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志賀氏菌檢測和分群PCR方法的建立

2018-03-09 05:54:28王海艷趙治國郭文秀陳宇飛趙林立
中國動(dòng)物檢疫 2018年3期
關(guān)鍵詞:增菌賀氏肉湯

王海艷,趙治國,催 強(qiáng),郭文秀,陳宇飛,趙林立

(內(nèi)蒙古出入境檢驗(yàn)檢疫局,內(nèi)蒙古呼和浩特 010020)

志賀氏菌對許多國家和地區(qū)的人類健康造成了嚴(yán)重危害。特別在不發(fā)達(dá)國家和發(fā)展中國家,由于缺乏清潔的水源和必要的衛(wèi)生醫(yī)療設(shè)備等,由其引發(fā)的公共衛(wèi)生問題更加嚴(yán)重[1-2]。大多數(shù)志賀氏菌病由3種志賀氏菌引起,即福氏志賀氏菌、宋內(nèi)志賀氏菌和痢疾志賀氏菌。近年來,由于多種耐藥志賀氏菌株的出現(xiàn),許多國家和地區(qū)的志賀氏菌病病例數(shù)量不斷增加。志賀氏菌病的早期確診需要準(zhǔn)確、快速的檢測方法。目前,對志賀氏菌的鑒定分群仍然依靠常規(guī)生化鑒定方法、免疫學(xué)方法。但這些方法復(fù)雜、耗時(shí)、耗力、敏感性低。一些學(xué)者研究建立了針對志賀氏菌屬的分子生物學(xué)檢測技術(shù),這些傳統(tǒng)PCR方法存在一定的局限性,容易出現(xiàn)誤檢或漏檢。因此,建立一種準(zhǔn)確、可靠、快捷的志賀氏菌鑒定和分群方法尤為重要。

本研究根據(jù)志賀氏菌的獨(dú)特基因,設(shè)計(jì)引物進(jìn)行PCR分析。設(shè)計(jì)的引物用于檢測志賀氏菌屬,同時(shí)對臨床上與志賀氏菌病有關(guān)的3種志賀氏菌(即福氏志賀氏菌、宋內(nèi)志賀氏菌和痢疾志賀氏菌)進(jìn)行分群,以彌補(bǔ)目前志賀氏菌分子生物學(xué)檢測方法的不足。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1引物 根據(jù)志賀氏菌invC、rfc、wbgZ和rfpB 等基因,利用引物在線設(shè)計(jì)網(wǎng)站(http∶//bioinfo.ut.ee/primer3-0.4.0/)分別設(shè)計(jì)的引物,用于鑒定志賀氏菌屬、福氏志賀氏菌、宋內(nèi)志賀菌和痢疾志賀菌,并以根據(jù)ompA基因設(shè)計(jì)的引物為參照。引物由上海奧吉生物技術(shù)有限公司合成(表1)。

1.1.2主要試劑 志賀氏菌增菌肉湯、志賀氏菌顯色培養(yǎng)基:購于北京陸橋公司;Tris Base、EDTA、溶菌酶、異硫氰酸胍、sarkosyl、 Taq酶、dNTPs、PCR緩沖液、溴化乙錠、分子量100 bp DNA Ladder Marker(100~1 500 bp):購自大連寶生物公司;低熔點(diǎn)瓊脂糖(電泳級)和其它試劑:國產(chǎn)分析純。

1.1.3主要儀器設(shè)備 低溫冷凍高速離心機(jī)、微量移液器、PCR儀、電泳槽、電泳儀、凝膠成像分析系統(tǒng)、恒溫培養(yǎng)箱等。

1.1.4菌株 福氏志賀氏菌株(CMCC51571、CMCC51572、ATCC12022、CMCC51579、CMCC51240),鮑氏志賀氏菌株(CMCC51346、CMCC51585、CMCC51586、ATCC9207),宋內(nèi)志賀氏 菌 株(CMCC51592、ATCC11060、ATCC29930、ATCC25931、CMCC51334),痢 疾 志 賀 氏 菌 株(CMCC51105、CMCC51570、CMCC51252), 單增李斯特氏菌CMCC54002株,英諾克李斯特氏菌ATCC33090株,威氏李斯特氏菌ATCC35897株,斯氏李斯特氏菌ATCC35967株,格氏李斯特氏菌ATCC25401株,枯草芽孢桿菌CMCC63501-21株,大腸桿菌CMCC44116株,沙門氏菌CMCC50079株,金黃色葡萄球菌CMCC26001株,乙型溶血型鏈球菌CMCC32210株,肺炎克雷白氏菌CMCC46114株,弗氏檸檬酸桿菌CMCC48001株,阪崎腸桿菌ATCC29544株,蠟樣芽孢桿菌CMCC63303株,陰溝腸桿菌ATCC13047株,綠膿桿菌ATCC27853株,小腸結(jié)腸耶爾森氏菌ATCC23715株,綿羊李斯特氏菌ATCC19119,大腸桿菌O157∶H7 ATCC43895株:購自中國藥品生物制品檢定所和上海漢尼公司:

1.1.5樣品 消毒鮮奶、雪糕、酸奶、香腸、熟肉和生肉:購于超市;原奶:購于個(gè)體養(yǎng)牛場;奶粉:送檢樣品。

1.2 方法

1.2.1PCR特異性檢測

1.2.1.1細(xì)菌培養(yǎng) 將所有細(xì)菌接種于TSB-YE中,37 ℃培養(yǎng)1 d。分別取1.5 mL細(xì)菌培養(yǎng)液,8 000 r/min離心5 min,棄上清,將沉淀用0.5 mL TE 洗1次,然后直接用于DNA提取或存于?20 ℃?zhèn)溆谩?/p>

1.2.1.2DNA提取 參照Pitcher等[3]方法進(jìn)行。將沉淀干燥后用60~70 μL滅菌雙蒸水溶解,將其直接用于PCR或存于?20 ℃冰箱中備用。

表1 本研究所用的引物

1.2.1.3PCR擴(kuò)增 以提取的細(xì)菌DNA為模板,分別用各對引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增。反應(yīng)體系均為 25 μL:模板 DNA 2 μL,EX Taq DNA 聚合酶(5 U/μL)0.25 μL,10×EX Taq Buffer 2.5 μL,dNTP混合物(2.5 mmol/L)各1 μL,上游引物(10 pmol/ μL)1 μL,下游引物(10 pmol/ μL)1 μL,滅菌蒸餾水17.25 μL;循環(huán)參數(shù):94 ℃預(yù)變性3 min,94 ℃變性30 s,gen、flex和ctr引物65 ℃(son引物67 ℃,dys引物63 ℃)退火30 s,72 ℃延伸30 s,30個(gè)循環(huán),最后72 ℃終延伸3 min;用3%瓊脂糖凝膠電泳后分析結(jié)果。

1.2.2PCR敏感性試驗(yàn)

1.2.2.1細(xì)菌定量接種與培養(yǎng) 按1~3、12、27、53、105 cfu/(25 g·mL-1)的量,將各株志賀氏菌分別接種到加入25 mL滅菌生理鹽水的225 mL 志賀氏菌增菌肉湯中(接菌的同時(shí)用志賀氏菌顯色培養(yǎng)基平板計(jì)數(shù)),并設(shè)未加菌的陰性對照,于41.5 ℃,厭氧培養(yǎng)18 h;各取1 mL培養(yǎng)物,8 000 r/min離心5 min;將沉淀用0.5 mL TE 緩沖液(pH 8. 0)懸起,移入1.5 mL離心管中,8 000 r/min離心5 min;棄盡上清后,直接用于DNA提取或存于?20 ℃冰箱中備用。

1.2.2.2DNA提取 方法同 1.2.1.2。

1.2.2.3PCR擴(kuò)增 方法同1.2.1.3。

1.2.3抗干擾試驗(yàn) 將志賀氏菌與非志賀氏菌屬細(xì)菌(乙型溶血性鏈球菌)混合物按相應(yīng)接種量,分別接種志賀氏菌增菌肉湯(接菌的同時(shí)用志賀氏菌顯色培養(yǎng)基平板計(jì)數(shù))。按照1.2.2的方法進(jìn)行培養(yǎng)、核酸提取和PCR擴(kuò)增試驗(yàn),同時(shí)采用傳統(tǒng)培養(yǎng)法(GB 4789.5)作對比試驗(yàn)。

1.2.4人工接種樣品驗(yàn)證試驗(yàn) 將消毒鮮奶、雪糕、酸奶、香腸、熟肉、生肉、原奶和奶粉,各取5個(gè)樣,經(jīng)常規(guī)方法檢驗(yàn)無志賀氏菌污染后,用作PCR檢測方法的人工接種試驗(yàn)。每個(gè)樣取25 g/mL加入到225 mL志賀氏菌增菌肉湯中;均質(zhì)后,按相應(yīng)細(xì)菌量進(jìn)行人工接種試驗(yàn),并按1.2.2中的方法進(jìn)行轉(zhuǎn)接、培養(yǎng)、DNA提取及PCR擴(kuò)增;同時(shí)將增菌肉湯劃線接種于志賀氏菌顯色培養(yǎng)基平板進(jìn)行分離培養(yǎng),挑取可疑菌落進(jìn)行PCR鑒定;采用ISO的傳統(tǒng)培養(yǎng)法作對比試驗(yàn)。

1.2.5實(shí)際樣品檢測 對本實(shí)驗(yàn)室送檢的和市場上購買的1 100份樣品進(jìn)行檢測,并與ISO的傳統(tǒng)培養(yǎng)法進(jìn)行比較。

2 結(jié)果

2.1 PCR特異性確定

引物genF/genR,除了非志賀氏菌屬細(xì)菌外,在所有志賀氏菌屬細(xì)菌中都擴(kuò)增出了878 bp的特異性片段(圖1-A);引物flexF/flexR,僅在福氏志賀氏菌擴(kuò)增出539 bp片段,其它志賀氏菌屬細(xì)菌和非志賀氏菌屬細(xì)菌均未擴(kuò)增出相應(yīng)大小片段(圖1-B);引物sonF/sonR,僅在宋內(nèi)志賀氏菌可擴(kuò)增出434 bp片段,其它志賀氏菌屬細(xì)菌和非志賀氏菌屬細(xì)菌均未擴(kuò)增出相應(yīng)大小片段(圖1-C);引物dysF/dysR,僅在痢疾志賀氏菌可擴(kuò)增出214 bp片段,其它志賀氏菌屬細(xì)菌和非志賀氏菌屬細(xì)菌均未擴(kuò)增出相應(yīng)大小片段(圖1-D);引物ctrF/ctrR,在所有細(xì)菌中均能夠擴(kuò)增出1 322 bp的特異性片段(圖1-E)。

2.2 PCR敏感性檢測

以生理鹽水替代食品,分別將福氏志賀氏菌、宋內(nèi)志賀氏菌和痢疾志賀氏菌定量接種于志賀氏菌增菌肉湯中,兩步增菌后進(jìn)行PCR檢測,可見增菌后 PCR 的最低檢出限為 1~3 cfu/(25 g·mL-1),證明該P(yáng)CR方法具有極高的敏感性(圖2)。

2.3 抗干擾試驗(yàn)

通過試驗(yàn)可見,在人工污染干擾菌的情況下,本試驗(yàn)建立的PCR方法和培養(yǎng)法均可檢出志賀氏菌,但培養(yǎng)法比較費(fèi)力。在非志賀氏菌屬細(xì)菌存在的情況下,由于在增菌肉湯中加入了抑菌劑,使得非志賀氏菌屬細(xì)菌的生長受到抑制,所以采用兩種方法均比較容易檢出目標(biāo)菌(表2)。

表2 志賀氏菌抗乙型溶血性鏈球菌干擾的試驗(yàn)結(jié)果

圖1 不同引物PCR擴(kuò)增結(jié)果

圖2 PCR敏感性檢測結(jié)果

2.4 人工污染食品中志賀氏菌的檢出情況

將人工污染樣品于41.5 ℃18 h增菌后的增菌肉湯直接進(jìn)行PCR分析,發(fā)現(xiàn)在消毒奶、冰淇淋、酸奶、奶酪、熟肉和香腸中的志賀氏菌檢出限為1~3 cfu/(25 g·mL-1),在原奶、生肉和奶粉中的檢出限分別為≤ 12、27 和≤ 27 cfu/(25 g·mL-1)。將增菌肉湯劃線接種于固體培養(yǎng)基分離培養(yǎng)后再進(jìn)行PCR分析,發(fā)現(xiàn)在所有檢樣中均能檢測到志賀氏菌,與GB4789.5傳統(tǒng)培養(yǎng)法的檢測限一致,均達(dá)到了1~3 cfu/(25 g·mL-1),證明該 PCR 方法適合不同類型樣品的常規(guī)檢測分析(表3)。

2.5 實(shí)際樣品檢測

對本實(shí)驗(yàn)室送檢的1 100份樣品進(jìn)行檢測,并與傳統(tǒng)培養(yǎng)法(GB 4789.5)進(jìn)行比較,均未分離到志賀氏菌,與GB4789.5的傳統(tǒng)培養(yǎng)法的檢測結(jié)果一致。

3 討論

目前,國內(nèi)外有許多研究者建立了食品中志賀氏菌屬的PCR檢測方法,如國外Houng等[4]建立的志賀氏菌屬的PCR檢測方法。但其建立的方法因存在一定的局限性而出現(xiàn)錯(cuò)檢或漏檢。在我國,許龍巖等[5]、蔡亦紅[6]等建立的食品中PCR檢測方法均只能鑒定志賀氏菌屬。并且上述傳統(tǒng)的PCR方法通常選擇侵襲質(zhì)粒(ipaH)基因、O抗原合成基因和16S基因作為目標(biāo)基因,因而檢測通常是基于序列的多態(tài)性或序列差別,而不是基于基因序列的缺失或存在。本研究根據(jù)志賀氏菌獨(dú)特的基因設(shè)計(jì)引物進(jìn)行PCR分析,將設(shè)計(jì)的引物用于檢測志賀氏菌屬,同時(shí)對臨床上重要的志賀氏菌(即福氏志賀氏菌、宋內(nèi)志賀氏菌和痢疾志賀氏菌)進(jìn)行區(qū)分。

一個(gè)新的方法在實(shí)驗(yàn)室應(yīng)用之前,必須與得到認(rèn)可的方法進(jìn)行對比,從而得到確證。本研究通過細(xì)菌干擾試驗(yàn)將本室建立的PCR方法與傳統(tǒng)培養(yǎng)法進(jìn)行對比,發(fā)現(xiàn)該P(yáng)CR方法與傳統(tǒng)培養(yǎng)法具有相同的檢出水平,但PCR方法更省時(shí)、方便、快捷。

為了提高檢測的靈敏性,在PCR檢測前,增加了增菌步驟。其優(yōu)點(diǎn)在于:使損傷的細(xì)胞得以修復(fù),使細(xì)胞的數(shù)量增加;稀釋樣品中的抑制劑及死細(xì)胞,從而避免出現(xiàn)假陰性或假陽性,增加檢測的靈敏度,提高檢測的可靠性。

表3 人工污染樣品中志賀氏菌的的檢出情況 單位:份

4 結(jié)論

本研究表明,經(jīng)過增菌之后,直接對增菌肉湯進(jìn)行PCR檢測,在其它雜菌污染輕微的食品中,檢測的靈敏度可達(dá) 1~3 cfu/(25 g·mL-1),即使在有大量雜菌干擾的原奶、生肉和奶粉中,檢測限也分別達(dá)到了≤ 12、27和≤ 27 cfu/(25 g·mL-1)。因此,增菌步驟對提高檢測的靈敏度十分必要。另外,將增菌肉湯劃線接種于固體培養(yǎng)基分離培養(yǎng)后對可疑菌落再進(jìn)行PCR鑒定,發(fā)現(xiàn)在所有檢樣中均能檢測到志賀氏菌,與GB4789.5的傳統(tǒng)培養(yǎng)法的檢測限一致,均達(dá)到了 1~3 cfu/(25 g·mL-1),說明該方法的檢測靈敏度與傳統(tǒng)培養(yǎng)法相同,可用于樣品中志賀氏菌的常規(guī)檢測分析。

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[6] 蔡亦紅. PCR 快速檢測食品中志賀氏菌方法的建立[J].中國人獸共患病學(xué)報(bào),2008,24(2):150-153.

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