孔令雯綜述,董競成審校
目前慢性阻塞性肺病(chronic obstructive pulmonary disease,COPD)是嚴重危害人類健康的慢性呼吸道炎癥疾病,發(fā)病機制目前仍不明確,氧化/抗氧化失衡是發(fā)病機制之一,機體外源性(煙霧/空氣污染)及內(nèi)源性(中性粒細胞、嗜酸粒細胞、巨噬細胞、淋巴細胞等)產(chǎn)生的氧化劑可以激活或抑制細胞內(nèi)與基因轉(zhuǎn)錄后修飾相關(guān)的蛋白酶,導致組蛋白及非組蛋白的染色質(zhì)重塑等表觀遺傳學的改變,造成某些基因異常表達,如炎癥因子、抗氧化、T細胞分化因子、細胞衰老、細胞自噬及凋亡等。目前表觀遺傳研究的分子基礎(chǔ)主要涉及三個方面:①DNA的甲基化修飾;②組蛋白的修飾;③非編碼RNA調(diào)控。組蛋白乙?;?去乙?;谡{(diào)節(jié)染色體結(jié)構(gòu)和功能上起核心作用,與COPD的關(guān)系也最密切[1]。組蛋白的乙酰化是染色體重構(gòu)的重要調(diào)節(jié)方式,組蛋白乙?;概c去乙酰化酶可通過增強或抑制組蛋白的乙?;?,實現(xiàn)對染色質(zhì)重構(gòu)的調(diào)控,進而控制基因的表達。煙霧氧化應激所致組蛋白乙?;揎椏梢酝ㄟ^激活炎癥因子基因、基質(zhì)金屬蛋白酶及活化T細胞等多條途徑,誘導COPD炎癥反應。抗氧化基因、T細胞分化因子表達基因及肺組織細胞老化、自噬、凋亡相關(guān)基因的表達異常,也與煙霧引起的組蛋白乙酰化/去乙?;揎楆P(guān)系密切。本文重點闡述COPD病程中,氧化應激造成的去乙酰化修飾相關(guān)的催化酶與這些基因表達的關(guān)系,以及這些異常表達的基因相互之間的影響,進一步明確氧化應激反應與組蛋白修飾在COPD病理過程中的重要地位,希望為疾病治療提供更多的藥物作用靶點。
染色質(zhì)的組蛋白乙酰化和去乙?;钦{(diào)節(jié)基因表達的重要方式,兩類作用完全相反的酶決定著組蛋白的乙?;潭?,即組蛋白乙酰基轉(zhuǎn)移酶(histone acetyltransfe-rases,HAT)和組蛋白去乙酰化酶(histone deacetylases,HDAC)。HDAC可以移去組蛋白Lys殘基上的乙?;謴徒M蛋白的正電性,增加了DNA與組蛋白之間的吸引力,染色質(zhì)結(jié)構(gòu)變得緊密,使轉(zhuǎn)錄因子及其輔助因子不易接近轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件,從而抑制基因的轉(zhuǎn)錄表達。而HAT的作用與之相反,可促進轉(zhuǎn)錄因子及其輔助因子與DNA分子的接觸,激活特定基因的轉(zhuǎn)錄過程。目前的研究多集中在HDAC異常與COPD發(fā)病之間的聯(lián)系。
COPD病理過程中涉及的組蛋白去乙?;讣易?HDAC)是一個大家族,其成員目前已知有4類18個不同的亞型,Ⅰ、Ⅱ、Ⅳ類具有結(jié)構(gòu)同源性,其中I類包括 HDAC1、2、3、8 四個亞型,Ⅱ類包括HDAC4、5、6、7、9、10 六個亞型;Ⅳ類只有 HDAC11一個亞型。Ⅰ類、Ⅱ類和Ⅳ各亞型HDAC與CODP關(guān)系的研究報道較多,Ⅲ類包括Sirt1-7共七個亞型,與前3類沒有結(jié)構(gòu)同源性,目前Ⅲ類中SIRT1亞型與COPD的關(guān)系受到越來越多研究者的重視。
2.1 COPD與Ⅰ類和Ⅱ類HDAC HDAC是一組重要的表觀遺傳調(diào)節(jié)酶,能夠把組蛋白賴氨酸殘基的乙酰基上去掉,導致DNA的纏繞和聚集,染色質(zhì)結(jié)構(gòu)變得緊密,抑制基因表達,而這類酶的表達降低可使組蛋白乙酰化水平增強,相應基因過度表達,導致疾病發(fā)生。吸煙引起的氧化應激反應使COPD患者肺組織中的HDAC減少或活性降低,其中HDAC2的減少最為顯著,致使HDAC/HAT平衡被破壞,使一些炎癥及凋亡相關(guān)基因激活,參與了COPD肺部炎癥及肺氣腫的發(fā)生[2]。動物實驗也證實,肺組織及其微血管上皮細胞中HDAC2表達降低后,缺氧誘導因子-1α(hypoxia inducible factor-1,HIF-1α)和血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)蛋白及mRNA表達水平相應降低,VEGF是維持正常肺組織結(jié)構(gòu)的重要生長因子,其表達降低破壞了試驗動物肺泡組織結(jié)構(gòu)[3],但是在后來的臨床實驗中,COPD 患者外周血Ⅰ(1、2、3、8)、Ⅱ(4、5、6、7、9、10)和Ⅳ(11)型 HDAC 中,除了 HDAC3 降低外,其他都沒有變化,為進一步明確COPD中最重要的HDAC作用亞型,研究者敲除COPD患者巨噬細胞的HDAC(1、2、3),發(fā)現(xiàn)只有HDAC3的下降促進白細胞介素-8(interleukin-8,IL-8)和白細胞介素1β(interleukin-1β,IL-1β)分泌,而 HDAC1、2 的降低對兩者均無影響[4],HDAC的異常表達在這些研究存在差異,需要進一步研究以明確。除了HDAC2、3以外,HDAC7異常也是COPD肺氣腫發(fā)生的重要原因。HDAC7減少或活性下降引起HIF-1α活性明顯降低,與 VEGF啟動子結(jié)合的能力下降,從而使VEGF的生成減少,導致COPD患者發(fā)生肺氣腫[5]。除此以外,HDAC還參與炎性趨化因子的分泌及基質(zhì)金屬蛋白酶活性的調(diào)節(jié),與COPD氣道平滑肌增殖等病理過程密切相關(guān)[6]。
2.2 COPD與去乙酰化酶 1(sirtuin type 1,SIRT1)SIRT1是第Ⅲ類去乙酰化酶,是研究相對較少的一種HDAC,可以催化各種蛋白及非蛋白質(zhì)的去乙?;磻绾艘蜃雍艘蜃?κB(nuclear factor κB,NF-κB),叉頭蛋白盒轉(zhuǎn)錄因子3,腫瘤抑制蛋白(tumor suppressor protein p53,p53),細胞周期依賴性蛋白激酶抑制因子1A,Ku抗原70 kDa亞基和過氧化物酶體增殖物激活受體γ輔激活因子1-a等。在煙霧刺激后的支氣管上皮細胞、巨噬細胞,COPD患者肺組織及煙霧刺激的大鼠肺組織中,均可發(fā)現(xiàn)SIRT1活性降低或表達水平下降[11,35]。由于SIRT1與氧化應激誘導的肺組織炎癥反應、自噬、凋亡、衰老及T細胞的活化等作用有關(guān),目前其已經(jīng)受到越來越多的關(guān)注[1]。
2.2.1 炎癥、細胞自噬與SIRT1 SIRT1對 COPD肺組織的保護作用是多方面的,首先表現(xiàn)為SIRT1對炎癥相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子NF-κB的抑制效應,吸煙可以顯著降低肺泡巨噬細胞中 SIRT1的活性,導致NF-κB的活化及促炎因子IL-8、腫瘤壞死因子-α的生成,引起肺部炎癥[7]。其次SIRT1參與多種金屬蛋白酶的分泌及活性的調(diào)節(jié),研究發(fā)現(xiàn)煙霧刺激后,氧化應激反應導致人類肺組織及單核細胞中SIRT1活性降低,進一步用煙霧刺激U937細胞也獲得了相同的結(jié)果,SIRT1活性以及mRNA表達減低使基質(zhì)金屬蛋白酶9(matrix metallopeptidases,MMP9)、12等金屬蛋白酶的啟動子(H4區(qū))乙?;缴?,相應的基因被激活并使多種金屬蛋白酶過度分泌,給予選擇性的 SIRT1激動劑可以有效降低MMP9的分泌,減輕胰蛋白酶誘導的肺大泡形成及肺功能的下降[8-9],說明 SIRT1通過對蛋白酶的抑制作用進而保護肺組織結(jié)構(gòu)完整性。最重要的是SIRT1還參與COPD病理過程中細胞自噬的調(diào)節(jié)。細胞自噬是細胞在極端狀況時的一種保護性行為,COPD氧化應激可以造成肺上皮細胞,成纖維細胞及巨噬細胞自噬行為發(fā)生,SIRT1在COPD的發(fā)病過程中有調(diào)節(jié)肺組織各種細胞自噬的作用,依據(jù)為:①煙霧刺激肺上皮細胞導致細胞自噬現(xiàn)象增加,給予SIRT1激動劑Resveratrol治療,細胞自噬減少;②SIRT1抑制劑增加肺組織細胞的自噬現(xiàn)象;③SIRT1-/-的小鼠的細胞自噬水平明顯增高,抑制NAD+-依賴酶PARP-1后也降低了細胞自噬的水平[10]。輕度氧化應激時SIRT1表達量會上調(diào),并且通過自噬的途徑幫助細胞度過難關(guān),然而煙霧刺激過度導致氧化應激所引起的細胞自噬,則使細胞、組織破壞增加。通過調(diào)節(jié)SIRT1的活性可以控制細胞自噬的范圍及程度,減輕COPD組織破壞程度。
2.2.2 細胞衰老與SIRT1 衰老的細胞是具有復雜且與細胞分泌相關(guān)的表型(senescence-associated secretory phenotype,SASP)的細胞,可以分泌 IL-6、IL-8及MPs等炎癥相關(guān)細胞因子[11]。Clara細胞與Ⅱ型肺泡細胞分別是支氣管和肺泡上皮細胞的祖細胞。COPD重要標志之一是這2種細胞提前出現(xiàn)衰老細胞的表型,這種分泌表型的出現(xiàn)是COPD肺部持續(xù)低水平炎癥反應及破壞肺組織結(jié)構(gòu)原因之一。研究發(fā)現(xiàn)胚胎干細胞中SIRT1的水平明顯高于分化成熟的各型細胞,細胞分化及衰老伴常隨著SIRT1水平的逐漸下降,COPD中煙霧引起的氧化應激反應可導致細胞內(nèi)SIRT1水平的急劇下降,該過程可以通過NF-κB途徑使RelA/p65亞單位乙?;缴摺⒓せ钛装Y相關(guān)基因轉(zhuǎn)錄、加速細胞老化,但是RelA/p65阻斷劑不能完全阻止細胞的老化,而SIRT1激動劑可以延遲細胞衰老的發(fā)生,所以SIRT1作為一種抗衰老蛋白,其降低可以直接加速COPD相關(guān)的Clara細胞與Ⅱ型肺泡細胞提前老化[12-13]。提高SIRT1活性有希望成為治療COPD細胞老化的選擇之一。
2.2.3 T細胞的活化與SIRT1 T細胞是COPD主要的反應細胞,T細胞的活化位于適應性免疫應答的中心位置,是炎癥反應過程中重要的起始環(huán)節(jié),它可以通過活化嗜酸性粒細胞、肥大細胞、巨噬細胞等炎癥細胞,進一步擴大呼吸道局部的炎癥反應。SIRT1可以通過抑制T細胞活化相關(guān)的蛋白Bclaf1(Bcl2相關(guān)因子)的活性,抑制T細胞的過度活化[13]。SIRT1水平及活性降低后,抑制作用下降,Bclaf1的啟動子區(qū)H3K56乙?;缴?,T細胞活化蛋白的活性增高,T細胞活性增加,炎癥反應逐級擴大[14]。通過調(diào)控組蛋白的乙?;秸{(diào)節(jié)T細胞等炎癥細胞的活性,將為COPD提供新的治療手段。
2.2.4 細胞凋亡與SIRT1 細胞凋亡是COPD的重要發(fā)病機制,是導致肺泡壁缺損、肺大泡形成等肺部結(jié)構(gòu)破壞的原因之一。組蛋白乙?;?去乙?;揎椀漠惓J浅朔核鼗?、磷酸化以外,可以引起細胞凋亡啟動的因素[16]。SIRT1水平及活性降低,可以使肺組織細胞凋亡率增加,其主要通過去?;疌DK4-pRB-E2F1這條途徑,抑制由其介導的細胞凋亡,同時通過使p53去乙?;档推浠钚?、抑制細胞凋亡。動物實驗發(fā)現(xiàn)SIRT1-/-的大鼠,在應激刺激后,p53乙?;矫黠@增高,DNA損傷誘導的細胞凋亡明顯增加[17]。體外研究的結(jié)果顯示,SIRT1能顯著抑制凋亡轉(zhuǎn)錄因子p53的K382位乙酰化,從而抑制p53轉(zhuǎn)錄活性,進而抑制其下游凋亡基因的表達[18]。但是在COPD中,SIRT1的下降是否可以通過激活p53,啟動細胞凋亡程序,從而引起肺組織細胞凋亡,目前尚無確切的證據(jù)證明。
紅系衍生核因子相關(guān)因子-2(Nuclear-factor erythroid 2-related factor 2,Nrf2)抗氧化信號通路是COPD煙霧氧化應激反應的主要要信號通路,參與COPD氧化應激反應、炎癥基因激活、激素敏感性的調(diào)控等多種反應。Nrf2是細胞氧化損傷的重要調(diào)節(jié)劑,是CNC轉(zhuǎn)錄因子家族成員之一[19]。在內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定的狀態(tài)下,在細胞質(zhì)內(nèi)Nrf2與Keap1蛋白結(jié)合,各種外源和內(nèi)源的小分子誘導劑可以導致Nrf2和Keap1解耦聯(lián),轉(zhuǎn)入細胞核內(nèi),從而激活血紅素氧化酶1、煙酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸、苯醌氧化還原酶1以及谷氨酸半胱氨酸連接酶等近50種抗氧化酶基因的表達[20]。Nrf2激活是在HDAC的催化下完成的。HDAC的數(shù)量下降或功能異常,可導致Nrf2與Keap1蛋白分離困難,Nrf2的核轉(zhuǎn)移率下降,抗氧化作用減弱,使肺組織應激損傷加重[21]。HDAC對抗氧化酶催化作用的下降,還可以造成COPD患者發(fā)生糖皮質(zhì)激素治療的抵抗,進一步加重肺組織局部的炎癥反應[22]。研究發(fā)現(xiàn),HDAC2可以直接與COPD患者來源的肺泡巨噬細胞的糖皮質(zhì)激素受體結(jié)合,發(fā)揮對炎癥基因轉(zhuǎn)錄因子NF-κB的共同抑制作用[23]。調(diào)節(jié)HDAC的活性不僅可以抑制炎癥相關(guān)基因的表達,還可以激活Nrf2抗氧化信號通路,增加抗感染治療的敏感性,減少激素治療的抵抗。
COPD肺組織的炎癥反應與T細胞亞群比例失衡有關(guān),T細胞向Th1亞群分化比例增加,出現(xiàn)Th1/Th2失衡。新的研究認為Th17/Treg比例在COPD患者也發(fā)生平衡失調(diào),T細胞傾向于向Th17細胞分化,COPD患者外周血Th17細胞相關(guān)的細胞因子 IL-17A/IL-17F 等分泌增多[24-25],造成 Th1/Th2/Treg/Th17失衡。氧化應激反應通過影響HDAC的功能,控制CD4+T細胞亞群分化的轉(zhuǎn)錄因子的表達,從而決定 T細胞亞群分化的類型[26]。HDAC1-/-的CD4+T細胞Th2型細胞因子生成增多,呼吸道過敏性炎癥加重,嗜酸性粒細胞在呼吸道聚集增加,呼吸道阻力增大[27];TLR2激動劑 Ara-LAM可以增強IL-12的啟動子區(qū)組蛋白H3的乙?;饔?,而使IL-12的分泌增加,誘導T細胞向Th1方向分化[28];Treg細胞的轉(zhuǎn)錄因子FOXP3啟動子區(qū)的組蛋白修飾的調(diào)節(jié)是影響Treg細胞分化的主要機制,多種HDAC的活性影響FOXP3與其他蛋白形成轉(zhuǎn)錄復合體,影響FOXP3的轉(zhuǎn)錄、轉(zhuǎn)錄的穩(wěn)定性和活性以及Treg的功能[29],HDAC抑制劑TSA,可以提高FOXP3的穩(wěn)定性及活性[30];Th17的分化也與HDAC有關(guān),TSA作為HDAC抑制劑,有效地減少Th1/Th17相關(guān)細胞因子IL-12/IL-23的分泌,選擇性降低相關(guān)趨化因子的水平,如 CXCL9、10、11[31]。綜上所述,通過調(diào)節(jié)組蛋白的乙?;揎棧M而調(diào)控T細胞亞群的分化,有望成為COPD等炎癥性疾病的治療手段。
組蛋白乙?;刚{(diào)節(jié)劑在臨床某些領(lǐng)域的應用已經(jīng)比較成熟,如HDAC抑制劑在腫瘤治療中的應用[32-33],HDAC 活性調(diào)節(jié)劑在治療呼吸系統(tǒng)疾病中的應用尚在探索階段,HDAC活性的降低可使COPD患者治療產(chǎn)生激素抵抗及抗氧化能力降低,導致肺部炎癥難以及時控制,提高HDAC活性有望成為治療呼吸系統(tǒng)炎癥性疾病的新的綜合治療靶點[34]。例如對HDAC活性具有調(diào)節(jié)作用的茶堿不僅是一種支氣管擴張劑,而且可以明顯增加HDAC的活性,從而在呼吸系統(tǒng)疾病的治療中占據(jù)了重要的地位[35],但是由于其作用靶點廣泛,特異性較差,副作用也較大,目前迫切需要研發(fā)特異性較高的針對某一特定HDAC的藥物,或者定位于某一組織、器官(如肺組織)的 HDAC抑制劑(靶向藥物)。組蛋白乙?;刚{(diào)節(jié)劑的研究的文獻比較少,目前研究仍較為落后,故進一步明確疾病的組蛋白表觀遺傳學修飾機制,將為這些藥物的研發(fā)提供基本的理論依據(jù)。
COPD中氧化應激反應使組蛋白乙酰化/去乙?;Ш饧叭旧|(zhì)結(jié)構(gòu)重塑,這種基因的表觀遺傳學修飾是導致炎癥因子表達增加的原因;通過對T細胞分化因子的組蛋白乙?;揎棧M而對肺部炎癥類型及程度產(chǎn)生巨大影響,同時HDAC也影響抗氧化基因作用的正常發(fā)揮;另外組蛋白修飾異常導致的肺組織細胞的老化、自噬、凋亡與肺部炎癥相互作用,更是加速病程的進展。目前COPD治療的形勢并不樂觀,建立以組蛋白乙?;?去乙酰化調(diào)整為靶點的治療方案,可以有效阻斷COPD病理進程的多個環(huán)節(jié)。如今,組蛋白修飾在COPD炎癥基因的表達及細胞功能調(diào)控方面的作用正變得越來越清晰,針對相應的酶的活性進行調(diào)節(jié)必將成為新的治療手段。針對HDAC調(diào)節(jié)劑的研究也取得了重大突破,HDAC抑制劑已廣泛應用于各種惡性腫瘤治療研究中,并顯示出特有的優(yōu)勢,未來的研究應當繼續(xù)探究組蛋白和DNA的甲基化修飾等轉(zhuǎn)錄后的修飾在COPD中的作用,尋找更多氧化應激所導致的表觀遺傳學修飾改變,建立以調(diào)節(jié)表觀遺傳修飾為理論基礎(chǔ)的COPD的治療方式,為呼吸道炎癥性疾病治療提供新的作用靶點。
[1]Sundar IK,Yao H,Rahman I.Oxidative stress and chromatin remodeling in chronic obstructive pulmonary disease and smokingrelated diseases[J].Antioxid Redox Signal,2013,18(15):1956-1971.
[2]Ito K,Ito M,Barnes PJ.Decreased histone deacetylase activity in chronic obstructive pulmonary disease[J].N Engl J Med,2005,352(19):1967-1976.
[3]Mizuno S,Yasuo M,Bogaard HJ,et al.Inhibition of histone deacetylase causes emphysema[J].Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol,2011,300(3):402-413.
[4]Winkler AR,Nocka KN,Williams CM.Smoke exposure of human macrophages reduces HDAC3 activity,resulting in enhanced inflammatory cytokine production[J].Pulm Pharmacol Ther,2012,25(4):286-292.
[5]To M,Yamamura S,Akashi K,et al.Defect of adaptation to hypoxia in patients with COPD due to reduction of histone deacetylase 7[J].Chest,2012,141(5):1233-1242.
[6]Ishikawa F,Miyoshi H,Nose K,et al.Transcriptional induction of MMP-10 by TGF-beta,mediated by activation of MEF2A and downregulation of class IIa HDAC[J].Oncogene,2010,29(6):909-919.
[7]Yang SR,Wright J,Bauter M,et al.Sirtuin regulates cigarette smoke-induced proinflammatory mediator release via RelA/p65 NF-kappaB in macrophages in vitro and in rat lungs in vivo:implications for chronic inflammation and aging[J].Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol,2007,292(2):567-576.
[8]Nakamaru Y,Vuppusetty C,Wada H,et al.A protein deacetylase SIRT1 is a negative regulator of metalloproteinase-9[J].FASEB J,2009,23:2810-2819.
[9]Yao H,Chung S,Hwang JW,et al.SIRT1 protects against emphysema via FOXO3-mediated reduction of premature senescence in mice[J].J Clin Invest,2012,122(6):2032-2045.
[10]Hwang JW,Chung S,Sundar IK,et al.Cigarette smoke-induced autophagy is regulated by SIRT1-PARP-1-dependent mechanism:implication in pathogenesis of COPD[J].Arch Biochem Biophys,2010,500(2):203-209.
[11]Tominaga-Yamanaka K,Abdelmohsen K,Martindale JL,et al.NF90 coordinately represses the senescence-associated secretory phenotype[J].Aging(Albany NY),2012,4(10):695-708.
[12]Rajendrasozhan S,Yang SR,Kinnula VL,et al.SIRT1,an antiinflammatory and antiaging protein,is decreased in lungs of patients with chronic obstructive pulmonary disease[J].Am J Respir Crit Care Med,2008,177(8):861-870.
[13]Kuilman T,Michaloglou C,Vredeveld LC,et al.Oncogene-induced senescence relayed by an interleukin-dependent inflammatory network[J].Cell,2008,133:1019-1031.
[14]McPherson JP,Sarras H,Lemmers B,et al.Essential role for Bclaf1 in lung development and immune system function[J].Cell Death Differ,2009,16(2):331-339.
[15]Das C,Lucia MS,Hansen KC,et al.CBP/p300-mediated acetylation of histone H3 on lysine 56[J].Nature,2009,459(7243):113-117.
[16]Groth A,Rocha W,Verreault A,et al.Chromatin challenges during DNA replication and repair[J].Cell,2007,128(4):721-733.
[17]Luo J,Li M,Tang Y,Laszkowska M,et al.Acetylation of p53 augments its site-specific DNA binding both in vitro and in vivo[J].Proc Natl Acad Sci USA,2004,101(8):2259-2264.
[18]Kalle AM,Mallika A,Badiger J,et al.Inhibition of SIRT1 by a small molecule induces apoptosis in breast cancer cells[J].Biochem Biophys Res Commun,2010,401(1):13-19.
[19]Xing HY,Liu Y,Chen JH,et al.Hyperoside attenuates hydrogen peroxide-induced L02 cell damage via MAPK-dependent Keap(1)-Nrf(2)-ARE signaling pathway[J].Biochem Biophys Res Commun,2011,410(4):759-765.
[20]Kensler TW,Wakabayashi N,Biswal S.Cell survival responses to environmental stresses via the Keap1-NRF2-ARE pathway[J].Annu Rev Pharmacol Toxicol,2007,47:89-116.
[21]Wang B,Zhu X,Kim Y,et al.Histone deacetylase inhibition activates transcription factor Nrf2 and protects against cerebral ischemic damage[J].Free Radic Biol Med,2012,52(5):928-936.
[22]Adenuga D,Caito S,Yao H,et al.Nrf2 deficiency influences susceptibility to steroid resistance via HDAC2 reduction[J].Biochem Biophys Res Commun,2010,403(3-4):452-456.
[23]Malhotra D,Thimmulappa RK,Mercado N,et al.Denitrosylation of HDAC2 by targeting Nrf2 restores glucocorticosteroid sensitivity in macrophages from COPD patients[J].J Clin Invest,2011,121(11):4289-4302.
[24]Vargas-Rojas MI,Ramírez-Venegas A,Limón-Camacho L,et al.Increase of Th17 cells in peripheral blood of patients with chronic obstructive pulmonary disease[J].Respir Med,2011,105(11):1648-1654.
[25]Zhao J,Lloyd CM,Noble A.Th17 responses in chronic allergic airway inflammation abrogate regulatory T-cell-mediated tolerance and contribute to airway remodeling[J].Mucosal Immunol,2013,6(2):335-346.
[26]Ansel KM,Djuretic I,Tanasa B,et al.Regulation of Th2 differentiation and Ⅱ4 locus accessibility[J].Annu Rev Immunol,2006,24:607-656.
[27]Grausenburger R,Bilic I,Boucheron N,et al.Conditional deletion of histone deacetylase 1 in T cells leads to enhanced airway inflammation and increased Th2 cytokine production[J].J Immunol,2010,185(6):3489-3497.
[28]Bhattacharya P,Gupta G,Majumder S,et al.Arabinosylated lipoarabinomannan skews Th2 phenotype towards Th1 during Leishmania infection by chromatin modification:involvement of MAPK signaling[J].PLoS One,2011,6(9):e24141.
[29]Zhang H,Xiao Y,Zhu Z,et al.Immune regulation by histone deacetylases:a focus on the alteration of FOXP3 activity[J].Immunol Cell Biol,2012,90(1):95-100.
[30]Tao R,de Zoeten EF,Ozkaynak E,et al.Deacetylase inhibition promotes the generation and function of regulatory T cells[J].Nat Med,2007,13(11):1299-1307.
[31]Bosisio D,Vulcano M,Del Prete A,et al.Blocking TH17-polarizing cytokines by histone deacetylase inhibitors in vitro and in vivo[J].J Leukoc Biol,2008,84(6):1540-1548.
[32]Kuo SJ,Lin HY,Chien SY,et al.SIRT1 suppresses breast cancer growth through downregulation of the Bcl-2 protein[J].Oncol Rep,2013,30(1):125-130.
[33]封 冰,陳龍邦.微小RNA與表觀遺傳調(diào)控:腫瘤治療新策略[J].醫(yī)學研究生學報,2011,24(1):92-95.
[34]Barnes PJ.New therapies for chronic obstructive pulmonary disease[J].Med Princ Pract,2010,19(5):330-338.
[35]文 文,賴國祥.慢性阻塞性肺疾病氣道重構(gòu)的研究進展[J].醫(yī)學研究生學報,2008,21(11):1214-1218.