牛 露 尹 華 鄭 猛 甘麥鄰 陳傲東 劉晨黎 陳道富 高 巍

(石河子大學動物科技學院，石河子832003)

?

飼糧不同粗蛋白質水平對育肥羔羊小腸氨基酸流量及吸收率的影響

牛 露 尹 華 鄭 猛 甘麥鄰 陳傲東 劉晨黎 陳道富 高 巍*

(石河子大學動物科技學院，石河子832003)

本研究旨在比較飼糧不同粗蛋白質(CP)水平對育肥羔羊小腸氨基酸(AA)流量及吸收率的影響。選用體重(30.0±3.7) kg，安裝有瘤胃、十二指腸近端和回腸末端瘺管的3只哈薩克羊公羔為試驗動物，采用3×3拉丁方試驗設計，各處理飼糧CP水平分別為11.00%、12.00%和13.00%；預試期10d，正試期10d。采用鐿錒(Yb-Ac)、鋰鉻乙二胺四乙酸(LiCr-EDTA)分別作為消化道固相和液相食糜標記物測定小腸食糜流量。結果表明：提高飼糧CP水平可增加羔羊氮進食量、表觀消化率和氮沉積，13.00%CP處理顯著高于11.00%CP處理(P<0.05)，并有增加飼糧干物質(DM)、有機物(OM)和中性洗滌纖維(NDF)表觀消化率的趨勢(0.05≤P<0.10)，但不影響酸性洗滌纖維(ADF)的表觀消化率(P>0.05)。提高飼糧CP水平雖然對小腸真食糜流量及氨基酸吸收率無顯著性影響(P>0.05)，但十二指腸氮、總氨基酸(TAA)流量以及必需氨基酸(EAA)中精氨酸(Arg)、組氨酸(His)和賴氨酸(Lys)的吸收率在數值上有所增加。結果顯示，提高飼糧CP水平有提高消化率、小腸食糜流量及氨基酸吸收率的潛在趨勢。

瘤胃降解蛋白質；氨基酸；流量；吸收率；哈薩克羊

農作物秸稈和棉籽殼等農副產物是新疆農區(qū)肉牛肉羊養(yǎng)殖中應用最普遍的粗飼料種類。由于品質差，粗蛋白質(CP)含量極低，為達到一定的生產性能，對精飼料特別是蛋白質補充料的依賴性很大。許多研究表明，如果精飼料中非纖維碳水化合物(NFC)含量過多，雖然可提高牛[1-2]或羊[3]的有機物(OM)的采食量，但粗飼料的采食量和纖維的消化率往往被抑制。如能補飼適宜水平的瘤胃降解蛋白質(RDP)將會促進瘤胃微生物生長與活性，提高粗飼料的采食量和消化率[4]。此外，體外研究表明，氨基酸(AA)[5]或小肽[6]也能刺激瘤胃微生物的生長與活性。雖然大部分游離AA被瘤胃微生物發(fā)酵生成氨和揮發(fā)性脂肪酸，精飼料中添加水溶性真蛋白質飼料可顯著提高小腸AA和小肽的流量[7]。據此分析，在以農副產物為粗飼料的飼養(yǎng)條件下，要達到預期的生產性能，不僅飼糧CP要滿足需要量，而且要求CP中RDP與瘤胃非降解蛋白質(RUP)的比例(RDP∶RUP)要適宜，才能確保瘤胃微生物的生長與活性，促進采食與消化，增加小腸養(yǎng)分的供應量，提高養(yǎng)分的利用效率。但目前人們對該飼養(yǎng)條件下飼糧中適宜RDP∶RUP知之甚少。

為此，本研究以安裝有瘤胃、十二指腸近端和回腸末端瘺管的哈薩克羊公羔為試驗動物，采用雙標記物法測定消化道食糜流量技術，比較研究了育肥羔羊在以小麥秸和棉籽殼為粗飼料的飼糧中不同CP水平對小腸AA流量及吸收率的影響，為今后進一步研究小腸限制性AA順序以及建立小腸理想AA模式提供試驗依據和研究基礎。

1 材料與方法

1.1 試驗動物與飼糧

選取體重(30.0±3.7) kg的哈薩克羊公羔3只作為試驗動物，手術安裝永久性瘤胃瘺管、十二指腸近端瘺管和回腸末端瘺管，代謝籠內單籠飼養(yǎng)。按NRC(2003)推薦采食量和營養(yǎng)需要量配制試驗飼糧，全混合日糧(TMR)1、2、3CP水平分別為11.00%、12.00%和13.00%，其余營養(yǎng)水平基本一致。每天等量飼喂2次，自由飲水。每天自由采食量為1200～1300g。試驗飼糧組成及營養(yǎng)水平見表1。

表1 試驗飼糧組成及營養(yǎng)水平(風干基礎)Table 1 Composition and nutrient levels of experimental diets (air-dry basis) %

1.2 試驗處理

采用3×3拉丁方試驗設計。各處理分別飼喂3種不同CP水平的飼糧；每期預試期10d，使羊只適應試驗飼糧，正試期10d。每天準確記錄試驗羊的采食量。

1.3 食糜標記物溶液的配制與灌注

按Udén等[8]的方法制備鋰鉻乙二胺四乙酸(LiCr-EDTA)結晶鹽，溶解于蒸餾水中，實測溶液中鉻(Cr)元素的濃度為3780.22mg/L。分4次由瘤胃瘺管灌注，每次15mL，連續(xù)灌注8d。配制好的鐿錒(Yb-Ac)水溶液中實測鐿(Yb)元素的濃度為560.10mg/L，灌注方法同前，灌注時間比Cr延后15min左右，避免相互干擾。每日灌注時間點08:00、14:00、20:00、02:00。連續(xù)灌注4～5d后可達到平衡狀態(tài)[9]。從灌注的第5天開始采集瘤胃、十二指腸和回腸食糜樣品。

1.4 樣品采集方案

正試期的第5天開始采集小腸食糜。每天采樣4次，連續(xù)采集3d。第5天的采樣時間點08:00、14:00、20:00、02:00；第6天的采樣時間點06:00、12:00、18:00、24:00；第7天的采樣時間點04:00、10:00、16:00、22:00。每隔6h采集瘤胃食糜50mL，十二指腸食糜30mL，回腸食糜15mL。將3d內不同時間點采集到的十二指腸和回腸食糜樣本等份量混合制成混合樣本。放置于磁力攪拌器(WH220，Wiggens,德國)上攪拌約3min，待食糜充分混勻后，邊攪拌邊用自制的前端挖孔的塑料注射器進行取樣。一份食糜樣品放入已稱重的小燒杯中稱重，記錄食糜濕重，60℃烘干后細粉碎，用于測定食糜中2種元素及AA的含量；另取一份食糜樣品放入離心管中，5000r/min離心10min，取上清液或沉淀置于三角瓶稱重，用于測定2種元素及AA的含量；其余樣品60℃烘干后細粉碎，用于測定食糜干物質(DM)及氮含量。第8～10天進行全收糞和全收尿的消化代謝試驗。每天取10%有代表性的糞樣和尿樣，于-20℃冰柜中冷凍保存。

1.5 測定分析

DM、CP、OM含量的分析按張麗英[10]的方法進行。中性洗滌纖維(NDF)和酸性洗滌纖維(ADF)的含量按Van Soest等[11]的方案進行測定，不添加亞硫酸鈉，按每克樣品添加20μL熱穩(wěn)定性α-淀粉酶(A3306,Sigma，美國)于中性洗滌液中。小腸食糜的AA含量采用AA分析儀(S433D，Sykam，德國)按國家標準(GB/T 18246)方法進行分析。小腸食糜分別進行酸水解[用于測定除蛋氨酸(Met)、半胱氨酸(Cys)和色氨酸(Trp)以外的其他AA]和過甲酸氧化水解[用于測定Met和Cys]。樣品中Cr、Yb元素的濃度按電感耦合等離子體原子發(fā)射光譜法通則(JY/T 015—1996)用VISTA-MPX電感耦合等離子體原子發(fā)射光譜儀(Varin,美國)進行測定分析。

1.6 食糜流量及AA吸收率計算

與單胃動物相比，采用體內法測定小腸食糜流量時，由于反芻動物消化生理的特殊性，小腸食糜特別是十二指腸食糜通常呈現為非均質狀態(tài)，表現出明顯的大或中食糜顆粒(固相)和液態(tài)食糜(含細小食糜顆粒，液相)的雙相或多相特征。當利用安裝有“T”型小腸瘺管的反芻動物通過點采樣來測定食糜流量時，如采用單標記物[如三氧化二鉻(Cr2O3)]作為食糜標記物，測得的食糜流量不準確。這主要是由于點采樣難以采集到有代表性的食糜樣品以及Cr2O3不能在固相和液相食糜中均勻分布造成的。為此，本試驗采用Yb-Ac和Cr-LiEDTA分別作為食糜固相和液相標記物，由瘤胃瘺管連續(xù)灌注，對育肥羔羊在每日等量飼喂2次的飼養(yǎng)條件下小腸食糜流量及AA吸收率進行了測定，并對3種不同CP水平飼糧對小腸AA的流量及吸收率的影響進行了比較分析。

食糜流量計算按Faichney[12]建立的非代表性食糜樣品重組法進行。連續(xù)灌注標記物，使標記物在小腸內的流量達到穩(wěn)衡狀態(tài)，從瘺管中采集食糜樣品，離心分離固液相。計算公式如下：

RT=(CYb,X/IYb-CCr,X/ICr)/CCr,T/ICr-CYb,T/IYb;

CCr,D=(CCr,X+RTCCr,T)/(1+RT);

CYb,D=(CYb,X+RTCYb,T)/(1+RT);

FD=ICr/CCr,D=IYb/CYb,D;

CAA,D=(CAA,X+RTCAA,T)/(1+RT);

FAA=CAA,D×FD;

AAA=100×(十二指腸AA流量-回腸AA流量)/十二指腸AA流量。

式中：RT為重組因子(流通常數)；ICr和IYb分別為標記物Cr和Yb的灌注速率(mg/d)；CCr,D和CYb,D分別為真食糜(D)中Cr和Yb的濃度(mg/g)；CCr,X和CYb,X分別為非代表性食糜樣品(X)中Cr和Yb的濃度(mg/g)；CCr,T和CYb,T分別為食糜上清液(T)中Cr和Yb的濃度(mg/g)；FD為真食糜流量(鮮重)(g/d)；CAA,D、CAA,X、CAA,T分別為真食糜、非代表食糜和食糜上清液中AA的含量(mg/g，鮮重基礎)；FAA為總氨基酸(TAA)(g/d)；AAA為AA吸收率(%)。

1.7 統(tǒng)計分析

采用GLM模塊按如下模型對飼糧處理、動物效應對小腸AA流量及吸收率測定結果的效應進行統(tǒng)計檢驗：

Yijk=μ+Ti+Aj+TAij+eijk[13]。

式中：Yijk為小腸食糜AA的流量或吸收率；μ為總體平均值；Ti為飼糧處理效應；Aj為動物效應；TAij為飼糧與動物間的互作效應；eijk為殘差，且假設符合正態(tài)及獨立分布。運用TSR對各處理平均值的顯著性差異進行多重比較，P<0.05為差異顯著，0.05≤P<0.10可看作趨勢。

2 結果與分析

2.1 飼糧不同CP水平對進食量、表觀消化率及氮平衡的影響

由表2可知，飼糧CP水平的提高可增加羔羊對氮表觀消化率和氮沉積，TMR3顯著高于TMR1(P<0.05)，并有提高飼糧DM、OM和NDF表觀消化率的趨勢(0.05≤P<0.10)，但對ADF表觀消化率無影響(P>0.05)。

表2 飼糧不同CP水平對羔羊進食量、表觀消化率及氮平衡的影響Table 2 Effects of different dietary CP levels on intake, apparent digestibility and N balance of lambs

2.2 飼糧不同CP水平對小腸真食糜流量的影響

由表3可知，飼糧CP水平的提高對十二指腸和回腸真食糜流量(鮮重)無顯著影響(P>0.05)，3個處理的平均值分別為9479和1711g/d。3個處理的十二指腸和回腸DM流量平均值分別為723和181g/d。TMR1和TMR3十二指腸氮流量均大于氮進食量，而TMR3十二指腸食糜TAA流量在數值上大于其他2種飼糧，差異不顯著(P>0.05)。

表3 飼糧不同CP水平對羔羊小腸食糜DM、氮及TAA流量的影響Table 3 Effects of different dietary CP levels on small intestinal chyme DM, N and TAA flows of lambs g/d

2.3 飼糧不同CP水平對小腸AA流量的影響

由表4可知，隨飼糧中CP水平的升高，雖然十二指腸AA流量在各處理間無顯著性差異(P>0.05)，但必需氨基酸(EAA)中精氨酸(Arg)、異亮氨酸(Ile)、組氨酸(His)、纈氨酸(Val)、蘇氨酸(Thr)、亮氨酸(Leu)與賴氨酸(Lys)的流量增加幅度明顯。

表4 飼糧不同CP水平對羔羊十二指腸氨基酸流量Table 4 Effects of different dietary CP levels on duodenal flows of AA of lambs g/d

由表5可知，單個AA的回腸流量在3個處理間的差異不顯著(P>0.05)，除個別AA(Arg和His)的流量TMR2較低外，其他AA的回腸流量TMR2在數值上均高于其他2個處理。

表5 飼糧不同CP水平對羔羊回腸AA流量的影響Table 5 Effects of different dietary CP levels on ileal flows of AA of lambs g/d

2.4 飼糧不同CP水平對小腸AA吸收率的影響

由表6可知，飼糧CP水平對小腸AA吸收率無顯著影響(P>0.05)?？傮w上，TMR2的AA吸收率偏低，而TMR3的AA吸收率普遍較高，而且TAA的吸收率也是最高的。

表6 飼糧不同CP水平對羔羊小腸AA吸收率的影響Table 6 Effects of different dietary CP levels on small intestinal absorption rate of AA of lambs %

3 討 論

3.1 飼糧不同CP水平對采食量、表觀消化率及氮平衡的影響

干物質進食量(DMI)決定著維持羔羊健康和生產所需養(yǎng)分的數量，受飼糧水分和NDF含量及其精粗比的影響。飼糧的CP水平的高低決定可利用能量的高低，而可利用能量的高低直接影響小腸AA的吸收。但是飼糧的不同CP水平對采食量、表觀消化率及氮平衡的是否有影響，不同學者的研究結果不同。Hentz等[14]采用與本研究近似體重的試驗羊，代謝籠內進行的消化代謝試驗結果表明，在自由采食蘇丹草的條件下，補飼不同水平的坎諾拉菜籽粕，氮進食量不影響DM、OM、NDF或ADF的表觀消化率，但是，氮進食量、氮表觀消化率、糞氮和尿氮排出量以及氮沉積等均隨補飼水平的增加而線性升高。馬濤等[15]采用杜×寒雜交綿羊公羊作為試驗羊，飼喂12種不同精粗比的全混合顆粒飼料，尿氮排出量和氮沉積均隨飼糧精飼料比例的升高而顯著升高。梁賢威等[16]則報道，隨飼糧精飼料比例升高，尿氮和糞氮排出量均下降。本試驗的結果表明，提高飼糧CP水平可顯著增加羔羊對氮的表觀消化率和氮沉積，這與以上結果一致。原因可能是隨著飼糧中精飼料比例的增加，瘤胃食糜外流速度增加。一般認為，纖維的消化率與飼糧酸性洗滌木質素(ADL)含量及瘤胃食糜外流速度負相關。本試驗雖未分析飼糧中ADL的含量，但3種飼糧的NDF含量比較接近，而ADF的含量略有差異。

3.2 飼糧不同CP水平對小腸真食糜流量的影響

張乃峰等[9]應用Cr2O3和聚乙二醇4000(PEG-4000)分別作為固相和液相食糜標記物，試驗羊的體重(35kg)和DMI(1100g)與本試驗接近，測定的十二指腸、回腸真食糜流量平均值分別為10.1和5.6L/d。十二指腸真食糜流量與本試驗非常接近，但回腸真食糜流量相差較大。造成此差異的原因不清，是否與飼喂頻率有關還有待進一步試驗證實。該試驗采用的飼喂方式是自動飼喂器連續(xù)飼喂，每隔1h飼喂1次，而本試驗是采用每日等量飼喂2次的方式。

Hentz等[14]試驗發(fā)現，隨著菜籽粕補飼量的加大，十二指腸食糜OM、氮、α-氨基-氮(α-amino-N)、氨態(tài)氮以及非氨非微生物氮(NANMN)的流量均線性增加，但微生物氮流量、瘤胃OM真消化率以及微生物蛋白質(MCP)合成效率均不受影響。RDP轉化為微生物氮的利用效率線性降低。說明雖然瘤胃內可利用氮的量增多了，但精飼料比例增加又加快了瘤胃食糜外流速度，造成食糜中來自于RUP的α-氨基-氮的比例相應增加了。上述分析或許可以解釋本研究中十二指腸TAA流量數值上增加的結果。

Oosting等[17]試驗采用4只體重為60kg的安裝有瘤胃、十二指腸和回腸瘺管的美利奴羊作為試驗動物，分別飼喂不同水平二氧化硫處理小麥秸和大麥的混合飼糧，按4×4拉丁方試驗設計進行消化代謝試驗，氮進食量(18.0g/d)與本研究的TMR1(19.0g/d)非常接近。結果表明，飼喂100%小麥秸飼糧條件下綿羊瘤胃氮的轉化效率最高，十二指腸氮流量隨飼糧中小麥秸比例的減少而降低(22.4g/d vs. 18.0g/d)，但不影響小腸氮的吸收量，各處理羊的小腸氮吸收量介于13.6～14.6g/d之間。此結果與本試驗結果不一致。本試驗測定的3種飼糧的十二指腸氮流量雖然與該結果非常接近，隨精飼料比例的增高，十二指腸氮流量也相應增大(19.4～25.4g/d)，TAA的流量也呈現一致升高的趨勢。小腸氮的吸收量(19.88～22.42g/d)明顯高于該試驗的報道值。進一步分析該試驗飼糧可以看出，雖然各處理飼糧的氮含量為2%，但小麥秸的氮含量是通過添加NPN來達到2%，與大麥的氮含量持平。而大麥的CP中RDP約占80%，由此推測，飼糧中RDP和NFC的供給量可能偏高，隨著大麥比例(30%、70%和100%)的增加，瘤胃液氨態(tài)氮的含量逐步升高，微生物發(fā)酵可能會因為瘤胃液pH降低而受到抑制，導致十二指腸非氨態(tài)氮的流量線性降低。本試驗未進行瘤胃至十二指腸食糜中各種氮組分(氨態(tài)氮、微生物氮、非氨態(tài)氮非微生物氮)的流量的測定，下一步試驗再深入分析增加飼糧CP水平對微生物氮的合成效率的影響。

3.3 飼糧不同CP水平對小腸AA流量的影響

梁賢威等[16]研究表明，不同碳源(玉米vs.大麥)和氮源(豆粕vs.魚粉)組合處理對小腸AA的吸收量的影響也無顯著性差異，但若將吸收量表示為進入十二指腸AA流量的百分比時，大麥-魚粉組合飼糧組的AA吸收率顯著高于其他組合處理。據Hussein等[18]報道，堿化處理小麥秸基礎飼糧中補充不同混合比例的玉米蛋白粉和血粉蛋白質補充料(飼糧CP 12.9%DM)，對綿羊小腸TAA流量無顯著性影響，但隨血粉替代玉米蛋白粉比例的增大，Val、His、Lys和Arg的流量顯著增加，而Ile、Leu和Met的流量顯著降低，Thr和苯丙氨酸(Phe)的流量不變。在只補充豆粕的情況下，十二指腸食糜中微生物氮的流量增加，而飼料及內源AA流量降低。上述結果提示，改變飼糧中RDP的水平，即使不影響十二指腸TAA的流量，但可改變AA的比例。十二指腸食糜中His和Lys流量增加，對于促進羔羊的生長育肥來說非常重要。因為瘤胃MCP中的Lys、Met和His相對于生長的需要量是限制性作用最大的AA。

本試驗測定的十二指腸EAA(Trp除外)流量的平均值(27.08g/d)，與王洪榮等[19]報道值(31.13g/d)非常接近。單個EAA流量測定值中，Met的流量比較接近，His和Thr的流量高于該報道的值，而其他AA和TAA的流量均低于其報道值。本試驗測定的TAA流量明顯低于一些報道的數值，這可能與不同的試驗條件及測定方法有關，如Hussein等[18]、王洪榮等[19]的試驗均采用單一Cr2O3作為食糜標記物。

3.4 飼糧不同CP水平對小腸AA吸收率的影響

一些研究發(fā)現，隨飼糧中血粉替代CGM比例的增加，Val、His和Lys的小腸吸收量增大，而Met、Ile和Leu的吸收量減小，說明改變飼糧RDP:RUP能夠影響小腸中一些重要AA的吸收，這有可能與小腸中AA的平衡性得到改善有關。這或許也是生產上閹牛和羔羊在以農作物秸稈為基礎飼糧條件下，補飼混合蛋白質飼料的增重速度和飼料轉化效率要優(yōu)于單獨補飼尿素或大豆粕的原因。

本試驗中，小腸TAA吸收率平均值(79.0%)略低于氮的吸收率平均值，且低于黃現青等[20]的報道值(82%)。Oosting等[17]用體內法測得的飼喂小麥秸與大麥混合飼糧的美利奴羊小腸AA的吸收量為70.1～72.6g/d，高于飼喂100%小麥秸飼糧的綿羊的吸收量(60.9g/d)。大麥不僅能夠提供豐富的可發(fā)酵OM，而且大麥的蛋白質中RDP的比例高達80%。由此可以看出，補飼大麥明顯增加了瘤胃MCP的合成量，從而增加了十二指腸AA的供應量。這是因為當農作物秸稈在飼糧中比例較高的情況下，瘤胃內MCP合成效率較低，秸稈自身可能因小腸消化率低所能提供的AA量也不足。

單個AA小腸吸收率比較發(fā)現，Glu的小腸吸收率在3種TMR中均最高，而Ile、Cys和脯氨酸(Pro)的吸收率較低，其余大部分AA的吸收率介于黃現青等[20]報道的吸收率范圍之內(40.69% ～92.67%)。劉志友等[21]對敖漢細毛羊小腸AA吸收率的測定發(fā)現，Cys、Val和Pro的吸收率均較低。本研究測定的AA在綿羊小腸吸收率與NRC公布的數據相近，但His的吸收率平均值(85.7%)明顯高于報道值(70%和58%)。

4 結 論

① 提高飼糧CP水平可顯著增加羔羊氮進食量、表觀消化率和氮沉積，并有增加飼糧DM、OM和NDF表觀消化率的趨勢，但不影響ADF表觀消化率。

② 提高飼糧CP水平雖然對小腸真食糜流量及AA吸收率無顯著性影響，但十二指腸氮、TAA流量以及EAA中Arg、His和Lys的吸收率在數值上有所增加。

致謝：

對試驗過程中給予幫助和支持的新疆農業(yè)大學動物科技學院的李海英、李鳳鳴和李昊老師表示誠摯的謝意。

[1] 王永新,莫放,董寬虎,等.肉?；旌先占Z不同進食水平對尿中嘌呤衍生物排出量的影響[J].中國農學通報,2008,24(12):11-15.

[2] 楊膺白,梁賢威,郭輝,等.山羊尿中嘌呤衍生物排出規(guī)律的研究[J].黑龍江畜牧獸醫(yī),2011(1):64-66.

[3] KOZLOSKI G V,NETTO D P,SANCHEZ L M B,et al.Nutritional value of diets based on a low-quality grass hay supplemented or not with urea and levels of cassava meal[J].African Journal of Agricultural Research,2006,1(3):38-46.

[4] GALVANI D B,PIRES C C,KOZLOSKI G V,et al.Protein requirements of Texel crossbred lambs[J].Small Ruminant Research,2009,81(1):55-62.

[5] VAN KESSEL J S,RUSSELL J S.The effect of amino nitrogen on the energetics of ruminal bacteria and its impact on energy spilling[J].Journal of Dairy Science,1996,79(7):1237-1243.

[6] ESCHENLAUER S C P,MCKAIN N,WALKER N D,et al.Ammonia production by ruminal microorganisms and enumeration,isolation,and characterization of bacteria capable of growth on peptides and amino acids from the sheep rumen[J].Applied and Environmental Microbiology,2002,68(10):4925-4931.

[7] VOLDEN H,MYDLAND L T,OLAISEN V.Apparent ruminal degradation and rumen escape of soluble nitrogen fractions in grass and grass silage administered intraruminally to lactating dairy cows[J].Journal of Animal Science,2002,80(10):2704-2716.

[8] UDéN P,COLUCCI P E,VAN SOEST P J.Investigation of chromium,cerium and cobalt as markers in digesta.Rate of passage studies[J].Journal of the Science of Food and Agriculture,1980,31(7):625-632.

[9] 張乃峰,王中華,李福昌,等.非同位素雙標記法測定十二指腸、回腸食糜流量方法的研究[J].畜牧獸醫(yī)學報,2005,36(3):225-229.

[10] 張麗英.飼料分析及飼料質量檢測技術[M].3版.北京:中國農業(yè)大學出版社,2010.

[11] VAN SOEST P J,ROBERTSON J B,LEWIS B A.Methods for dietary fiber,neutral detergent fiber,and nonstarch polysaccharides in relation to animal nutrition[J].Journal of Dairy Science,1991,74(10):3583-3597.

[12] FAICHNEY G J.The use of markers to partition digestion within the gastro-intestinal tract of ruminants[C]//MCDONALD I W,WARNER A C I.Digestion and metabolism in the ruminant.Armidale:University of New England,1975:277-291.

[13] SAS Institute Inc.SAS/STAT user’s guide:version 9.1[M].Cary：SAS Instute Inc.,2003.

[14] HENTZ F,KOZLOSKI G V,ORLANDI T,et al.Intake and digestion by wethers fed a tropical grass-based diet supplemented with increasing levels of canola meal[J].Livestock Science,2012,147(1/2/3):89-95.

[15] 馬濤,刁其玉,鄧凱東,等.日糧不同精粗比對肉羊氮沉積和尿嘌呤衍生物排出量的影響[J].中國畜牧雜志,2012,48(15):29-33.

[16] 梁賢威,白劍飛,李麗莉,等.不同精粗比日糧對青年母水牛尿中嘌呤衍生物排出規(guī)律的影響[J].畜牧與獸醫(yī),2008,40(12):6-10.

[17] OOSTING S J,VAN BRUCHEM J,CHEN X B.Intake,digestion and small intestinal protein availability in sheep in relation to ammoniation of wheat straw with or without protein supplementation [J].British Journal of Nutrition,1995,74(3):347-368.

[18] HUSSEIN H S,JORDAN R M,STERN M D.Ruminal protein metabolism and intestinal amino acid utilization as affected by dietary protein and carbohydrate sources in sheep[J].Journal of Animal Science,1991,69(5):2134-2146.

[19] 王洪榮,盧德勛,張海鷹,等.氨基酸在綿羊小腸內消化率的研究[J].內蒙古畜牧科學,1998(2):18-21,33.

[20] 黃現青,雒秋江,陳勇,等.綿羊對不同蛋白水平日糧的消化與吸收[J].草食家畜,2004(3):46-53.

[21] 劉志友,孫海洲,李志明,等.敖漢細毛羊小腸氨基酸流量和消化率的研究[J].飼料工業(yè),2009,30(1):30-33.

(責任編輯 王智航)

Effects of Different Dietary Crude Protein Levels on Amino Acid Flows and Absorbability in Small Intestine of Growing Lambs

NIU Lu YIN Hua ZHENG Meng GAN Mailin CHEN Aodong LIU Chenli CHEN Daofu GAO Wei*

(CollegeofAnimalScience&Technology,ShiheziUniversity,Shihezi832003,China)

This experiment was conducted to compare the effects of different dietary crude protein (CP) levels on amino acid (AA) flows and absorbability in small intestine of growing lambs. Three Kazakh male lambs [(30.0±3.7) kg of body weight] fitted with permanent ruminal, duodenal and ileal fistulas were selected. A 3×3Latin square design was adopted. Dietary CP levels of different treatments were 11.00%, 12.00% and 13.00%, respectively; the pretest lasted for 10days, and the test lasted for 10days. A dual-phase marker system with lithium-chromium ethylenediamine tetra-acetate (LiCr-EDTA) and ytterbium-actinium (Yb-Ac) as liquid-phase and particulate-phase digesta flow makers was adopted to measure small intestinal digesta flows, respectively. The results showed as follows: the intake, apparent digestibility and retention of nitrogen were increased with increasing level of dietary CP, and 13% treatment was significantly higher than 11% treatment (P<0.05); in addition, there were increasing trends of apparent digestibility of dry matter, organic matter and neutral detergent fiber (0.05≤P<0.1), but no significant effects on apparent digestibility of acidic detergent fiber was found (P>0.05). Although intestinal true digesta flows and amino acid absorbability were not significantly affected by the increasing dietary CP level (P>0.05), but the flows of nitrogen and total amino acids, as well as absorption rates of essential amino acids, such as arginine, hisitidine and lysine, were numerically increased. The results indicate that increasing dietary CP level has the potential to improve digestibility, intestinal digesta flows and amino acid absorption rate.[ChineseJournalofAnimalNutrition, 2016, 28(4)：1241-1249]

rumen-degradable protein; amino acid; flow; absorbability; Kazakh lambs

10.3969/j.issn.1006-267x.2016.04.036

2015-11-10

國家自然科學基金項目(31260557);兵團博士資金專項(2013BB018)

牛 露(1993—)，女，甘肅白銀人，本科生，動物科學專業(yè)。E-mail: 2587191120@qq.com

*通信作者：高 巍，副教授，碩士生導師，E-mail: gw@shzu.edu.cn

S826

A

1006-267X(2016)04-1241-09

*Corresponding author, associate professor, E-mail: gw@shzu.edu.cn