李 歡,管福琴,陳 雨,印 敏,孫 浩,王 鳴,馮 煦,單 宇
(江蘇省中國(guó)科學(xué)院植物研究所,南京中山植物園,江蘇省農(nóng)業(yè)種質(zhì)資源保護(hù)與利用平臺(tái),江蘇南京 210014)
積雪草酸通過(guò)改變自噬作用促進(jìn)膠質(zhì)瘤細(xì)胞T98G凋亡的實(shí)驗(yàn)研究
李 歡,管福琴,陳 雨,印 敏,孫 浩,王 鳴,馮 煦,單 宇
(江蘇省中國(guó)科學(xué)院植物研究所,南京中山植物園,江蘇省農(nóng)業(yè)種質(zhì)資源保護(hù)與利用平臺(tái),江蘇南京 210014)
中國(guó)圖書(shū)分類(lèi)號(hào):R284.1;R329.24;R329.25;R730.264;R916.4
摘要:目的 研究積雪草酸對(duì)T98G細(xì)胞凋亡及自噬的影響。方法 MTT法分析積雪草酸對(duì)T98G細(xì)胞增殖的影響;Hoechst 33258染色觀(guān)察細(xì)胞形態(tài);流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞凋亡和細(xì)胞自噬;Western blot檢測(cè)凋亡和自噬通路相關(guān)因子的表達(dá)。結(jié)果 積雪草酸對(duì)T98G細(xì)胞增殖有抑制作用,IC50值為46.3 μmol·L-1。Annexin-V/7-AAD雙染和West-ern blot結(jié)果顯示,積雪草酸可引起Akt表達(dá)下調(diào)、線(xiàn)粒體膜電位下降和Caspase-3激活,進(jìn)而誘導(dǎo)T98G細(xì)胞凋亡。同時(shí),AA可抑制T98G細(xì)胞自噬,表現(xiàn)為降低MDC熒光強(qiáng)度,抑制Beclin-1、LC3-Ⅱ、Atg表達(dá)。通過(guò)氯喹上調(diào)Beclin-1和LC3-Ⅱ的表達(dá),積雪草酸抑制自噬作用被阻斷,同時(shí)促凋亡作用也明顯降低。結(jié)論 積雪草酸可同時(shí)誘導(dǎo)T98G細(xì)胞凋亡和抑制自噬,并且抑制自噬作用能夠促進(jìn)細(xì)胞凋亡,進(jìn)而抑制T98G細(xì)胞增殖。
關(guān)鍵詞:積雪草酸;T98G細(xì)胞;凋亡;自噬;機(jī)制;相互作用
網(wǎng)絡(luò)出版時(shí)間:2015-9-14 14:53 網(wǎng)絡(luò)出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/34.1086.R.20150914.1453.016.html
積雪草酸(asiatic acid,AA)又名亞細(xì)亞酸,屬于五環(huán)三萜類(lèi)化合物中的烏蘇烷型。1971年積雪草酸被發(fā)現(xiàn)具有治療皮膚創(chuàng)傷的作用,隨后研究表明,AA具有廣泛的藥理活性,如治療慢性潰瘍、護(hù)肝、抗抑郁、防治心腦血管疾病、抗阿爾茨海默病等[1],還具有較強(qiáng)的抗腫瘤作用。目前國(guó)內(nèi)外研究發(fā)現(xiàn),AA對(duì)結(jié)腸癌細(xì)胞、肺癌細(xì)胞、黑色素瘤細(xì)胞、人神經(jīng)膠質(zhì)瘤細(xì)胞、肝癌細(xì)胞、乳腺癌細(xì)胞、骨髓瘤細(xì)胞等具有明顯的抑制作用[2-7]。本文擬AA作用于T98G膠質(zhì)瘤細(xì)胞株,研究其抑制腦癌的作用,并探討其作用機(jī)制。
1.1細(xì)胞株和主要試劑 T98G細(xì)胞購(gòu)自中國(guó)科學(xué)院上海細(xì)胞庫(kù);高糖型DMEM、胎牛血清(fetal bo-vine serum,F(xiàn)BS)、青霉素和鏈霉素為Gibco/Invitro-gen產(chǎn)品;積雪草酸(AA,分子式:C30H48O5,分子質(zhì)量:488.7,白色結(jié)晶,溶于水、甲醇、DMSO)由本實(shí)驗(yàn)室從灰氈毛忍冬中分離得到;氯喹(chloroquine,CQ)、二甲基亞砜(dimethylsulfoxide,DMSO)、十二烷基硫酸鈉(sodiumdodecyl sulfate,SDS)購(gòu)自Sigma-Aldrich;RIPA裂解液(RIPA lysis buffer)和BeyoECL Plus化學(xué)發(fā)光試劑盒購(gòu)自碧云天公司;所有免疫印跡抗體均購(gòu)自Cell Signaling Technology公司。
1.2儀器 Thermo-6500 CO2培養(yǎng)箱、Thermo Nap-flow超凈工作臺(tái)(美國(guó)Thermo公司);Centrifuge 5804 R高速離心機(jī)(德國(guó)Eppendorf公司);IX5倒置顯微鏡(日本Olympus公司);Infinite M200型酶標(biāo)儀(美國(guó)TECAN公司);Accuri C6流式細(xì)胞儀(美國(guó)BD公司);MS3 digital定時(shí)微量振蕩器(德國(guó)IKA公司);LIBROR AEL-200電子天平(日本Shi-madzu公司)。
2.1細(xì)胞培養(yǎng) T98G細(xì)胞用含有10%FBS、10% F10、100 kU·L-1青霉素和100 mg·L-1鏈霉素的DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng),置于37℃、5%CO2濕度飽和的培養(yǎng)箱中,每2~3天換液傳代。取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞用于實(shí)驗(yàn)。
2.2MTT測(cè)定細(xì)胞的增殖活性 將對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞用胰酶消化后按5 000個(gè)/孔接種于96孔板,每孔加100 μL,培養(yǎng)24 h;次日加入含不同濃度藥物及相應(yīng)溶劑對(duì)照的新鮮培養(yǎng)基,每孔加100 μL,設(shè)6個(gè)劑量組,阿霉素(ADM)1 μg·L-1為陽(yáng)性對(duì)照,溶劑為空白對(duì)照。培養(yǎng)72 h后,每孔加10 μL新鮮配制的5 μg·L-1MTT液,繼續(xù)培養(yǎng)4 h。去上清,每孔加100 μL DMSO,微型振蕩器振蕩混
勻。酶標(biāo)儀570 nm測(cè)定光密度值(A),計(jì)算細(xì)胞存活率,并按中效方程計(jì)算IC50。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
細(xì)胞抑制率/%=(對(duì)照組平均A值-給藥組平均A值)/對(duì)照組平均A值×100%。
2.3Hoechst 33258染色法檢測(cè)細(xì)胞凋亡 取狀態(tài)良好的T98G細(xì)胞,胰酶消化后接種于2 mL圓盤(pán)培養(yǎng)板中,貼壁后加藥,根據(jù)MTT結(jié)果,設(shè)空白對(duì)照組和實(shí)驗(yàn)組(含有40 μmol·L-1AA),培養(yǎng)48 h后,棄培養(yǎng)液,冰冷PBS洗1遍,加入Hoechst 33258染液(終濃度5 mg·L-1),染色15 min,熒光顯微鏡下觀(guān)察拍照。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
2.4Western blot檢測(cè)凋亡相關(guān)蛋白質(zhì)表達(dá) AA處理T98G細(xì)胞48 h后,提取蛋白,12%SDS-PAGE分離,轉(zhuǎn)移到PVDF膜上,質(zhì)量體積比為5%的牛血清白蛋白(BSA)封閉,一抗(1∶1 000)封閉過(guò)夜,二抗(1∶1 000)室溫孵育2 h,最后用BeyoECL Plus化學(xué)發(fā)光試劑盒顯色,暗盒中膠片曝光,顯影、定影后掃描圖像。
2.5Annexin-V/7-AAD雙標(biāo)記染色檢測(cè)凋亡 根據(jù)MTT結(jié)果,設(shè)低、中、高(20、40、80μmol·L-1)濃度實(shí)驗(yàn)組,檢測(cè)不同濃度AA對(duì)T98G細(xì)胞凋亡率的影響。此外,設(shè)對(duì)照(0.1%DMSO)組、AA(60 μmol ·L-1)組、CQ(5μmol·L-1)組、AA(60 μmol· L-1)+CQ(5 μmol·L-1)組檢測(cè)細(xì)胞自噬對(duì)T98G細(xì)胞凋亡的作用。給藥48 h后,離心收集細(xì)胞,PBS洗滌,Annexin V Binding Buffer重懸細(xì)胞,加入An-nexin V-FITC和7-AAD(7-Amino-Actinomycin D),室溫避光孵育15 min,流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞凋亡。分布于散點(diǎn)圖左下象限散點(diǎn)代表正常細(xì)胞,右下象限的散點(diǎn)代表早期凋亡細(xì)胞,右上象限的散點(diǎn)代表晚期凋亡細(xì)胞。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
2.6MDC熒光染色檢測(cè)細(xì)胞自噬 丹酰戊二胺(MDC)能選擇性地結(jié)合到自噬囊泡膜上而被用來(lái)檢測(cè)自噬的發(fā)生。實(shí)驗(yàn)設(shè)對(duì)照(0.1%DMSO)組、AA(60 μmol·L-1)組、CQ(5 μmol·L-1)組、AA (60 μmol·L-1)+CQ(5 μmol·L-1)。收集細(xì)胞加入0.05 mmol·L-1MDC于37℃避光孵育20 min,棄培養(yǎng)液,PBS懸浮,流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞自噬。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
2.7Western blot檢測(cè)自噬相關(guān)蛋白水平 收集細(xì)胞用RIPA試劑裂解,細(xì)胞裂解上清液經(jīng)SDS-PAGE電泳分離,轉(zhuǎn)至PVDF膜上,5%BSA封閉后加入相應(yīng)抗體孵育過(guò)夜,加入二抗室溫孵育2 h,最后用BeyoECL Plus化學(xué)發(fā)光試劑盒顯色,暗盒中膠片曝光,顯影、定影后掃描圖像。
3.1AA對(duì)T98G細(xì)胞增殖的影響 如Fig 1所示,膠質(zhì)瘤細(xì)胞T98G經(jīng)不同濃度積雪草酸處理后,細(xì)胞生長(zhǎng)明顯受到抑制(P<0.01),且隨著給藥劑量的增加,細(xì)胞生長(zhǎng)抑制率逐漸增大,說(shuō)明AA對(duì)T98G細(xì)胞有明顯的生長(zhǎng)抑制作用,并且具有良好的劑量依賴(lài)關(guān)系。藥物處理72 h,半數(shù)抑制濃度(IC50)為46.3 μmol·L-1。
Fig 1 Effect of asiatic acid(AA)on T98G cell proliferation(±s,n=3)
3.2AA對(duì)T98G細(xì)胞形態(tài)的影響 對(duì)照組細(xì)胞生長(zhǎng)情況較好,貼壁較牢固,細(xì)胞間緊密相連,細(xì)胞核被Hoechst 33258均勻的染成藍(lán)色。AA處理細(xì)胞48 h后,鏡下清晰可見(jiàn)細(xì)胞變圓,脫落,Hoechst 33258染色呈亮藍(lán)色。見(jiàn)Fig 2。
Fig 2 Morphological change of T98G cells after AA treatment(×400)
3.3細(xì)胞凋亡率檢測(cè)結(jié)果 藥物作用48 h后,流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)發(fā)現(xiàn),AA明顯誘導(dǎo)T98G凋亡(P<0.05,P<0.01),且凋亡率(含早期凋亡和晚期凋亡)隨著藥物濃度增加而升高,分別達(dá)到9.3%、17.2%和48.7%。見(jiàn)Fig 3。
Fig 3 Effects of AA on apoptosis in T98G cells(±s,n=3)
3.4AA對(duì)T98G細(xì)胞內(nèi)凋亡相關(guān)因子表達(dá)的影響 不同濃度AA處理T98G細(xì)胞48h后PARP、Cleaved Caspase-3、Cleaved Caspase-7以及Akt、P-Akt的表達(dá)明顯上調(diào),而Mcl-1、Bcl-xl的表達(dá)被下調(diào),且均呈明顯的劑量依賴(lài)效應(yīng)。見(jiàn)Fig 4。
Fig 4 Expression of apoptosis-related factors in T98G cells treated with AA
3.5AA對(duì)T98G細(xì)胞自噬的影響 蛋白印跡法檢測(cè)顯示,不同濃度AA作用細(xì)胞48 h后,自噬相關(guān)基因(autophagy related gene,ATG)Atg16L1、Atg3的表達(dá)明顯降低(Fig 5A)。以60 μmol·L-1AA處理細(xì)胞不同時(shí)間后,Beclin-1和LC3-Ⅰ/LC3-Ⅱ蛋白的表達(dá)量均明顯降低,且呈時(shí)間依賴(lài)性(Fig 5B)。結(jié)果提示,AA可抑制T98G細(xì)胞自噬,該作用具有時(shí)間和濃度依賴(lài)性。流式細(xì)胞術(shù)結(jié)果表明,AA和氯喹(CQ)聯(lián)合用藥后可明顯降低氯喹誘導(dǎo)的細(xì)胞自噬水平(Fig 6),這進(jìn)一步驗(yàn)證AA具有抑制T98G細(xì)胞自噬作用。
Fig 5 Expression of autophagy-related factors in T98G cells treated with AA
3.6AA抑制細(xì)胞自噬作用對(duì)細(xì)胞凋亡的影響進(jìn)一步研究AA和CQ聯(lián)用后對(duì)細(xì)胞凋亡作用的影響,結(jié)果發(fā)現(xiàn),AA單獨(dú)作用時(shí)T98G細(xì)胞凋亡率為19.3%,AA與CQ聯(lián)用后,凋亡率降至17.2%,這表明AA抑制細(xì)胞自噬作用阻斷后AA誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡作用也被部分抑制,AA抑制細(xì)胞自噬作用可以促進(jìn)AA誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡作用。見(jiàn)Fig 7。
已有研究表明,AA可抑制人類(lèi)神經(jīng)膠質(zhì)瘤細(xì)胞U-87MG和LN18的增殖,主要作用機(jī)制為誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡,但是否有自噬作用在AA誘導(dǎo)膠質(zhì)瘤細(xì)胞死亡中的作用尚未見(jiàn)報(bào)道。細(xì)胞自噬是一種機(jī)體的保護(hù)性行為,與人類(lèi)腫瘤的發(fā)生、發(fā)展密切相關(guān)。有學(xué)者認(rèn)為,自噬作用可以為腫瘤細(xì)胞提供能量,有效緩解腫瘤細(xì)胞面臨的營(yíng)養(yǎng)邪僻,促進(jìn)腫瘤細(xì)胞存活并擴(kuò)增[8-9]。也有證據(jù)表明,化療藥物在誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞發(fā)生凋亡的同時(shí),可導(dǎo)致細(xì)胞自噬活性增強(qiáng),產(chǎn)生耐藥性,而自噬抑制劑可以減弱這種耐藥性[10]。這些研究為我們提供了研發(fā)抗腫瘤藥物的新策略。
本研究初步表明,Akt是AA抑制T98G細(xì)胞增殖的重要靶點(diǎn)。Akt是原癌基因c-Akt的表達(dá)產(chǎn)物,
在細(xì)胞凋亡、細(xì)胞增殖、細(xì)胞分化、生理代謝、衰老及疾病和癌癥等細(xì)胞生理病理活動(dòng)的調(diào)控中起著至關(guān)重要的作用[11]。AA通過(guò)抑制Akt表達(dá),進(jìn)而激活線(xiàn)粒體凋亡通路,抑制Bcl-xl和Mcl-1表達(dá),導(dǎo)致線(xiàn)粒體膜電位下降,Caspase-3、7和PARP活化,促使細(xì)胞凋亡。
Fig 6 Autophagy ratios of T98G cells in different groups(±s,n=3)
Beclin1是細(xì)胞自噬過(guò)程中最重要的正調(diào)節(jié)因子,通過(guò)與Vps34/PI3K形成復(fù)合物促進(jìn)自噬[12],本研究證實(shí)Beclin1是啟動(dòng)自噬的關(guān)鍵蛋白。AA作用T98G細(xì)胞后,Beclin1的表達(dá)明顯降低,使得Atg蛋白失活,從而阻礙自噬前體結(jié)構(gòu)(PAS)的形成;同時(shí)LC3-II-PE泛素樣蛋白系統(tǒng)的作用減弱,進(jìn)而導(dǎo)致自噬體的形成受阻,抑制細(xì)胞自噬。
Fig 7 Apoptotic ratios of T98G cells in different groups(±s,n=3)
近年來(lái)大量的研究結(jié)果已開(kāi)始揭示自噬與腫瘤發(fā)生發(fā)展的密切聯(lián)系,自噬在腫瘤預(yù)防及治療中的重要性已初露端倪[13]。普遍認(rèn)為在不同的細(xì)胞中、不同的條件下,自噬和凋亡之間的關(guān)系也隨之不同。李彩麗等[14]發(fā)現(xiàn)自噬在As2O3誘導(dǎo)的Burkitt淋巴瘤Raji細(xì)胞凋亡中具有重要作用,自噬促進(jìn)凋亡。曾蓉等[15]則發(fā)現(xiàn)自噬對(duì)冬凌草甲素誘導(dǎo)的多發(fā)性骨髓瘤細(xì)胞凋亡具有拮抗作用,抑制自噬后,細(xì)胞凋亡率增加。在本實(shí)驗(yàn)中,AA誘發(fā)T98G細(xì)胞凋亡和抑制細(xì)胞自噬并存,為了更好解釋AA抑制自噬作用在抑制腫瘤發(fā)生發(fā)展中的角色,我們采用AA與CQ聯(lián)用法檢測(cè)其對(duì)細(xì)胞凋亡的影響,結(jié)果表明阻斷了AA抑制細(xì)胞自噬的作用后會(huì)明顯降低其促進(jìn)細(xì)胞凋亡的作用,初步表明自噬在AA誘導(dǎo)T98G細(xì)胞
凋亡的機(jī)制中可能發(fā)揮著重要作用。
(致謝:本文實(shí)驗(yàn)于江蘇省中國(guó)科學(xué)院植物研究所天然產(chǎn)物化學(xué)研究中心完成。單宇、管福琴、陳雨、印敏、孫浩、王鳴、馮煦老師對(duì)本項(xiàng)工作提出寶貴的建議,并進(jìn)行細(xì)致的指導(dǎo)。在此致謝?。?/p>
參考文獻(xiàn):
[1] 孟艷秋,王 楠,張良鋒.積雪草酸生物活性的研究進(jìn)展[J].化學(xué)通報(bào),2013,76(8):721-4.
[1] Meng Y Q,Wang N,Zhang L F.Advances in studies on biological activity of asiatic acid[J].Chem Bull,2013,76(8):721-4.
[2] Wang L,Xu J,Zhao C H,et al.Antiproliferative,cell-cycle dys-regulation effects of novel asiatic acid derivatives on human non-small cell lung cancer cells[J].Chem Pharm Bull,2013,61 (10):1015-23.
[3] Chen J Y,Xu Q W,Xu H,Huang Z H.Asiatic acid promotes p21WAF1/CIP1 protein stability through attenuation of NDR1/2 dependent phosphorylation of p21WAF1/CIP1 in HepG2 human hepatoma cells[J].Asian Pac J Cancer Prev,2014,15(2):963 -7.
[4] Parka B C,Bosirea K O,Lee E S,et al.Asiatic acid induces ap-optosis in SK-MEL-2 human melanoma cells[J].Cancer Lett,2005,218:81-90.
[5] Cho C W,Choi D S,Cardone M H,et al.Glioblastoma cell death induced by asiatic acid[J].Cell Biol Toxicol,2006,22:393-408.
[6] Hsu Y L,Kuo P L,Lin L T,Lin C C.Asiatic acid,a triterpene,induces apoptosis and cell cycle arrest through activation of extra-cellular signal-regulated kinase and p38 mitogen-activated protein kinase pathways in human breast cancer cells[J].Cancer Lett,2005,313(1):333-44.
[7] 呂婷婷,劉 芳,陳 燕,姜旭東.積雪草酸對(duì)多發(fā)性骨髓瘤細(xì)胞增殖活性的影響及其機(jī)制探討[J].中草藥,2010,41 (9):1484-8.
[7] Lyu T T,Liu F,Chen Y,Jiang X D.Effect of asiatic acid on pro-liferation of multiple myeloma cells and its mechanism[J].Chin Tradit Herbal Drugs,2010,41(9):1484-8.
[8] Nagelkerke A,Sweep F C,Geurts-Moespota A,et al.Therapeutic targeting of autophagy in cancer.Part I:Molecular pathways con-trolling autophagy[J].Semin Cancer Biol,2015,31:89-98.
[9] Nagelkerke A,Bussink J,Geurts-Moespota A,et al.Therapeutic targeting of autophagy in cancer.Part II:Pharmacological modula-tion of treatment-induced autophagy[J].Semin Cancer Biol,2015,31:99-105.
[10]Sui X B,Zhu J,Zhou J C,et al.Epigenetic modifications as regu-latory elements of autophagy in cancer[J].Cancer Lett,2015,360:106-13.
[11]王 秀,張競(jìng)競(jìng),張 配,等.雷公藤甲素誘導(dǎo)鼻咽癌細(xì)胞凋亡作用[J].中國(guó)藥理學(xué)通報(bào),2014,30(8):1147-50.
[11]Wang X,Zhang J J,Zhang P,et al.Effect of triptolide on apopto-sis of nasopharynx cancer[J].Chin Pharmacol Bull,2014,30 (8):1147-50.
[12]王 寵,張 萍,朱衛(wèi)國(guó).細(xì)胞自噬與腫瘤發(fā)生的關(guān)系[J].
中國(guó)生物化學(xué)與分子生物學(xué)報(bào),2010,26(11):988-97.
[12]Wang C,Zhang P,Zhu W G.Relationship between autophagy and tumorigenesis[J].Chin J Biochem Mol Biol,2010,26(11):988 -97.
[13]Guo J Y,Xia B,White E.Autophagy-mediated tumor promotion [J].Cell,2013,155(6):1216-9.
[14]李彩麗,陳 靜,王 蓓,等.自噬在As2O3誘導(dǎo)Burkitt淋巴瘤Raji細(xì)胞死亡中的作用及機(jī)制研究[J].中國(guó)藥理學(xué)通報(bào),2014,30(5):719-24.
[14]Li C L,Chen J,Wang B,et al.Effect of triptolide on apoptosis of nasopharynx cancer[J].Chin Pharmacol Bull,2014,30(5):719-24.
[15]曾 蓉,陳 燕,崔國(guó)惠.抑制自噬促進(jìn)冬凌草甲素誘導(dǎo)的多發(fā)性骨髓瘤細(xì)胞凋亡涉及胞內(nèi)ROS產(chǎn)生[J].中國(guó)組織化學(xué)與細(xì)胞化學(xué)雜志,2011,20(4):295-300.
[15]Zeng R,Chen Y,Cui G H.Inhibition of autophagy enhances ap-optosis involved with intracellular ROS generation in multiple mye-loma cells exposed to oridonin[J].Chin J Histochem Cytochem,2011,20(4):295-300.
Asiatic acid induces apoptosis in T98G human glioblastoma cells by changing autophagy
LI Huan,GUAN Fu-qin,CHEN Yu,YIN Min,SUN Hao,WANG Ming,F(xiàn)ENG Xu,SHAN Yu
(Institute of Botany,Jiangsu Province and Chinese Academy of Sciences,Nanjing Botanical Garden Mem Sun Yat-sen,The Jiangsu Provincial Platform for Conservation and Utilization of Agricultural Germplasm,Nanjing 210014,China)
Abstract:Aim To investigate the effect of asiatic acid on apoptosis and autophagy in human glioblastoma T98G cells.Methods MTT colorimetry was employed to assay the cellular proliferating activity.The fluores-cence microscope and Hoechst 33258 staining were used to detect the morphological changes.The cell ap- optosis and autophagy were analyzed by flow cytometry with Annexin-V/7-AAD and MDC staining respective-ly.The expressions of associated proteins were detected by Western blot to analyze the mechanism of apoptosis and autophagy.Results MTT assay showed that the growth of T 9 8 G cells was inhibited by asiatic acid
(IC50=46.3 μmol·L-1).Annexin V/7-AAD stai-ning and Western blot revealed that asiatic acid in-duced apoptosis in T98G cells by reducing the expres-sion of Akt,decreasing the mitochondrial membrane potential,and increasing the expression of Caspase-3.MDC staining and Western blot showed that the per-centage of MDC-positive cells was decreased and the expressions of Beclin-1,LC3-II and Atgs were inhibi-ted by asiatic acid treatment.5 μmol·L-1chloroquine was used to up-regulate the expressions of LC3-Ⅱand Beclin-1.Asiatic acid-inhibited autophagy was blocked and the total apoptotic rate was reduced remarkably.Conclusion Asiatic acid suppresses T98G cells pro-liferation by inducing apoptosis and inhibiting cell au-tophagy,and the very role of inhibiting autophagy could promote apoptosis to a certain extent.
Key words:asiatic acid;T98G cells;apoptosis;au-tophagy;mechanism;interaction
作者簡(jiǎn)介:李 歡(1990-),女,碩士生,研究方向:天然產(chǎn)物活性成分研究與開(kāi)發(fā),E-mail:lihuan405@sina.cn;單 宇(1979-),男,博士,副研究員,研究方向:天然產(chǎn)物活性成分研究與開(kāi)發(fā),通訊作者,Tel:025-84347116,E-mail:shanyu79@126.com
基金項(xiàng)目:國(guó)家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(No 81402829);江蘇省自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(No BK20131338);江蘇省鹽土生物資源研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室開(kāi)放課題(No JKLBS2013003);江蘇省藥用植物研究開(kāi)發(fā)中心開(kāi)放基金(No藥201201)
收稿日期:2015-05-07,修回日期:2015-07-28
文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A
文章編號(hào):1001-1978(2015)10-1363-06
doi:10.3969/j.issn.1001-1978.2015.10.008