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超濾分級(jí)研究乳清蛋白肽美拉德反應(yīng)產(chǎn)物的抗氧化活性的影響

2014-12-16 07:43:08孫常雁李德海劉騫孔保華
中國(guó)乳品工業(yè) 2014年2期
關(guān)鍵詞:螯合分子量自由基

孫常雁,李德海,劉騫,孔保華

(1.東北農(nóng)業(yè)大學(xué) a.食品學(xué)院,哈爾濱 150030;b.黑龍江省乳品工業(yè)技術(shù)開發(fā)中心,哈爾濱150028;2.東北林業(yè)大學(xué) 林學(xué)院,哈爾濱 150040)

0 引 言

美拉德反應(yīng)能提高天然蛋白質(zhì)、肽及氨基酸的乳化性[1]、溶解性[2]、熱穩(wěn)定性[3]、抗菌性[4]、抗癌性[5]、抗氧化活性[6]和抗過(guò)敏性[7]等。但由于MRPs分子組成很復(fù)雜,需要分級(jí)分離研究,目前多采用膜法進(jìn)行分離。楊曉泉等[8]利用切向流超濾膜對(duì)大豆蛋白肽進(jìn)行了分級(jí)分離并研究其功能性的變化;黃文凱[9]對(duì)大豆肽液超濾和納濾脫鹽的分離特性進(jìn)行了系統(tǒng)的研究;Feng等[10]使用膜將酪蛋白-葡萄糖MRPs分成多個(gè)分子量范圍并研究其抗氧活性的差異;徐獻(xiàn)兵等[11]采用超濾膜分離技術(shù)研究不同分子量段MRPs的特性。

本研究利用不同分子截留量的超濾膜對(duì)WPPMRPs進(jìn)行了分級(jí)分離,目的是分析其抗氧化活性隨分子量分布的變化規(guī)律,為WPP-MRPs在功能食品和藥品中的應(yīng)用提供可行的依據(jù)。

1 實(shí) 驗(yàn)

1.1 試驗(yàn)原料、試劑與儀器

乳清蛋白,ABTS(2,2'-連氮基-雙-(3-乙基苯并二氫噻唑啉-6-磺酸)二銨鹽),抗壞血酸(Vc)、丁基羥基茴香醚(BHA)、鄰苯二酚紫、硫酸亞鐵、磷酸鹽緩沖液(PBS)、無(wú)水乙醇。

紫外可見分光光度計(jì)TU-1800,高速萬(wàn)能粉碎機(jī),R-205B旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,超濾膜分離設(shè)備,電子天平,恒溫水浴鍋。

1.2 WPP-MRPs的制備

參照本實(shí)驗(yàn)室前期的實(shí)驗(yàn)結(jié)果[12],準(zhǔn)確稱取乳清蛋白配成質(zhì)量分?jǐn)?shù)為5%的乳清蛋白溶液、經(jīng)95℃預(yù)熱5 min,用1 mol/L的NaOH調(diào)節(jié)溶液pH值到8.5,加入堿性蛋白酶,酶與底物比為2∶100(即每100 g的乳清蛋白底物所需要的堿性蛋白酶的體積為2 mL),水浴55℃下振蕩水解,反應(yīng)過(guò)程中不斷加入濃度為1 mol/L的NaOH,使pH值保持8.5,水解5 h,之后煮沸5 min滅酶活。

將水解后的乳清蛋白抗氧化肽,加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)為8%的葡萄糖,在一定溫度和磁力攪拌(40 r/min)下加熱,反應(yīng)一定時(shí)間后立即用冰水混合物迅速降溫,終止反應(yīng),樣品經(jīng)1 000 g離心10 min,除去沉淀,上清液凍低溫旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮、冷凍干燥為粉末備用。

1.3 不同分子量分布范圍的WPP-MRPs的分級(jí)

利用中空纖維超濾膜將1.2中制備的WPP-MRPs混合物上清液進(jìn)行超濾分級(jí),使其先后通過(guò)截留分子量為5 ku及0.8 ku的的超濾膜進(jìn)行截流分段,溫度為20℃,壓力為0.1 MPa, 得到I(分子量<0.8 ku)、II(0.8 ku<分子量<5 ku)、III (分子量>5 ku)3個(gè)不同分子量等級(jí)WPP-MRPs,然后低溫旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮、冷凍干燥為粉末備用。

1.4 WPP-MRPs抗氧化活性測(cè)定

抗氧化能力包括總鐵還原能力、ABTS自由基清除能力、羥基自由基清除、硫代巴比妥酸反應(yīng)物質(zhì)(Thiobarbituric acid-reactive substances,TBARS)、 對(duì)金屬離子螯合能力。分別測(cè)定I、II、III部分WPPMRPs和不分段的WPP-MRPs混合物的抗氧化活性各項(xiàng)指標(biāo)。

1.4.1 總還原能力測(cè)定

參照Kanokwan[13]的方法。分別取樣品溶液0.5 mL(質(zhì)量濃度為10,20,30,40,50,60,70 g/L),加入2.5 mL磷酸鹽緩沖液(濃度為0.2 mol/L,pH值為6.6)和2.5 mL的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%鐵氰化鉀溶液,混合均勻。再將混合物在50℃下水浴保持20 min后急速冷卻,加入2.5 mL的10%的三氯乙酸溶液,然后將混合物在3 360 g下離心10 min。取2.5 mL上層清液,加入2.5 mL蒸餾水和0.5 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.1%的氯化鐵溶液,混合均勻,放置10 min后,在700 nm處測(cè)定其吸光值。以Vc為對(duì)照,研究WPP-MRPs的還原能力。

1.4.2 ABTS自由基清除的測(cè)定

參照Ozgen[14]的方法并略有改動(dòng),分別將WPPMRPs配制成質(zhì)量濃度為10,20,30,40,50,60,70 g/L的樣品溶液。濃度為7.0 mmol/L的ABTS溶液與終濃度為2.45 mmol/L的過(guò)硫酸鉀混合,室溫避光放置12~16 h。用pH值為4.5的乙酸鈉溶液(濃度為20 mmol/L)稀釋至波長(zhǎng)734 nm處的吸光度為0.7±0.02。取3 mL該溶液與20 μL樣品液混合,放置6 min,于波長(zhǎng)734 nm處測(cè)定吸光度,以Vc為對(duì)照,研究WPP-MRPs的清除ABTS自由基能力。按照下式計(jì)算ABTS自由基清除率為

式中:Ac為對(duì)照的吸光度;As為樣品的吸光度。

1.4.3 ·OH自由基清除能力的測(cè)定

參照Wang[15]的方法稍作改進(jìn),分別將WPP-MRPs配制成質(zhì)量濃度為10,20,30,40,50,60,70 g/L的樣品溶液。在試管中依次加入濃度為6 mmol/L的FeSO4溶液1 mL,濃度為6 mmol/L的H2O2溶液1mL和樣品溶液1 mL,搖勻,靜置10 min,再加入濃度為6 mmol/L的水楊酸溶液1 mL,搖勻,靜置30 min后于510 nm波長(zhǎng)處測(cè)其吸光度。以乙醇溶液代替待測(cè)液作空白對(duì)照,測(cè)定吸光度。以Vc為對(duì)照,研究WPP-MRPs的清除羥自由基能力。清除率為

·OH清除率=[1-(A1-A0)/A]×100%,

式中:A為空白對(duì)照的吸光度;A0為無(wú)水楊酸時(shí)加入樣品液的吸光度;A1為加入樣品液的吸光度。

1.4.4 對(duì)金屬離子的螯合能力

參照Guo[16]的方法稍作修改進(jìn)行研究。Cu2+的螯合:用鄰苯二酚紫作為金屬螯合指示劑。向1 mL濃度為2 mmol/L的CuSO4溶液、1mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10%的吡啶與20 μL質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.1%的鄰苯二酚紫混合物中添加1 mL的乳清蛋白水解物,鄰苯二酚紫與CuSO4結(jié)合形成藍(lán)色物質(zhì),在有螯合劑存在時(shí)鄰苯二酚紫與Cu2+離子分離,溶液藍(lán)色消失。鄰苯二酚紫溶液顏色的變化可以在632 nm處測(cè)得。

對(duì)于Fe2+的螯合:1 mL濃度為20 μmol/L的FeCl2與1 mL濃度為0.5 mmol/L的ferrozine混合后會(huì)產(chǎn)生一種物質(zhì),在562 nm處有強(qiáng)吸收。向其中添加0.5m L的乳清蛋白水解物,由于Fe2+被螯合,溶液顏色發(fā)生變化,在562 nm下讀取吸光值。

螯合作用=[1-(樣品溶液的吸光值/空白溶液的吸光值)]×100。

1.4.5 硫代巴比妥酸反應(yīng)物質(zhì)的測(cè)定

第一步:脂肪氧化體系(Liposome)的制備

卵磷脂脂質(zhì)體氧化體系 (soybean phosphatidylcholine liposome),采用Decker和 Hultin[17]的方法并進(jìn)行一些改進(jìn)。將大豆卵磷脂(質(zhì)量濃度0.2 g/L)溶解在濃度為0.12 mol/L的KCl溶液,濃度為5 mmol/L組氨酸緩沖溶液 (pH值為 6.8)均質(zhì)后,在4°C進(jìn)行超聲波降解45 min。為測(cè)定樣品的抗氧化活力,準(zhǔn)備一系列5 mL脂質(zhì)體和1 mL各種待測(cè)樣品進(jìn)行試驗(yàn)。陰性對(duì)照用1 mL水代替1 mL樣品溶液與5 mL脂質(zhì)混合,同時(shí)以質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.02%的BHA作為陽(yáng)性對(duì)照。脂質(zhì)氧化由鐵的氧化還原反應(yīng)引發(fā),將0.1 mL濃度為50 mmol/L的FeCl3和0.1 mL濃度為10 mmol/L抗壞血酸鹽加入脂質(zhì)/蛋白溶液(6 mL)中。樣品在37°C 水浴中保溫1 h,并迅速通過(guò)測(cè)定硫代巴比妥酸反應(yīng)物質(zhì) (TBARS)研究脂肪氧化情況。

第二步:硫代巴比妥酸反應(yīng)物質(zhì)的測(cè)定

TBARS的測(cè)定,參照Sinnhuber和Yu[18]的方法,并作適當(dāng)?shù)男薷?。? mL樣品加入3 mL硫代巴比妥酸溶液、17 mL三氯乙酸-鹽酸溶液,混勻后,沸水浴中反應(yīng)30min,冷卻,取5 mL樣品加入等體積的氯仿,3000 r/min下離心10 min,532 nm下讀取吸光值。TBARS值以每升脂質(zhì)氧化樣品溶液中丙二醛的毫克數(shù)表示。計(jì)算為

TBARS(mg/kg)=(A532/Vs)× 9.48,

式中A532為溶液的吸光值;Vs為樣品的體積;9.48為常數(shù)。

1.5 統(tǒng)計(jì)分析

實(shí)驗(yàn)中測(cè)定結(jié)果重復(fù)測(cè)定3次,結(jié)果表示為平均數(shù)±SD。數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析采用Statistix 8.1(分析軟件,St Paul,MN)軟件包中Linear Models程序進(jìn)行,差異顯著性(P<0.05)分析使用Tukey HSD程序,采用sigmaplot9.0軟件作圖。

2 結(jié)果與討論

2.1 WPP-MRPs總還原能力分析

測(cè)定總還原能力實(shí)質(zhì)是基于氧化還原反應(yīng)的比色法,非酶抗氧化劑可以看作還原劑,把氧化物質(zhì)還原,從而起到抗氧化劑的作用。本試驗(yàn)以不同濃度的天然抗氧化劑Vc作為對(duì)照,評(píng)價(jià)WPP-MRPs混合物及不同分子量分布范圍Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ的總還原能力。

圖1 WPP-MRPs的還原能力

由圖1可以看出,WPP-MRPs、Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ和Vc均隨著質(zhì)量濃度的增加,A700值增大,表明還原能力隨之增大,而且還原能力與其濃度成量效關(guān)系。其中質(zhì)量濃度在10~70 g/L之間,Ⅱ的還原能力顯著高于相同質(zhì)量濃度WPP-MRPs、Ⅰ、Ⅲ及Vc的還原能力(P<0.05),但是WPP-MRPs混合物的還原能力高于相同濃度Ⅰ、Ⅲ的還原能力,說(shuō)明具有較好還原力的WPP-MRPs分子量分布在0.8~5 ku之間。當(dāng)質(zhì)量濃度為70 g/L時(shí),Ⅱ的A700值為1.551±0.06,WPP-MRPs的A700值為1.26±0.07,分別相當(dāng)于質(zhì)量濃度為212.9 mg/L和173.2 mg/L Vc的還原力。結(jié)果表明,Ⅱ分子量分布在0.8~5 ku之間的WPP-MRPs具有較強(qiáng)的還原能力。

Ames 等[19]將MRPs分為兩大類:一種是由2~4個(gè)含有多個(gè)共軛雙鍵的環(huán)狀物組成的中低分子量化合物,另一種是量具有發(fā)色基團(tuán)的較高分子的褐色聚合物-類黑精。美拉德反應(yīng)產(chǎn)物具有一定的還原能力,原因可能為反應(yīng)過(guò)程產(chǎn)生了大量褐色素以及還原酮、吡咯酮、脫氧果糖嗪類等能夠提供氫電子的物質(zhì)[20],而氫電子具有還原性,可將Fe3+還原為Fe2+,F(xiàn)e2+進(jìn)一步發(fā)生Perl’s Prussian反應(yīng)從而表現(xiàn)出還原能力[21]。Eichner等[22]發(fā)現(xiàn)MRPs中等分子量的還原酮類化合物可通過(guò)羥基提供電子破壞自由基鏈,表現(xiàn)出較好的還原性。

2.2 WPP-MRPs的ABTS自由基清除能力分析

以不同質(zhì)量濃度的天然抗氧化劑Vc作為對(duì)照,不同分子量的WPP-MRPs的ABTS自由基清除能力。

圖2 WPP-MRPs的ABTS自由基清除能力

由圖2可以看出,對(duì)比5種溶液,可以發(fā)現(xiàn)乳清蛋白肽美拉德反應(yīng)物具有較好的清除ABTS自由基能力,可很清楚的看到分段之后,Ⅱ段分子量的美拉德產(chǎn)物清除ABTS自由基的能力略高于Ⅰ段、Ⅲ段和WPP-MRPs的混合物,尤其當(dāng)Ⅱ段質(zhì)量濃度為50 g/L時(shí),清除率可達(dá)91.49%±3.04%,說(shuō)明在0.8 ku<分子量<5ku的WPP-MRPs具有較強(qiáng)的自由基清除能力。

很多文獻(xiàn)證明了美拉德反應(yīng)產(chǎn)物具有清除ABTS自由基的能力。Hayase等人[23]研究表明木糖與蛋白的MRPs對(duì)ABTS自由基有很好的清除能力;Wagner等人[24]研究了以葡萄糖為模型MRPs也具有較強(qiáng)的ABTS自由基清除能力;另外Nienaber[25]發(fā)現(xiàn)抗氧化活性物質(zhì)主要存在于無(wú)色的中低分子量MRPs中,此結(jié)論恰好與本試驗(yàn)結(jié)果一致。

2.3 羥基自由基清除能力分析

本研究以不同質(zhì)量濃度的天然抗氧化劑Vc作為對(duì)照,評(píng)價(jià)不同分子量分布范圍乳清蛋白肽美拉德反應(yīng)產(chǎn)物羥基自由基清除能力。

圖3 WPP-MRPs的羥基自由基清除能力

由圖3可以看出,當(dāng)質(zhì)量濃度在10~40 g/L之間時(shí),WPP-MRPs對(duì)羥基自由基清除能力隨著質(zhì)量濃度的增加而快速增大(P<0.05),但是質(zhì)量濃度在50~70 g/L范圍內(nèi),WPP-MRPs對(duì)羥基自由基清除能力隨著濃度的增幅減小,即增加不顯著(P>0.05)。而質(zhì)量濃度在10~70 mg/L范圍內(nèi),Vc對(duì)羥基自由基清除能力隨著濃度的增加而增大,具有量效關(guān)系。當(dāng)質(zhì)量濃度為40 g/L時(shí)Ⅱ段WPP-MRPs對(duì)羥基自由基清除能力99.36%±3.25%,相當(dāng)于質(zhì)量濃度為330.2 mg/L的Vc對(duì)羥基自由基清除能力。結(jié)果表明,WPP-MRPs具有較好的清除羥基自由基能力。

Lusani等[26]研究表明賴氨酸與果糖反應(yīng)產(chǎn)物具有較強(qiáng)的羥自由基清除能力,羥自由基是活性極強(qiáng)的自由基,幾乎可以與細(xì)胞內(nèi)一切有機(jī)物反應(yīng),表現(xiàn)在使核酸斷裂、多糖解聚和不飽和脂肪酸過(guò)氧化作用,導(dǎo)致遺傳突變、膜損傷、酶失活、線粒體氧化磷酸化作用等一系列變化,進(jìn)而損傷細(xì)胞的機(jī)構(gòu)和功能。

2.4 金屬離子螯合能力分析

許多過(guò)渡金屬離子都能促進(jìn)體內(nèi)氧化的進(jìn)行,它們可以催化超氧陰離子產(chǎn)生羥自由基,造成肌體的氧化衰老,而抗氧化劑可以通過(guò)螯合金屬離子,間接阻止體內(nèi)自由基的形成,從而達(dá)到抗氧化的目的。本試驗(yàn)選擇了銅離子和亞鐵離子兩種金屬離子來(lái)測(cè)定美拉德產(chǎn)物不同組分的抗氧化活性。

圖4 WPP-MRPs亞鐵離子螯合率

各組分亞鐵離子螯合率如圖4。由圖4可以看出,隨著WPP-MRPs質(zhì)量濃度的增高,螯合亞鐵的能力均略有升高;當(dāng)質(zhì)量濃度在10~60 g/L之間時(shí),Ⅲ段的亞鐵離子螯合率明顯高于其他組分;在最大質(zhì)量濃度70 g/L下,Ⅱ和Ⅲ段的亞鐵離子螯合率達(dá)到最高15.65%±1.3%和15.97%±0.7%,二者差異不顯著(P>0.05),可見大分子的WPP-MRPs對(duì)亞鐵離子的螯合能力較強(qiáng)。

圖5 WPP-MRPs銅離子(Cu2+)螯合率

對(duì)比圖4和圖5,可以看出WPP-MRPs對(duì)銅離子的螯合率明顯高于亞鐵離子,且兩個(gè)圖中的WPP-MRPs對(duì)金屬螯合能力均明顯高于Vc溶液,該項(xiàng)指標(biāo)也反映了抗氧化活性的大小,如Jing等[27]提出糖-賴氨酸的MRPs表現(xiàn)抗氧化活性可能通過(guò)螯合金屬離子。

螯合金屬能力的差異可能是由于MRPs組分復(fù)雜多樣,國(guó)內(nèi)外也有相應(yīng)的研究,Tan等[28]發(fā)現(xiàn)MRPs中具有較強(qiáng)的螯合能力的化合物為還原酮類,Hofmann[29]報(bào)道了金屬離子螯合能力主要與MRPs中的大分子物質(zhì)相關(guān),Eiserich[30]認(rèn)為雜環(huán)化合物也具有很強(qiáng)的螯合鐵離子能力。本研究表明WPP-MRPs中抗氧化性較強(qiáng)的物質(zhì)是Ⅱ、Ⅲ段即分子量M>0.8 ku段,原因可能為該分子量中含有較多還原酮結(jié)構(gòu)和雜環(huán)化合物;并且分子量M<0.8 ku的肽段主要成分是小分子量的WPPMRPs及肽、氨基酸和葡萄糖,其螯合金屬能力較差。

2.5 TBARS的分析

食品中的脂類非常容易氧化,發(fā)生此變化的原因也很復(fù)雜,原因可能是金屬離子產(chǎn)生的促氧化作用,也有可能是某些自由基本身的促氧化作用,因此,WPP-MRPs的抑制脂質(zhì)氧化可能二者兼而有之。以不同濃度的抗氧化劑BHA作為對(duì)照,WPP-MRPs對(duì)卵磷脂脂質(zhì)氧化的抑制作用。

圖6 WPP-MRPs的TBARS的抑制作用

由圖6可以看出,各組分WPP-MRPs均有一定的對(duì)脂質(zhì)抗氧化能力,隨著質(zhì)量濃度的增大,脂質(zhì)抗氧化能力不斷增加,但質(zhì)量濃度超過(guò)50 g/L時(shí),抗氧化能力趨于平緩。分子量為0.8 ku<分子量<5 ku反應(yīng)物的抗氧化能略高與其他組分,在質(zhì)量濃度為50 g/L時(shí),WPP-MRPs、Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ的TBARS值分別為1.02±0.09,0.83±0.07,0.73 ±0.07和(0.79±0.03)mg/L,差異不顯著(P>0.05)。 Rao等[31]研究證實(shí)了殼聚糖、葡萄糖的美拉德產(chǎn)物具有一定的抑制脂肪氧化作用;目前肽類MRPs對(duì)脂質(zhì)氧化的抑制研究較少,Miranda[32]研究了不同氨基酸美拉德反應(yīng)產(chǎn)物的脂質(zhì)抗氧化效果,結(jié)果為精氨酸-MRPs>纈氨酸-MRPs>組氨酸-MRPs。

本研究可以清晰的看出BHA具有較強(qiáng)的脂質(zhì)抗氧化能力,其效果明顯高于MRPs,但WPP-MRPs作為普通食品原料,具有一定的脂質(zhì)抗氧化能力,還將有廣闊的應(yīng)用空間。

3 結(jié) 論

本研究表明經(jīng)過(guò)中空纖維超濾膜分級(jí)的WPPMRPs均具有一定抗氧化活性,且隨著質(zhì)量濃度的增加其抗氧化能力也增強(qiáng),其中Ⅱ的總還原力、ABTS自由基清除能力和羥基自由基清除能力在同等濃度條件下較Ⅰ和Ⅲ高,而金屬螯合能力主要是分子量較大的Ⅲ表現(xiàn)出較好的螯合率,TBARS值為Ⅱ級(jí)具有一定的抑制脂肪氧化能力。本試驗(yàn)同時(shí)與Vc或BHA進(jìn)行比較,通過(guò)增加WPP-MRPs濃度可以達(dá)到Vc或BHA的抗氧化效果,說(shuō)明WPP-MRPs作為食品原料在抗氧化劑領(lǐng)域中應(yīng)用具有廣闊的開發(fā)前景。

[1]BEATRIZ M,ALEJANDRO S.The Occurrence of a Maillard-type Protein-polysaccharide Reaction between β-lactoglobulin and Chitosan[J].Food Chemistry,2007,100:1071-1075.

[2]LI C P,ENOMOTO H,OHKI S,et al.Improvement of Functional Properties of Whey Protein Isolate Through Glycation and Phosphory-lation by Dry Heating[J].Journal of Dairy Sci,2005,88:4137-4145.

[3]KITABATAKE N,CUQ J L,CHEFTEL J C.Covalent Binding of Glycosyl Residues to β-Lactoglobulin Effect on Solubility and Heat Stability[J].Agric Food Chem,1985,33:125-130.

[4]MIRALLES B,MARTINEZ-RODRIGUEZ A,SANTIAGO A,et al.The Occurrence of a Maillard-type Protein-Polysacchande Reaction between β-lactoglobulin and Chitosan[J].Food Chemistry,2007,100(3):1071-1075.

[5]HWANG I G,KIM H Y,LEE S H,et al.Isolation and Identification of an Antiproliferative Substance from Fructose-tyrosine Maillard Reaction Products[J].Food Chemistry,2012,130:547-551.

[6]KIM J S,LEE Y S.Antioxidant Activity of Maillard Reaction Products derived from aqueous Glucose/Glycine,Diglycine,and Triglycine model systems as a Function of Heating Time[J].Food Chemistry,2009,116(1):227-232.

[7]ENOMOTO H,HAYASHI Y,LIC P,et al.Glycation and Phosphorylation of α-lactalbumin by dry Heating:Effect on Protein Structure and Physiological Functions[J].Journal of Dairy Science,2009,92(7):3057-3068.

[8]楊曉泉,張新會(huì),陳山,陳中,趙謀明.大豆肽的分級(jí)膜分離研究.華南理工大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2003,31(5):16-20.

[9]黃文凱.膜分離方法制備免疫活性大豆肽的研究[D].無(wú)錫:江南大學(xué)糧食、油脂及植物蛋白工程系,2007.

[10]FENG L G,JIN M K,SHABBAR A,et al.Structure and Antioxidant Activity of high Molecular Weight Maillard Reaction Products from Casein-Glucose[J].Food Chemistry,2010,120:505-511.

[11]徐獻(xiàn)兵,于淑娟.超濾分離美拉德反應(yīng)產(chǎn)物的特性研究.現(xiàn)代食品科技,2010,26(12):1338-1340.

[12]PENG X Y,XIONG Y L,KONG B H.Antioxidant Activity of Peptide Fractions from Whey Protein Hydrolysates as measured by Electron Spin Resonance[J].Food Chemistry,2009,113:196-201.

[13]KANOKWAN M A,SOOTTAWAT B A,MUNEHIKO T.Effect of Reactant Concentrations on the Maillard Reaction in a Fructoseglycine model system and the Inhibi-tion of black Tiger Shrimp PolypHenoloxidase[J].Food Chemistry,2006,98:1-8.

[14]OZGEN M,REESE R N,TULIO A Z,et al.Modified 2,2-Azinobis-3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic Acid (ABTS)method to Measure Antioxidant Capacity of selected small Fruits and Comparison to Ferric Reducing Antioxidant Power(FRAP)and 2,2’-diphenyl-1-picrylhydrazyl(DPPH)Methods[J].Journal of Agriculture and Food Chemistry,2006,54(4):1151-1157.

[15]WANG H,GAO X D,ZHOU G C,et al.In Vitro and in Vivo Antioxidant Activity of Aqueous Extract from Choerospondias Axillaris Fruit[J].Food Chemistry,2008,106:888-895.

[16]GUO J T,LEE H L,CHIANG S H,et al.Antioxidant Properties of the Extracts from different parts of Broccoli in Taiwan.Journal of Food and Drug Analysis.2001,9(2):96-101.

[17]DECKER E A,HULITINH O.Factors influencing Catalysis of Lipid Oxidation by the Soluble Fraction of Mackerel Muscle[J].Journal of Food Science,1990,55:947-950,953.

[18]SINNHUBER R O,YU T C.2-Thiobarbituric Acid method for the Measurement of Rancidity in Fishery Prducts II.The quantitative determination of Malonaldehyde[J].Food Technology.1958.12:9-12

[19]AMES J M,NURSEN H E.Recent advances in the Chemistry of Coloured Compounds formed during the Maillard Reaction.Trends in Food Science.Singapore:Institute of Food Science and Technology,1989,8-14.

[20]DELGADO A C,RUFIAN H J,MORALES F J.Assessing the Antioxidant Activity of Melanoidins from Coffee Brews by Different Antioxidant Methods[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry.2005,53(20):7832-7836.

[21]BENJAKIL S.Antioxidative Activity of Caramelisation Products and their Preventive Effect on Lipid Oxidation in Fish Mince[J].Food Chemistry.2005,90(1-2):231-239.

[22]EICHNER K.Antioxidant effect of Maillard Reaction Intermediates[J].Progress in Food&Nutrition Science,1980,5:441-451.

[23]HAYASE F,USUI T,WATANABE H.Chemistry and some Biological Effects of Model Melanoidins and Pigments as Maillard Intermediates[J].Molecular Nutrition and Food Research,2006,50(12):1171-1179.

[24]WAGNER K,DERKITS S,HERR M,et al.Antioxidative Potential of Melanoidins Isolated from a Roasted Glucose-Glycine model[J].Food Chemistry,2002,78:375-382.

[25]NIENABER U,EICHNER K.The Antioxidative Effect of Maillard Reaction Products in model Systems and Roasted Hazelnuts[J].Health&Environmental Research Online (HERO),1995,97(12):435-444.

[26]LUSANI N V,JESSY V W.Antioxidant Activity of Maillard Reaction Products(MRPs)derived from Fructose-Lysine and Ribose-Lysine Model Systems[J].Food Chemistry,2013,137:92-98.

[27]JING H,YAP M,WONG P Y,et al.Comparison of Physicochemical and Antioxidant Properties of Egg-white Proteins and Fructose and Inulin Maillard Reaction Products[J].Food and Bioprocess Technology,2009,1-8.

[28]TAN B K,HARRIS N D.Maillard Products inhibit Apple Polyphenoxidase[J].Food Chemistry.1995,53(3):267-273.

[29]HOFMANN T.Studies on Melanoidin-Type Colorants Generated from the Maillard Reaction of Protein-bound Lysine and Furan-2-carboxaldehyde-Chemical Characterisation of a red Coloured Domaine[J].Zeitschrift für Lebensmitteluntersuchung und-Forschung A.1998,206(4):251-258.

[30]EISERICH J P,SHIBAMOTO T.Antioxidative Activity of Volatile Heterocyclic Compounds[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry.1994,42(5):1060-1063.

[31]RAO M S,CHAWLA S P,CHANDER R,et al.Antioxidant Potential of Maillard Reaction Products formed by Irradiation of Chitosan-Glucose solution.[J].Carbohydrate Polymers,2011,83:714-719.

[32]MIRANDA L T,RAKOVSKI C,Were L M.Effect of Maillard Reaction Products on Oxidation Products in Dround Chicken Breast[J].Meat Science,2012,90(2):352-360.

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