李偉豐
(河南濟源市動物衛(wèi)生監(jiān)督所,河南濟源 459000)
基于近紅外熒光技術(shù)快速診斷豬瘟病毒
李偉豐
(河南濟源市動物衛(wèi)生監(jiān)督所,河南濟源 459000)
通過對比豬瘟病毒(CSFV)經(jīng)典株(shimen)和豬瘟弱毒疫苗株(HCLV)的基因組信息,設(shè)計特異的引物和探針,通過擴增獲得的核酸產(chǎn)物用于在固定有特異探針的微孔板中進行雜交。雜交結(jié)果使用近紅外熒光進行掃描檢測。利用近紅外熒光可以獲得高信噪比的檢測結(jié)果,使用微孔板可以方便地進行多樣品同時操作。
豬瘟野毒感染近紅外熒光診斷高通量
豬瘟(Classical swine fever,CSF)是由豬瘟病毒(Classical swine fever virus,CSFV)引起豬的一種以高熱稽留、梗死、出血、壞死和高死亡率為主要特征的高度接觸性傳染病。目前,該病主要在亞洲、歐洲、非洲、美洲的國家與地區(qū)流行。在我國,當(dāng)前各省市均有豬瘟的流行,每年因豬瘟死亡的約占病死豬的l/3以上。我國每年由豬瘟導(dǎo)致的直接經(jīng)濟損失有數(shù)10億元,造成了巨大的資源浪費。
基于我國目前的國情,效仿美歐所采取的撲殺措施在經(jīng)濟上是很難承受的,所以,開發(fā)一種能夠快速檢測豬瘟感染的方法是很有必要的。目前,CSFV診斷的主要方法包括:病原學(xué)診斷、血清學(xué)檢測、間接血凝試驗和分子生物學(xué)方法,其中,分子生物學(xué)方法因為具有高度特異性和靈敏性而受到越來越多的關(guān)注。分子生物學(xué)診斷的原理主要依靠設(shè)計特異的引物,使用PCR或qPCR等方法進行鑒別。
利用熒光技術(shù)檢測生物大分子在生化分析和研究中應(yīng)用已經(jīng)相當(dāng)廣泛。一般的熒光染料激發(fā)和檢測波長分子位于可見光范圍(約400~700 nm)內(nèi),機體的內(nèi)源性物質(zhì)、雜質(zhì)等經(jīng)可見光激發(fā)都有很強的自體熒光,易產(chǎn)生高背景熒光干擾檢測,所以一般的熒光染料不能直接用于生物檢測。近紅外光(Near-Infrared,NIR)波長范圍在700~900 nm,在這個范圍內(nèi)生物體和生物組織自身吸收散射和自發(fā)熒光背景都比較低,檢測的信噪比和靈敏度相比可見光譜熒光都有極大的提高。
本文中我們介紹一種利用近紅外熒光(NIRF)快速診斷CSF的方法,首先使用常規(guī)方法處理病料,提取RNA,反轉(zhuǎn)錄后,使用引物進行反向延伸,同時,引入biotin修飾的dUTP,獲得的延伸產(chǎn)物與微孔板中固定的探針進行雜交,然后使用修飾有近紅外熒光染料的鏈霉親和素進行檢測。這個方法具有高通量、特異性高,快速等優(yōu)勢,同時可以排除豬瘟弱毒疫苗的干擾。
1.1 材料
1.1.1 主要試劑和儀器
TRIzol試劑購自Invitrogen公司;Taq聚合酶、RNA酶抑制劑、DL2000 DNA Marker等購自大連寶生物工程有限公司;GoldView購于天根生化科技有限公司;反轉(zhuǎn)錄酶MLV購于Promega公司,DEPC購于Ameresco公司;瓊脂糖為Sigma公司產(chǎn)品;近紅外熒光染料購自美國LI-COR公司,其他試劑均為國產(chǎn)分析純產(chǎn)品。
DNA-BINDTMWhite 96 Well Polystyrene Microplate(Corning,2505),Odyssey雙色紅外熒光成像系統(tǒng)(美國LI-COR公司),高速冷凍離心機3-30KS(sigma公司),凝膠成像儀(Bio-Rad),恒溫金屬浴(ependof)。
1.1.2 病料
豬瘟兔化弱毒疫苗有**提供,收集濟源市周邊不同地區(qū)的疑似豬瘟病例10個,送檢病料取脾臟、淋巴結(jié)或扁桃體。
1.1.3 探針和引物設(shè)計
1.2 方法
1.2.1 實驗材料準(zhǔn)備
在無菌環(huán)境中剪去脂肪,肌腱等組織。按照1∶5的比例加入無菌PBS,使用研磨器研磨后放入-20℃冰箱凍存?zhèn)溆?。按照說明書使用TRIzol試劑提取備檢病料和豬瘟兔化弱毒疫苗的RNA,溶解后測定濃度,取3μg RNA用于反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,反應(yīng)體系共計20μl:5xRT buffer 4μl;dNTP(10mmol/μl)2μl;RNAase抑制劑 1μl;Rev-R引物(10pmol/μl)1μl;反轉(zhuǎn)錄酶(200U/ μl)1μl;DEPC水 6μl;混合后42℃水浴40min,然后95℃維持5 min。反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物作為模板進行PCR,反應(yīng)體系50μl,其中包括5μl的cDNA產(chǎn)物,其中,按照5000:1加入biotin-dUTP,反應(yīng)產(chǎn)物進行瓊脂糖凝膠電泳檢測。
1.2.2 探針設(shè)計及固定
根據(jù)NCBI網(wǎng)站收錄的豬瘟病毒基因組信息,經(jīng)典株(CSFV)登錄號:12657941,兔弱化株(HCLV)登錄號:AF531433.1,通過序列比對設(shè)計探針和引物。
將合成的5'端NH2修飾的探針粉末溶于寡核苷酸結(jié)合緩沖液(OBB,50mM磷酸鈉,pH8.5;1mM EDTA,pH 8.0;50mmol磷酸鈉配制:1mol Na2HPO4:1M NaH2PO4=43.65:1;),制成100μM的貯存液,使用OBB稀釋至0.25 pmol/μl后,以每孔100μl加入微孔板,4℃孵育過夜;使用OBB溶液反復(fù)清洗5遍后,以200μl/well加入封閉液(3% BSA),37℃孵育30min。
1.2.3 探針固定效果檢測
稀釋H-Con和C-Con至濃度為2nm,分別加入固定好探針的孔中,每孔60μl,然后300RPM,50℃混勻,維持1h后,使用馬來酸(0.1mol馬來酸,0.15molNaCl,pH 7.0)清洗3次;加入提前稀釋好的Streptavidin-IRDye800CW(1∶10000),每孔加入80μl后,37℃,1h;使用馬來酸清洗3次以上,將微孔板放入Odyssey近紅外激光成像系統(tǒng)掃描檢測結(jié)果。
1.2.4 病料檢測
將PCR產(chǎn)物用凝膠回收試劑盒回收目標(biāo)片段后,測定濃度。稀釋為2 nm后,95℃,5 min變性后迅速加入固定有探針的微孔板中,每孔加入60μl,剩余步驟按照前述操作進行。
其中Fix-C用于確定豬瘟病毒是否存在,F(xiàn)ix-H用于當(dāng)Fix-C為陽性時區(qū)分是野毒感染還是疫苗接種。
2.1 序列比對結(jié)果
根據(jù)NCBI收錄的豬瘟病毒與兔化弱毒株基因組信息,進行序列比對,發(fā)現(xiàn)在3’端有一個9bP的插入突變,[12]利用這個差異設(shè)計探針用于區(qū)分野毒感染和疫苗接種。比對結(jié)果見圖1。
圖1 CSFV和HCLV基因組序列比對結(jié)果(局部)
2.2 PCR結(jié)果
使用1%的瓊脂糖凝膠,電泳檢測PCR的結(jié)果,結(jié)果如圖2所示,從圖中可以看出設(shè)計的引物都可以從CSFV和HCLV中擴增出片段,而產(chǎn)物中9個堿基的差異通過凝膠檢測是不能發(fā)現(xiàn)差別的。
圖2 對病料樣品和疫苗樣品擴增結(jié)果(H:HCLV,C:CSFV,1-10:10個待檢測病料,N:NC,M是DNA Marker。)
2.3 探針固定結(jié)果
將合成的探針利用其上修飾的氨基基團與微孔板上的NOS基團共價連接后固定到微孔板,將互補探針加入微孔板進行雜交,每個探針重復(fù)2次。
圖3 探針在微孔板固定后的檢測(第1列:Fix-C,第2列:Fix-H,第3列:空白對照)
2.4 雜交檢測結(jié)果
用HCLV和CSFV的PCR結(jié)果作為樣品用于雜交檢測。結(jié)果如圖4所示。從結(jié)果可以看出所設(shè)計的探針可以區(qū)分HCLV和CSFV。
圖4 HCLV和CSFV擴增結(jié)果的檢測(A、B:Fix-C,C、D:Fix-H,1:CSFV,2:HCLV)
對PCR呈陽性的結(jié)果進行探針檢測,結(jié)果如圖5所示。從圖中可以看出9個陽性病例均為野毒感染。
圖5 送檢病料的檢測結(jié)果(A、B:Fix-C,C、D:Fix-H,1、3-10:陽性樣品)
目前豬瘟試驗室診斷方法在敏感性、特異性、時效性等方面都存在各自的不足,而且這些方法都不能有效地區(qū)分野毒感染與疫苗接種。按照國際通行的做法[1,13],一旦暴發(fā)豬瘟疫情,對涉及的所有豬只一律進行撲殺焚燒處理。依照我國現(xiàn)有國情[14],這將會導(dǎo)致大量的非野毒感染豬被“錯殺”,損害養(yǎng)豬者利益,阻礙養(yǎng)豬業(yè)的發(fā)展,破壞肉品的穩(wěn)定供應(yīng)。
本研究利用豬瘟病毒的經(jīng)典株和兔化弱毒株在基因組序列上的差異,這些差異可以利用不同的探針進行檢測,以區(qū)分確診病例是野毒感染還是疫苗接種。利用微孔板操作可以實現(xiàn)快速、批量的操作,檢測通量高。本文中的10個病料樣品使用一個微孔板即可完成檢測。
[1] 修金生.不同規(guī)模豬場種豬豬瘟抗體檢測與豬瘟凈化[J].福建農(nóng)業(yè)學(xué)報,2010,25(2):235-238.
[2] 周家喜.豬瘟疫苗治療豬瘟的探討[J].中國畜禽種業(yè),2007,3(10):66-67.
[3] 梁淑蘭,肖俊婷,刁賀軍.非典型豬瘟與隱性感染豬瘟[J].中國獸醫(yī)雜志,2007,43(7):81-82.
[4] 陳鐘鳴.規(guī)模化豬場非典型豬瘟的診斷和防制[J].畜牧與獸醫(yī),2007,39(5):49-51.
[5] 程喜榮.免疫豬群暴發(fā)豬瘟的診斷與分析[J].湖北農(nóng)業(yè)科學(xué),2003,(5):82-83.
[6] 張鵬舉.仔豬豬瘟的診斷與防制[J].中國畜牧獸醫(yī),2005,32(8):50-51.
[7] 李菲.豬瘟分子生物學(xué)診斷新進展[J].中國畜牧獸醫(yī),2010,37(6):168-170.
[8] 呂紅生.豬瘟疫苗注射后發(fā)生豬瘟的原因分析[J].云南畜牧獸醫(yī),2004,(3):31.
[9] 傅妮娜,王紅,張華山.近紅外熒光探針及其在生物分析中的應(yīng)用進展[J].分析科學(xué)學(xué)報,2008,24(2):233-239.
[10] 鄭洪,朱昌青,陳小蘭.近紅外熒光探針法測定核酸的研究[J].福州大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版),1999,27(Z1):122.
[11] 胡敏.近紅外熒光探針天青A檢測DNA[J].分析化學(xué),2007,35(6):890-892.
[12] 曹晟,張楚瑜,伊光輝.豬瘟病毒的重組分析[J].遺傳學(xué)報,2005,32(1):52-56.
[13] 胡薛英.豬瘟免疫豬群暴發(fā)豬瘟的診斷[J].華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2000,19(2):147-150.
[14] 林榮泉.非洲豬瘟與豬瘟的鑒定及防控技術(shù)[J].肉類工業(yè),2001,(3):25-28.