楊惠忠

[摘 要] 目的：檢測細胞粘附分子CD44在腎病綜合征（Nephrotic syndrome，NS）、慢性腎小球腎炎（Chronic glomerulonephritis，CGN）患者外周血表達水平，探討其臨床意義。方法：選取我院2013年7月～2016年7月收治的57例NS患者、69例GGN患者及同期60名健康體檢者，分別納入NS組、GGN組及對照組，采用流式細胞儀檢測3組受試者外周血單個核細胞CD44表達水平，并分析CD44表達水平與NS患者、GGN患者血漿白蛋白（ALB）、膽固醇（CE）、肌酐（Cr）、尿素氮（BUN）的相關(guān)性。結(jié)果：CGN組患者外周血CD44表達水平高于NS組，NS組患者外周血CD44表達水平高于對照組，差異有統(tǒng)計學意義（P<0.05）。Pearson相關(guān)分析示，外周血CD44表達水平與NS患者ALB呈負相關(guān)，與CE呈正相關(guān)，與CGN患者Cr、BUN呈正相關(guān)（P<0.05）。結(jié)論：NS、CGN患者外周血CD44表達水平超出正常范圍，可能通過免疫機制參與NS、CGN的發(fā)生發(fā)展，同時，外周血CD44表達水平與患者腎功能存在一定相關(guān)性，對于輔助病情判斷亦具有一定價值。

[關(guān)鍵詞] 細胞粘附分子；CD44；腎病綜合征；慢性腎小球腎炎

中圖分類號：R692 文獻標識碼：A 文章編號：2095-5200（2016）06-094-03

DOI：10.11876/mimt201606035

腎病綜合征（Nephrotic syndrome，NS）、慢性腎小球腎炎（Chronic glomerulonephritis，CGN）發(fā)病有多種因素參與，其中免疫損傷是二者發(fā)生過程中的共同環(huán)節(jié) [1]。細胞免疫、體液免疫平衡失調(diào)是導致腎臟疾病發(fā)病并進展至終末期腎衰竭、影響患者生存質(zhì)量的主要原因[2]。作為細胞粘附分子家族重要成員，CD44主要參與細胞與細胞、細胞與基質(zhì)間特異性粘連過程，在腫瘤、器官移植排斥反應(yīng)、自身免疫性疾病的發(fā)生發(fā)展中扮演著重要角色[3]。本研究就NS、CGN患者外周血CD44表達水平進行了檢測與分析，探討CD44在腎小球病變中作用機制。

1 資料與方法

1.1 一般資料

選取我院2013年7月—2016年7月收治的57例NS患者、69例GGN患者及同期60名健康體檢者，分別納入NS組、GGN組及對照組。NS患者、GGN患者均經(jīng)病史、體格檢查、實驗室檢查或腎臟病理組織學檢查，并參照改善全球腎臟病預(yù)后組織（KDIGO）慢性腎臟疾病診療指南（2012年版）確診[4]，且入組前未接受相關(guān)治療，排除合并感染、肝功能異常、其他免疫性疾病者，健康體檢者血壓、蛋白尿均處于正常范圍內(nèi)，既往無腎病史、嚴重感染史及免疫性疾病。各組受試者年齡、體質(zhì)量指數(shù)（BMI）、性別等一般臨床資料比較，差異無統(tǒng)計學意義（P>0.05）。本研究經(jīng)我院醫(yī)學倫理委員會批準，受試者均知情同意并簽署書面協(xié)議。

1.2 研究方法

1.2.1 外周血CD44表達水平檢測 于入組次日清晨抽取受試者空腹肘靜脈抗凝血2 mL，使用淋巴分離液分離，以1×106/mL提取單個核細胞懸液，取細胞懸液100 μL，依次加入20 μL CD44-FITC（法國Immunotech公司）及陰性對照羊抗鼠IgG1-FITC（法國Immunotech公司），避光處理30 min后，使用Epics Altra 型流式細胞儀（美國Beckman Coulter公司）上機檢測[5]。CD44表達水平計算方法[6]：CD44陽性細胞百分比=（待測標本內(nèi)標記陽性細胞數(shù)/受檢細胞總數(shù)）×100%-非特異結(jié)合細胞百分比。比較各組受試者外周血CD44表達水平的差異。

1.2.2 腎功能相關(guān)指標檢測及相關(guān)性分析 于入組次日清晨抽取NS組、CGN組患者空腹肘靜脈抗凝血2 mL，使用AU5800全自動生化分析儀（美國Beckman Coulter公司）對其血漿白蛋白（ALB）、膽固醇（CE）、肌酐（Cr）、尿素氮（BUN）進行檢測，運用Pearson法計算CD44表達水平與ALB、CE、Cr、BUN的相關(guān)性。

1.3 統(tǒng)計學分析

數(shù)據(jù)采用SPSS19.0進行分析，性別以（n/%）表示，并采用χ2檢驗，年齡、BMI、CD44表達水平等計量資料以（x±s）表示，相關(guān)性分析采用Pearson法，以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

2 結(jié)果

2.1 外周血CD44表達水平

CGN組患者外周血CD44表達水平高于NS組，NS組患者外周血CD44表達水平高于對照組，差異有統(tǒng)計學意義（P<0.05）。見表1。

2.2 外周血CD44表達水平與腎功能相關(guān)指標相關(guān)性

Pearson相關(guān)分析顯示，外周血CD44表達水平與NS患者ALB呈負相關(guān)，與CE呈正相關(guān)，與CGN患者Cr、BUN呈正相關(guān)（P<0.05）。見表2。

3 討論

細胞粘附分子是一類來自不同基因的配體/受體分子，具有介導細胞信號轉(zhuǎn)導、調(diào)節(jié)細胞增殖分化等作用，在近年來腎臟疾病的機制研究中得到了廣泛關(guān)注[7-8]。

研究發(fā)現(xiàn)，CD44在人類和大鼠正常腎臟組織中幾乎無表達，腎小囊上皮細胞、亨氏拌升支粗段小管上皮細胞以及遠端小管上皮細胞可見少量表達，但在腎臟疾病中，CD44蛋白表達往往處于異常增高狀態(tài)[9]。Fogo等[10]

發(fā)現(xiàn)，系膜增生性腎炎患者外周血CD44表達水平明顯升高，且與系膜細胞活化增殖、腎小球內(nèi)炎癥細胞浸潤具有密切關(guān)聯(lián)；鄒麗萍等[11]指出，CD44可促進機體炎癥因子分泌，參與炎癥反應(yīng)。本研究就CD44在NS、CGN患者外周血內(nèi)表達水平進行了檢測，結(jié)果表明，NS、CGN患者外周血CD44表達水平均處于異常升高狀態(tài)，考慮與CD44誘導淋巴細胞在腎組織內(nèi)廣泛浸潤、活化炎癥和產(chǎn)生炎性因子等作用有關(guān)[12]，說明CD44在NS、CGN發(fā)生發(fā)展過程中扮演了重要角色。

本研究相關(guān)性分析結(jié)果可見，CD44表達水平與NS患者ALB呈負相關(guān)，與CE呈正相關(guān)，其機制可能為：CD44具有調(diào)節(jié)細胞游走功能作用，可通過促進淋巴細胞在腎間質(zhì)內(nèi)廣泛浸潤，造成外周血淋巴細胞數(shù)量或功能異常、淋巴細胞亞群間比例失衡，而T淋巴細胞功能失調(diào)被認為是NS發(fā)病的重要機理之一[13-14]，而NS患者以高脂血癥、低白蛋白血癥為主要表現(xiàn)[15]，故隨著NS患者外周血CD44表達水平的升高，其CE逐漸升高，ALB逐漸下降。

通過對CD44與CGN患者腎功能相關(guān)指標的分析，可以發(fā)現(xiàn)，CD44表達水平與患者Cr、BUN呈正相關(guān)，與ALB、CE無明顯相關(guān)性，與CGN患者腎臟病理生理改變具有一致性：CGN患者腎小球濾過率的下降可導致肌酐清除率降低，繼而導致體內(nèi)Cr、BUN水平大幅上升，且其上升程度與患者病情具有密切關(guān)聯(lián)[16]，而CD44可與透明質(zhì)酸配體結(jié)合，上調(diào)細胞活素類物質(zhì)、化學活素類物質(zhì)表達，參與CGN細胞免疫病理過程，促進巨噬細胞向腎小球、腎小管間質(zhì)浸潤，導致病情進展[17]。此外，Maruyama等[18]發(fā)現(xiàn)，腎臟疾病患者尿液內(nèi)CD44細胞密度亦呈現(xiàn)明顯增高狀態(tài)，說明CD44對系膜細胞及系膜基質(zhì)的影響在NS、CGN發(fā)生發(fā)展過程中可能發(fā)揮了一定作用。

因此，可以認為，細胞粘附分子CD44在NS、CGN患者外周血表達水平均呈現(xiàn)異常增高狀態(tài)，說明CD44在NS、CGN發(fā)病過程中扮演了重要角色，與此同時，CD44與患者腎功能相關(guān)指標具有顯著相關(guān)性，亦可為患者病情判斷提供一定參考。本研究為NS、CGN發(fā)病機制的深入了解及臨床防治策略的制定提供了思路，但需要注意的是，由于目前臨床對于腎臟疾病的確切發(fā)病機制尚無明確闡釋，關(guān)于CD44對NS、CGN發(fā)生發(fā)展的具體機理仍有待更深層次的研究加以了解。

參 考 文 獻

[1] Smeets B， Stucker F， Wetzels J， et al. Detection of activated parietal epithelial cells on the glomerular tuft distinguishes early focal segmental glomerulosclerosis from minimal change disease[J]. Am J Pathol， 2014， 184（12）： 3239-3248.

[2] Bever K M， Masha L I， Sun F， et al. Risk factors for venous thromboembolism in immunoglobulin light chain amyloidosis[J]. Haematologica， 2016， 101（1）： 86-90.

[3] 王蔚， 樊均明， 陳輝珍. CD44對5/6腎切除大鼠殘腎細胞增生和表型轉(zhuǎn)化的影響[J]. 臨床腎臟病雜志， 2005（1）：22-24.

[4] Lu M， Wang C， Yuan Y， et al. Differentially expressed microRNAs in kidney biopsies from various subtypes of nephrotic children[J]. Exp Mol Pathol， 2015， 99（3）： 590-595.

[5] 王莉. 細胞粘附分子CD44、CD62p在兒童原發(fā)性腎病綜合征的表達及其相關(guān)性與臨床意義的研究[D].濟南：山東大學， 2003.

[6] Fogo A B， Cohen A H， Colvin R B， et al. Minimal change disease and focal segmental glomerulosclerosis[M]//Fundamentals of Renal Pathology. Springer Berlin Heidelberg， 2014： 45-58.

[7] Zhang J， Pippin J W， Krofft R D， et al. Podocyte repopulation by renal progenitor cells following glucocorticoids treatment in experimental FSGS[J]. Am J Physiol Renal Physiol， 2013， 304（11）： F1375-F1389.

[8] Hamatani H， Hiromura K， Sakairi T， et al. Expression of a novel stress-inducible protein， sestrin 2， in rat glomerular parietal epithelial cells[J]. Am J Physiol Renal Physiol， 2014， 307（6）： F708-F717.

[9] 肖敬川. 腎病綜合征、慢性腎小球腎炎和2-糖尿腎病抗碳酸酐酶抗體、CD44和CRP的測定[D]. 武漢：中南大學， 2007.

[10] Fogo A B. Causes and pathogenesis of focal segmental glomerulosclerosis[J]. Nature Reviews Nephrology， 2015， 11（2）： 76-87.

[11] 鄒麗萍， 王偉， 張艷麗， 等. 粘附分子CD62P和CD44在毛細支氣管炎患兒外周血中的表達及意義[J]. 中國當代兒科雜志， 2015， 17（11）： 1200-1203.

[12] Tokgoz H， Caliskan U， Keles S， et al. Variable presentation of primary immune deficiency： two cases with CD3 gamma deficiency presenting with only autoimmunity[J]. Pediatr Allergy Immunol， 2013， 24（3）： 257-262.

[13] Rampanelli E， Rouschop K M A， Claessen N， et al. Opposite role of CD44-standard and CD44-variant-3 in tubular injury and development of renal fibrosis during chronic obstructive nephropathy[J]. Kidney Int， 2014， 86（3）： 558-569.

[14] 都興華， 蘇澤軒， 丁泓文， 等. CD44在大鼠腎缺血再灌注損傷中的表達及意義[J]. 中華實驗外科雜志， 2015， 32（6）： 1259-1260.

[15] Rampanelli E， Rouschop K， Teske G J D， et al. CD44v3-v10 reduces the profibrotic effects of TGF-β1 and attenuates tubular injury in the early stage of chronic obstructive nephropathy[J]. Am J Physiol Renal Physiol， 2013， 305（10）： F1445-F1454.

[16] Ramani K， Pawaria S， Maers K， et al. An essential role of interleukin-17 receptor signaling in the development of autoimmune glomerulonephritis[J]. J Leukoc Biol， 2014， 96（3）： 463-472.

[17] Peng Y， Ke M， Xu L， et al. Donor-derived mesenchymal stem cells combined with low-dose tacrolimus prevent acute rejection after renal transplantation： a clinical pilot study[J]. Transplantation， 2013， 95（1）： 161-168.

[18] Maruyama T， Fukuda N， Matsumoto T， et al. Systematic implantation of dedifferentiated fat cells ameliorated monoclonal antibody 1-22-3-induced glomerulonephritis by immunosuppression with increases in TNF-stimulated gene 6[J]. Stem Cell Res Ther， 2015， 6（1）： 1.