謝智彬 付偉金 陸春宇 趙東 徐艷圳 吳華裕
廣西醫(yī)科大學第一附屬醫(yī)院(南寧 530021);廣西醫(yī)科大學(南寧 530021)
膀胱癌是泌尿系腫瘤中常見的惡性腫瘤[1],具有易復發(fā)、侵襲轉(zhuǎn)移等特點,因此大部分患者確診時已達中晚期,所以抑制腫瘤復發(fā)和轉(zhuǎn)移對患者的生存預后及生存質(zhì)量有重要意義。上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化(epithelial?mesenchymal transition,EMT)是指細胞失去上皮細胞特性和極性,重構細胞骨架網(wǎng),使其獲得間皮細胞特性和運動能力,從而促進腫瘤細胞的侵襲轉(zhuǎn)移能力[2]。因此,抑制EMT是當前抗膀胱癌的侵襲遷移研究的熱點。二氯乙酸(dichloroacetate,DCA),也稱二氯醋酸,是一種小分子代謝調(diào)節(jié)劑,臨床上主要用于治療乳酸中毒和線粒體遺傳性疾?。?]。近年來研究發(fā)現(xiàn)DCA在多種腫瘤細胞中具有明顯抗腫瘤活性,如腎癌、結(jié)腸癌、子宮癌等[4-6],但DCA作用于膀胱癌T24細胞的克隆形成、侵襲及遷移的影響在國內(nèi)外卻鮮有報道。因此,2016年4-12月筆者觀察了DCA對膀胱癌T24細胞克隆形成、侵襲、遷移能力及對EMT相關蛋白表達的影響,并初步探討其相關機制,為逆轉(zhuǎn)膀胱癌轉(zhuǎn)移提供理論依據(jù)。
1.1 主要材料 細胞:人T24細胞株購自中國科學院細胞庫。藥物:二氯乙酸(Sigma)試劑:胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)(gibco)、雙抗(gibco)、胰酶(gibco)、1640培養(yǎng)基(gibco)、Giemsa染液(Sigma)、二甲基亞砜(DMSO)(Sigma)、PBS(Sig?ma)、Matrigel基質(zhì)膠(Corning)、RIPA細胞裂解液(Sigma)、BCA試劑盒(碧云天)、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(Takara)、GAPDH引物、鈣黏蛋白E(E?cadherin)引物、鈣黏蛋白 N(N?cadherin)引物、波形蛋白(vimentin)引物Snail引物及Slug引物均由金開瑞生物工程有限公司合成。兔抗人β?肌動蛋白(β?actin)/E?cadherin/N?cadherin/vimentin/Snail/Slug 抗體(Abcam)。儀器:Transwell小室(Sigma)、各種規(guī)格培養(yǎng)瓶(皿)、離心管(Corning)、CKX41倒置顯微鏡(Olympus),37℃ 5%CO2恒溫孵育箱(Thermo)。
1.2 細胞培養(yǎng) 細胞用含有10%FBS和1%雙抗的1640培養(yǎng)基于5%CO2、37℃恒溫培養(yǎng)箱內(nèi)常規(guī)培養(yǎng)。取生長對數(shù)期細胞用于實驗。
1.3 細胞克隆檢測 取對數(shù)生長期的T24細胞以500個/孔均勻接種于6孔板,置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待細胞貼壁后,實驗組加入含5、10、20 mmol/L DCA的無血清培養(yǎng)基2 mL,對照組加入等量含0.1%DMSO的無血清培養(yǎng)基培養(yǎng),當肉眼可見克隆形成時,終止培養(yǎng);棄去培養(yǎng)基,用PBS洗3次,用甲醇進行固定20 min,Giemsa染液染色30 min,沖洗后空氣干燥;拍照、計數(shù)肉眼可見的克隆數(shù)目。實驗重復3次。
1.4 細胞劃痕檢測細胞遷移能力 將T24細胞接種于6孔板培養(yǎng),待細胞生長面積達90%后,用10 μL加樣槍頭對細胞進行劃痕損傷,每孔劃痕1次。用PBS洗3次,將脫落細胞和細胞碎片沖洗干凈。實驗分組及處理同1.3繼續(xù)培養(yǎng),于0、24、48、72 h倒置相差顯微鏡下觀察拍照(×100),根據(jù)細胞間距計算遷移率,細胞遷移率=(1-愈合后間距/起始間距)×100%。實驗重復3次。
1.5 Transwell小室檢測細胞侵襲能力 將T24細胞以1× 105/mL密度,200 μL接種于鋪有Matrigel基質(zhì)膠的Transwell小室上室,實驗分組及處理同1.3,下室加入600 μL含20%FBS的RPMI1640培養(yǎng)基,37℃、5%CO2條件下培養(yǎng)24 h后,用棉簽輕輕擦去基質(zhì)膠和上室未穿膜細胞,甲醇固定10 min,0.1%的Giemsa染液室溫下染色30 min,鏡下隨機5個視野(×100)觀察結(jié)果并拍照、計數(shù),取均值。實驗重復3次。
1.6 Real time PCR 法檢測 E?cadherin、N?cad?herin、vimentin、Snail及Slug mRNA的表達 取T24細胞接種于6孔板培養(yǎng),待細胞處于對數(shù)生長期時,實驗分組及處理同1.3繼續(xù)培養(yǎng)48 h,TRIzol法提取各組細胞的總RNA,用紫外分光光度計檢測RNA的純度和濃度;取1 μg總RNA,應用反轉(zhuǎn)錄試劑盒將其反轉(zhuǎn)錄成cDNA,反轉(zhuǎn)錄條件37℃15 min、85 ℃ 5 s,以cDNA為模板應用Real time PCR檢測各組細胞中E?cadherin、N?cadherin、vimentin、Snail及Slug mRNA的表達。N?cadherin基因上游引物序列為 5′?GCCACCTACAAAGGCAGAAG?3′,下游引物序列為 5′?ACTGTCCCATTCCAAACCTG?3′;E?cadherin基因上游引物序列為5′?TCATGAGT?GTCCCCCGGTAT?3′,下游引物序列為 5′?TCTT?GAAGCGATTGCCCCAT?3′;vimentin基因上游引物序列為 5′?GGACCAGCTAACCAACGACA?3′,下游引物序列為 5′?AAGGTCAAGACGTGCCAGAG?3′;Snail基因上游引物序列為 5′?CTGGGTGCCCTCAA?GATGCA?3′,下游引物序列為 5′?CCGGACATG?GCCTTGTAGCA?3′;Slug基因上游引物序列為5′?ATCTGACCCGTCGTGACG?3′,下游引物序列為 5′?CGTCACGACGGGTCAGAT?3′;GAPDH 基因(內(nèi)參照)上游引物序列為 5′?CTATAAATTGAGCCCG?CAGC?3′,下游引物序列為 5′?GACCAAATCCGTT?GACTCCG ?3′;Real time PCR反應條件:95 ℃預變性10 min;95℃變性10 s、60℃退火10 s、72℃延伸10 s,共40個循環(huán)。以2?ΔΔCt值表示目的基因 mRNA的相對表達水平。
1.7 Western blot檢測 E?cadherin、N?cadherin、vimentin、Snail及Slug蛋白的表達 將T24細胞接種于6孔板培養(yǎng),待細胞處于對數(shù)生長期時,實驗分組及處理同1.3繼續(xù)培養(yǎng)48 h,PBS潤洗2遍后加入含有蛋白酶抑制劑的RIPA裂解液,4℃裂解30 min,12 000 r/min離心后取上清液。再按照BCA試劑盒說明書測定總蛋白濃度后加入適量蛋白上樣緩沖液,沸水浴加熱10 min使蛋白變性后分裝,-20℃保存。取60 μg總蛋白上樣量,計算蛋白的上樣體積,根據(jù)目的蛋白分子量大小選擇合適比例的SDS?PAGE凝膠電泳后轉(zhuǎn)印到PVDF膜上,5%脫脂牛奶封閉1 h,TBST潤洗后分別加入兔抗人β?actin、E?cadherin、N?cadherin、vimentin、Snail及 Slug抗體4℃孵育過夜,抗體稀釋度均為1∶1 000。TBST潤洗10 min×3次,常溫搖床下孵育熒光二抗(1∶5 000)1 h;用TBST溶液洗膜10 min×3次,熒光化學發(fā)光檢測儀檢測,圖像掃描。采用Image J軟件分析蛋白條帶灰度值,以目的蛋白與β?actin條帶的光密度比值表示目的蛋白相對表達量。實驗重復3次。
1.8 統(tǒng)計學方法 采用SPSS 23.0統(tǒng)計軟件,數(shù)據(jù)以表示,計量資料多組間均數(shù)比較采用ANOVA方差分析,進一步組間比較采用SNK?q法,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 DCA對T24細胞克隆增殖能力的影響 實驗組5、10、20 mmol/L濃度的每孔細胞克隆形成數(shù)量分別為(292.3 ± 20.5)個/孔、(178.7 ± 17.2)個/孔和(122.3±9.6)個/孔,明顯低于對照組(416.3±12.6)個/孔,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01)。見圖1。
2.2 DCA對T24細胞遷移活性的影響 劃痕實驗結(jié)果顯示:與對照組相比,在5、10、20 mmol/L濃度的DCA作用24、48、72 h后,細胞遷移率呈現(xiàn)不同程度地降低,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。見表1、圖2。
圖1 兩組細胞克隆形成數(shù)量比較Fig.1 Comparison of the number of clones formed in the two groups
圖2 細胞劃痕實驗檢測兩組細胞遷移能力(×100)Fig.2 Cell scratches were used to detect the migration ability of the two groups(× 100)
2.3 DCA對T24細胞侵襲活性的影響 Transwell實驗結(jié)果顯示:實驗組用5、10、20 mmol/L DCA處理24 h后侵襲細胞數(shù)分別為(361.7±20)個/視野、(165.0 ± 17.1)個/視野、(71.0 ± 16.1)個/視野,均低于對照組的(536.7±27.6)個/視野,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01)。見圖3。
2.4 DCA 對 E?cadherin、N?cadherin、vimentin、Snail及Slug的mRNA表達的影響 實驗組用5、10、20 mmol/L DCA處理T24細胞48 h后,細胞中E?cadherin mRNA表達水平均高于對照組,而Snail、Slug、vimentin和N?cadherin mRNA表達水平均低于對照組,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。見表2。
表1 兩組細胞的遷移率比較Tab.1 Comparison of the mobility of the two groups±s
表1 兩組細胞的遷移率比較Tab.1 Comparison of the mobility of the two groups±s
注:與對照組比較,*P<0.01
組別實驗組5 mmol/L 10 20對照組24 h 48 h 72 h 34.6±2.2*25.4±1.2*21.4±1.5*54.2±1.7 52.1±1.2*34.0±1.7*30.0±1.3*63.4±1.9 63.2±1.3*58.4±1.1*41.6±1.0*80.1±1.6
圖3 Transwell檢測兩組細胞侵襲細胞數(shù)(×100)Fig.3 The number of invading cells were detected by Transwell in both groups(× 100)
表2 兩組間mRNA相對表達量的比較Tab.2 Comparison of mRNA expression between the two groups ±s
表2 兩組間mRNA相對表達量的比較Tab.2 Comparison of mRNA expression between the two groups ±s
注:與對照組比較,*P<0.05
E?cadherin N?cadherin vimentin Snail Slug 組別實驗組5 10 20對照組1.57±0.13*2.11±0.09*3.35±0.14*1.00±0.00 0.72±0.11*0.68±0.15*0.52±0.08*1.00±0.00 0.88±0.09*0.62±0.15*0.48±0.13*1.00±0.00 0.86±0.08*0.75±0.11*0.61±0.13*1.00±0.00 0.84±0.12*0.67±0.13*0.62±0.07*1.00±0.00
圖4 Western blot檢測兩組細胞的EMT標記蛋白的表達Fig.4 The expression of EMT marker protein was detected by Western blot
2.5 DCA 對 E?cadherin、N?cadherin、vimentin、Snail及Slug的蛋白表達的影響 實驗組用5、10、20 mmol/L DCA處理T24細胞48 h后,細胞中E?cadherin蛋白表達水平均高于對照組,而Snail、Slug、vimentin和N?cadherin蛋白表達水平均低于對照組,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。見圖4和表3。
能量代謝異常是惡性腫瘤最鮮明的特征之一,尤其是糖代謝異常,其中有氧糖酵解是惡性腫瘤能量代謝方面的最主要特征,即腫瘤細胞在充足的有氧條件下仍然優(yōu)先通過糖酵解方式獲取能量[7-8],其生產(chǎn)的大量中間產(chǎn)物為腫瘤生長侵襲遷移提供幫助。DCA,又稱二氯醋酸,是一種小分子代謝調(diào)節(jié)劑,臨床上用于治療乳酸中毒和線粒體遺傳性疾病,其藥理作用機制為通過抑制丙酮酸脫氫酶激酶(pyruvate dehydrogenase kinase,PDK)活性,上調(diào)丙酮酸脫氫酶(pyruvate dehydrogenase,PDH)活性,促進丙酮酸進入三羧酸循環(huán)從而減少乳酸生成[9],從而抑制腫瘤細胞生長,但對正常細胞卻無損害。近年來研究發(fā)現(xiàn)DCA具有明顯抗腫瘤活性,但對于DCA作用于膀胱癌T24細胞的克隆形成、侵襲及遷移的影響在國內(nèi)外卻鮮有報道。因此,我們探討DCA對膀胱癌T24細胞克隆形成、侵襲和遷移的影響,為逆轉(zhuǎn)膀胱癌轉(zhuǎn)移提供理論依據(jù)。
本研究表明,DCA能夠明顯抑制體外培養(yǎng)的膀胱癌T24細胞的克隆形成,推測DCA可能通過抑制膀胱癌T24細胞PDK激活PDH,從而改變膀胱癌細胞糖代謝途徑,使癌細胞從依賴糖酵解獲得能量向依賴氧化磷酸化獲能發(fā)生轉(zhuǎn)化。
細胞劃痕實驗顯示,與對照組相比發(fā)現(xiàn),實驗組隨DCA的濃度的增加和時間的延長,細胞遷移的總體寬度明顯較對照組大。結(jié)合Transwell結(jié)果,實驗組與對照組的侵襲細胞數(shù)相比,前者比后者明顯減少,且呈濃度依賴性,差異均有統(tǒng)計學意義(均P<0.05),提示DCA可以抑制T24細胞的侵襲能力,與細胞劃痕實驗結(jié)果相一致。
不同腫瘤細胞的發(fā)病機制不盡相同,但研究證實EMT是上皮源性腫瘤細胞發(fā)生發(fā)展的重要環(huán)節(jié),與腫瘤細胞發(fā)生遷移和侵襲密切相關[2,10]。典型的EMT是指上皮細胞失去上皮特性,向間質(zhì)細胞轉(zhuǎn)化,表現(xiàn)為細胞間連接減少,從而增強癌細胞的侵襲及遷移能力,其主要特征為上皮標記物E?cadherin表達的減少,間質(zhì)標記物vimentin和N?cadherin表達的增加[10-11]。Snail家族(包括Snail和Slug)是具有負調(diào)控作用的鋅指轉(zhuǎn)錄因子,能夠與E?cadherin相互作用,從而抑制 E?cadherin的表達[12]。大量研究發(fā)現(xiàn)膀胱癌的侵襲遷移與EMT密切相關,主要通過上調(diào)E?cadherin表達的同時,下調(diào)vimentin和N?cadherin表達,從而抑制膀胱癌細胞的侵襲遷移能力[2,13-14]。在臨床研究方面同樣發(fā)現(xiàn)EMT與膀胱癌患者密切相關,HENSLEY等[2]研究發(fā)現(xiàn)EMT與膀胱癌患者的臨床病理分級分期及預后密切相關,認為EMT的特征性標記物可作為浸潤性膀胱癌的潛在的腫瘤標記物。同時,SINGH等[15]研究認為EMT標記物可作為判斷膀胱癌患者預后的一個有效的敏感性腫瘤標記物。本研究發(fā)現(xiàn),DCA能夠抑制T24細胞的侵襲遷移,但其機制尚未明確,所以我們探討DCA抑制T24細胞侵襲遷移是否與EMT相關標記物的改變有關。
表3 兩組間蛋白相對表達水平(灰度值)Tab.3 between the two groups of protein relative expression level(gray value) x±s
本研究通過Real time PCR法及Western blot法檢測 EMT相關標記物 E?cadherin、N?cadherin、vimentin、Snail及Slug表達水平。Real time PCR結(jié)果顯示:實驗組T24細胞的E?cadherin表達上升,而Snail、Slug、vimentin和N?cadherin表達下降,差異均有統(tǒng)計學意義(均P<0.05)。這一結(jié)果,在Western blot檢測蛋白的表達情況也得到驗證。因此,我們推斷DCA通過下調(diào)核轉(zhuǎn)錄因子Snail和Slug的表達,進而促進E?cadherin的表達,同時減少間質(zhì)細胞標記物vimentin和N?cadherin的表達,抑制T24細胞發(fā)生EMT,降低膀胱癌細胞侵襲遷移的能力。但關于DCA抑制膀胱癌T24細胞的增殖、侵襲及遷移的確切分子機制還有待進一步研究,本課題組擬建立惡性腫瘤的裸鼠移植模型,進一步探討DCA在動物水平的抗腫瘤效應。
綜上所述,本研究應用DCA處理T24細胞,通過對T24細胞克隆形成能力、細胞侵襲力及遷移能力的觀察,認為DCA可抑制T24細胞克隆形成能力,且對腫瘤的侵襲和遷移能力也有明顯的抑制作用,其機制可能通過下調(diào)核轉(zhuǎn)錄因子Snail和Slug的表達,進而促進E?cadherin的表達,同時減少間質(zhì)細胞標記物vimentin和N?cadherin的表達,抑制T24細胞發(fā)生EMT,降低膀胱癌細胞侵襲遷移的能力。
[1]SIEGEL R L,MILLER K D,JEMAL A.Cancer Statistics,2017[J].CA Cancer J Clin,2017,67(1):7?30.
[2]HENSLEY P J,ZETTER D,HORBINSKI C M,et al.Associa?tion of epithelial?mesenchymal transition and nuclear cofilin with advanced urothelial cancer[J].Hum Pathol,2016,57:68?77.
[3]MICHELAKIS E D,WEBSTER L,MACKEY J R.Dichloroace?tate(DCA)as a potential metabolic?targeting therapy for cancer[J].Br J Cancer,2008,99(7):989?994.
[4]KINNAIRD A,DROMPARIS P,SALEME B,et al.Metabolic modulation of clear?cell renal cell carcinoma with dichloroace?tate,an inhibitor of pyruvate dehydrogenase kinase[J].Eur Urol,2016,69(4):734?744.
[5]LI B,LI X,NI Z,et al.Dichloroacetate and metformin synergis?tically suppress the growth of ovarian cancer cells[J].Oncotar?get,2016,7(37):59458?59470.
[6]ZHU D,HOU L,HU B,et al.Crosstalk among proteome,acety?lome and succinylome in colon cancer HCT116 cell treated with sodium dichloroacetate[J].Sci Rep,2016,6:37478.
[7]MARIN D,SABATER B.The cancer Warburg effect may be a testable example of the minimum entropy production rate princi?ple[J].Phys Biol,2017,14(2):024001.
[8]FU Y,LIU S,YIN S,et al.The reverse Warburg effect is likely to be an Achilles′heel of cancer that can be exploited for can?cer therapy[J].Oncotarget,2017.
[9]閆曉歡,王婉,鄭英如.二氯乙酸鹽通過促進Mcl?1降解誘導宮頸癌細胞凋亡[J].第三軍醫(yī)大學學報,2016,38(7):693?696.
[10]ZHANG Y,LIU W,HE W,et al.Tetrandrine reverses epithelial?mesenchymal transition in bladder cancer by downregulating Gli?1[J].Int J Oncol,2016,48(5):2035?2042.
[11]TSAI J H,YANG J.Epithelial?mesenchymal plasticity in carci?noma metastasis[J].Genes Dev,2013,27(20):2192?2206.
[12]韓麗麗,張玲玲,楊蕊蕊.CD44在腫瘤細胞上皮?間充質(zhì)轉(zhuǎn)化及其侵襲過程中的作用[J].中華實驗外科雜志,2015,32(12):3135?3138.
[13]QU H,MA B,YUAN H F,et al.Effect of salinomycin on metas?tasis and invasion of bladder cancer cell line T24[J].Asian Pac J Trop Med,2015,8(7):578?582.
[14]CHEN Y,PENG Y,XU Z,et al.LncROR promotes bladder can?cer cell proliferation,migration,and epithelial?mesenchymal transition[J].Cell Physiol Biochem,2017,41(6):2399?2410.
[15]SINGH R,ANSARI J A,MAURYA N,et al.Epithelial?to?mes?enchymal transition and its correlation with clinicopathologic features in patients with urothelial carcinoma of the bladder[J].Clin Genitourin Cancer,2017,15(2):e187?e197.