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黃嘌呤氧化酶活性對(duì)大鼠血清胰島素水平的影響

2019-01-17 06:26:16馬淑麗李省三李洪龍婁峰閣李繼媛孫威陳影梁馨元劉暢張淼剛薛陽薛海峰
世界復(fù)合醫(yī)學(xué) 2018年5期
關(guān)鍵詞:黃嘌呤酵母粉灌胃

馬淑麗 ,李省三 ,李洪龍 ,婁峰閣 ,李繼媛 ,孫威 ,陳影 ,梁馨元 ,劉暢 ,張淼剛 ,薛陽 ,薛海峰

1.齊齊哈爾醫(yī)學(xué)院公共衛(wèi)生學(xué)院,黑龍江齊齊哈爾 161006;2.齊齊哈爾醫(yī)學(xué)院醫(yī)學(xué)技術(shù)學(xué)院,黑龍江齊齊哈爾 161006

糖尿病作為常見慢性病之一,其患病率逐年升高[1],而且常見高尿酸血癥(HUA)并發(fā)[2]。一些研究認(rèn)為HUA是糖尿病的危險(xiǎn)因素[3-4]。HUA的原因有兩方面:一方面是尿酸(UA)排泄障礙,另一方面是UA生成過多[5]。嘌呤代謝可產(chǎn)生UA,黃嘌呤氧化酶(XO)是其關(guān)鍵酶之一,而且XO催化過程中產(chǎn)生超氧陰離子和過氧化氫,導(dǎo)致氧化應(yīng)激[5]。氧化應(yīng)激可引起組織細(xì)胞過氧化損傷,損害組織細(xì)胞功能。大量研究表明UA過高可誘發(fā)胰島素抵抗和糖尿病[6],但XO活化所致氧化應(yīng)激是否起作用研究較少。2017年9月以大鼠為研究對(duì)象,擬探討XO所致氧化應(yīng)激在胰島素抵抗和糖尿病發(fā)生中的作用。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 動(dòng)物 39只SD大鼠,雄性,192.5~250.1g,齊齊哈爾醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供。實(shí)驗(yàn)前適應(yīng)性喂養(yǎng)1周,自由攝食和飲水。

1.1.2 儀器 低溫高速離心機(jī),紫外可見光分光光度計(jì),全自動(dòng)酶標(biāo)分析儀,電熱恒溫培養(yǎng)箱,數(shù)顯恒溫水浴鍋,電子天平等實(shí)驗(yàn)設(shè)備。

1.1.3 試劑 酵母粉、苯溴馬隆片、UA、XO和大鼠胰島素試劑盒。

1.2 方法

按大鼠體重分層隨機(jī)分組,每組13只:空白對(duì)照組(C 組)按10g/(kg·d)酵母粉灌胃,酵母組(Y 組)按10g/(kg·d)酵母粉、5mg/(kg·d)苯溴馬隆灌胃,“酵母+苯溴馬隆”組(YB組)灌胃等體積蒸餾水,每天分2次灌胃給藥。實(shí)驗(yàn)持續(xù)4周,每周稱量大鼠體重一次,根據(jù)體重調(diào)整灌胃量。

1.3 指標(biāo)檢測(cè)

干預(yù)前和干預(yù)后,大鼠外眥靜脈采血,室溫下放置1h,3000r/min離心10min,分離血清,測(cè)定血清中UA、XO、GLU、INS 水平,并計(jì)算胰島素抵抗指數(shù)(IRI)。 IRI=空腹血糖水平(mmol/L)×空腹胰島素水平(mU/L)/22.5。

1.4 統(tǒng)計(jì)方法

采用SPSS24.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件分析數(shù)據(jù)。計(jì)量資料正態(tài)數(shù)據(jù),用均值±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,多組均數(shù)采用方差分析兩兩比較;干預(yù)前后比較采用配對(duì)t檢驗(yàn)。統(tǒng)計(jì)檢驗(yàn)水準(zhǔn)為α=0.05。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 干預(yù)前大鼠各項(xiàng)指標(biāo)比較

干預(yù)前,除了C組和Y組大鼠血糖水平高于對(duì)照組外,其他各項(xiàng)指標(biāo)組間均差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。詳見表1。

表1 干預(yù)前大鼠各項(xiàng)指標(biāo)水平(±s)

表1 干預(yù)前大鼠各項(xiàng)指標(biāo)水平(±s)

注:#與 YB 組比較,P<0.05。

組別UA(μmol/L)XO(U/L)GLU(mmol/L)INS(mU/L) IRI C 組(n=13)Y 組(n=13)YB 組(n=13)124.8±44.9125.4±34.4118.7±35.29.6±0.99.7±0.810.3±1.4(6.1±1.0)#(6.1±0.7)#5.1±0.81.69±0.181.61±0.151.74±0.140.46±0.090.44±0.060.40±0.06

2.2 干預(yù)后大鼠各項(xiàng)指標(biāo)比較

干預(yù)后,Y組大鼠血清XO活性升高,Y組和YB組大鼠血清XO活性均高于C組。C組大鼠血清GLU水平降低,而Y組和YB組均升高;Y組大鼠血清GLU水平高于C組和YB組。各組大鼠血清INS水平均降低,而且Y組和YB組大鼠血清INS水平均低于對(duì)照組。各組大鼠胰島素抵抗水平均下降,而且YB組大鼠胰島素抵抗水平低于C組和Y組。詳見表2。

表2 干預(yù)后大鼠各項(xiàng)指標(biāo)水平(±s)

表2 干預(yù)后大鼠各項(xiàng)指標(biāo)水平(±s)

注:*與 C 組比較,P<0.05;※與干預(yù)前比較,P<0.05;&與 Y 組比較,P<0.05;#與 YB 組比較,P<0.05。

組別UA(μmol/L)XO(U/L)GLU(mmol/L)INS(mU/L) IRI C 組(n=13)Y 組(n=13)YB 組(n=13)120.1±17.3138.7±23.9141.1±14.69.0±1.1(10.8±1.0)*※(10.4±1.0)*(5.5±0.6&)※(6.9±0.7)※(5.9±1.0&)※(1.15±0.21)※(0.91±0.29)*※(0.76±0.09)*※(0.28±0.06)#※(0.28±0.10)#※(0.20±0.03)※

3 討論

UA是嘌呤代謝的終產(chǎn)物,XO是代謝過程的關(guān)鍵酶。XO催化次黃嘌呤、黃嘌呤生成尿酸時(shí),產(chǎn)生超氧化陰離子和過氧化氫。超氧化陰離子和過氧化氫等自由基過多可引起氧化應(yīng)激,氧化應(yīng)激可造成組織細(xì)胞損傷[5]。

用酵母粉(或膏)制備的高尿酸血癥動(dòng)物模型不穩(wěn)定[7]。周道遠(yuǎn)等[8]研究發(fā)現(xiàn),與干預(yù)前(138.52±16.50)μmol/L 相比,干預(yù)2周后酵母干預(yù)組大鼠血清尿酸(168.76±33.04)μmol/L 升高(P<0.05),干預(yù)3周后(159.98±41.65)μmol/L降低(P>0.05)。 該研究結(jié)果與之相似,與干預(yù)前(125.4±34.4)μmol/L相比,干預(yù)4周后Y組大鼠血清UA水平(138.7±23.9)μmol/L 無明顯升高(P>0.05)。 這可能由于大鼠自身代償機(jī)制使尿酸酶數(shù)量增加或活性增強(qiáng),以及苯溴馬隆的促尿酸排泄作用使尿酸水平下降。吳安康等[9]研究發(fā)現(xiàn),與對(duì)照組(9.48±1.05)U/L相比,酵母干預(yù)組小鼠血清 XO 活性(19.54±2.23)U/L 高(P<0.05)。 該研究也發(fā)現(xiàn),Y組大鼠血清XO活性升高[干預(yù)前(9.7±0.8)U/L,干預(yù)后(10.8±1.0)U/L,P<0.05],且高于 C 組[(9.0±1.1)U/L,P<0.05],說明酵母可以促進(jìn)XO活化。Li X等[10]研究發(fā)現(xiàn),XO活化是2性糖尿病的獨(dú)立危險(xiǎn)因素。以第一四分位數(shù)為對(duì)照,黃嘌呤氧化酶活性為第四四分位數(shù)人群的糖尿病發(fā)病風(fēng)險(xiǎn):男性為1.90(95%CI1.30~2.78),女性為2.36(1.43~3.90)。該研究發(fā)現(xiàn),Y組大鼠血清INS水平降低 [干預(yù)前(1.61±0.15)mU/L,干預(yù)后(0.91±0.29)mU/L,P<0.05],并低于對(duì)照組[(1.15±0.21)mU/L,P<0.05],說明黃嘌呤氧化酶活化誘發(fā)糖尿病的機(jī)制可能是XO活化所致氧化應(yīng)激損傷了胰島B細(xì)胞功能,使胰島素分泌減少。

綜上所述,該研究發(fā)現(xiàn)酵母灌胃可促進(jìn)大鼠血清XO活性升高和INS水平降低,可能機(jī)制是XO活化產(chǎn)生的超氧陰離子和過氧化氫導(dǎo)致氧化應(yīng)激,這可能對(duì)大鼠胰島B細(xì)胞功能有損傷作用,使胰島素分泌減少。

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