鄒敬宇,班允超,徐曉鶴,包義君,吳安華
(中國(guó)醫(yī)科大學(xué) 1. 附屬第一醫(yī)院神經(jīng)外科,沈陽(yáng) 110001; 2. 附屬盛京醫(yī)院眼科,沈陽(yáng) 110004)
阿爾茨海默病 (Alzheimer disease,AD) 是一種進(jìn)行性發(fā)展的神經(jīng)系統(tǒng)退行性疾?。?],占癡呆病例的60%~70%[2],目前公認(rèn)的病理生理特征為淀粉樣蛋白的沉積和神經(jīng)纖維纏結(jié)及神經(jīng)細(xì)胞凋亡[3]。然而,認(rèn)知能力與斑塊的積累并非總是密切相關(guān)[4]。無(wú)論是AD患者還是AD模型小鼠,在淀粉樣蛋白斑塊出現(xiàn)之前,通常就已經(jīng)出現(xiàn)了學(xué)習(xí)能力的損害[5]。越來(lái)越多的研究[6]表明,在形成淀粉樣沉積前,可溶性的β-淀粉樣蛋白 (amyloid β-protein,Aβ) 在AD的病理進(jìn)程中發(fā)揮著重要作用,尤其是AD早期階段。腦外傷 (traumatic brain injury,TBI) 是導(dǎo)致AD的危險(xiǎn)因素[7],并且可以加速AD的病理進(jìn)程,降低AD的發(fā)病年齡[8]。有研究[9]表明,TBI或運(yùn)動(dòng)相關(guān)的腦損傷可加速AD樣神經(jīng)病理學(xué)的改變。與無(wú)損傷的大腦相比,受損的大腦內(nèi)不溶性Aβ沉積物更多。在3xTg-AD模型小鼠中,TBI小鼠提前出現(xiàn)了AD樣病理學(xué)的改變[10]。而TBI是否可導(dǎo)致可溶性Aβ增加,從而導(dǎo)致行為學(xué)改變以及突觸和神經(jīng)元功能受損,尚無(wú)報(bào)道。
1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物及分組:20只C57BL/6雄性小鼠(WT),20只三轉(zhuǎn)基因APP/PS1/tau雄性小鼠 (3xTg) ,4~5月齡,由日本金澤醫(yī)科大學(xué)生理學(xué)Ⅰ實(shí)驗(yàn)室惠贈(zèng)。各隨機(jī)分為2組 (n = 10) ,分別標(biāo)記為WT組和3xTg組。距前囟和頂枕點(diǎn)連線中點(diǎn)左右兩側(cè)2.0 mm處,用直徑為0.6 mm的電鉆鉆開(kāi)顱骨,使用漢密爾頓1 μL注射器,在雙側(cè)皮質(zhì)表面以下1.0 mm處注入0.25 μmol/L谷氨酸鈉 (glutamate,Glu) 或生理鹽水0.2 μL。
1.1.2 主要試劑及儀器:Glu,Morris水迷宮及視頻軟件,震蕩切片機(jī),玻璃電極控制儀,恒流泵,恒溫浴槽,電子天平,生理信號(hào)采集記錄分析系統(tǒng)。
1.2.1 Morris水迷宮實(shí)驗(yàn):本研究采用經(jīng)典Morris水迷宮實(shí)驗(yàn)方法[11]。應(yīng)用圓形恒溫水池 (直徑150 cm,高50 cm) ,水溫 (25±1) ℃;在第2象限正中放置直徑9 cm、低于水面1 cm的圓形平臺(tái),距離水池邊緣約30 cm,各象限的池壁中點(diǎn)處上方分別放置紅、綠、藍(lán)、黃色的模型作為小鼠尋找平臺(tái)的參照物。實(shí)驗(yàn)期間,保持圓形平臺(tái)和4個(gè)參照物的位置不變。
連續(xù)5 d進(jìn)行定位航行實(shí)驗(yàn),每日下午1次,在4個(gè)象限中點(diǎn)處作為入水點(diǎn),將小鼠面向池壁置入水中,記錄1 min內(nèi)找到平臺(tái)的時(shí)間,如1 min內(nèi)小鼠仍未找到平臺(tái),則將小鼠人為放置于平臺(tái),停留1 min。每次入水實(shí)驗(yàn)間隔休息30 s,將小鼠拭干。在第5天實(shí)驗(yàn)結(jié)束后撤去平臺(tái),設(shè)置同樣的參數(shù)進(jìn)行空間探索實(shí)驗(yàn),任選一處入水,測(cè)量小鼠穿越平臺(tái)所在位置的次數(shù),停留時(shí)間及游動(dòng)距離。尾靜脈注射,7 d后再進(jìn)行Morris水迷宮實(shí)驗(yàn)。第1組小鼠完成注射2周后行Morris水迷宮實(shí)驗(yàn)。另一組小鼠在Morris水迷宮實(shí)驗(yàn)后進(jìn)行注射,2周后進(jìn)行第2次水迷宮實(shí)驗(yàn)。
1.2.2 小鼠海馬腦片細(xì)胞外記錄場(chǎng)興奮性突觸后電 位 (field exciatatory postsynaptic potential,fEPSP):配置好使用的人工腦脊液(artificial cerebrospinal fluid,ACSF) 和切片液,裝有切片的燒杯至于冰水混合物中,小鼠斷頭取腦,置入切片液中5 min,取出腦組織,分離海馬及相連皮質(zhì),用低濃度瓊脂將組織固定于備好的瓊脂塊膠皿中,切片液倒入膠皿,將膠皿固定在振動(dòng)切片機(jī),腦片厚度400 μm,將切好的腦片置入ACSF中,所有操作均通氧氣。使用恒流泵建立有氧的ACSF循環(huán)。腦片轉(zhuǎn)至記錄槽固定,刺激電極置于CA3區(qū)錐體細(xì)胞schaffer側(cè)支,記錄電極(充以1 mol/L NaCl玻璃微電極) 置于CA1區(qū)錐體細(xì)胞樹(shù)突層130~200 μm。設(shè)置參數(shù),刺激電壓為引起最大fEPSP的30%,基礎(chǔ)fEPSP穩(wěn)定30 min,穩(wěn)定后記錄5 min,改為T(mén)BS參數(shù),TBS后改為原參數(shù)記錄fEPSP,如PS增幅>20%,持續(xù)30 min,視為L(zhǎng)TP誘發(fā)成功。
斷頭取腦,液氮凍存游離的海馬組織,按腦質(zhì)量加入相當(dāng)體積的生理鹽水,用勻漿器將組織研磨,在冰浴下超聲波粉碎制成勻漿,4 ℃,10 000 r/min離心10 min,取上清液備用。上清液用1 mol/L Tris稀釋20倍,中和PH。采用BNT-77/BC-05夾心酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)試劑盒說(shuō)明書(shū) (日本W(wǎng)ako Chemical Ltd公司)進(jìn)行操作。建立標(biāo)準(zhǔn)曲線:試劑盒標(biāo)準(zhǔn)溶液 (人Aβ1-42) 20 pmol/L,然后獲得每個(gè)腦組織的Aβ1-42的濃度(pmol·L-1·g-1) 。對(duì)于每個(gè)樣品,重復(fù)測(cè)量2次。
采用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行方差分析和t檢驗(yàn),計(jì)量資料采用表示,P < 0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
與3xTg小鼠相比,WT小鼠逃避潛伏期顯著縮短 (P < 0.01,表1) ,將WT和3xTg小鼠每組再分為平均成績(jī)幾乎相同的2組,分別注射谷氨酸鈉 (WT+G組和3xTg +G組) 和生理鹽水 (WT+S組和3xTg +S組) 。與3xTg+S組小鼠相比,3xTg+G組小鼠逃避潛伏期顯著增加 (P < 0.05,表2) ,3xTg+G組小鼠 1 min內(nèi)在平臺(tái)所在象限停留時(shí)間比例(40.64%±1.36%) 顯著低于3xTg+S組小鼠 (48.56%±1.63%) (P < 0.05,n = 10) 。而WT+S組小鼠與WT+G組小鼠的逃避潛伏期無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異 (P > 0.05,表2) ;WT+S組小鼠(53.74%±1.24%) 與WT+G組小鼠 (51.58%±1.46%)1 min內(nèi)在平臺(tái)所在象限停留時(shí)間比例無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異 (P > 0.05,n = 10) 。
表1 各組小鼠逃避潛伏期 ( ,n = 10)Tab.1 Escape latency of mice in each group ( ,n = 10)
表1 各組小鼠逃避潛伏期 ( ,n = 10)Tab.1 Escape latency of mice in each group ( ,n = 10)
Compared with 3xTg mice,1) P < 0.05;2) P < 0.01.
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表2 Glu對(duì)各組小鼠逃避潛伏期的影響 (,n = 10)Tab.2 Effect of glutamate on escape latency of mice in each group (,n = 10)
表2 Glu對(duì)各組小鼠逃避潛伏期的影響 (,n = 10)Tab.2 Effect of glutamate on escape latency of mice in each group (,n = 10)
Compared with 3xTg+G group,1) P < 0.05.
?
各組高頻強(qiáng)直刺激后成功誘發(fā)LTP,持續(xù)記錄30 min。3xTg+S組小鼠fEPSP斜率明顯高于3xTg+G組小鼠,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義 (P < 0.05) 。WT+G組小鼠與WT+S組小鼠fEPSP相比,斜率無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異 (P> 0.05) ,見(jiàn)圖1。
圖1 各組小鼠高頻強(qiáng)直電刺激前后海馬CA1區(qū)fEPSP相對(duì)最大斜率的比較
從每組隨機(jī)選出3只小鼠并取出雙側(cè)海馬,進(jìn)行DNA微陣列分析。注射生理鹽水的組與注射Glu的組相比,有3個(gè)基因的表達(dá)增加了2倍以上 (P < 0.05,n = 3) ,1個(gè)基因下調(diào)2倍以上 (P < 0.05,n = 3) 。見(jiàn)表3。
為了驗(yàn)證Glu可能導(dǎo)致海馬內(nèi)Aβ1-42增加,從而導(dǎo)致3xTg小鼠的學(xué)習(xí)能力惡化,用酶聯(lián)免疫吸附實(shí)驗(yàn)比較了3xTg+G組小鼠和3xTg+S組小鼠海馬可溶性Aβ1-42含量。結(jié)果表明,3xTg+G組 (6.037 pmol·L-1·g-1) 海馬內(nèi)可溶性Aβ1-42顯著高于3xTg+S組 (4.327 pmol·L-1·g-1,t = 2.776,P = 0.020) 。
已有研究[12]顯示,TBI可加速Aβ斑塊的沉積,從而加速其認(rèn)知功能的損害,然而,TBI是否在早期即引起可溶性Aβ增加,從而引起認(rèn)知功能的損害,目前尚無(wú)報(bào)道[13]。因此,近來(lái)越來(lái)越多的學(xué)者將目光集中到了AD早期細(xì)胞內(nèi)可溶性Aβ的相關(guān)研究。
本研究以4~5月齡的3xTg-AD模型小鼠為研究對(duì)象,該月齡小鼠特點(diǎn)為可溶性Aβ已在細(xì)胞內(nèi)聚集,而細(xì)胞外Aβ斑塊尚未沉積。結(jié)果表明,Glu誘導(dǎo)的微小皮質(zhì)損傷能夠損害3xTg-AD模型小鼠空間學(xué)習(xí)能力。
通過(guò)1次傳統(tǒng)的Morris水迷宮實(shí)驗(yàn),將3xTg小鼠分為成績(jī)相同的2組,同時(shí)將WT小鼠也分為成績(jī)相同的2組,分別進(jìn)行Glu損傷注射和生理鹽水對(duì)照注射,而后進(jìn)行重復(fù)的Morris實(shí)驗(yàn)表明,3xTg+S組的學(xué)習(xí)記憶能力明顯優(yōu)于3xTg+G組。而WT+S組與WT+G組無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。
表3 各組小鼠海馬組織DNA微陣列分析結(jié)果 (n = 3)Tab.3 Results of DNA microarray analysis in hippocampi of mice in each group (n = 3)
為了驗(yàn)證Glu誘導(dǎo)3xTg小鼠學(xué)習(xí)能力惡化的原因,用酶聯(lián)免疫吸附實(shí)驗(yàn)對(duì)比了3xTg+G組和3xTg+S組小鼠海馬組織中可溶性Aβ1-42含量,結(jié)果表明,3xTg+G組學(xué)習(xí)能力的下降可能與海馬組織中可溶性Aβ1-42含量的增加有關(guān)。
本研究中,海馬并未直接受到注射損傷,故推斷注射損傷可能產(chǎn)生了某些因子并傳遞到海馬組織,而Glu引起海馬內(nèi)可溶性Aβ1-42含量增高,可能也由這些因子造成,因此本研究進(jìn)行了DNA微陣列分析。結(jié)果表明,與生理鹽水對(duì)照組相比,Glu注射組海馬組織的Prg4,4833420G17Rik,Arhgef10基因表達(dá)增加了2倍以上 (P < 0.05) ,Upk1b基因表達(dá)下降了2倍以上 (P < 0.05) ,但它們是否與Aβ的增殖和清除存在直接關(guān)聯(lián)目前尚無(wú)報(bào)道。因此,這些“可移動(dòng)的”因子還有待進(jìn)一步研究。
顱腦損傷與AD的相互作用還存在很多未知因素,微小顱腦損傷可能加快AD臨床前期的發(fā)展速度。神經(jīng)細(xì)胞凋亡可上調(diào)皮質(zhì)中某種因子的表達(dá),該因子通過(guò)某種途徑轉(zhuǎn)運(yùn)至海馬組織中,激活A(yù)β42產(chǎn)生的循環(huán)通路,啟動(dòng)小鼠認(rèn)知功能障礙。未來(lái)將通過(guò)體內(nèi)外實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步研究皮質(zhì)神經(jīng)細(xì)胞凋亡—某因子—Aβ42—小鼠認(rèn)知功能障礙之間的內(nèi)在機(jī)制。