国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

脂肪間充質干細胞對肝衰竭治療作用機制的研究進展

2016-04-05 17:30:04張亞東史光軍
山東醫(yī)藥 2016年29期
關鍵詞:充質肝細胞肝功能

張亞東,史光軍

(青島大學附屬青島市市立醫(yī)院,山東青島 266000)

?

脂肪間充質干細胞對肝衰竭治療作用機制的研究進展

張亞東,史光軍

(青島大學附屬青島市市立醫(yī)院,山東青島266000)

脂肪間充質干細胞(ADMSCs)是一類具有多向分化潛能、免疫調控功能和自主更新能力的干細胞。ADMSCs可通過誘導分化為肝樣細胞,參與細胞趨化與黏附、抗纖維化及免疫調節(jié)而發(fā)揮治療肝衰竭的作用。通過搭載目的基因來強化或改善ADMSCs干細胞功能活性的方法對急性肝臟衰竭的保護作用明顯增強,基因水平的實驗研究對進一步發(fā)掘ADMSCs的作用和價值意義重大。

肝功能衰竭;脂肪間充質干細胞;干細胞移植;細胞因子;免疫調節(jié)

肝功能衰竭患者的臨床癥候多險惡,病死率高,預后較差。針對急、慢性肝功能衰竭,目前臨床上多采用人工肝和原位肝臟移植治療,然而由于供體缺乏、移植代價高、術后并發(fā)癥多等問題,使得肝移植在臨床上的應用受到限制[1]。人工肝治療技術雖然可以降低肝衰竭病死率,但并非病因治療,而且有感染的風險,患者最終的恢復效果仍需依賴肝細胞的再生,故臨床效果一般。近年來細胞移植成為眾多學者探尋除肝臟移植外治療終末期肝臟衰竭的方法,脂肪間充質干細胞(ADMSCs)具有強大的免疫調控功能和自主更新能力,不僅取材方便、來源廣泛、免疫原性較低,而且增殖速度快、血清選擇性低。近年研究[2]發(fā)現ADMSCs移植可明顯改善肝衰竭大鼠的肝功能情況,降低病死率,提示其在肝組織再生領域中的巨大潛能。本文就ADMSCs移植技術、治療肝衰竭的分子機制、基因搭載及移植存在的問題進行總結?,F綜述如下。

1 ADMSCs移植技術

ADMSCs最早是由Zuk等[3]從抽脂術中抽取的脂肪組織懸液中分離、培養(yǎng)得到。 Strem等[4]證實ADMSCs具有多向分化的潛能,在體外一定的誘導條件下可以分化為相應的組織細胞。2005年德國學者首次將間充質干細胞用于肝臟疾病治療,并證實間充質干細胞可以促進肝臟再生。Banas等[5]研究發(fā)現,將ADMSCs移植到經CCl4誘導肝損傷的裸鼠體內,裸鼠體內血氨、ALT 、AST水平逐漸降低并趨于正常,表明ADMSCs對受損肝臟具有明顯保護作用。此外,采用PKH26對ADMSCs進行標記(細胞標記率達95%以上),熒光顯微鏡下觀察肝組織冰凍切片,可見散在分布的紅色標記細胞,免疫熒光染色顯示大部分標記細胞白蛋白表達陽性,從而證實由ADMSCs分化的肝樣細胞可以替代凋亡肝細胞,改善肝功能[6]。

ADMSCs移植后表現出的強大生物學功能得益于其高度活躍的代謝能力,不但可以分泌細胞外基質,還可以通過“旁分泌作用”分泌一系列的細胞因子激活內源性干細胞、通過免疫調節(jié)減輕炎癥反應、抑制受損肝細胞凋亡、促進新生血管形成等,從而促進肝臟組織的再生,很多人稱之為“細胞因子工廠”。Ranganath等[7]提出MSCs 轉錄組、分泌組和蛋白質組的概念,并通過研究發(fā)現ADMSCs并非通過直接細胞替代,而是分泌蛋白及細胞因子發(fā)揮組織再生作用。ADMSCs可表達肝細胞生長因子(HGF)、血管上皮生長因子、轉移生長因子、IL-6以及肝細胞特異性基因[8,9],提示ADMSCs移植在肝衰竭治療方面的巨大潛力和研究價值。

2 ADMSCs治療肝衰竭的相關機制

2.1ADMSCs誘導分化為肝樣細胞 ADMSCs在體外經HGF誘導可分化為肝樣細胞,HGF主要由肝臟Kupffer細胞、肝血竇內皮細胞分泌,通過作用于HGF受體c-met,從而啟動下游細胞外調節(jié)蛋白激酶1/2和磷脂酰肌醇-6 激酶(PI3k)/Akt轉錄因子,誘導ADMSCs分化;此外,成纖維細胞生長因子通過激活酪氨酸激酶受體、啟動 PI3K/Akt/PKB信號通路等途徑與HGF相互作用,兩者共同調節(jié)ADMSCs向肝樣細胞的分化。有研究發(fā)現此分化過程可能是通過下調Wnt/β-catenin信號通路來完成的[10]。

2.2細胞趨化與黏附作用 趨化因子基質細胞衍生因子1(SDF-1)與SDF-1受體(CXCR4)分別屬于CXC 類趨化因子和CXCR類G蛋白偶聯受體超家族,SDF-1/CXCR4信號通路參與細胞內信號轉導,影響細胞的趨化、運動、黏附、分泌、血管生成、生長等生物學行為[11]。Jung等[12]將ADMSCs移植到 CCl4誘導的肝損傷模型大鼠體內,發(fā)現模型鼠的肝脾腫大及壞死均得到較大改善,肝功酶學指標降低,流式細胞儀及免疫組織化學法檢測發(fā)現損傷肝組織內CXCR4和SDF-1表達明顯增加,提示細胞趨化與黏附為ADMSCs發(fā)揮生物學作用奠定了重要基礎。

2.3 抗纖維化作用 由肝損傷引發(fā)的進行性加重的肝纖維化是肝臟發(fā)生衰竭的重要原因之一,Philips 等[13]在肝損傷小鼠模型中用GDC-0449抑制hedgehog通路,發(fā)現小鼠肝臟肌成纖維細胞減少,肝纖維程度降低,小鼠病死率降低。此外,有學者將ADMSCs培養(yǎng)液離心并取上清液進行提取濃縮,注入肝衰竭小鼠體內,發(fā)現小鼠體內TGF-β/Smad信號通路被抑制,Ⅰ、Ⅲ型膠原蛋白合成量明顯減少,肝臟纖維化的進展明顯減慢[14]。肝星狀細胞(HSC)與肝纖維化的發(fā)生發(fā)展密切相關[15],研究[16~18]表明ADMSCs可以激活NF-κB途徑和Fas/FasL途徑,誘導HSC凋亡,從而發(fā)揮抗纖維化作用。

2.4 免疫調節(jié)作用 免疫反應在肝細胞壞死過程中扮演重要的角色。ADMSCs可分泌大量細胞因子,抑制免疫細胞增殖、遷移,發(fā)揮抗炎作用[19];此外,ADMSCs還可分泌SDF-1、血管內皮生長因子[20],其培養(yǎng)上清能顯著降低肝衰竭大鼠體內炎性因子水平,抑制巨噬細胞的遷移浸潤[21];Ji等[22]通過提取肝衰竭小鼠肝組織內的 CD4+T細胞,體外與ADMSCs共培養(yǎng),結果顯示CD4+T 細胞分泌IFN-γ和TNF-α的水平明顯下降。Higashimoto等[23]發(fā)現ADMSCs能夠抑制CD4+T細胞和CD11b+髓系細胞TNF-α、CXCL10的分泌,從而發(fā)揮抗炎作用。

3 ADMSCs移植技術新思路-基因搭載

近來有學者將ADMSCs治療肝衰竭的研究領域進一步深化,通過逆轉錄、基因剪接、復合等技術完成對ADMSCs的基因修飾,將IGF-1、HGF、Trx-1基因片段成功導入ADMSCs內,結果顯示ADMSCs移植后對急性肝臟衰竭的保護作用明顯增強[24~26]。Du等[27]在實驗中誘導間充質干細胞的CXCR4高表達,發(fā)現其改善肝功能衰竭的能力得到提高。這種通過搭載目的基因來強化或改善干細胞功能活性的方法為科研工作提供了新思路,基因水平的實驗研究對進一步發(fā)掘ADMSCs作用和價值意義重大。

4 存在的問題

對于ADMSCs的研究目前主要集中在體外培養(yǎng)條件,對于移植入生物體內之后的原位實驗研究仍然較少,各種學說及機制的建立未能在生物體內特定微環(huán)境下得到進一步證實。研究發(fā)現體內ADMSCs表面高表達δ核心蛋白聚糖,但在體外培養(yǎng)條件下,ADMSCs表面并未見δ核心蛋白聚糖表達,提示體外實驗結果與體內情況存在一定的差異;抑制趨化因子受體CXCR4/CXCL12,雖對肝細胞再生有利,但可能有引發(fā)細胞癌變等風險[28],鑒于其療效和安全性,還需要多環(huán)節(jié)、大樣本的臨床研究來進一步驗證。

5 總結與展望

肝細胞壞死和肝功能衰竭是目前臨床工作和基礎研究中面臨的難點問題,ADMSCs以其獨特的優(yōu)勢,在肝衰竭治療領域具有良好的應用前景。我們有理由設想,運用基因重組等技術,敲除在肝細胞壞死凋亡過程中起關鍵作用的基因位點,搭載有利于肝臟再生的基因片段,從而更好地發(fā)揮ADMSCs的免疫調節(jié)作用;又如是否能通過基因靶向技術在基因水平調節(jié)ADMSCs向肝細胞的分化,這些設想的合理性和可行性均需要通過大量的實驗來進一步驗證。

[1] Dhawan A, Puppi J, Hughes RD, et al. Human hepatocyte transplantation: current experience and future challenges[J]. Nat Rev Gastroenterol Hepatol, 2010,7(5):288-298.

[2] Kubo N, Narumi S, Kijima H, et al. Efficacy of adipose tissue-derived mesenchymal stem cells for fulminant hepatitis in mice induced by concanavalin A[J]. J Gastroenterol Hepatol, 2012,27(1):165-172.

[3] Zuk PA, Zhu M, Mizuno H, et al. Multipotent cells from human adipose tissue implications for cell-based therapies[J]. Tissue Eng, 2001,7(2):211-228.

[4] Strem BM, Hicok KC, Zhu M, et al. Multipotential differentiation of adipose tissue-derived stem cells[J]. Keio J Med, 2005,54(3):132-141.

[5] Banas A, Teratani T, Yamamoto Y, et al. Rapid hepatic fate specification of adipose-derived stem cells and their therapeutic potential for liver failure[J]. J Gastroenterol Hepatol, 2009,24(1):70-77.

[6] Liang L, Ma T, Chen W, et al. Therapeutic potential and related signal pathway of adipose-derived stem cell transplantation for rat liver injury[J]. Hepatol Res, 2009,39(8):822-832.

[7] Ranganath SH, Oren L, Inamdar MS, et al. Harnessing the mesenchymal stem cell secretome for the treatment of cardiovascular disease[J]. Cell Stem Cell, 2012,10(3):244-258.

[8] Nakanishi C, Nagaya N, Ohnishi S, et al. Gene and protein expression analysis of mesenchymalstem cells derived from rat adipose tissue and bone marrow[J]. Circ J, 2011,75(9):2260-2268.

[9] Zemel R, Bachmetov L, Ad-El D, et al. Expression of liver-specific markers in naive adipose-derived mesenchymal stem cells[J]. Liver Int, 2009,29(9):1326-1337.

[10] 平鍵,陳紅云,周揚,等. 一貫煎誘導骨髓間充質干細胞分化為肝細胞樣細胞的實驗研究[J].中國中西醫(yī)結合雜志,2014,34(3):348-354.

[11] 楊志峰,楊清玲,陳昌杰.趨化因子SDF-1與受體CXCR4的研究進展[J].分子診斷與治療雜志,2011,3(1):58-61.

[12] Jung YJ, Ryu KH, Cho SJ, et al. Syngenic bone marrow cells restore hepatic function in carbon tetrachloride-induced mouse liver injury[J]. Stem Cells Dev, 2006,15(5):687-695.

[13] Philips GM, Chan IS, Swiderska M, et al. Hedgehog signaling antagonist promotes regression of both liver fibrosis and hepatocellular carcinoma in a murine model of primary liver cancer[J]. PLoS One, 2011,6(9):e23943.

[14] Li T, Yan Y, Wang B, et al. Exosomes derived from human umbilical cord mesenchmal stem cells alleviate liver fibrosis[J]. Stem Cells Dev, 2013,22(6):845-854.

[15] Zheng L, Chu J, Shi Y, et al. Bone marrow-derived stem cells ameliorate hepatic fibrosis by down-regulating interleukin-17[J]. Cell Biosci, 2013,3(1):46.

[16] Parekkadan B, van Poll D, Megeed Z, et al. Immunomodulation of activated hepatic stellate cells bymesenchymal stem cells[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2007,363(2):247-252.

[17] Lin N, Hu K, Chen S, et al. Nerve growth factor-mediated paracrine regulation of hepatic stellate cells by multipotentmesenchymal stromal cells[J]. Life Sci, 2009,85(7-8):291-295.

[18] Akiyama K, Chen C, Wang D, et al. Mesenchymal-stem-cell-induced immunoregulation involves FAS-ligand-/FAS-mediated T cell apoptosis[J]. Cell Stem Cell, 2012,10(5):544-555.

[19] Parekkadan B, van Poll D, Suganuma K, et al. Mesenchymal stem cell-derived molecules reverse fulminant hepatic failure[J]. PLoS One, 2007,2(9):e941.

[20] van Poll D, Parekkadan B, Cho CH, et al. Mesenchymal stem cell-derived molecules directly modulate hepatocellular death and regeneration in vitro and in vivo[J]. Hepatology, 2008,47(5):1634-1643.

[21] Gu Z, Akiyama K, Ma X, et al. Transplantation of umbilical cord mesenchymal stem cells alleviates lupus nephritis in MRL/lpr mice[J]. Lupus, 2010,19(13):1502-1514.

[22] Ji S, Guo Q, Han Y, et al. Mesenchymal stem cell transplantation inhibits abnormal activation of Akt/GSK3β signaling pathway in T cells from systemic lupuserythematosus mice[J]. Cell Physiol Biochem, 2012,29(5-6):705-712.

[23] Higashimoto M, Sakai Y, Takamura M, et al. Adipose tissue derived stromal stem cell therapy inmurine ConA-derived hepatitis is dependent on myyeloid-lineage and CD4+T-cell supression[J]. Eur J Immunol, 2013,43(11):2956-2968.

[24] Fiore EJ, Bayo JM, Garcia MG, et al. Mesenchymal stromal cells engineered to produce igf-I by recombinant adenovirus ameliorate liver fibrosis in mice[J]. Stem Cells Dev, 2015,24(6):791-801.

[25] Seo KW, Sohn SY, Bhang DH, et al. Therapeutic effects of hepatocyte growth factor-overexpressing human umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells on liver fibrosis in rats[J]. Cell Biol Int, 2014,38(1):106-116.

[26] Hu J, Yang Z, Wang J, et al. Infusion of trx-1-overexpressing hucMSC prolongs the survival of acutely irradiated NOD/SCID mice by decreasing excessive inflammatory injury[J]. PLoS One, 2013,8(11):e78227.

[27] Du Z, Wei C, Yan J, et al. Mesenchymal stem cells overexpressing C-X-C chemokine receptor type 4 improve early liver regeneration of small-for-size liver grafts[J]. Liver Transpl, 2013,19(2):215-225.

[28] Ghanem I, Riveiro ME, Paradis V, et al. Insights on the CXCL12-CXCR4 axis in hepatocellular carcinoma carcinogenesis[J]. Am J Transl Res, 2014,6(4):340-352.

史光軍(E-mail:sgjzp@hotmail.com)

10.3969/j.issn.1002-266X.2016.29.037

R575.3

A

1002-266X(2016)29-0102-03

2016-03-05)

猜你喜歡
充質肝細胞肝功能
重視肝功能正常的慢性HBV感染者
肝博士(2024年1期)2024-03-12 08:38:08
肝功能報告單解讀
肝博士(2022年3期)2022-06-30 02:48:58
外泌體miRNA在肝細胞癌中的研究進展
miR-490-3p調控SW1990胰腺癌細胞上皮間充質轉化
間充質干細胞外泌體在口腔組織再生中的研究進展
間充質干細胞治療老年衰弱研究進展
三七總皂苷對A549細胞上皮-間充質轉化的影響
肝細胞程序性壞死的研究進展
肝細胞癌診斷中CT灌注成像的應用探析
拉米夫定在乳腺癌化療期間對肝功能的作用
衡南县| 双鸭山市| 鄢陵县| 宜阳县| 福安市| 特克斯县| 道孚县| 河西区| 远安县| 正宁县| 尼勒克县| 浑源县| 绥中县| 揭阳市| 措美县| 青龙| 民和| 汤原县| 巴南区| 和田县| 梁河县| 岐山县| 临武县| 恩施市| 上虞市| 台东县| 万盛区| 绵阳市| 临安市| 乌兰县| 时尚| 监利县| 塔河县| 色达县| 依兰县| 龙陵县| 鄱阳县| 仪陇县| 临沧市| 平山县| 霍城县|