王寧,趙燕燕,Δ,陶文杰,劉麗麗,劉萬(wàn)卉,3
(1.煙臺(tái)大學(xué) 藥學(xué)院,山東 煙臺(tái) 264005;2.山東博安生物技術(shù)有限公司 抗體技術(shù)研究部,山東 煙臺(tái) 264005;3.綠葉制藥集團(tuán)有限公司 長(zhǎng)效和靶向制劑國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,山東 煙臺(tái) 264005)
?
陶瓷羥基磷灰石去除單抗聚集體的工藝研究
王寧1,趙燕燕1,2Δ,陶文杰2,劉麗麗2,劉萬(wàn)卉1,3
(1.煙臺(tái)大學(xué) 藥學(xué)院,山東 煙臺(tái) 264005;2.山東博安生物技術(shù)有限公司 抗體技術(shù)研究部,山東 煙臺(tái) 264005;3.綠葉制藥集團(tuán)有限公司 長(zhǎng)效和靶向制劑國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,山東 煙臺(tái) 264005)
目的 研究陶瓷羥基磷灰石(ceramic hydroxyapatite,CHT) I型和II型對(duì)2種單克隆抗體(monoclonal Ab,mAb)1和2聚集體的去除工藝。方法 層析儀為AKTA AVANT 150,層析柱為Tricon 10/50,先進(jìn)行CHT I、CHT II 2種填料的動(dòng)態(tài)載樣量研究,然后選取合適的載量進(jìn)行分離純化研究。上樣條件為5 mmol/L磷酸二氫鈉(NaH2PO4),pH 6.5,上樣,然后用10 mmol/L NaH2PO4,pH 6.5和10 mmol/L NaH2PO4,2 mol/L NaCl,pH 6.5梯度洗脫來(lái)分離單體和聚集體。用分子尺寸排阻高效液相色譜(SEC-HPLC)測(cè)定上樣蛋白溶液和洗脫峰單體及聚集體的含量。使用20 cm高的XK 16/40的層析柱進(jìn)行工藝放大研究。結(jié)果 mAb 1在CHT I型的載量為40 mg/mL,去除后單體含量為98.6%,工藝收率為92.5%;mAb 2在CHT I型的載量為45 mg/mL,去除后單體含量為98.8%,工藝收率為91.5%;mAb 1在CHT II型載量為16 mg/mL,去除后單體含量為99.8%,工藝收率為91.8%;mAb 2在CHT II型載量為20 mg/mL,去除后單體含量為99.9%,工藝回收率為92.2%。結(jié)論 2種類型的陶瓷羥基磷灰石填料在聚集體含量高于10%的情況下,都有很好的去除能力,去除結(jié)果符合法規(guī)要求。該方法操作簡(jiǎn)單,能夠很順利的進(jìn)行工藝放大,滿足中試和生產(chǎn)需求。
陶瓷羥基磷灰石;單克隆抗體;純化工藝;聚集體
近年來(lái),單克隆抗體(簡(jiǎn)稱單抗)已成為世界生物工程制藥業(yè)的支柱產(chǎn)業(yè)之一[1]。在單抗的純化過(guò)程中,如果pH<3,單抗會(huì)發(fā)生不可逆聚集;鹽濃度過(guò)高會(huì)增加疏水聚集;堿性單抗在多價(jià)陰離子緩沖液中易形成穩(wěn)定的離子復(fù)合物,導(dǎo)致單抗之間的聚合;這些過(guò)程都可能產(chǎn)生聚集體。單抗中的聚集體是工藝過(guò)程中產(chǎn)生的雜質(zhì),聚集體過(guò)高會(huì)促進(jìn)形成中和單抗、引起血栓等[2-3]。在工業(yè)化生產(chǎn)中,為保證終產(chǎn)品的均一性和高比活,簡(jiǎn)單有效的去除單抗聚集體的方法對(duì)提高單抗藥物的質(zhì)量至關(guān)重要[4-6]。
聚集體的去除可以通過(guò)陽(yáng)離子交換和疏水層析進(jìn)行去除,研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)聚集體含量超過(guò)10%的時(shí)候,陽(yáng)離子交換樹(shù)脂和疏水層析很難達(dá)到理想的效果,而羥基磷灰石層析方法能夠去除單抗中含量較高的聚集體[7-10]。
羥基磷灰石(hydroxyapatite,HA)的分子式為[Ca5(PO4)3OH]2[11],包括帶正電荷的鈣離子和帶負(fù)電荷的磷酸根離子,其與單抗主要有兩種作用機(jī)制,磷酸根易與單抗中的堿性基團(tuán)作用,通過(guò)增加中性鹽離子例如氯化鈉會(huì)破壞這種作用力,結(jié)合的單抗從柱子上解離下來(lái);鈣離子與單抗中的酸性基團(tuán)以金屬螯合方式結(jié)合,主要通過(guò)磷酸鹽將吸附的單抗洗脫下來(lái)[12]。
本文采用伯樂(lè)公司生產(chǎn)的陶瓷羥基磷灰石(ceramic hydroxyapatite,CHT),對(duì)比研究CHT I和CHT II 2種填料對(duì)2種單抗(mAb1和mAb2)中聚集體的去除效果。層析條件是伯樂(lè)公司提供的單抗聚集體去除的普遍適用條件,經(jīng)過(guò)簡(jiǎn)單優(yōu)化[13-14]。單體和聚集體含量測(cè)定采用SEC-HPLC方法[15-18]。
1.1 單抗 單抗mAb 1和mAb 2,聚集體含量分別為14.5%和12.8%。2種單抗是細(xì)胞培養(yǎng)液經(jīng)過(guò)親和層析純化后的樣品,由山東博安生物技術(shù)有限公司抗體技術(shù)研發(fā)部提供。
1.2 儀器 Cedex Bio生物過(guò)程分析儀(Roche公司);HiprepTM26/10 Desalting脫鹽柱(GE Healthcare公司);TSK-Gel G30000SWxl 凝膠色譜柱7.8 mm×300 mm(東曹公司);生物安全柜(Heraeus公司);AKTA AVANT 150(GE Healthcare公司)。
1.3 填料 CHTTMceramic hydroxyapatite,Type I,40 μm;CHTTMceramic hydroxyapatite,Type II, 40 μm(Bio-Rad公司)。
1.4 試劑 氫氧化鈉(天津永大化學(xué)試劑有限公司);氯化鈉、磷酸二氫鈉(天津博迪化工有限公司)。
1.5 方法
1.5.1 樣品處理:5 mmol/L NaH2PO4pH 6.5緩沖液平衡HiprepTM26/10 Desalting柱,使用同一緩沖液洗脫,然后依次用0.2 mol/LNaOH、平衡緩沖液清洗脫鹽柱后保存在20%乙醇里。流速4 mL/min。接收洗脫峰,在生物安全柜中使用微孔濾膜過(guò)濾后作為上樣蛋白。
1.5.2 CHT I、CHT II的單抗動(dòng)態(tài)載量:用2種填料裝柱,使用量均為1 mL,取過(guò)濾后的蛋白作為測(cè)試樣品,用緩沖液A(10 mmol/L NaH2PO4pH 6.5)平衡好離子交換柱,CHT I按照載量為30、40、45、50、55 mg/mL上樣;CHT II按照載量為10、15、20、25、30 mg/mL上樣,分析流穿組分。
1.5.3 CHT I去除2種單抗中的聚集體:取過(guò)濾后的蛋白,使用Tricon10/50 (CV4.9 mL) CHT I離子交換柱,緩沖液A為平衡緩沖液,緩沖液A和緩沖液B(10 mmol/L NaH2PO4,2 mol/LNaCl pH 6.5)梯度洗脫(0~50%,40 CV),收集洗脫峰,然后使用緩沖液C(500 mmol/L NaH2PO4pH 6.5)沖洗柱子上未洗脫下來(lái)的成分,收集再生峰[19-20]。流速1 mL/min。檢測(cè)洗脫峰聚集體含量,計(jì)算回收率。
回收率(%)=純化后單體重量(mg)/純化前單體重量(mg)×100%
1.5.4 CHT II去除2種單抗中的聚集體:取過(guò)濾后的蛋白,使用Tricon10/50(CV4.9 mL)CHT II離子交換柱,緩沖液A為平衡緩沖液,緩沖液A和緩沖液B梯度洗脫(20%~50%,30 CV),收集洗脫峰,然后使用緩沖液C沖洗柱子上未洗脫下來(lái)的成分,收集再生峰[19-20]。流速1 mL/min。檢測(cè)洗脫峰聚集體含量,計(jì)算回收率。
1.5.5 層析柱放大去除2種單抗的聚集體:按照1.5.2和1.5.3方法,使用2種填料分別裝填20 cm高XK16/40層析柱,進(jìn)行放大,收集洗脫峰和再生峰。檢測(cè)洗脫峰聚集體含量,計(jì)算回收率。
1.5.6 蛋白濃度的測(cè)定:采用紫外分光光度計(jì)在280 nm和320 nm處測(cè)定吸光度進(jìn)行定量,用超純水在280 nm和320 nm空白校正,分別測(cè)定樣品在280 nm和320 nm處的吸收值。
公式:A=(A280-A320)樣品-(A280-A320)空白
A=ECL;E:摩爾吸光系數(shù);C:樣品濃度;L:光程1 cm
1.5.7 SEC-HPLC檢測(cè)聚集體含量:用0.35 mol/L磷酸鈉和0.35 mol/L氯化鈉混合溶液,pH 7.2作為流動(dòng)相,樣品用流動(dòng)相稀釋至0.5 mg/mL,微孔濾膜過(guò)濾后進(jìn)樣檢測(cè)。流速0.5 mL/min,檢測(cè)波長(zhǎng)280 nm,進(jìn)樣量100 μL,拖尾因子應(yīng)為0.95~1.40,按面積歸一化法計(jì)算供試品中單體和多聚體的含量。
1.6 SEC-HPLC方法學(xué)驗(yàn)證
1.6.1 精密度:取供試品連續(xù)進(jìn)樣6針,進(jìn)樣分析,記錄色譜圖,計(jì)算峰面積。
1.6.2 準(zhǔn)確度:以加樣回收率方法計(jì)算,制備聚體含量分別為高、中、低的樣品各3份,進(jìn)樣分析,記錄色譜圖,計(jì)算峰面積。
1.6.3 線性方稱:取高分子量物質(zhì)(多聚體含量較高的純化物質(zhì))溶液和單體物質(zhì)(單體含量較高的純化物質(zhì))溶液,按供試品溶液制備項(xiàng)制備。分別連續(xù)進(jìn)樣6針,按面積歸一化法,分別計(jì)算聚體、單體的平均含量。然后以一定比例混合分別配制成聚體含量為0.1%、3.0%、6.4%、9.4%、12.4%、14.2%、16.4%和18.0%的系列溶液,進(jìn)樣分析,以聚體含量為橫坐標(biāo),峰面積為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.6.4 重復(fù)性:取供試品配制6份,進(jìn)樣分析記錄色譜圖,計(jì)算峰面積。
1.6.5 中間精密度:操作者1和操作者2,分別取供試品配制6份,進(jìn)樣分析,記錄色譜圖,計(jì)算峰面積。
2.1 CHT I、CHT II填料對(duì)2種單抗的動(dòng)態(tài)載量結(jié)果 使用生物過(guò)程分析儀分析流穿組分,結(jié)果表明CHTI的對(duì)mAb 1、mAb 2載量分別為40 mg/mL、45 mg/mL,見(jiàn)圖1;CHT II對(duì) mAb 1、 mAb 2載量分別為16 mg/mL、20 mg/mL,見(jiàn)圖2。
圖1 CHT I 動(dòng)態(tài)結(jié)合載量Fig.1 CHT I dynamic binding capacity
圖2 CHT II 動(dòng)態(tài)結(jié)合載量Fig.2 CHT II dynamic binding capacity
2.2 CHT I、CHT II填料去除2種單抗中聚集體的效果 使用SEC-HPLC分別檢測(cè)2種單抗的洗脫峰聚集體含量,見(jiàn)圖3。結(jié)果表明:CHT I純化 mAb1、 mAb 2的洗脫峰單體含量分別為98.6%、98.8%。,回收率分別為92.5%、91.5%。CHT II純化mAb 1、mAb 2的洗脫峰單體含量分別為99.8%、99.9%,回收率分別為91.8%、92.2%。
圖3 抗體純化前/后的分子排阻色譜結(jié)果A: 抗體1(前) B:抗體2(前) C:抗體1(后) D:抗體2(后)Fig.3 SEC-HPLC chromotagram of mAb before/after purificationA: mAb1 (before) B: mAb2 (before) C: mAb1 (after) D: mAb2 (after )
2.3 SEC-HPLC方法學(xué)驗(yàn)證結(jié)果
2.3.1 精密度試驗(yàn)結(jié)果:精密度試驗(yàn)結(jié)果表明RSD值為0.01%,儀器精密度良好。
2.3.2 準(zhǔn)確度試驗(yàn)結(jié)果:準(zhǔn)確度試驗(yàn)結(jié)果表明平均回收率分別為88.6%、87.9%、99%,RSD值分別為0.13%、0.01%、0.46%,證明方法準(zhǔn)確度良好。
2.3.3 線性曲線:標(biāo)準(zhǔn)曲線的回歸方程為:Y=3×106X+275853,R2=0.9997,此方法在聚體含量0.1%~18.0%的范圍內(nèi)呈良好的線性關(guān)系。
2.3.4 重復(fù)性試驗(yàn)結(jié)果:重復(fù)性試驗(yàn)結(jié)果表明樣品的RSD值為0.2%,符合要求。
2.3.5 中間精密度試驗(yàn)結(jié)果:不同試驗(yàn)者批內(nèi)精密度RSD分別為0.14%、0.16%,結(jié)果符合中間精密度要求。
2.4 工藝放大結(jié)果 使用SEC-HPLC檢測(cè)2種單抗的洗脫峰中聚集體含量。結(jié)果表明:CHT II去除聚集體的效果要優(yōu)于CHT I,分辨率高,與放大前的結(jié)果基本一致,方法重現(xiàn)性好。CHT I、CHT II放大結(jié)果見(jiàn)表1。
表1 20 cm XK16/40 層析柱分析結(jié)果Tab.1 Results of 20 cm height XK16/40 column
本實(shí)驗(yàn)使用CHT I和CHT II 2種類型的陶瓷羥基磷灰石填料去除2種單抗中的聚集體,2種單抗的聚集體含量都高于10%,層析方法經(jīng)過(guò)進(jìn)一步優(yōu)化梯度洗脫條件,獲得純度超過(guò)98.5%的單體。
載樣量實(shí)驗(yàn)證明了CHT I載樣量高于CHT II。聚集體含量測(cè)定采用SEC-HPLC方法,結(jié)果顯示CHT II純化后單體比例均高于99.8%,聚集體含量均低于0.2%;CHT I單體比例均高于98.5%,聚集體含量均低于1.5%,而且蛋白的回收率均在90%以上,說(shuō)明CHT II去除單抗聚集體效果優(yōu)于CHT I。使用XK16/40層析柱對(duì)工藝進(jìn)行了放大,結(jié)果顯示方法具有較好的重現(xiàn)性。實(shí)驗(yàn)中,層析柱使用多次后出現(xiàn)反壓大的問(wèn)題,需要在每次實(shí)驗(yàn)結(jié)束后進(jìn)行徹底的清洗,否則會(huì)影響聚集體的去除效果。
使用CHT I和CHT II 2種填料去除多聚體方法簡(jiǎn)單,容易實(shí)現(xiàn)工藝放大。單抗結(jié)構(gòu)在序列上有相當(dāng)高的一致性,可以在本方法的基礎(chǔ)上優(yōu)化用于去除目標(biāo)單抗中的聚集體,本文為單抗聚集體的去除提供了實(shí)驗(yàn)依據(jù)和有利參考。
[1] Reichert JM.Monoclonal antibodies as innovative therapeutics[J].Curr Pharm Biotechnol,2008, 9(6):423.
[2] Mire-Sluis AR,Barrett YC,Devanarayan V,et al.Recommendations for the design and optimization of immunoassays used in the detection of host antibodies against biotechnology products[J].J Immunol Methods,2004,289(1-2) :1-16.
[3] Gupta S,Indelicato SR,Jethwa V,et al.Recommendations for the design,optimization,and qualification of cell-based assays used for the detection of neutraliazing antibody responses elicited to biological therapeutics[J].J Immunol Methods,2007,321(1-2):1-18.
[4] 232ndNational Meeting of the Americal Chemical Society.San Francisco, California USA,2006.
[5] Vázquez-Rey M, Lang DA. Aggregates in monoclonal antibody manufacturing processes[J]. Biotechnol.Bioeng,108(7):1494-1508.
[6] Rosenberg AS.Effects of protein aggregates.an immunologic perspective[J].AAPS J,2006,8 (3) :E501-507.
[7] Josics DJ, Loster K, Kuhl R, et al. Purification of monoclonal antibodies by hydroxyapatite HPLC and size exclusion HPLC[J].Biol.Chem.Hoppe-Seylars,1991,372(3):149-156.
[8] Gagnon P.Monoclonal antibody purification with hydroxyapatite[J].N Biotechnol,2009,25(5): 287-293..
[9] Sun S.Removal of high molecular weight aggregates from an antibody preparation using ceramic hydroxyapatite chromatography,oral presentation[C]. 3rd International Hydroxyapatite Conference,Lisbon,2003.
[10] Sun S.Ceramic hydroxyapatite chromatography in antibody and Fcfusion protein purification[C]. (Oral presentation). 12th Annual Waterside Conference,San Juan,Puerto Rico.2007.
[11] Gagnon P,Ng P,Zhen J,et al.A ceramic hydroxypatite-based purification platform:simultaneous removal of leached protein A,aggregates,DNA,and endotoxins from mAbs[J].Bioprocess Int,2006,4:50-60.
[12] Chen J,Tetrault J,Zhang YY,et al.The distinctive separation attributes of mixed-mode resins and their application in monoclonal antibody downstream purification process[J].J Chromatogr A,2010,1217 (2):216-224.
[13] Ng PK,He J,Gagnon P.Mechanistic model for adsorption of immunoglobulin on hydroxyapatite[J].J Chromatogr A,2007,1142 (1):13-28.
[14] Franklin S.Removal of aggregate from an IgG4 product using CHT ceramic hydroxyapatite.chromatography Tech Note 2940, Bio-Rad Laboritories,Inc.2002.
[15] Luo P,Hayes RJ,Cha I,et al.Development of a cytokine analog with enhanced stability using computational ultrahigh throughput screening[J].Pro Sci,2002,11(5):1218-1226.
[16] kramarczyk JF, kelley BD, coffman JL. High-throughput screening of chromatographic separations:Ⅱ.Hydrophobic interaction[J].Biotechnol Bioeng, 100(4):707-720.
[17] Tosoh Bioscience LLC.Analysis of human immunoglobulins by size exclusion chromatography,application note G00951.
[18] Diederich P,Hansen SK,Oelmeier SA.A sub-two minutes method for monoclonal antibody aggregate quantification using parallel interlaced size exclusion high performance liquid chromatography[J].J Chromatogr A,2011,1218: 9010-9018.
[19] Gagnon P.Improved antibody aggregate removal by hydroxyapatite chromatography in the presence of polyethylene glycol[J].J Immunol Methods,2008,336 (2):222-228..
[20] Gagnon P,Beam K.Antibody aggregate removal by hydroxyapatite chromatography[J].Curr Pharm Biotechnol,2009,10 (4): 440-446.
(編校:王冬梅)
Study on the process of ceramic hydroxyapatite for removing monoclonal antibody aggregates
WANG Ning1, ZHAO Yan-yan1,2Δ, TAO Wen-jie2, LIU Li-li2, LIU Wan-hui1,3
(1.School of Pharmacy, Yantai University, Yantai 264005, China; 2.Department of Antibody Technology, BoanBiotech Group Ltd., Yantai 264005, China; 3.State Key Laboratory of Long-acting and Targeting Drug Delivery System, Luye Pharma Group Ltd., Yantai 264005, China)
ObjectiveTo compare the purification process of two types of ceramic hydroxyapatite(CHT I and CHT II)to remove the aggregates from two monoclonal antibodies(mAb 1 and mAb 2).MethodsAll the chromatography runs were performed on AKTA AVANT 150 with Tricon 10/50 column.The dynamic binding capacity(DBC) of two types of CHT was studied firstly, and then purification research was carried out selecting the suitable DBC.The column was equilibrated with 5 mmol/L sodium dihydrogen phosphate pH 6.5, and then was eluted with gradient buffers which were 10 mmol/L sodium dihydrogen phosphate pH 6.5 and 2 mol/L sodium chloride pH 6.5.Aggregate content in loading and elution pool was evaluated by size exclusion chromatography.Scale-up process was carried on 20 cm height chromatography column XK16/40.ResultsDBC of CHT I for mAb 1 was 40 mg/mL and mAb 2 was 45 mg/mL.After purity, monomer content of mAb 1 reached 98.6% and yield was 92.5% and monomer content of mAb 2 reached 98.8% and yield was 91.5% .DBC of CHT II for mAb1 was 16 mg/mL and mAb 2 was 20 mg/mL.After purity, monomer content of mAb 1 reached 99.8% and yield was 91.8% and monomer content of mAb 2 reached 99.9% and yield was 92.2%.ConclusionTwo types of CHT both can remove aggregates effectively from monoclonal antibodies when aggregate content reaches more than 10%, and results conform to the regulations.CHT I has higher dynamic binding capacity than CHT II, and CHT II is superior to CHT I in removing aggregate efficiency.The purification process is simple and can be easily scaled up in pilot and manufacture.Therefore, it meets the requirement pilot and scale production.
ceramic hydroxyapatite; monoclonal antibody; purification process; aggregate
國(guó)家863計(jì)劃(2012AA02A302 )
王寧,女,碩士在讀,研究方向:生物制藥,E-mail:294316576@qq.com;趙燕燕,通訊作者,女,博士,講師,研究方向:生物制藥,E-mail:zhaoyy@luye.cn。
R367.2
A
1005-1678(2015)05-0177-04