孫艾明, 王 劍, 董 瑩, 陳夢(mèng)妮, 徐艷春, 鄧 艷, 毛祥華
(1. 大理大學(xué) 病原與媒介生物研究所普洱分部,普洱 665000; 2. 云南省寄生蟲病防治所 云南省瘧疾研究中心 云南省蟲媒傳染病防控研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,普洱 665000)
青蒿素是中國(guó)藥學(xué)工作者20世紀(jì)70年代從菊科植物黃花蒿葉中提取分離到的倍半萜內(nèi)酯類化合物,是一種高效、迅速且副作用小的新型抗瘧藥[1-2]。世界衛(wèi)生組織推薦以青蒿素聯(lián)合療法(ACTs)作為治療惡性瘧疾最有效的一線抗瘧藥,在降低瘧疾相關(guān)疾病的發(fā)病率和死亡率中起到了不可或缺的作用,顯著降低了全球范圍內(nèi)的瘧疾負(fù)擔(dān)[3]。但自2008年首次在柬埔寨地區(qū)報(bào)道青蒿素耐藥性蟲株以來(lái)[4],東南亞的緬甸、泰國(guó)邊境等地也陸續(xù)檢測(cè)到青蒿素耐藥性蟲株[4-9],目前,柬埔寨、老撾、緬甸、泰國(guó)及我國(guó)云南省處于青蒿素耐藥性泛濫的中心地帶[10-11]。云南省的惡性瘧流行區(qū)主要局限在中緬邊境地區(qū)[12],其中80%以上的惡性瘧疾病例在緬甸境內(nèi)感染形成,而緬甸大部分地區(qū)均為青蒿素耐藥性惡性瘧流行區(qū)[13],青蒿素使用歷史已超過(guò)30年[14],持續(xù)的青蒿素類耐藥性惡性瘧原蟲的傳播將對(duì)全球瘧疾控制和消除造成嚴(yán)重威脅。
青蒿素及其衍生物是惡性瘧原蟲磷脂酰肌醇-3-激酶(Plasmodiumfalciparumphosphatidylinositol-3-kinase,PfPI3K) 的強(qiáng)效抑制劑[15],Mbengue等[16]發(fā)現(xiàn),PfKelch13的某些位點(diǎn)突變,可通過(guò)PfPI3K的信號(hào)變化,介導(dǎo)青蒿素耐藥性產(chǎn)生。Imwong等[17]、Wang等[18]和Huang等[19]進(jìn)一步證實(shí),緬甸惡性瘧原蟲分離株P(guān)fKelch13基因kelch結(jié)構(gòu)域的F446I突變型基因,對(duì)青蒿素耐藥性產(chǎn)生有一定影響,但研究均未對(duì)兩者間的關(guān)聯(lián)性進(jìn)行分析,針對(duì)我國(guó)云南省的惡性瘧報(bào)告病例的類似研究更是匱乏。本研究采用群體遺傳學(xué)評(píng)價(jià)與遺傳關(guān)聯(lián)性研究相結(jié)合的方法,對(duì)惡性瘧原蟲不同種群分離株的PfKelch13基因分化進(jìn)行了分析,間接評(píng)估了云南省惡性瘧原蟲分離株P(guān)fKelch13基因突變與青蒿素耐藥性之間的關(guān)聯(lián)程度,為惡性瘧原蟲青蒿素耐藥性分子監(jiān)測(cè)標(biāo)志提供了一定的理論依據(jù)。
1.1 研究對(duì)象及血樣采集
1.1.1 云南省瘧疾報(bào)告病例血樣來(lái)源
實(shí)驗(yàn)所采用的病例血樣來(lái)源于2013年1月—2015年12月,經(jīng)云南全省衛(wèi)生醫(yī)療機(jī)構(gòu)參照《中華人民共和國(guó)衛(wèi)生行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)——瘧疾診斷標(biāo)準(zhǔn)(WS259—2006)》[20]和經(jīng)基因檢測(cè)方法[21]確診,屬于“中國(guó)疾病預(yù)防控制信息系統(tǒng)”登記管理的惡性瘧疾報(bào)告病例,采其0.6 mL靜脈血制作濾紙血膜,采集范圍見圖1。通過(guò)流行病學(xué)調(diào)查判定其感染來(lái)源地,瘧疾發(fā)作潛伏期之前無(wú)云南省外流動(dòng)史者為云南本地病例,有緬甸、非洲國(guó)家流動(dòng)史者為緬甸、非洲感染病例。
1.1.2 緬甸境內(nèi)病例血樣來(lái)源
實(shí)驗(yàn)所采用的病例血樣來(lái)源于2009年1月—2012年12月,經(jīng)顯微鏡檢查和基因檢測(cè)確診,且長(zhǎng)期定居緬甸拉咱及周邊的緬籍惡性瘧現(xiàn)癥病例,采其靜脈血0.6 mL制作濾紙血膜,采集范圍見圖1。
圖1 本研究惡性瘧現(xiàn)癥病例血樣采集范圍
Fig 1 The range of blood sample collection ofPlasmodiumfalciparumin this study
注:“”為云南疫情病例血樣采集中心;“”為緬甸境內(nèi)血樣采集中心;“”為地州、縣政府駐地
緬甸境內(nèi)病例血樣年齡為2~60歲,2周內(nèi)無(wú)抗瘧藥或/和抗菌藥服藥史者同時(shí)接受青蒿琥酯耐藥性體內(nèi)測(cè)試。藥物及治療方案參考文獻(xiàn)[22],療效評(píng)價(jià)采用參考文獻(xiàn)[23],以上內(nèi)容均獲得病人知情和簽字認(rèn)可。
參照試劑盒說(shuō)明書提取基因組DNA,-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>
參照文獻(xiàn)[8,24-25]的引物和條件擴(kuò)增PfKelch13基因kelch結(jié)構(gòu)域,目的基因片段749~850 bp[26]。
測(cè)序結(jié)果在DNAStar Lasergene 7.1拼接或轉(zhuǎn)換后經(jīng)NCBI BLAST與惡性瘧原蟲PfKelch13基因參比序列(ID:PF3D7-1343700)進(jìn)行比對(duì),比對(duì)正常的DNA序列在MEGA5.04軟件進(jìn)行氨基酸轉(zhuǎn)換和文件格式調(diào)整。用Clustal X2.1軟件多重比對(duì)DNA序列,確認(rèn)錯(cuò)義突變和同義突變。PfKelch13基因kelch結(jié)構(gòu)域446、578、556、676、458、574、16、469、449、566、538、481、483、492和76等15個(gè)等位基因位點(diǎn)的野生型基因?yàn)椤癋446A578E556A676N458P574S16C469G449V566G538A481F483L492Y76”。用Arlequin 3.01軟件分析基因片段單倍型及期望雜合度(He)、基因多態(tài)系數(shù)(H)和群體間遺傳分化指數(shù)(Fst)等,F(xiàn)st采用分子方差分析法(AMOVA)計(jì)算,檢驗(yàn)水平為α=0.05。
采用Epi Data 3.1軟件建立數(shù)據(jù)庫(kù),在IBM?SPSS?21軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,對(duì)PfKelch13基因kelch結(jié)構(gòu)域突變型構(gòu)成比進(jìn)行χ2檢驗(yàn),檢驗(yàn)水平為α=0.05,并計(jì)算惡性瘧原蟲分離株P(guān)fKelch13基因kelch結(jié)構(gòu)域突變型與青蒿素治療失敗的比值比(OR)及其95%CI。
云南省惡性瘧疾報(bào)告病例血樣202份,其中192份PfKelch13基因kelch結(jié)構(gòu)域PCR擴(kuò)增陽(yáng)性,測(cè)序成功190例。緬甸境內(nèi)惡性瘧病例血樣382份, 289份PCR擴(kuò)增陽(yáng)性,測(cè)序成功194例,其中,包括60例接受青蒿琥酯療效評(píng)價(jià)病例血樣的53條序列,樣本使用流程如圖2。
惡性瘧原蟲分離株的PfKelch13基因kelch結(jié)構(gòu)域PCR擴(kuò)增產(chǎn)物如圖3,在750 bp處可見電泳條帶。
圖2 本研究惡性瘧現(xiàn)癥病例的血樣使用流程圖
圖3 惡性瘧現(xiàn)癥病例血樣PfKelch13基因kelch結(jié)構(gòu)域巢式PCR擴(kuò)增電泳圖
M:DNA標(biāo)志物;1:惡性瘧原蟲陽(yáng)性對(duì)照;2:間日瘧原蟲陽(yáng)性對(duì)照;3:第1輪PCR陰性對(duì)照;4:第2輪PCR陰性對(duì)照;5:陰性樣本;6~13:陽(yáng)性樣本
190例測(cè)序成功的云南省瘧疾報(bào)告病例DNA序列中,66例序列檢出10種氨基酸突變型,均為單位點(diǎn)錯(cuò)義突變,突變率 34.7%(66/190),10種氨基酸突變型為F446I、A578S、N458Y、P574L、A676D、G449A、C469Y、V566I、E556D和S16L,各型突變所占比如圖4。
圖4 云南省和緬甸兩地感染惡性瘧原蟲PfKelch13基因kelch結(jié)構(gòu)域氨基酸編碼突變類型及比例(n=16)
“Δ”:云南分離株構(gòu)成比;“*”:緬甸分離株構(gòu)成比
測(cè)序成功的194例緬甸境內(nèi)病例DNA序列中,114例序列檢出12種氨基酸突變型,均為錯(cuò)義突變,突變率為58.8%(114/194),且每例序列均為單一突變。12種突變型為F446I、P574L、C469Y、A676D、A481V、E556D、N458Y、F483S、L492S、G538V、G449A和Y76K,各型突變所占比例如圖4。
測(cè)序成功的云南省病例血樣的PfKelch13基因kelch結(jié)構(gòu)域DNA序列共有13種單倍型,He、H分別為0.0481和0.5183,緬甸境內(nèi)病例血樣的PfKelch13基因kelch結(jié)構(gòu)域DNA序列共有19種單倍型,He、H分別為0.0440和0.6510。兩地惡性瘧原蟲種群間的Fst=0.0410(P<0.05)(見表1)。來(lái)自群體內(nèi)的變異占95.90%,群體間變異比例占4.10%,群體內(nèi)遺傳變異大于群體間遺傳變異。
表1 云南及緬甸境內(nèi)惡性瘧病例分離株P(guān)fKelch13基因 kelch結(jié)構(gòu)域的等位多態(tài)性分析
“※”:百分?jǐn)?shù); “Δ”:1 組與2組配對(duì)分析; “*”:P<0.05
60例緬甸境內(nèi)病例接受青蒿琥酯療效評(píng)價(jià),其中49例完成全程隨訪。完成全程隨訪病例中,28例病例血樣檢出PfKelch13基因kelch結(jié)構(gòu)存在5種位點(diǎn)突變,突變率為57.1%(28/49),突變型為F446I 、C469Y 、A676D 、N458Y 和P574L,所占比例分別為46.9%(23/49)、4.1%(2/49)、2.0%(1/49)、2.0%(1/49)和2.0%(1/49)。
緬甸境內(nèi)惡性瘧病例青蒿琥酯治療失敗與PfKelch13基因kelch結(jié)構(gòu)域突變位點(diǎn)間的關(guān)聯(lián)程度分析如表2。
表2 緬甸境內(nèi)病例惡性瘧原蟲分離株P(guān)fKelch13基因kelch結(jié)構(gòu)域突變位點(diǎn)與青蒿素耐藥性關(guān)聯(lián)程度分析
本研究中,盡管云南報(bào)告病倒惡性瘧原蟲種群與緬甸境內(nèi)病例惡性瘧原蟲種群PfKelch13基因的位點(diǎn)突變類型、單倍型種類及其數(shù)量均存在不同(表1),但兩種群間的遺傳分化系數(shù)較小(Fst=0.0410,P<0.05),且群體內(nèi)變異貢獻(xiàn)率占95.9%,群體間變異貢獻(xiàn)率只占4.1%,故可認(rèn)為云南及緬甸境內(nèi)惡性瘧疾病例種群具有相似的遺傳背景,因而以緬甸境內(nèi)病例蟲株求得的PfKelch13基因突變對(duì)青蒿素耐藥性的風(fēng)險(xiǎn)程度(表2),可以用于評(píng)估云南瘧疾報(bào)告病例PfKelch13基因突變與青蒿素耐藥性之間的關(guān)聯(lián)性,即感染PfKelch13基因F446I突變型或感染所有突變型位點(diǎn)的惡性瘧蟲株病例,其青蒿素治療無(wú)效的風(fēng)險(xiǎn)是感染PfKelch13基因野生型惡性瘧原蟲的1.640倍(95%CI:1.284~2.095)和1.840倍( 95%CI:1.412~2.398),其中,單一F446I突變型位點(diǎn)是PfKelch13基因的主導(dǎo)型突變(圖4),與Tun等[14]、Wang等[18]、Huang等[19]和Ye等[27]的研究結(jié)果一致。雖然本研究中的關(guān)聯(lián)性評(píng)價(jià)并不能完全揭示基因突變與耐藥性產(chǎn)生的因果關(guān)系,但仍提示PfKelch13基因多態(tài)性突變位點(diǎn)特別是F446I突變位點(diǎn)可以作為云南地區(qū)的惡性瘧原蟲青蒿素耐藥性分子水平的監(jiān)測(cè)標(biāo)志。
本研究的局限性也不容忽視。首先,我們進(jìn)行遺傳關(guān)聯(lián)性研究的樣本量仍不足夠大,PfKelch13基因突變的危險(xiǎn)程度如何,需進(jìn)一步進(jìn)行論證;其次,本研究中接受表型測(cè)試的對(duì)象為緬甸境內(nèi)的外國(guó)人種,與云南本地瘧疾報(bào)告病例之間可能存在遺傳異質(zhì)性,加之本實(shí)驗(yàn)中的表型研究地區(qū)——緬甸拉咱仍為瘧疾高度流行區(qū),因此,不同惡性瘧流行區(qū)使用本研究所獲得的微觀評(píng)價(jià)指標(biāo)時(shí)須謹(jǐn)慎理解。下一步除需擴(kuò)大同質(zhì)研究樣本量外,可適當(dāng)開展相關(guān)的系統(tǒng)分析研究,以期高效揭示PfKelch13基因突變與青蒿素耐藥性之間的遺傳關(guān)聯(lián)性。
致謝:感謝云南省德宏、保山、昆明、普洱、臨滄、大理、怒江、麗江、西雙版納、玉溪、楚雄、紅河、昭通、迪慶、曲靖、文山16個(gè)州/市級(jí)及其轄區(qū)內(nèi)各縣級(jí)疾病預(yù)防控制中心的傾力支持。
[1]TU Y. The discovery of artemisinin (qinghaosu) and gifts from Chinese medicine[J]. Nat Med, 2011, 17(10):1217-1220.
[2]MILLER L H, SU X. Artemisinin: discovery from the Chinese herbal garden[J]. Cell, 2011, 146(6):855-858.
[3]張逸龍,潘衛(wèi)慶.惡性瘧原蟲對(duì)青蒿素產(chǎn)生抗性的研究進(jìn)展[J].中國(guó)寄生蟲學(xué)與寄生蟲病雜志,2015,33(6):418-424.
[4]NOEDL H, SE Y, SCHAECHER K, et al. Evidence of artemisinin-resistant malaria in western Cambodia[J]. N Engl J Med, 2008, 359(24): 2619-2620.
[5]AMARATUNGA C, SRENG S, SUON S , et al. Artemisinin-resistantPlasmodiumfalciparumin Pursat province, western Cambodia: a parasite clearance ratestudy [J]. Lancet Infect Dis, 2012, 12(11):851-858.
[6]PHYO A P, NKHOMA S, STEPNIEWSKA K, et al. Emergence of artemisinin-resistant malaria on the western border of Thailand: a longitudinal study [J]. Lancet, 2012, 379(9830):1960-1966.
[7]KYAW M P, NYUNT M H, CHIT K, et al. Reduced susceptibility ofPlasmodiumfalciparumto artesunate in southern Myanmar [J]. PLoS One, 2013, 8(3):e57689.
[8]ASHLEY E A, DHORDA M, FAIRHURST R M, et al. Spread of artemisinin-resistance inPlasmodiumfalciparummalaria[J]. N Engl J Med, 2014, 371(5):411-423.
[9]DONDORP A M, NOSTEN F, YI P, et al. Artemisinin-resistance inPlasmodiumfalciparummalaria [J]. N Engl J Med, 2009, 361(5):455-467.
[10]WOOTTON J C, FENG X, FERDIG M T, et al. Genetic diversity and chloroquine selective sweeps inPlasmodiumfalciparum[J]. Nature, 2002, 418(6895): 320-323.
[11]GETHING P W, PATIL A P, SMITH D L, et al. A new world malaria map:Plasmodiumfalciparumendemicity in 2010 [J]. Malar J, 2011, 10:378.
[12]周水森, 王 漪, 房 文, 等. 2008年全國(guó)瘧疾形勢(shì)[J]. 中國(guó)寄生蟲學(xué)與寄生蟲病雜志, 2009, 27(6): 455-457.
[13]TUN K M, IMWONG M, LWIN K M, et al. Spread of artemisinin-resistantPlasmodiumfalciparumin Myanmar: across-sectional survey of the K13 molecular marker [J]. Lancet Infect Dis, 2015,15(4):415-421.
[14]李華憲, 陳國(guó)偉, 楊沅川, 等.云南省2001-2005 年瘧疾疫情分析[J].中國(guó)寄生蟲學(xué)與寄生蟲病雜志, 2008, 26(1):46-49.
[15]MOK S, ASHLEY E A, FERREIRA P E, et al. Population transcriptomics of human malaria parasites reveals the mechanism of artemisinin resistance[J]. Science, 2005, 347:431-435.
[16]MBENGUE A, BHATTACHARGRR S, PANDHARKAR T,et al. A molecular mechanism of artemisinin resistance inPlasmodiumfalciparummalaria[J]. Nature , 2015, 520:683-687.
[17]TUN K M, JEEYAPANT A, IMWONG M, et al.Parasite clearance rates in upper Myanmar indicate a distinctive artemisinin-resistance phenotype: a therapeutic efficacy study [J]. Malar J, 2016, 15:185.
[18]WANG Z, SHRESTHA S, LI X, et al. Prevalence of K13-propeller polymorphisms inPlasmodiumfalciparumfrom China-Myanmarborder in 2007 2012 [J]. Malaria J, 2015, 14: 168.
[19]HUANG F, TAKALA-HARRISON S, JACOB C G, et al. A single mutation in K13 predominates in Southern China and is associated with delayed clearance ofPlasmodiumfalciparumfollowing artemisinin treatment [J]. J Infect Dis, 2015, 212(10):1629-1635.
[20]中華人民共和國(guó)衛(wèi)生部. 中華人民共和國(guó)衛(wèi)生行業(yè)標(biāo)準(zhǔn):瘧疾診斷標(biāo)準(zhǔn)(WS259—2006)[S]. 北京: 人民衛(wèi)生出版社, 2006.
[21]董 瑩, 毛祥華, 陳夢(mèng)妮, 等. 2012—2014年云南省瘧疾實(shí)驗(yàn)室診斷質(zhì)量分析[J]. 中國(guó)寄生蟲學(xué)與寄生蟲病雜志, 2015, 33(3): 191-195.
[22]王 劍, 徐艷春, 孫曉東, 等. 緬甸北部三熱病人的三日瘧診斷與治療分析[J]. 中國(guó)病原生物學(xué)雜志, 2016, 11(8): 723-727.
[23]WHO. Monitoring antimalarial drug resistance: Report of a WHO consultation [R]. Geneva: World Health Organization, 2002.
[24]NYUNT M H, HLAING T, OO H W, et al. Molecular assessment of artemisinin-resistance markers, polymorphisms in the K13 propeller and a multidrug-resistance gene, in eastern and western border areas of Myanmar [J]. Clin Infect Dis, 2014, 60(8): 1208-1215.
[25]孫艾明,董 瑩,陳夢(mèng)妮,等. 云南省惡性瘧原蟲青蒿素耐藥性相關(guān)基因K13序列多態(tài)性的分析[J].中國(guó)寄生蟲學(xué)與寄生蟲病雜志,2016,34(4):339-345.
[26]WERNSDORFER W H,LANDGRAF B,WIEDERMANN G,et al. Chloroquine resistance ofPlasmodiumfalciparum: a biological advantage[J]. Trans R Trop Med Hyg, 1995, 89(1):90-91.
[27]YE R, HU D, ZHANG Y, et al. Distinctive origin of artemisinin resistantPlasmodiumfalciparumon the China-Myanmar border[J]. Sci Rep, 2016, 6:20100.