)ATP能量供應(yīng)[39]。在SD大鼠APAP(800 mg·kg-1)肝毒性模型中,相同摩爾劑量(2.4 mmol·kg-1)的NAC、次?;撬岷团;撬犸@示了同等的保護(hù)作用,盡管它們的結(jié)構(gòu)和體外抗氧化活性不盡相同;它們的保護(hù)作用均表現(xiàn)為氧化應(yīng)激水平和GSH代謝體系的改變,雖然次?;撬岷团;撬岵粎⑴cGSH的合成,但在維持GSH水平、GSH與氧化型GSH比例上卻與NAC功能相當(dāng)[40]。

在小鼠模型中,韓國紅參(Korean red ginseng,KRG)能夠降低 APAP的 LD50,降低轉(zhuǎn)氨酶活性,改善肝組織病理變化。作用機(jī)制研究發(fā)現(xiàn),KRG通過抑制CYP2E1和誘導(dǎo)谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶A2(glutathione S-transferase alpha 2,GSTA2)改變APAP代謝,破壞GSTA2對(duì)GSH的催化作用可逆轉(zhuǎn)KRG的作用。人參皂苷Rg3可激活GSTA2的轉(zhuǎn)錄并增加GSTA2蛋白的表達(dá)?;贙RG能有效的防止APAP誘導(dǎo)的肝毒性,而皂苷Rg3是KRG的主要成分,人參皂苷Rg3可能是一種潛在的護(hù)肝劑[41]。由上可見,GSH耗竭是APAP肝毒性發(fā)生的始動(dòng)因素,直接補(bǔ)充GSH或增加GSH的合成代謝是當(dāng)前防治APAP肝毒性的主要策略。

3.2 基于促進(jìn)能量代謝的肝毒性防治

每天給小鼠腹腔注射氯貝特500 mg·kg-1,連續(xù)10 d,小鼠肝GSH含量顯著增加,并且APAP引起的蛋白質(zhì)芳基化、GSH耗竭及肝細(xì)胞壞死明顯減少。提前24 h單次給予相同劑量氯貝特也具有良好的保護(hù)作用,但與上述多劑量給藥的保護(hù)作用不同,單劑量給藥沒有通過控制蛋白質(zhì)芳基化和GSH水平產(chǎn)生保護(hù)作用[42]。氯貝特對(duì)APAP肝毒性的保護(hù)與早期增加APAP-GSH加合物在膽汁排泄物中的濃度有關(guān),說明氯貝特的保護(hù)作用也發(fā)生在APAP的代謝環(huán)節(jié)。同樣是 PPARα激動(dòng)劑,Wy-14643和非諾貝特也被證實(shí)對(duì)APAP引起的肝毒性具有充分的保護(hù)作用,且保護(hù)作用通過過氧化物酶體增殖物激活受體α的靶基因UCP2產(chǎn)生,其調(diào)控的下游環(huán)節(jié)包括H2O2、GSH、炎癥反應(yīng)和脂肪酸β氧化等[18]。因此,促進(jìn)肝細(xì)胞線粒體的能量代謝是尋找APAP肝毒性防治的策略之一。

3.3 傳統(tǒng)中藥防治APAP肝毒性作用

我國中醫(yī)傳統(tǒng)將柴胡、五味子、三七和丹參等中藥廣泛用于治療肝病,可能具有防治藥物肝毒性的功能。已有研究表明,柴胡能夠調(diào)控炎癥反應(yīng),柴胡提取物可以減輕APAP肝毒性的發(fā)生。柴胡皂苷d是柴胡的主要有效成分之一,能夠?qū)顾穆然?、二甲基亞硝胺引起的肝炎、肝癌和肝纖維化等毒性[43-44]。本課題組對(duì)中藥單體柴胡皂苷d的研究發(fā)現(xiàn),提前5 d給柴胡皂苷d 2 mg·kg-1能夠防治APAP 200 mg·kg-1所導(dǎo)致的肝毒性,且該保護(hù)作用通過抑制IL-6-STAT3-SOCS3炎癥反應(yīng)通路產(chǎn)生。五味子是中國最常用的護(hù)肝傳統(tǒng)中藥之一,其提取物對(duì)APAP引起的肝損傷具有明顯的保護(hù)作用,該保護(hù)作用與上調(diào)過氧化物酶體增殖物激活受體α的靶基因Cpt1和Acot1等、恢復(fù)脂肪酸β氧化至正常水平有關(guān)[45]。因此,從傳統(tǒng)中藥中篩選有效單體化合物,對(duì)防治APAP肝毒性具有巨大的潛力。

3.4 植物提取物防治APAP肝毒性作用

齊墩果酸(deanolic acid)是植物來源的三萜系化合物,它可防治小鼠APAP的肝毒性,但在核因子E2相關(guān)因子(nuclear factor erythroid 2-related factor 2,Nrf2)敲除小鼠(Nrf2-/-)中保護(hù)作用較弱,認(rèn)為齊墩果酸促進(jìn)Nrf2的核積聚,誘導(dǎo)Nrf2依賴的靶基因,從而有助于防治APAP的肝毒性[46]。組織病理學(xué)觀察和生物化學(xué)檢查提示,蝦子花(Woodfordia fruticosa)的甲醇提取物有效地防治APAP引起的大鼠肝損傷,認(rèn)為其保肝作用是通過抑制肝總蛋白消耗和恢復(fù)GSH水平發(fā)揮的[47]。金櫻子(Rosa laevigate Michx)果中的總皂苷可通過抗氧化作用,誘導(dǎo)自吞噬,抑制炎癥反應(yīng)和細(xì)胞凋亡發(fā)揮對(duì)小鼠的保肝作用,并可能用于防治APAP肝損傷[48]。

在民間,普果拉靈呆明堿(Pergularia daemia)植物常被用于治療肝病和黃疸。其水提取物和乙醇提取物預(yù)處理可顯著減輕由APAP誘導(dǎo)的肝生化指標(biāo)和組織病理變化,其作用與水飛薊素相當(dāng),且乙醇提取物比水提取物有更好的保肝作用[49]。長葉獐牙菜(Swerchia lobgifolia Boiss)的地上部分總植物提取物和甲基獐牙菜口山酮(Swerchirin植物的主要成分)預(yù)處理可顯著降低Swiss小鼠谷丙轉(zhuǎn)氨酶、谷草轉(zhuǎn)氨酶和堿性磷酸酶等活性,表現(xiàn)出良好的抗 APAP肝損傷的作用[50]。然而上述提取物APAP肝毒性保護(hù)作用機(jī)制尚不清楚。

4 展望

APAP過量后,肝細(xì)胞損傷開始于APAP活性代謝物的產(chǎn)生和 GSH耗竭(0~30 min),然后共價(jià)結(jié)合胞漿和線粒體的蛋白質(zhì)(30~120 min),引起線粒體功能障礙、活性氧和過氧化亞硝酸鹽形成,從而導(dǎo)致線粒體膜孔開放和線粒體膜電位崩潰(2~6 h);線粒體功能障礙也導(dǎo)致核DNA斷裂和溶解,這些事件都導(dǎo)致肝細(xì)胞腫脹壞死。APAP肝毒性的核心是細(xì)胞內(nèi)事件導(dǎo)致肝細(xì)胞腫脹壞死,炎癥反應(yīng)可能通過支持細(xì)胞內(nèi)活動(dòng)或促進(jìn)氧化應(yīng)激加重細(xì)胞損傷,但炎癥反應(yīng)對(duì)去除細(xì)胞碎片和促進(jìn)細(xì)胞再生也至關(guān)重要。

目前肝毒性藥物防治已經(jīng)有進(jìn)展,所涉及的保護(hù)機(jī)制包括調(diào)節(jié)氧化應(yīng)激、炎癥反應(yīng)、脂肪酸β氧化和APAP代謝排泄等?;谀壳暗恼J(rèn)識(shí),導(dǎo)致細(xì)胞腫脹壞死的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)機(jī)制可能存在大量的關(guān)聯(lián)靶點(diǎn),深入研究代謝活化和共價(jià)結(jié)合后的生化事件,加強(qiáng)對(duì)傳統(tǒng)中藥的開發(fā),都將對(duì)APAP肝毒性的藥物防治產(chǎn)生積極的推動(dòng)作用。

[1]Lee WM.Acetaminophen and the U.S.Acute Liver Failure Study Group:lowering the risks of hepatic failure[J].Hepatology,2004,40(1):6-9.

[2]Mitchell JR,Jollow DJ,Potter WZ,Gillette JR,Brodie BB.Acetaminophen-induced hepatic necrosis.Ⅳ.Protective role of glutathione[J].J Pharmacol Exp Ther,1973,187(1):211-217.

[3]Chen C,Krausz KW,Idle JR,Gonzalez FJ.Identification of novel toxicity-associated metabolites by metabolomics and mass isotopomer analysis of acetaminophen metabolism in wild-type and Cyp2e1-null mice[J].J Biol Chem,2008,283(8):4543-4559.

[4]Jaeschke H,Knight TR,Bajt ML.The role of oxidant stress and reactive nitrogen species in acetaminophen hepatotoxicity[J].Toxicol Lett,2003,144(3):279-288.

[5]Knight TR,Kurtz A,Bajt ML,Hinson JA,Jaeschke H.Vascular and hepatocellular peroxynitrite formation during acetaminophen toxicity:role of mitochondrial oxidant stress[J].Toxicol Sci,2001,62(2):212-220.

[6]Knight TR,F(xiàn)ariss MW,F(xiàn)arhood A,Jaeschke H.Role of lipid peroxidation as a mechanism of liver injury after acetaminophen overdose in mice[J].Toxicol Sci,2003,76(1):229-236.

[7]Hinson JA,Pike SL,Pumford NR,Mayeux PR.Nitrotyrosine-protein adducts in hepatic centrilobular areas following toxic doses of acetaminophen in mice[J].Chem Res Toxicol,1998,11(6):604-607.

[8]Cover C,Mansouri A,Knight TR,Bajt ML,Lemasters JJ,Pessayre D,et al.Peroxynitrite-induced mitochondrial and endonuclease-mediated nuclear DNA damage in acetaminophen hepatotoxicity[J].J Pharmacol Exp Ther,2005,315(2):879-887.

[9]Knight TR,Ho YS,F(xiàn)arhood A,Jaeschke H.Peroxynitrite is a critical mediator of acetaminophen hepatotoxicity in murine livers:protection by glutathione[J].J Pharmacol Exp Ther,2002,303(2):468-475.

[10]Lawson JA,F(xiàn)isher MA,Simmons CA,F(xiàn)arhood A,Jaeschke H.Inhibition of Fas receptor(CD95)-induced hepatic caspase activation and apoptosis by acetaminophen in mice[J].Toxicol Appl Pharmacol,1999,156(3):179-186.

[11]Gujral JS,Knight TR,F(xiàn)arhood A,Bajt ML,Jaeschke H.Mode of cell death after acetaminophen overdose in mice:apoptosis or oncotic necrosis?[J].Toxicol Sci,2002,67(2):322-328.

[12]KnightTR, JaeschkeH. Acetaminophen-induced inhibition of Fas receptor-mediated liver cell apoptosis:mitochondrial dysfunction versus glutathione depletion[J].Toxicol Appl Pharmacol,2002,181(2):133-141.

[13]Cover C, Fickert P, Knight TR, Fuchsbichler A,F(xiàn)arhood A,Trauner M,et al.Pathophysiological role of poly(ADP-ribose)polymerase(PARP)activation during acetaminophen-induced liver cell necrosis in mice[J].Toxicol Sci,2005,84(1):201-208.

[14]Xie Y,McGill MR,Dorko K,Kumer SC,Schmitt TM,F(xiàn)orster J,et al.Mechanisms of acetaminophen-induced cell death in primary human hepatocytes[J].Toxicol Appl Pharmacol,2014,doi:10.1016/j.taap.2014.05.010.

[15]Williams CD,McGill MR,Lebofsky M,Bajt ML,Jaeschke H.Protection against acetaminophen-induced liver injury by allopurinol is dependent on aldehyde oxidase-mediated liver preconditioning[J].Toxicol Appl Pharmacol,2014,274(3):417-424.

[16]Coen M, Lenz EM, Nicholson JK, Wilson ID,Pognan F,Lindon JC.An integrated metabonomic investigation ofacetaminophen toxicity in the mouse using NMR spectroscopy[J].Chem Res Toxicol,2003,16(3):295-303.

[17]Chen C,Krausz KW,Shah YM,Idle JR,Gonzalez FJ.Serum metabolomics reveals irreversible inhibition of fatty acid beta-oxidation through the suppression of PPARalpha activation as a contributing mechanism of acetaminophen-induced hepatotoxicity[J].Chem Res Toxicol,2009,22(4):699-707.

[18]Patterson AD,Shah YM,Matsubara T,Krausz KW,Gonzalez FJ.Peroxisome proliferator-activated receptor alpha induction of uncoupling protein 2 protects against acetaminophen-induced liver toxicity[J].Hepatology,2012,56(1):281-290.

[19]Jaeschke H,Williams CD,Ramachandran A,Bajt ML.Acetaminophen hepatotoxicity and repair:the role of sterile inflammation and innate immunity[J].Liver Int,2012,32(1):8-20.

[20]Laskin DL, Gardner CR, Price VF, Jollow DJ.Modulation of macrophage functioning abrogates the acute hepatotoxicity of acetaminophen[J].Hepatology,1995,21(4):1045-1050.

[21]Liu P, McGuire GM, Fisher MA, Farhood A,Smith CW,Jaeschke H.Activation of Kupffer cells and neutrophils for reactive oxygen formation is responsible for endotoxin-enhanced liver injury after hepatic ischemia[J].Shock,1995,3(1):56-62.

[22]James LP,McCullough SS,Knight TR,Jaeschke H,Hinson JA.Acetaminophen toxicity in mice lacking NADPH oxidase activity:role of peroxynitrite formation and mitochondrial oxidant stress[J].Free Radic Res,2003,37(12):1289-1297.

[23]Ju C,Reilly TP,Bourdi M,Radonovich MF,Brady JN,George JW,et al.Protective role of Kupffer cells in acetaminophen-induced hepatic injury in mice[J].Chem Res Toxicol,2002,15(12):1504-1513.

[24]Ito Y,Bethea NW,Abril ER,McCuskey RS.Early hepatic microvascular injury in response to acetaminophen toxicity[J].Microcirculation,2003,10(5):391-400.

[25]Knight TR, Jaeschke H. Peroxynitriteformation and sinusoidal endothelial cell injury during acetaminophen-induced hepatotoxicity in mice[J].Comp Hepatol,2004,3(Suppl 1):S46.

[26]Bourdi M,Masubuchi Y,Reilly TP,Amouzadeh HR,Martin JL,George JW,et al.Protection against acetaminophen-induced liver injury and lethality by interleukin 10:role of inducible nitric oxide synthase[J].Hepatology,2002,35(2):289-298.

[27]Blazka ME,Wilmer JL,Holladay SD,Wilson RE,Luster MI.Role of proinflammatory cytokines in acetaminophen hepatotoxicity[J].Toxicol Appl Pharmacol,1995,133(1):43-52.

[28]Gardner CR,Laskin JD,Dambach DM,Chiu H,Durham SK,Zhou P,et al.Exaggerated hepatotoxicity of acetaminophen in mice lacking tumor necrosis factor receptor-1.Potential role of inflammatory mediators[J].Toxicol Appl Pharmacol,2003,192(2):119-130.

[29]Chiu H, Gardner CR,Dambach DM,Durham SK,Brittingham JA,Laskin JD,et al.Role of tumor necrosis factor receptor 1(p55)in hepatocyte proliferation during acetaminophen-induced toxicity in mice[J].Toxicol Appl Pharmacol,2003,193(2):218-227.

[30]Bourdi M,Reilly TP,Elkahloun AG,George JW,Pohl LR.Macrophage migration inhibitory factor in drug-induced liver injury:a role in susceptibility and stress responsiveness[J].Biochem Biophys Res Commun,2002,294(2):225-230.

[31]Liu ZX,Govindarajan S,Kaplowitz N.Innate immune system plays a critical role in determining the progression and severity of acetaminophen hepatotoxicity[J].Gastroenterology,2004,127(6):1760-1774.

[32]Masubuchi Y, Bourdi M, Reilly TP, Graf ML,George JW,Pohl LR.Role of interleukin-6 in hepatic heat shock protein expression and protection against acetaminophen-induced liver disease[J].Biochem Biophys Res Commun,2003,304(1):207-212.

[33]Numata K,Kubo M,Watanabe H,Takagi K,Mizuta H,Okada S,et al.Overexpression of suppressor of cytokine signaling-3 in T cells exacerbates acetaminophen-induced hepatotoxicity[J].J Immunol,2007,178(6):3777-3785.

[34]Hogaboam CM,Bone-Larson CL,Steinhauser ML,Lukacs NW,Colletti LM,Simpson KJ,et al.Novel CXCR2-dependent liver regenerative qualities of ELR-containing CXC chemokines[J].FASEB J,1999,13(12):1565-1574.

[35]Bone-Larson CL, Hogaboam CM, Evanhoff H,Strieter RM,Kunkel SL. IFN-Gamma-inducible protein-10(CXCL10)is hepatoprotective during acute liver injury through the induction of CXCR2 on hepatocytes[J].J Immunol,2001,167(12):7077-7083.

[36]Chosay JG,Essani NA,Dunn CJ,Jaeschke H.Neutrophil margination and extravasation in sinusoids and venules of liver during endotoxin-induced injury[J].Am J Physiol,1997,272(5 Pt 1):G1195-G1200.

[37]Ishida Y, Kondo T, Ohshima T, Fujiwara H,Iwakura Y,Mukaida N.A pivotal involvement of IFN-gamma in the pathogenesis of acetaminopheninduced acute liver injury[J].FASEB J,2002,16(10):1227-1236.

[38]Park JH,Seo KS,Tadi S,Ahn BH,Lee JU,Heo JY,et al.An indole derivative protects against acetaminophen-induced liver injury by directly binding to N-acetyl-p-benzoquinone imine in mice[J].Antioxid Redox Signal,2013,18(14):1713-1722.

[39]Saito C,Zwingmann C,Jaeschke H.Novel mechanisms of protection against acetaminophen hepatotoxicity in mice by glutathione and N-acetylcysteine[J].Hepatology,2010,51(1):246-254.

[40]Acharya M,Lau-Cam CA.Comparison of the protective actions of N-acetylcysteine,hypotaurine and taurine against acetaminophen-induced hepatotoxicity in the rat[J].J Biomed Sci,2010,17(Suppl 1):S35.

[41]Gum SI,Cho MK.Korean red ginseng extract pre-vents APAP-induced hepatotoxicity through metabolic enzyme regulation:the role of ginsenoside Rg3,a protopanaxadiol[J].Liver Int,2013,33(7):1071-1084.

[42]Manautou JE,Emeigh Hart SG,Khairallah EA,Cohen SD.Protection against acetaminophen hepatotoxicity by a single dose of clofibrate:effects on selective protein arylation and glutathione depletion[J].Fundam Appl Toxicol,1996,29(2):229-237.

[43]Fan J,Li X,Li P,Li N,Wang T,Shen H,et al.Saikosaponin-d attenuates the development of liver fibrosis by preventing hepatocyte injury[J].Biochem Cell Biol,2007,85(2):189-195.

[44]Wu SJ,Tam KW,Tsai YH,Chang CC,Chao JC.Curcumin and saikosaponin a inhibit chemical-induced liver inflammation and fibrosis in rats[J].Am J Chin Med,2010,38(1):99-111.

[45]Bi H, Li F, Krausz KW, Qu A,Johnson CH,Gonzalez FJ.Targeted metabolomics of serum acylcarnitines evaluates hepatoprotective effect of Wuzhi Tablet(Schisandra sphenanthera extract)against acute acetaminophen toxicity[J].Evid BasedComplementAlternatMed, 2013, doi:10.1155/2013/985257.

[46]Reisman SA,Aleksunes LM,Klaassen CD.Oleanolic acid activates Nrf2 and protects from acetaminophen hepatotoxicity via Nrf2-dependent and Nrf2-independent processes[J].Biochem Pharmacol,2009,77(7):1273-1282.

[47]Baravalia Y,Chanda S.Protective effect of Woodfordia fruticosa flowers against acetaminophen-induced hepatic toxicity in rats[J].Pharm Biol,2011,49(8):826-832.

[48]Dong D,Xu L,Han X,Qi Y,Xu Y,Yin L,et al.Effects of the total saponins from Rosa laevigata Michx fruit against acetaminophen-induced liver damage in mice via induction of autophagy and suppression of inflammation and apoptosis[J].Molecules,2014,19(6):7189-7206.

[49]Bhaskar VH,Balakrishnan N.Protective effects of Pergularia daemia roots against paracetamol and carbon tetrachloride-induced hepatotoxicity in rats[J].Pharm Biol,2010,48(11):1265-1272.

[50]Hajimehdipoor H, Sadeghi Z, Elmi S, Elmi A,Ghazi-Khansari M,Amanzadeh Y,et al.Protective effects of Swertia longifolia Boiss.and its active compound, swerchirin, onparacetamol-induced hepatotoxicity in mice[J].J Pharm Pharmacol,2006,58(2):277-280.

猜你喜歡
過氧化亞硝酸鹽肝細(xì)胞
外泌體miRNA在肝細(xì)胞癌中的研究進(jìn)展
脂質(zhì)過氧化在慢性腎臟病、急性腎損傷、腎細(xì)胞癌中的作用
羊亞硝酸鹽中毒的病因、臨床表現(xiàn)、診斷與防治措施
高位池亞硝酸鹽防控
冬棚養(yǎng)殖需警惕亞硝酸鹽超標(biāo)!一文為你講解亞硝酸鹽過高的危害及處理方法
西洋參防護(hù)X線輻射對(duì)小鼠肺的過氧化損傷
中成藥(2017年12期)2018-01-19 02:06:48
家畜硝酸鹽和亞硝酸鹽中毒的診斷、鑒別和防治
肝細(xì)胞程序性壞死的研究進(jìn)展
肝細(xì)胞癌診斷中CT灌注成像的應(yīng)用探析
過氧化硫酸鈉在洗衣粉中的應(yīng)用
山东省| 惠东县| 丰宁| 禄丰县| 云阳县| 文登市| 元谋县| 信丰县| 庄浪县| 鄂州市| 昌宁县| 竹北市| 沁水县| 永康市| 大渡口区| 布拖县| 镇原县| 玉屏| 连南| 黔南| 萨迦县| 丰顺县| 泸西县| 白玉县| 西平县| 木兰县| 义乌市| 吉木乃县| 正安县| 义马市| 松桃| 安化县| 唐山市| 中山市| 瓦房店市| 阳新县| 交口县| 平乐县| 卫辉市| 峨眉山市| 碌曲县|