閆廣偉,丁燕子,邢金芳,代延朋,杜紅梅,袁恩武
鄭州大學(xué)第三附屬醫(yī)院檢驗(yàn)科 鄭州 450052
滋養(yǎng)細(xì)胞由妊娠初期胚胎外胚層細(xì)胞衍生而來(lái),可分為細(xì)胞滋養(yǎng)細(xì)胞、合體滋養(yǎng)細(xì)胞和中間型滋養(yǎng)細(xì)胞,其中細(xì)胞滋養(yǎng)細(xì)胞為滋養(yǎng)干細(xì)胞,隨著妊娠的形成分化發(fā)育成絨毛滋養(yǎng)細(xì)胞和絨毛膜外滋養(yǎng)細(xì)胞兩種類(lèi)型[1]。絨毛膜外滋養(yǎng)細(xì)胞可以侵入子宮螺旋動(dòng)脈和血管內(nèi)皮,子宮螺旋動(dòng)脈重鑄能夠保證足夠的胎盤(pán)灌流維持正常妊娠。妊娠早期胎盤(pán)發(fā)育處于相對(duì)低氧(2%~5%氧濃度)環(huán)境,蛻膜組織氧濃度在8%左右[2],而此時(shí)氧濃度是影響滋養(yǎng)細(xì)胞侵襲性的關(guān)鍵因素。作為胎盤(pán)的主要成分,低氧條件下滋養(yǎng)細(xì)胞的增殖、分化、侵襲性等生理功能的變化受眾多信號(hào)通路的調(diào)節(jié),滋養(yǎng)細(xì)胞侵襲功能障礙可導(dǎo)致子癇前期、胎兒生長(zhǎng)受限、流產(chǎn)等疾病[3-4]。自噬是一種存在于真核細(xì)胞中依賴溶酶體途徑消化降解自身成分的過(guò)程,微管相關(guān)蛋白1輕鏈3(LC3)和Beclin 1是兩個(gè)重要的自噬相關(guān)分子,檢測(cè)二者的表達(dá)可以判斷細(xì)胞自噬的活性[5]。研究[6-7]表明,胎盤(pán)細(xì)胞自噬在維持正常妊娠過(guò)程起重要作用,自噬過(guò)度或自噬不足與多種妊娠期疾病有關(guān)。滋養(yǎng)細(xì)胞自噬同樣受到眾多信號(hào)通路的調(diào)節(jié),研究[8]顯示缺氧條件下原代培養(yǎng)滋養(yǎng)細(xì)胞自噬水平增強(qiáng),然而低氧誘導(dǎo)滋養(yǎng)細(xì)胞自噬的分子機(jī)制尚不完全明了。本研究以絨毛膜外滋養(yǎng)細(xì)胞HTR-8/SVneo為研究對(duì)象,采用缺氧和自噬抑制劑3-MA處理滋養(yǎng)細(xì)胞,對(duì)HIF-1α/BNIP3信號(hào)通路的關(guān)鍵因子進(jìn)行檢測(cè),探討低氧對(duì)滋養(yǎng)細(xì)胞自噬和侵襲性的影響及其機(jī)制,為妊娠期缺氧性相關(guān)疾病的研究提供理論依據(jù)和新的思路。
1.1主要試劑RPMI 1640培養(yǎng)基購(gòu)自北京索萊寶公司,胎牛血清購(gòu)自杭州四季青公司,胰蛋白酶購(gòu)自美國(guó)HyClone公司,自噬抑制劑3-MA為美國(guó)Selleck公司產(chǎn)品,熒光定量試劑盒SYBI Green購(gòu)自日本TOYOBO公司,Transwell小室購(gòu)自Corning Costar公司,Matrigel基質(zhì)膠購(gòu)自美國(guó)BD公司,HIF-1α、BNIP3兔抗人一抗購(gòu)自美國(guó)Abcam公司,LC3、Beclin 1兔抗人一抗購(gòu)自美國(guó)CST公司。滋養(yǎng)細(xì)胞株HTR-8/SVneo購(gòu)自美國(guó)ATCC公司。
1.2細(xì)胞培養(yǎng)及實(shí)驗(yàn)分組將HTR-8/SVneo細(xì)胞置于含體積分?jǐn)?shù)10%胎牛血清的RPMI 1640培養(yǎng)基,37 ℃、體積分?jǐn)?shù)5%二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng),每2~3 d傳代1次,取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。細(xì)胞以105mL-1的密度接種于6孔板,每孔2 mL,待細(xì)胞達(dá)70%融合時(shí)更換無(wú)血清培養(yǎng)基培養(yǎng)24 h后分為3組:常氧組在正常條件下培養(yǎng)細(xì)胞,缺氧組加入終濃度為200 μmol/L 的CoCl2,3-MA+缺氧組在缺氧組基礎(chǔ)上加入終濃度為5 mmol/L 3-MA。繼續(xù)培養(yǎng)24 h后進(jìn)行1.3和1.4的檢測(cè)。
1.3Real-timePCR檢測(cè)HIF-1α、BNIP3mRNA的表達(dá)量Trizol一步法提取常氧組和缺氧組細(xì)胞總RNA,按照逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說(shuō)明合成cDNA,置于熒光定量PCR儀進(jìn)行擴(kuò)增,擴(kuò)增體系為20 μL。擴(kuò)增條件為95 ℃預(yù)變性60 s;95 ℃變性15 s,60 ℃退火15 s,共40個(gè)循環(huán)。PCR引物(表1)由上海生物工程有限公司設(shè)計(jì)合成。采用2-ΔΔCT法計(jì)算HIF-1α、BNIP3 mRNA的相對(duì)表達(dá)量。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
表1 Real-time PCR擴(kuò)增引物序列及擴(kuò)增片段長(zhǎng)度
F:上游引物;R:下游引物
1.4Westernblot檢測(cè)HIF-1α、BNIP3、Beclin1和LC3蛋白表達(dá)量收集常氧組和缺氧組細(xì)胞,用RIPA蛋白裂解液提取總蛋白,BCA法測(cè)定蛋白濃度,取30 μg蛋白樣品進(jìn)行SDS-PAGE凝膠電泳,之后經(jīng)轉(zhuǎn)膜、封閉后加入按比例稀釋后HIF-1α、BNIP3一抗(按11 000稀釋),4 ℃孵育過(guò)夜,第2天取出室溫平衡后加入辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的二抗(按110 000稀釋),室溫避光孵育1 h,1×TBST洗膜3遍,ECL化學(xué)發(fā)光檢測(cè),最后采用Odyssey Clx紅外熒光掃描成像系統(tǒng)分析目的條帶。另取3組細(xì)胞,同上測(cè)Beclin 1、LC3蛋白表達(dá)量。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
1.5Transwell實(shí)驗(yàn)檢測(cè)細(xì)胞侵襲力在Transwell小室內(nèi)加入100 μL按照18稀釋的Matrigel基質(zhì)膠,將小室放入24孔板內(nèi)置恒溫培養(yǎng)箱孵育4 h,上室加入200 μL細(xì)胞懸液(細(xì)胞密度為5×105mL-1),下室加入600 μL含體積分?jǐn)?shù)10% 胎牛血清的RPMI 1640培養(yǎng)基,放入恒溫培養(yǎng)箱,待細(xì)胞貼壁后,上室按照分組加入CoCl2、3-MA或不處理,置37 ℃、體積分?jǐn)?shù)5%二氧化碳培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)24 h,取出24孔板,用棉簽輕輕擦去上室培養(yǎng)基和未穿透細(xì)胞,PBS溶液輕輕沖洗3遍后,用體積分?jǐn)?shù)4%甲醇固定30 min,在小室內(nèi)加入蘇木精染色15 min,置倒置顯微鏡(×400)下觀察,拍照并計(jì)數(shù),每個(gè)Transwell小室計(jì)數(shù)5個(gè)視野。
1.6統(tǒng)計(jì)學(xué)處理應(yīng)用SPSS 17.0處理數(shù)據(jù)。采用兩獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)比較常氧組和缺氧組HIF-1α、BNIP3 mRNA和蛋白表達(dá)水平的差異,采用單因素方差分析比較常氧組、缺氧組和3-MA+缺氧組Beclin 1和LC3蛋白的表達(dá)水平及侵襲細(xì)胞數(shù)的差異,兩兩比較采用LSD-t檢驗(yàn)。檢驗(yàn)水準(zhǔn)α=0.05。
2.1缺氧對(duì)滋養(yǎng)細(xì)胞HIF-1α、BNIP3mRNA及蛋白表達(dá)的影響Real-time PCR結(jié)果顯示:與常氧組相比,缺氧處理24 h后滋養(yǎng)細(xì)胞HTR-8/SVneo中HIF-1α mRNA表達(dá)水平無(wú)明顯變化,BNIP3 mRNA表達(dá)水平升高,HIF-1α、BNIP3蛋白表達(dá)水平均上調(diào),見(jiàn)圖1、表2。
1:常氧組;2:缺氧組圖1 缺氧后滋養(yǎng)細(xì)胞HIF-1α及BNIP3蛋白的表達(dá)
表2 缺氧條件下滋養(yǎng)細(xì)胞HIF-1α、BNIP3 mRNA和蛋白的表達(dá)
2.2缺氧和3-MA對(duì)滋養(yǎng)細(xì)胞LC3、Beclin1蛋白表達(dá)的影響與常氧組相比,經(jīng)缺氧處理24 h后,滋養(yǎng)細(xì)胞中LC3Ⅱ/LC3Ⅰ、Beclin 1蛋白表達(dá)水平升高;與缺氧組相比,3-MA+缺氧組LC3Ⅱ/LC3Ⅰ蛋白表達(dá)水平降低,同時(shí)Beclin 1蛋白表達(dá)水平下降(圖2、表3)。
1:常氧組;2:缺氧組;3:3-MA+缺氧組圖2 3組滋養(yǎng)細(xì)胞Beclin 1、LC3蛋白的表達(dá)
2.3缺氧和3-MA對(duì)滋養(yǎng)細(xì)胞侵襲力的影響缺氧組侵襲細(xì)胞數(shù)高于常氧組,但在缺氧條件下使用自噬抑制劑3-MA后侵襲細(xì)胞數(shù)減少(圖3、表3)。
A:常氧組;B:缺氧組;C:3-MA+缺氧組圖3 3組滋養(yǎng)細(xì)胞侵襲細(xì)胞數(shù)比較(×400)
表3 3組滋養(yǎng)細(xì)胞Beclin 1、LC3蛋白的表達(dá)水平及侵襲細(xì)胞數(shù)的比較
*:與常氧組相比,P<0.05;#:與缺氧組相比,P<0.05
妊娠期胎盤(pán)是維持胎兒宮內(nèi)生長(zhǎng)發(fā)育的重要器官,胎盤(pán)是母體與胎兒進(jìn)行氧交換和二氧化碳交換的主要場(chǎng)所。本課題組前期研究[9]顯示稽留流產(chǎn)胎盤(pán)絨毛組織滋養(yǎng)層細(xì)胞自噬標(biāo)志物L(fēng)C3Ⅱ/Ⅰ蛋白表達(dá)比值下降,同時(shí)HIF-1α/BNIP3信號(hào)通路在這個(gè)過(guò)程中起重要作用 。Wu等[4]的研究表明滋養(yǎng)細(xì)胞侵襲力的改變可能是流產(chǎn)發(fā)生發(fā)展的重要機(jī)制。正常妊娠12周后,絨毛膜外滋養(yǎng)細(xì)胞可侵入子宮螺旋動(dòng)脈取代其血管內(nèi)皮細(xì)胞,參與平滑肌細(xì)胞的降解[10],在胚胎植入、胎兒發(fā)育、建立有效的母胎循環(huán)過(guò)程中發(fā)揮至關(guān)重要的作用。
HIF-1α是細(xì)胞內(nèi)的一種轉(zhuǎn)錄因子,與HIF-1β構(gòu)成異二聚體,可調(diào)控100多種靶基因的表達(dá),在調(diào)節(jié)血管形成、胎盤(pán)和胚胎發(fā)育、糖代謝及細(xì)胞凋亡和自噬過(guò)程中扮演重要角色。Dubinsky等[11]研究發(fā)現(xiàn)HIF-1α在滋養(yǎng)層細(xì)胞中表達(dá),參與控制了滋養(yǎng)層細(xì)胞的侵入和遷移。研究[12]已證實(shí)BNIP3參與細(xì)胞凋亡、自噬和細(xì)胞壞死等過(guò)程;BNIP3在機(jī)體缺氧條件下會(huì)急劇升高,其表達(dá)受HIF-1α的調(diào)控。本研究以絨毛膜外滋養(yǎng)細(xì)胞HTR-8/SVneo為研究對(duì)象,采用CoCl2處理模擬細(xì)胞缺氧模型[13],結(jié)果顯示缺氧處理24 h后HIF-1α、BNIP3蛋白及BNIP3 mRNA的表達(dá)水平均升高,但HIF-1α mRNA的表達(dá)水平無(wú)明顯改變。
LC3是自噬體膜上重要的標(biāo)記蛋白,它在細(xì)胞內(nèi)以LC3Ⅰ和LC3Ⅱ兩種形式存在。在自噬發(fā)生過(guò)程中, LC3Ⅰ轉(zhuǎn)化為L(zhǎng)C3Ⅱ并定位于自噬體膜,因此LC3Ⅱ/Ⅰ可以反映自噬水平的高低[14]。Beclin 1是酵母ATG6/Vps30基因在哺乳動(dòng)物中的同源物,位于人類(lèi)染色體17q21,主要通過(guò)與ClassⅢ PI3K和Atg14L結(jié)合形成復(fù)合體調(diào)控自噬體的形成[15]。低氧條件下,活化的HIF-1α通過(guò)上調(diào)BNIP3將Beclin 1從Beclin 1/Bcl-2復(fù)合體解離釋放,激活自噬[16]。本研究結(jié)果顯示滋養(yǎng)細(xì)胞缺氧后,自噬標(biāo)志蛋白Beclin 1及 LC3Ⅱ/Ⅰ表達(dá)均升高,而加用自噬抑制劑3-MA后滋養(yǎng)細(xì)胞Beclin 1和LC3Ⅱ/Ⅰ蛋白表達(dá)水平降低。這一發(fā)現(xiàn)表明缺氧可誘導(dǎo)滋養(yǎng)細(xì)胞自噬的發(fā)生,HIF-1α/BNIP3途徑可能在此過(guò)程中起重要作用。
滋養(yǎng)細(xì)胞的侵襲、浸潤(rùn)是一個(gè)多因素參與調(diào)節(jié)、多步驟的復(fù)雜過(guò)程。有研究[17]顯示缺氧條件下人絨毛膜外滋養(yǎng)細(xì)胞MMP-2表達(dá)升高并使細(xì)胞侵襲力增強(qiáng),同時(shí)MMP-9和TIMP-1表達(dá)升高;缺氧可通過(guò)MMP-9/TIMP-1來(lái)調(diào)節(jié)細(xì)胞侵襲性。Maltepe等[18]研究發(fā)現(xiàn),滋養(yǎng)細(xì)胞在低氧條件下可以通過(guò)激活HIF-1α影響其侵襲能力。研究[19-20]顯示,腫瘤細(xì)胞自噬與其侵襲性存在復(fù)雜關(guān)系,然而自噬與滋養(yǎng)細(xì)胞侵襲性的相關(guān)研究國(guó)內(nèi)外較少。本研究結(jié)果顯示,HTR-8/SVneo細(xì)胞缺氧24 h后侵襲細(xì)胞數(shù)量比常氧組增多,此外,自噬抑制劑3-MA對(duì)缺氧后滋養(yǎng)細(xì)胞侵襲力有抑制作用,這表明自噬抑制劑可能通過(guò)抑制缺氧誘導(dǎo)的自噬從而影響滋養(yǎng)細(xì)胞的侵襲能力。結(jié)合前期研究,我們推測(cè)在低氧環(huán)境中,稽留流產(chǎn)患者絨毛滋養(yǎng)層細(xì)胞自噬減弱,滋養(yǎng)細(xì)胞處于低浸潤(rùn)能力狀態(tài),不足以應(yīng)對(duì)缺氧環(huán)境帶來(lái)的壓力,無(wú)法正常促進(jìn)胚泡植入和胎盤(pán)形成,從而導(dǎo)致胚胎停止發(fā)育,發(fā)生稽留流產(chǎn)[9]。
綜上所述,低氧可能通過(guò)HIF-1α/BNIP3途徑誘導(dǎo)滋養(yǎng)細(xì)胞自噬并影響其侵襲能力,自噬抑制劑3-MA通過(guò)抑制低氧條件下滋養(yǎng)細(xì)胞自噬的發(fā)生從而降低其侵襲性。缺氧環(huán)境中滋養(yǎng)細(xì)胞自噬、侵襲性和妊娠期相關(guān)疾病之間存在錯(cuò)綜復(fù)雜的關(guān)系,仍需進(jìn)一步深入研究。
[1] GENBACEV O,ZHOU Y,LUDLOW JW,et al.Regulation of human placental development by oxygen tension[J].Science,1997,277(5332):1669
[2] JAUNIAUX E,WATSON A,BURTON G.Evaluation of respiratory gases and acid-base gradients in human fetal fluids and uteroplacental tissue between 7 and 16 weeks' gestation[J].Am J Obstet Gynecol,2001,184(5):998
[3] LIAN IA,TOFT JH,OLSEN GD,et al.Matrix metalloproteinase 1 in pre-eclampsia and fetal growth restriction: reduced gene expression in decidual tissue and protein expression in extravillous trophoblasts[J].Placenta,2010,31(7):615
[4] WU Y,CHEN X,CHANG X,et al.Potential involvement of placental AhR in unexplained recurrent spontaneous abortion[J]. Reprod Toxicol,2016,59:45
[5] NAKASHIMA A,AOKI A,KUSABIRAKI T,et al.Role of autophagy in oocytogenesis, embryogenesis, implantation, and pathophysiology of pre-eclampsia[J].J Obstet Gynaecol Res,2017,43(4):633
[6] CHU A,THAMOTHARAN S,GANGULY A,et al.Gestational food restriction decreases placental interleukin-10 expression and markers of autophagy and endoplasmic reticulum stress in murine intrauterine growth restriction[J].Nutri Res,2016,36(10):1055
[7] SAITO S,NAKASHIMA A.A review of the mechanism for poor placentation in early-onset preeclampsia: the role of autophagy in trophoblast invasion and vascular remodeling[J].J Reprod Immunol,2014,101-102:80
[8] CHEN B,LONGTINE MS,NELSON DM.Hypoxia induces autophagy in primary human trophoblasts[J].Endocrinology,2012,153(10):4946
[9] 袁恩武,王銀芳,邢金芳,等.妊娠早期稽留流產(chǎn)患者絨毛組織中HIF-1α、BNIP3、LC3的表達(dá)[J].鄭州大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版),2017,52(3):335
[10]STARZYK KA,SALAFIA CM,PEZZULLO JC,et al.Quantitative differences in arterial morphometry define the placental bed in preeclampsia[J].Human Pathol,1997,28(3):353
[11]DUBINSKY V,POEHLMANN TG,SUMAN P,et al.Role of regulatory and angiogenic cytokines in invasion of trophoblastic cells[J].Am J Reprod Immunol,2010,63(3):193
[12]FARRALL AL,WHITELAW ML.The HIF1alpha-inducible pro-cell death gene BNIP3 is a novel target of SIM2s repression through cross-talk on the hypoxia response element[J].Oncogene,2009,28(41):3671
[13]YUAN Y,HILLIARD G,FERGUSON T,et al.Cobalt inhibits the interaction between hypoxia-inducible factor-alpha and von Hippel-Lindau protein by direct binding to hypoxia-inducible factor-alpha[J].J Biol Chem,2003,278(18):15911
[14]MIZUSHIMA N,YOSHIMORI T,LEVINE B.Methods in mammalian autophagy research[J].Cell,2010,140(3):313
[15]KANG R,ZEH HJ,LOTZE MT,et al.The Beclin 1 network regulates autophagy and apoptosis[J].Cell Death Differ,2011,18(4):571
[16]LEVINE B,KROEMER G.Autophagy in the pathogenesis of disease[J].Cell,2008,132(1):27
[17]LI G,ZHANG Y,QIAN Y,et al.Interleukin-17A promotes rheumatoid arthritis synoviocytes migration and invasion under hypoxia by increasing MMP2 and MMP9 expression through NF-κB/HIF-1α pathway[J].Mol Immunol,2013,53(3):227
[18]MALTEPE E,KRAMPITZ GW,OKAZAKI KM,et al.Hypoxia-inducible factor-dependent histone deacetylase activity determines stem cell fate in the placenta[J].Development,2005,132(15):3393
[19]CATALANO M,D'ALESSANDRO G,LEPORE F,et al.Autophagy induction impairs migration and invasion by reversing EMT in glioblastoma cells[J].Mol Oncol,2015,9(8):1612
[20]GOU WF,SHEN DF,YANG XF,et al.ING5 suppresses proliferation, apoptosis, migration and invasion, and induces autophagy and differentiation of gastric cancer cells: a good marker for carcinogenesis and subsequent progression[J].Oncotarget,2015,6(23):19552
鄭州大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版)2018年2期