張大偉 呂恒娟 劉貴波 李明秋 (牡丹江醫(yī)學(xué)院,黑龍江 牡丹江 570)
隨著人們對腫瘤淋巴道轉(zhuǎn)移的研究不斷深入,關(guān)于淋巴管內(nèi)皮細(xì)胞(LECs)的形態(tài)學(xué)特征、生理功能、生物特性及其在病理過程的作用也逐漸成為研究熱點(diǎn)。1984年Jottstcm和Walker首次成功地分離、培養(yǎng)了牛腸系膜LECs,并觀察了其形態(tài)學(xué)特征〔1〕。近年來,隨著分子生物學(xué)和細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)的飛速發(fā)展,許多學(xué)者成功地進(jìn)行了多種組織的 LECs離體培養(yǎng)〔2~6〕。本研究從原代培養(yǎng)豬胸導(dǎo)來源的內(nèi)皮細(xì)胞入手,研究LECs的形態(tài)學(xué)特性,并創(chuàng)建了可靠的培養(yǎng)方法,將為今后進(jìn)一步研究LECs的功能和在腫瘤轉(zhuǎn)移中的作用機(jī)制提供可靠的材料。
1.1 材料 取豬胸主動脈及其后面的組織(其內(nèi)含胸異管),用含有雙抗(含青霉素鏈霉素各200 U/ml)和兩性霉素 B 50 U/ml預(yù)冷的D-Hanks沖洗3次,盡可能去除血液和雜質(zhì),然后放入裝有含雙抗的D-Hanks液瓶中,置于冰袋預(yù)冷的保溫箱內(nèi)送實(shí)驗(yàn)室,立即進(jìn)行試驗(yàn)。
1.2 LECs的分離純化培養(yǎng)及傳代 將胸導(dǎo)管兩端游離,并插入導(dǎo)管,用止血鉗將近心端導(dǎo)管結(jié)扎,在遠(yuǎn)心端向胸導(dǎo)管內(nèi)注入膠原酶(1 g/L),至胸導(dǎo)管充盈為止。將其置于37℃的恒溫箱內(nèi)消化10~15 min,用培養(yǎng)液加壓沖洗管腔,將消化液和沖洗液離心(1 000 r/min,10 min),吸去上清液,用培養(yǎng)液輕輕混懸細(xì)胞。將細(xì)胞接種于預(yù)先用明膠或多聚賴氨酸噴涂的培養(yǎng)皿中,然后置于37℃,體積分?jǐn)?shù)為5%的CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。每隔2~3 d更換培養(yǎng)液1次。約10%細(xì)胞匯合生長形成單層。當(dāng)內(nèi)皮細(xì)胞生長形成單層時,進(jìn)行1∶3傳代培養(yǎng)。
1.3 免疫熒光染色鑒定LECs 原代LECs傳代于24孔板中繼續(xù)培養(yǎng)至60% ~80%,用預(yù)溫磷酸鹽緩沖液(PBS)洗滌3次,4%多聚甲醛室溫固定60~90 min,PBS洗滌2次,0.5%Triton-100處理細(xì)胞30 min,PBS洗滌2次,山羊血清用PBS按1∶10的比例稀釋后室溫封閉20 min,后棄去多余液體,分別用鼠抗人血管皮生長因子受體(VEGR)-3(1∶200),淋巴管內(nèi)皮透明質(zhì)酸受體-1(LYVE-1)(1∶400)抗體4℃孵育過夜,PBS洗滌3次,羊來源的二抗(1∶100)室溫孵育30 min,PBS洗滌2次,鏈霉親合素-生物素復(fù)合物(SABC)-異硫氰酸熒光素(FITC)(1∶100)室溫孵育30 min,PBS洗滌4次,倒置熒光顯微鏡下觀察拍照分析。
1.4 透射電鏡觀察LECs超微結(jié)構(gòu) 收集培養(yǎng)的豬胸導(dǎo)管內(nèi)皮細(xì)胞,離心后用3%戊二醛固定,1%鋨酸固定,經(jīng)脫水、浸透、包埋,制成半薄切片,然后制成超薄切片,透射電鏡觀察。
2.1 細(xì)胞的原代培養(yǎng)及傳代 原代細(xì)胞培養(yǎng)3~5 h后,大部分活力較高的內(nèi)皮細(xì)胞完成貼壁;12~24 h后,內(nèi)皮細(xì)胞已鋪展形成由數(shù)個細(xì)胞組成的細(xì)胞群,每群細(xì)胞數(shù)目不等,形態(tài)呈梭形;培養(yǎng)18~24 h后,更換培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)。在2~3 d內(nèi),細(xì)胞生長緩慢,1 w后細(xì)胞分裂旺盛,進(jìn)入對數(shù)生長期;10 d后,細(xì)胞呈生長密集狀并匯合形成單層,呈特征性“鵝卵石狀”或“鋪路石狀”鑲嵌排列生長并有接觸抑制現(xiàn)象,無重疊生長。當(dāng)淋巴管內(nèi)皮細(xì)胞形成單層時進(jìn)行傳代培養(yǎng),25~30 min后,淋巴管內(nèi)皮細(xì)胞開始貼壁生長,傳代培養(yǎng)1 w后內(nèi)皮細(xì)胞匯合形成單層。見圖1。
圖1 細(xì)胞原代培養(yǎng)(×100)
2.2 免疫熒光染色鑒定LECs 免疫熒光檢測發(fā)現(xiàn)實(shí)驗(yàn)中所分離的細(xì)胞絕大部分均表達(dá)淋巴管內(nèi)皮細(xì)胞標(biāo)記分子LYVE-1和VEGFR-3。綜合分析該細(xì)胞的純度>95%,淋巴管內(nèi)皮細(xì)胞特征明確,可以用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。見圖2。
2.3 LECs超微結(jié)構(gòu) 在透射電鏡下,內(nèi)皮細(xì)胞呈卵圓形、短梭形、多角形或不規(guī)則形,從細(xì)胞膜上偶有一些長的突起。細(xì)胞核大,核仁清晰,細(xì)胞質(zhì)內(nèi)含有豐富的吞飲小泡,并有較多的線粒體和粗面內(nèi)質(zhì)網(wǎng),在對數(shù)生長期可見雙核仁。見圖3。
圖2 免疫熒光染色鑒定LECs
圖3 透射電鏡觀察LECs超微結(jié)構(gòu)
LECs在多次傳代后性狀會發(fā)生改變,因此在目前階段認(rèn)為原代培養(yǎng)LECs是比較可靠的實(shí)驗(yàn)方法,而LECs的長期培養(yǎng)建系長期以來都是一個難題。取材過程中傳統(tǒng)方法是把胸導(dǎo)管完全游離,用鑷子和眼科剪子仔細(xì)剝除胸導(dǎo)管表面的脂肪和纖維組織〔5~7〕,但在修剪胸導(dǎo)管過程中,常把胸導(dǎo)管小的屬支剪斷,使胸導(dǎo)管有一些漏點(diǎn),以至于很難取到足夠長的胸導(dǎo)管進(jìn)行消化。
LECs活力有限,對培養(yǎng)條件要求較高。ECM是培養(yǎng)內(nèi)皮細(xì)胞的專用培養(yǎng)基,其含有必需氨基酸、維生素和無機(jī)鹽;ECGS能顯著提高細(xì)胞的活力,縮短細(xì)胞的生長周期,未加入ECGS的培養(yǎng)基接種LECs后發(fā)現(xiàn)其擴(kuò)增有限,難以生長。
目前 LECs的標(biāo)記分子如 LYVE-1,VEGFR-3,Prox-1,Podoplanin等已經(jīng)得到國內(nèi)外學(xué)者的證實(shí),其特異性均比較高〔8~11〕。本文采用兩種標(biāo)記分子對所培養(yǎng)的細(xì)胞進(jìn)行免疫熒光細(xì)胞化學(xué)鑒定,排除所培養(yǎng)的細(xì)胞不是LECs的可能,尤其是在消化過程中可能造成污染的成纖維細(xì)胞和平滑肌細(xì)胞的干擾,同時也排除了生物學(xué)特性與LECs相近的微血管內(nèi)皮細(xì)胞的可能。目前也有研究報道部分炎性細(xì)胞如腫瘤相關(guān)巨噬細(xì)胞,樹突細(xì)胞也可表達(dá)LYVE-1〔12〕,但是此類細(xì)胞在本實(shí)驗(yàn)條件下難以生長。結(jié)果表明培養(yǎng)的LECs純度比較高,達(dá)到95%可以用于進(jìn)一步的實(shí)驗(yàn)。
透射電鏡觀察到,LECs胞質(zhì)內(nèi)有發(fā)達(dá)的線粒體和粗面內(nèi)質(zhì)網(wǎng)等細(xì)胞器,說明培養(yǎng)的淋巴管內(nèi)皮功能較活躍。胞質(zhì)中有豐富的吞飲小泡,這些小泡有運(yùn)輸物質(zhì)的作用,這表明細(xì)胞有很強(qiáng)的吞飲能力。內(nèi)皮細(xì)胞核淡染,以常染色質(zhì)為主,核仁大而明顯。在對數(shù)生長期細(xì)胞核內(nèi)可見雙核仁,這表明LECs具有旺盛的增殖分裂能力。此外,該細(xì)胞在體外培養(yǎng)至第3代時仍保持了內(nèi)皮細(xì)胞的特性。
本實(shí)驗(yàn)改進(jìn)了膠原酶灌注消化豬胸導(dǎo)管得到LECs的方法,可以用較少的材料獲得數(shù)量和純度均較高的LECs,成功率高,這為進(jìn)一步研究LECs生理功能、免疫反應(yīng)、生長發(fā)育提供有效的平臺。此外,本實(shí)驗(yàn)還觀察了LECs的超微結(jié)構(gòu),為進(jìn)一步研究LECs提供了形態(tài)學(xué)依據(jù)。
1 Jonston MG,Walker MA.Lymphatic endothelial and smooth-muscle cells in tissue culture〔J〕.In Vitro,1984;20(7):556-72.
2 Gnepp DR,Chandler W.Tissue culture of human and canine thoracic duct endothelium〔J〕.In Vitro Cell Dev Biol,1985;21(4):200.
3 Leak LV,Jones M.Lymphatic endothelium isolation,characterization and long term culture〔J〕.Anat Rec,1993;236(4):641.
4 譚玉珍,王海杰.細(xì)胞外基質(zhì)對體外淋巴管新生的作用〔J〕.解剖學(xué)報,2002;33(1):69-73.
5 遲曉艷,邵旭建.血管生成抑制素和反應(yīng)停對淋巴管內(nèi)皮細(xì)胞生成的影響〔J〕.解剖學(xué)雜志,2005;28(5):513-6.
6 謝方民,程園園,邵旭建.內(nèi)抑制素和血小板因子-4對淋巴管內(nèi)皮細(xì)胞生成的影響〔J〕.解剖學(xué)報,2005;36(4):386-9.
7 劉 超,高慧婕,邵旭建.血管內(nèi)皮抑制因子α-干擾素和γ-干擾素對淋巴管內(nèi)皮細(xì)胞增殖和游走的影響〔J〕.解剖學(xué)雜志,2007;30(1):16-21.
8 Banerji S,Ni J,Wang SX,et al.LYVE-1,a new homologue of the CD44 glycoprotein,is a lymph-specific receptor for hyaluronan〔J〕.J Cell Biol,1999;144(4):789-801.
9 Nojiri H,Ohhashi T.lmmunolocalization of nitric oxide synthase and VEGF receptors in cultured lymphatic endothelial cells〔J〕,Microcirculation,1999;6(1):75-8.
10 Wigel JT,Oliver G.Prox l function is required for the development of the mlurine lymphatic system〔J〕.Cell,1999;98(6):769-78.
11 Sehlingenmann RO,Dingian GM,Emeis JJ.Monoclonal antibody PAL-E specific for endothelium〔J〕.Lab Invest,1985;52(1):71-6.
12 Rubbia-Brandt L,Terris B,iostra E,et al.Lymphatic vessel density and vascular endothelial growth factor-C expression correlate with malignant behavior in human pancreatic endocrine tumors〔J〕.Clin Cancer Res,2004;10(20):6919-28.