熊盼盼 劉 菲
?
上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化相關(guān)信號通路在肝纖維化中作用的研究進(jìn)展
熊盼盼劉菲
201203同濟(jì)大學(xué)附屬東方醫(yī)院胃腸內(nèi)科
摘要:肝臟細(xì)胞上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)是指在慢性肝損傷的微環(huán)境下上皮細(xì)胞失去原有特性而獲得成纖維細(xì)胞典型特征的病理過程。EMT最終將導(dǎo)致肝纖維化。多種信號因子和多條信號通路參與EMT過程,研究表明,這些通路之間并不是獨(dú)立存在的,相互之間存在緊密聯(lián)系。近年來,靶向治療已經(jīng)成為肝纖維化治療的研究熱點(diǎn)之一,信號通路的研究為肝纖維化的靶向治療提供了重要依據(jù)。
關(guān)鍵詞:上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化;肝纖維化;信號通路
肝纖維化是指在慢性肝臟損傷和炎性反應(yīng)刺激的作用下,細(xì)胞外基質(zhì)(ECM)增生和降解失衡,從而引起肝臟內(nèi)纖維結(jié)締組織的異常沉積,肝小葉重構(gòu),假小葉及結(jié)節(jié)形成,并最終導(dǎo)致肝硬化。ECM的產(chǎn)生主要來源于3條途徑:(1)肝臟自身產(chǎn)ECM細(xì)胞,包括肝星狀細(xì)胞(HSC)和門管區(qū)成纖維細(xì)胞;(2)骨髓源性的間充質(zhì)細(xì)胞;(3)發(fā)生肝上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)的肝細(xì)胞和膽管細(xì)胞[1]。以前普遍認(rèn)為活化的HSC是ECM的主要來源,肝細(xì)胞則是纖維化過程中的受害者,目前則認(rèn)為肝細(xì)胞也參與其中。Nitta等[2]研究發(fā)現(xiàn),約1/3纖維細(xì)胞由肝臟細(xì)胞EMT過程產(chǎn)生。近年來研究表明,肝EMT可通過獨(dú)特的信號通路加速肝纖維化,是有效的肝纖維化治療靶標(biāo),阻斷EMT過程,可抑制肝纖維化的發(fā)生發(fā)展。
1EMT
1.1EMT的定義
EMT是一個轉(zhuǎn)分化過程,在小鼠單側(cè)輸尿管梗阻模型中首次被證實,它是指上皮細(xì)胞失去頂-基底極性和黏附性,并向間質(zhì)成纖維細(xì)胞轉(zhuǎn)變。在肝細(xì)胞中主要表現(xiàn)為:上皮細(xì)胞失去其多邊緊密連接形態(tài),并轉(zhuǎn)變?yōu)榕帕兴缮⒌?、梭形間質(zhì)細(xì)胞;肝細(xì)胞表面的E-鈣黏蛋白(E-cadherin)、緊密連接蛋白 1 (ZO-1)等上皮表型標(biāo)志物的丟失以及波形蛋白(vimentin)、N-鈣黏蛋白(N-cadherin)等間質(zhì)表型標(biāo)志物的獲得;肝細(xì)胞基底膜降解,并可以自由移行產(chǎn)生膠原。實際上,在肺臟、肝臟、腎臟等器官的纖維化和癌變過程中,EMT都參與其中并發(fā)揮了重要的作用。
1.2EMT的分型
EMT可分為3型:1型EMT與受精卵著床、胚胎形成和器官的發(fā)育有關(guān),在胚胎發(fā)育期參與原腸胚、神經(jīng)嵴等的形成;2型EMT與器官纖維化、損傷修復(fù)及組織再生相關(guān),例如在創(chuàng)傷和炎性損傷等持續(xù)刺激下,上皮細(xì)胞可被誘導(dǎo)轉(zhuǎn)變?yōu)槔w維原細(xì)胞,從而促進(jìn)器官發(fā)生纖維化;3型EMT則與腫瘤的侵襲和轉(zhuǎn)移密切相關(guān),例如在早期癌巢中,上皮細(xì)胞轉(zhuǎn)變?yōu)檗D(zhuǎn)移腫瘤細(xì)胞,從而通過血液發(fā)生轉(zhuǎn)移[3]。研究表明,肝纖維化的發(fā)生發(fā)展主要與2型EMT有關(guān)。本文將主要闡述2型EMT參與肝纖維化的作用機(jī)制。
1.3EMT的特征
EMT較顯著的特征是細(xì)胞表型的改變。研究表明,在EMT時,免疫熒光顯示上皮表型標(biāo)志物(如E-cadherin、ZO-1和白蛋白等)的表達(dá)發(fā)生下調(diào);而其間質(zhì)表型標(biāo)志物[如vimentin、α-平滑肌肌動蛋白(α-SMA)、N-cadherin等]的表達(dá)則上調(diào)[4]。實際上,在EMT發(fā)生的同時,成纖維細(xì)胞特異性蛋白-1(FSP-1,亦稱S100A4)也會表達(dá)上調(diào),但是其只表達(dá)于炎性巨噬細(xì)胞中,而不表達(dá)于產(chǎn)ECM的細(xì)胞,所以不屬于纖維母細(xì)胞的特征標(biāo)志物[5-7]。
EMT的另一種特征是損傷的組織細(xì)胞獲得移行性表型。損傷的組織細(xì)胞釋放一些細(xì)胞因子如轉(zhuǎn)化生長因子β1(TGF-β1)、表皮生長因子(EGF)等,這些細(xì)胞因子激活包括TGF-β1/smad信號通路、Hedgehog(Hh)信號通路、絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)信號通路、磷脂酰肌醇-3激酶/絲蘇氨酸蛋白激酶(PI3K/Akt)信號通路等在內(nèi)的多條信號通路。信號通路之間可以相互調(diào)節(jié)和促進(jìn),這些信號通路可作用于下游的轉(zhuǎn)錄輔助阻遏因子(如鋅指轉(zhuǎn)錄因子Snail超家族、Twist等)和轉(zhuǎn)錄輔助活化因子,從而調(diào)控靶基因的轉(zhuǎn)錄,導(dǎo)致E-cadherin等上皮表型蛋白表達(dá)下調(diào),vimentin等間質(zhì)表型蛋白表達(dá)上調(diào),最終導(dǎo)致上皮細(xì)胞表達(dá)間質(zhì)細(xì)胞表型,移行并產(chǎn)生ECM沉積,從而促進(jìn)肝臟的纖維化。
2EMT相關(guān)信號通路在肝纖維化中的作用機(jī)制
多條信號通路參與調(diào)節(jié)EMT,進(jìn)而影響肝纖維化的發(fā)生發(fā)展。例如由膽源性病因引起的肝纖維化,其信號通路主要為Hh信號通路;肝細(xì)胞性病因所致的肝纖維化,其主要為TGF-β1信號通路;Notch信號通路、表皮生長因子受體(EGFR)信號通路等也參與了肝纖維化。同時,信號通路之間也存在著密切聯(lián)系。
2.1Hh信號通路對EMT的調(diào)控
Hh信號通路包括Hh膜受體[Patched(Ptc)和Smoothened(Smo)]、轉(zhuǎn)錄因子Ci/Gli、絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶Fused(Fu)、Fu抑制劑(SuFu)、類運(yùn)動蛋白costal-2(cos2)和蛋白激酶A(PKA)等組成成分。
在肝纖維化過程中,Hh信號通路在抑制HSC凋亡和增殖方面起著重要作用,同時也參與了EMT過程,在膽管細(xì)胞中表現(xiàn)得尤為明顯,比如膽管閉鎖(BA)、原發(fā)性膽汁性肝硬化(PBC)、原發(fā)性硬化性膽管炎(PSC)、非酒精性脂肪性肝病(NAFLD)等膽汁淤積性疾病發(fā)生肝纖維化時,肝膽管上皮細(xì)胞發(fā)生EMT,轉(zhuǎn)變成間質(zhì)細(xì)胞,并參與纖維化的形成。
Xue等[8]和Omenetti等[9]發(fā)現(xiàn),BA時,肝膽管上皮細(xì)胞中Hh配體表達(dá)上調(diào),Hh靶基因表達(dá)增加,同時Hh轉(zhuǎn)錄因子Gli2和vimentin共定位于肝小葉間導(dǎo)管上皮。Jung等[10]發(fā)現(xiàn),PBC時,肝膽管細(xì)胞中同時表達(dá)細(xì)胞角蛋白19(CK19)、Gli2和Ptc。Syn等[11]在研究食物誘導(dǎo)下發(fā)生的NAFLD時發(fā)現(xiàn),未成熟的膽管祖細(xì)胞發(fā)生EMT并轉(zhuǎn)變成間質(zhì)纖維細(xì)胞,并離開原來位置移行至肝實質(zhì)細(xì)胞中替代壞死的肝細(xì)胞,從而促進(jìn)肝纖維化的發(fā)生發(fā)展。同時有研究證實,在膽道結(jié)扎術(shù)(BDL)誘導(dǎo)的小鼠肝纖維化模型中,膽管細(xì)胞可發(fā)生EMT,膽管細(xì)胞表型標(biāo)志物由E-cadherin、ZO-1轉(zhuǎn)變?yōu)関imentin、α-SMA、Ⅰ型膠原,而肝細(xì)胞中沒有出現(xiàn)類似的改變,提示僅肝膽管細(xì)胞發(fā)生EMT[1]。
膽汁淤積性肝纖維化過程中,Hh信號通路被激活,Hh蛋白釋放,與Ptc受體結(jié)合,解除了Ptc受體對Smo受體的抑制作用,從而活化了Gli家族和PKA,激活cos2、SuFu和Fu并形成復(fù)合物,使Gli蛋白進(jìn)入核內(nèi)并激活下游靶基因如Twist、Snail等轉(zhuǎn)錄輔助阻遏因子、細(xì)胞周期蛋白D1等轉(zhuǎn)錄因子和轉(zhuǎn)錄輔助活化因子,在這些轉(zhuǎn)錄因子的共同相互作用下,E-cadherin等上皮表型標(biāo)志物表達(dá)下降,而N-cadherin等間質(zhì)表型標(biāo)志物的表達(dá)則上升。膽管細(xì)胞表型的改變隨即導(dǎo)致細(xì)胞的移行,發(fā)生ECM,從而促進(jìn)纖維化。
2.2TGF-β1信號通路對EMT的調(diào)控
在病毒性肝炎等肝病的肝損傷中,庫普弗細(xì)胞、肝細(xì)胞、HSC、自然殺傷(NK)細(xì)胞、淋巴細(xì)胞和樹突狀細(xì)胞均會分泌炎性細(xì)胞因子,包括TGF-β1、腫瘤壞死因子(TNF)等,其中TGF-β1是目前公認(rèn)最強(qiáng)的促纖維分泌因子,TGF-β1在EMT中發(fā)揮了重要作用,其主要通過參與TGF-β1/smad信號通路和non-smad信號通路來調(diào)控這一過程。在一項CCl4誘導(dǎo)小鼠肝纖維化的模型中,證實了TGF-β1信號通路參與了肝纖維化的主要通路[7,12]。
在TGF-β1/smad信號通路中,TGF-β1 Ⅱ型受體活化并磷酸化Ⅰ型受體,兩者形成復(fù)合物后,依次活化并磷酸化smad2/3和smad4,后者發(fā)生核轉(zhuǎn)位并與Snail和Twist等轉(zhuǎn)錄因子相互作用,從而調(diào)控肝細(xì)胞表型蛋白的表達(dá)。
在non-smad信號通路中,通過TGF-β1受體的磷酸化或直接作用,激活下游通路的活化激酶,后者再分別激活下游的一系列信號通路,如PI3K、細(xì)胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶(ERK)和p38MAPK激酶等信號通路,最后作用于下游的轉(zhuǎn)錄輔助阻遏因子和轉(zhuǎn)錄輔助活化因子,在這些轉(zhuǎn)錄因子的相互作用下調(diào)控靶基因的轉(zhuǎn)錄,從而下調(diào)上皮表型標(biāo)志物,上調(diào)間質(zhì)表型標(biāo)志物,導(dǎo)致肝細(xì)胞EMT。
Nitta等[2]研究發(fā)現(xiàn),通過對肝硬化后的肝細(xì)胞轉(zhuǎn)染smad7,可以抑制smad2和smad3的表達(dá),從而抑制了smad信號通路,同時也抑制了p-Akt的表達(dá);同樣使用PI3K/Akt信號通路抑制劑LY294002也可以抑制smad信號通路,表明smad信號通路與non-smad信號通路下游的PI3K/Akt信號通路之間存在著相互交叉聯(lián)系。上述研究表明,受損的肝細(xì)胞經(jīng)TGF-β1作用后,可激活下游的多條信號通路,在各信號通路的相互作用下,肝細(xì)胞表型發(fā)生改變,導(dǎo)致EMT,同時引起細(xì)胞移行并產(chǎn)生膠原,從而促進(jìn)肝纖維化的形成。
2.3信號通路間的相互作用
肝細(xì)胞EMT發(fā)生時,細(xì)胞上皮表型標(biāo)志物中主要的改變是E-cadherin的下調(diào),其下調(diào)主要由4種轉(zhuǎn)錄阻遏因子調(diào)控[13]:轉(zhuǎn)錄因子Snail超家族(由Snail1和Snail2組成)、bHLH因子、Twist和Zeb家族(由Zeb1和Zeb2組成)。實際上,各轉(zhuǎn)錄因子間也存在相互促進(jìn)和協(xié)調(diào)的作用。Snail1可大幅抑制E-cadherin的mRNA和蛋白質(zhì)水平的表達(dá);Snail1還可以參與調(diào)控Zeb1的轉(zhuǎn)錄,當(dāng)Snail1被敲除時,Zeb1的表達(dá)也相應(yīng)減少;而Snail1和Twist則協(xié)同調(diào)控相關(guān)靶基因的轉(zhuǎn)錄,當(dāng)Twist被敲除時,Snail1的上調(diào)就相對滯后[14-15]。
TGF-β1信號通路和Hh信號通路可共同調(diào)控Twist和Snail等轉(zhuǎn)錄因子,并且這兩條信號通路起著相互協(xié)調(diào)和促進(jìn)的作用。smad活化的轉(zhuǎn)錄因子Snail和Twist的表達(dá)可被Hh激活的Gli蛋白增強(qiáng),同時,TGF-β1在沒有活化的smo受體的前提下可以直接促使Gli蛋白表達(dá),從而調(diào)節(jié)下游靶基因的表達(dá),用環(huán)巴明抑制Hh信號通路后,TGF-β1的表達(dá)水平下降[16]。
Notch信號通路也參與了肝細(xì)胞EMT過程[17-18],而且其與TGF-β1也存在相互促進(jìn)的作用機(jī)制。Notch作為跨膜蛋白受體,與配體結(jié)合被激活后,其胞內(nèi)活化域(NICD)發(fā)生核轉(zhuǎn)位并作用于Snail的啟動子上,促進(jìn)Snail的表達(dá)。此外,TGF-β1可以促進(jìn)Notch1、Notch4受體和Jagged1、Jagged2配體的表達(dá),NICD可與smad3結(jié)合形成復(fù)合體,后者可促進(jìn)胞內(nèi)TGF-β1的活性,從而激活smad3基因的啟動子。
Kang等[19]研究表明,在肝纖維化和肝細(xì)胞癌中TGF-β1信號通路和EGFR信號通路相互補(bǔ)充促進(jìn)四次跨膜蛋白TM4SF5的表達(dá),從而促進(jìn)肝細(xì)胞EMT的發(fā)生。TGF-β1體外培養(yǎng)的肝細(xì)胞加入EGFR抑制劑可以阻斷TM4SF5的表達(dá)和EMT的發(fā)生,smad的高表達(dá)可以促進(jìn)EGFR和TM4SF5的表達(dá),提示smad和EGFR信號通路對于TM4SF5的表達(dá)存在著相互作用,從而促進(jìn)肝細(xì)胞EMT的發(fā)生。
綜上所述,參與肝細(xì)胞EMT的多條信號通路之間存在著相互作用,共同調(diào)節(jié)肝細(xì)胞EMT。
3總結(jié)及展望
Hh信號通路和TGF-β1信號通路等共同參與了調(diào)節(jié)肝細(xì)胞EMT,進(jìn)而影響肝纖維化的發(fā)生發(fā)展,信號通路之間存在著緊密聯(lián)系,聯(lián)合治療是肝纖維化治療的較好選擇。
通過骨形態(tài)發(fā)生蛋白-7(BMP-7)、肝細(xì)胞生長因子(HGF)等內(nèi)源性抑制分子可阻斷肝細(xì)胞EMT的信號通路。Bi等[20]的研究發(fā)現(xiàn),在EMT過程中,TGF-β1∶BMP-7 = 1∶10是較好的平衡比例,當(dāng)這個比例增加時,E-cadherin的表達(dá)就會逐步下調(diào),更傾向于發(fā)生肝細(xì)胞EMT。亦可通過外源性抑制藥物如TGF-β1信號通路抑制劑(蜂毒明肽、塞來昔布、阿侖膦酸鈉等)[21-25]和Hh信號通路抑制劑[環(huán)巴明、單克隆抗體5E1、GDC-0499等][24-25]阻斷相關(guān)信號通路,抑制EMT的發(fā)生,但要注意藥物對機(jī)體的不良反應(yīng)。研究表明,外源性抑制藥物也可以通過誘導(dǎo)產(chǎn)生內(nèi)源性信號分子參與信號通路的阻斷。Bi等[23]研究發(fā)現(xiàn),阿侖膦酸鈉可以在抑制TGF-β1誘導(dǎo)的肝細(xì)胞EMT的同時,促進(jìn)BMP-7的表達(dá),參與BMP-7介導(dǎo)的間質(zhì)上皮轉(zhuǎn)化(MET),逆轉(zhuǎn)肝纖維化;此外,也可通過miRNA(結(jié)合于mRNA UTR,起到抑制翻譯起始或降解mRNA的作用)轉(zhuǎn)染來抑制肝細(xì)胞EMT[26]。Zhang等[13]研究表明,miR-30可通過作用于轉(zhuǎn)錄因子Snail1來調(diào)控肝細(xì)胞EMT的發(fā)生,從而抑制了上皮表型向間質(zhì)表型的轉(zhuǎn)變。
肝細(xì)胞EMT信號通路的研究為肝纖維化靶點(diǎn)治療開辟了新的道路,但EMT受多種細(xì)胞因子和多條信號通路的調(diào)控,各種信號通路和細(xì)胞因子之間的相互協(xié)同作用尚不清楚,有待于進(jìn)一步探究,恰當(dāng)?shù)闹委煏r間點(diǎn)的選擇、聯(lián)合治療方案中的藥物搭配和抑制劑劑量的控制等也有待進(jìn)一步深入研究,從而為肝纖維化的治療提供更合理、精準(zhǔn)、有效的方案。
參考文獻(xiàn)
1 Lee SJ, Kim KH, Park KK. Mechanisms of fibrogenesis in liver cirrhosis: The molecular aspects of epithelial-mesenchymal transition[J]. World J Hepatol, 2014, 6: 207-216.
2 Nitta T, Kim JS, Mohuczy D, et al. Murine cirrhosis induces hepatocyte epithelial mesenchymal transition and alterations in survival signaling pathways[J]. Hepatology, 2008, 48: 909-919.
3 Pinzani M. Epithelial-mesenchymal transition in chronic liver disease: Fibrogenesis or escape from death [J].J Hepatol, 2011, 55: 459-465.
4 Zeisberg M, Neilson EG. Biomarkers for epithelial-mesenchymal transitions[J]. J Clin Invest, 2009, 119: 1429-1437 .
5 ?sterreicher CH, Penz-?sterreicher M, Grivennikov SI, et al. Fibroblast-specific protein 1 identifies an inflammatory subpopulation of macrophages in the liver[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2011, 108: 308-313.
6 Rockey DC. Translating an understanding of the pathogenesis of hepatic fibrosis to novel therapies[J]. Clin Gastroenterol Hepatol, 2013, 11: 224-231. e1-e5.
7 Bi WR, Yang CQ, Shi Q. Transforming growth factor-β1 induced epithelial-mesenchymal transition in hepatic fibrosis[J]. Hepatogastroenterology, 2012, 59: 1960-1963.
8 Xue ZF, Wu XM, Liu M. Hepatic regeneration and the epithelial to mesenchymal transition[J]. World J Gastroenterol, 2013, 19: 1380-1386.
9 Omenetti A, Bass LM, Anders RA, et al. Hedgehog activity, epithelial-mesenchymal transitions, and biliary dysmor-phogenesis in biliary atresia[J]. Hepatology, 2011, 53: 1246-1258.
10 Jung Y, McCall SJ, Li YX, et al. Bile ductules and stromal cells express hedgehog ligands and/or hedgehog target genes in primary biliary cirrhosis[J]. Hepatology, 2007, 45: 1091-1096.
11 Syn WK, Jung Y, Omenetti A, et al. Hedgehog-mediated epithelial-to-mesenchymal transition and fibrogenic repair in nonalcoholic fatty liver disease[J]. Gastroenterology, 2009, 137: 1478-1488.
12 Xie G, Diehl AM. Evidence for and against epithelial-to-mesenchymal transition in the liver[J]. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol, 2013, 305: G881-G890.
13 Zhang J, Zhang H, Liu J, et al. miR-30 inhibits TGF-β1-induced epithelial-to-mesenchymal transition in hepatocyte by targeting Snail1[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2012, 417: 1100-1105.
14 Rowe RG, Lin Y, Shimizu-Hirota R, et al. Hepatocyte-derived Snail1 propagates liver fibrosis progression[J]. Mol Cell Biol, 2011, 31: 2392-2403.
15 Dave N, Guaita-Esteruelas S, Gutarra S, et al. Functional cooperation between Snail1 and twist in the regulation of ZEB1 expression during epithelial to mesenchymal transition[J]. J Biol Chem, 2011, 286: 12024-12032.
16 Katoh Y, Katoh M. Hedgehog target genes: mechanisms of carcinogenesis induced by aberrant hedgehog signaling activation[J]. Curr Mol Med, 2009, 9: 873-886.
17 黃穎而, 許嘉彬, 安海燕. Notch信號通路對肝纖維化EMT環(huán)節(jié)的影響[J]. 世界華人消化雜志, 2014, 22: 4588-4592.
18 Sahlgren C, Gustafsson MV, Jin S, et al. Notch signaling mediates hypoxia-induced tumor cell migration and invasion[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2008, 105: 6392-6397.
19 Kang M, Choi S, Jeong SJ, et al. Cross-talk between TGF-β1 and EGFR signalling pathways induces TM4SF5 expression and epithelial-mesenchymal transition[J]. Biochem J, 2012, 443: 691-700.
20 Bi WR, Xu GT, Lv LX, et al. The ratio of transforming growth factor-β1/bone morphogenetic protein-7 in the progression of the epithelial-mesenchymal transition contributes to rat liver fibrosis[J]. Genet Mol Res, 2014, 13: 1005-1014.
21 Wen SL, Gao JH, Yang WJ, et al. Celecoxib attenuates hepatic cirrhosis through inhibition of epithelial-to-mesenchymal transition of hepatocytes[J]. J Gastroenterol Hepatol, 2014, 29: 1932-1942.
22 Lee WR, Kim KH, An HJ, et al. Apamin inhibits hepatic fibrosis through suppression of transforming growth factor β1-induced hepatocyte epithelial-mesenchymal transition[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2014, 450: 195-201.
23 Bi WR, Jin CX, Xu GT, et al. Effect of alendronate sodium on the expression of mesenchymal-epithelial transition markers in mice with liver fibrosis[J]. Exp Ther Med, 2013, 5: 247-252.
24 Maun HR, Wen X, Lingel A, et al. Hedgehog pathway antagonist 5E1 binds hedgehog at the pseudo-active site[J]. J Biol Chem, 2010, 285: 26570-26580.
25 Philips GM, Chan IS, Swiderska M, et al. Hedgehog signaling antagonist promotes regression of both liver fibrosis and hepatocellular carcinoma in a murine model of primary liver cancer[J]. PLoS One, 2011, 6: e23943.
26 Brockhausen J, Tay SS, Grzelak CA, et al. miR-181a mediates TGF-beta-induced hepatocyte EMT and is dysregulated in cirrhosis and hepatocellular cancer[J]. Liver Int, 2015, 35: 240-253.
(本文編輯:周駿)
通信作者:劉菲,Email: 13301921052@163.com
DOI:10.3969/j.issn.1673-534X.2016.03.007
(收稿日期:2015-11-03)