韓芬霞,范新景,耿 升,婁文娟,梁桂兆,劉本國,*
(1.河南科技學院動物科技學院,河南 新鄉(xiāng) 453003;2.河南科技學院食品學院,河南 新鄉(xiāng) 453003;3.重慶大學生物工程學院,生物流變科學與技術教育部重點實驗室,重慶 400044)
α-葡萄糖苷酶(EC 3.2.1.20)又名α-D-葡萄糖苷水解酶,具有水解和轉糖苷雙重作用,被廣泛應用于乙醇發(fā)酵、低聚糖生產、淀粉水解、食品成分分析、代謝機理研究和生物診斷等領域[1-3]。α-葡萄糖苷酶參與生物體的糖代謝,對維持人體的正常生理功能起著重要作用,其在小腸內可以催化多糖分解為葡萄糖,由此會引發(fā)餐后高血糖,而控制餐后高血糖是控制糖尿病患者發(fā)病的重要手段。采用α-葡萄糖苷酶抑制劑,可有效控制α-葡萄糖苷酶的活性,降低II型糖尿病及并發(fā)癥的發(fā)生率[4-5]。目前,臨床上已有一些通過抑制α-葡萄糖苷酶活性來治療糖尿病的藥物,其中研究最為成熟的是阿卡波糖、伏格列波糖、米格列醇,這些藥物雖然可以有效降低餐后血糖水平和減少糖尿病并發(fā)癥的發(fā)生,但毒副作用較大[6-7]。近來的研究表明,來源于植物的類黃酮具有較強的α-葡萄糖苷酶抑制活性和較低的生物毒性[8-10]。劉杰等采用聚酰胺柱制備青錢柳總黃酮,發(fā)現(xiàn)其α-葡萄糖苷酶抑制活性高于阿卡波糖,可顯著改善小鼠糖耐量,降低餐后血糖濃度[11]。芶琳等發(fā)現(xiàn)富含黃酮的老鷹茶乙醇提取物對α-葡萄糖苷酶有較強的抑制作用(半抑制濃度(half maximal inhibitory concentration,IC50)為0.12 mg/mL),其抑制機制為可逆混合型[12]。
圖1 異甘草素的化學結構Fig. 1 Chemical structure of isoliquiritigenin
異甘草素(圖1)屬于查耳酮類物質,是甘草等藥食兩用植物的重要活性成分,具有抗氧化、抗炎、抗腫瘤、維護心腦血管等多種生物活性[13-15]。余穎等發(fā)現(xiàn)甘草酸提取廢液的乙酸乙酯萃取物具有良好的α-葡萄糖苷酶抑制活性,推測與其富含甘草素、異甘草素及其糖苷有關[16]。但至今鮮有對于異甘草素抑制α-葡萄糖苷酶的系統(tǒng)研究。鑒于此,本研究擬通過酶抑制動力學、熒光猝滅等實驗手段考察異甘草素的酶抑制及互作情況,運用Surflex-Dock分子對接法研究異甘草素與酶的結合模式,將實驗和模擬手段相結合,以揭示異甘草素抑制α-葡萄糖苷酶的分子機制。本研究對推動異甘草素在食品領域的應用、開發(fā)新型的降糖保健品具有一定的參考意義。
異甘草素、阿卡波糖、對硝基苯酚 上海阿拉丁生化科技股份有限公司;α-葡萄糖苷酶(來自釀酒酵母)、對硝基苯-α-D-吡喃葡糖苷 美國Sigma-Aldrich公司;其他試劑皆為國產分析純。
Cary Eclipse熒光分光光度計 美國Agilent公司;TU-1810PC紫外-可見分光光度計 北京普析通用儀器有限公司;GenPure UF/UV純水超純水系統(tǒng) 美國Thermo Scientific公司;ME104電子天平 梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司。
1.3.1 α-葡萄糖苷酶抑制效果測定
對硝基苯-α-D-吡喃葡糖苷(4-nitrophenyl α-D-glucopyranoside,PNPG)作為底物時可被α-葡萄糖苷酶水解為黃色且在405 nm波長處有最大吸收的對硝基苯酚。參照文獻[17]的方法,分別取1 mL α-葡萄糖苷酶溶液(0.2 U/mL)與1 mL的10、20、30、40、50 μg/mL異甘草素溶液在試管中振蕩使混勻,對照管用1.0 mL磷酸鹽緩沖液(0.1 mol/L,pH 6.8)代替樣品,在37 ℃水浴中反應10 min,而后向試管中加入1 mL底物PNPG(1 mmol/L)溶液,反應20 min,最后迅速加入1 mL無水乙醇使酶失活,終止反應,測定405 nm波長處的吸光度。空白管為1 mL樣品與1 mL酶混合,加入1 mL緩沖液,最后加入1 mL無水乙醇使酶失活。每次實驗3 組平行。樣品的抑制率效果用IC50進行比較,抑制率按公式(1)計算。
1.3.2 α-葡萄糖苷酶的抑制類型判斷
設定5 個PNPG濃度(0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mmol/L),固定異甘草素(0、20、50 μg/mL)和α-葡萄糖苷酶含量(0.2 U/mL),測定反應速率,以酶促反應速率(1/v)對PNPG濃度的倒數(shù)(1/[S])作圖,得Lineweaver-Burk雙倒數(shù)曲線圖,以判斷抑制類型。
1.3.3 熒光光譜測定
參照文獻[18]的方法,將1 mL不同質量濃度的樣品溶液分別與4 mL酶液均勻混合,分別在25、30、37 ℃下反應10 min,之后對其進行熒光光譜掃描。激發(fā)波長為295 nm,掃描范圍是320~380 nm,激發(fā)和發(fā)射的狹縫寬度均為10 nm。
1.3.4 分子對接實驗
運用SYBYL 8.1軟件中Surf l ex-Dock對接模塊研究異甘草素與α-葡萄糖苷酶的結合模式。異甘草素的三維結構預先用Gaussian 09軟件通過密度泛函方法(B3LYP/6-31g+)進行優(yōu)化。α-葡萄糖苷酶的晶體結構下載自RCSB PDB數(shù)據(jù)庫(http://www.rcsb.org/,PDB編號4J5T),刪除水分子和非必需子結構,通過末端處理、加氫、分配原子類型、加電荷等步驟完成受體結構的準備,采用Surf l ex-Dock高精度對接法,原型分子生成閾值設為0.5,其余參數(shù)默認。對接后,選取Total score最大且Cscore也較大的構象作為研究對象[19]。
每個處理質量濃度測定3 次,使用SPSS軟件的Duncan's法對結果的方差顯著性進行分析。
圖2 異甘草素(A)和阿卡波糖(B)對α-葡萄糖苷酶的抑制效果Fig. 2 α-Glucosidase inhibitory activities of isoliquiritigenin (A)and acarbose (B)
由圖2可知,隨著質量濃度的上升,異甘草素和阿卡波糖對α-葡萄糖苷酶的抑制率均逐漸上升,當異甘草素質量濃度為50 μg/mL時對α-葡萄糖苷酶的抑制率為74.72%,而阿卡波糖在3.0 mg/mL時,對α-葡萄糖苷酶的抑制才達到73.45%,通過曲線擬合計算可確定異甘草素和阿卡波糖對α-葡萄糖苷酶的IC50分別為(26.44±2.19)μg/mL和(1.22±0.05)mg/mL,異甘草素對α-葡萄糖苷酶的抑制能力顯著優(yōu)于阿卡波糖,表明其是一種食源性α-葡萄糖苷酶抑制劑,在功能性食品和醫(yī)藥領域具有潛在的應用前景。
為了研究異甘草素對α-葡萄糖苷酶的抑制類型,考察了不同質量濃度異甘草素存在的測試體系中,酶催化不同濃度PNPG水解的反應速率,經Lineweaver-Burk雙倒數(shù)作圖,得到1/[S]對1/v的線性回歸關系(圖3)。隨著抑制劑異甘草素質量濃度的上升,異甘草素的米氏常數(shù)Km逐漸增加,最大反應速度vm逐漸減小,表明異甘草素采用競爭性與非競爭性相混合的方式抑制α-葡萄糖苷酶。Geng Sheng等在研究二氫楊梅素與α-葡萄糖苷酶的互作時也發(fā)現(xiàn)了相同的抑制行為[20]。阿卡波糖與寡糖結構相似,可通過競爭性結合α-葡萄糖苷酶上的碳水化合物結合位點發(fā)揮抑制作用[21]。而異甘草素不僅可與酶的活性部位相結合,還可與酶的非活性部位相結合,阻止產物生成,發(fā)揮抑制作用,因而在酶抑制實驗中展現(xiàn)了更好的抑制效果。
圖3 異甘草素對α-葡萄糖苷酶抑制作用的Lineweaver-Burk圖Fig. 3 Lineweaver-Burk plot for the inhibition of α-glucosidase by isoliquiritigenin
熒光光譜法是在接近生理環(huán)境下研究活性小分子與酶間相互作用應用最廣泛的方法,其基于小分子引起的酶蛋白內源熒光光譜的變化來獲得二者的結合常數(shù)、結合位點數(shù)及熱力學參數(shù)等信息[22-23]。由圖4可知,隨著異甘草素質量濃度的增加,α-葡萄糖苷酶的熒光強度呈規(guī)律性降低,表明二者發(fā)生了相互作用。采用Stern-Volmer方程(公式(2))分析不同溫度下的熒光數(shù)據(jù),獲得相應的猝滅常數(shù)(表1)。不同溫度下的猝滅常數(shù)(Kq)均遠大于生物大分子動態(tài)熒光猝滅的最大常數(shù)2×1010L/(mol·s),表明異甘草素通過與α-葡萄糖苷酶結合成復合物,引發(fā)了酶蛋白的靜態(tài)熒光猝滅。
式中:F0為無猝滅劑時反應體系的熒光強度(au);F為有猝滅劑時反應體系的熒光強度(au);τ0為無猝滅劑時熒光分子壽命/s;[Q]為猝滅劑濃度/(mol/mL)。
圖4 異甘草素在25(a)、30(b)、37 ℃(c)時對α-葡萄糖苷酶熒光光譜的影響Fig. 4 Effect of isoliquiritigenin on fluorescence spectra of α-glucosidase at 25 (a), 30 (b) and 37 ℃ (c)
表1 異甘草素與α-葡萄糖苷酶間的熒光猝滅常數(shù)Table 1 Stern-Volmer quenching constants between isoliquiritigenin and α-glucosidase
對于靜態(tài)熒光猝滅過程,可以使用雙對數(shù)方程(公式(3))計算異甘草素與α-葡萄糖苷酶互作過程的結合常數(shù)(Ka)和結合位點數(shù)(n),相關結果見表2。
式中:F0為無猝滅劑時反應體系的熒光強度(au);F為有猝滅劑時反應體系的熒光強度(au);Ka為反應的結合常數(shù)/(L/mol);n為結合位點數(shù);[Q]為猝滅劑濃度/(mol/mL)。
表2 異甘草素與α-葡萄糖苷酶間的結合參數(shù)Table 2 Binding parameters between isoliquiritigenin and α-glucosidase
由表2可知,隨著溫度的升高,異甘草素與α-葡萄糖苷酶的結合常數(shù)顯著上升,而其結合位點數(shù)則略有增加,都穩(wěn)定在1附近,推測適當升溫不僅可以加速二者在溶液中的運動速率,提高結合效果,還可令α-葡萄糖苷酶結構更加伸展,暴露更多的結合位點。
為了理解異甘草素與α-葡萄糖苷酶的結合過程,利用Van't Hoff方程(公式(4))和吉布斯自由能方程(公式(5))獲得了二者互作的熱力學常數(shù)(表3)。
式中:Ka為反應的結合常數(shù)/(L/m o l);ΔH為反應的焓變/(k J/m o l);ΔS為反應的熵變/(J/(mol·K));ΔG為反應的吉布斯自由能變/(kJ/mol);R為氣體摩爾常數(shù)(8.314 J/(mol·K));T為熱力學溫度/K。
表3 異甘草素與α-葡萄糖苷酶間的熱力學參數(shù)Table 3 Thermodynamic parameters between isoliquiritigenin and α-glucosidase
異甘草素與α-葡萄糖苷酶互作的自由能變(ΔG)為負值,表明異甘草素與α-葡萄糖苷酶的結合是一個自發(fā)的過程,而焓變(ΔH)和熵變(ΔS)為正值,根據(jù)前人總結的熱力學規(guī)律[24],二者的結合過程是一個以熵驅動為主的自發(fā)進行的過程,受疏水作用力驅動,這可能由于異甘草素在結構上具有兩個疏水性的苯環(huán),因而在與酶的疏水口袋結合過程中,疏水力發(fā)揮了主要作用。
多酚與酶的互作涉及復雜的結構改變,其中酶可能發(fā)生有序的高級結構重組,并伴隨能量轉移、信號分子傳遞等新的變化[25]。目前,多種實驗手段可用于此類研究,如光譜法(包括紫外光譜、熒光光譜、紅外光譜、拉曼光譜、圓二色光譜等)、平衡透析、電泳及色譜等方法,還有新出現(xiàn)的等溫滴定量熱、核磁共振、表面等離子共振等方法[26-27]。但復雜的條件參數(shù)給研究帶來了極大困難,近年來,分子模擬方法成為互作研究的重要工具[28]。近期迅速發(fā)展的ONIOM計算、分子動力學、分子對接已被用于研究多酚與酶蛋白的結合機制[29]。為了驗證前述的實驗結果,本研究運用Surflex-Dock分子對接法考察了異甘草素與α-葡萄糖苷酶的作用模式。Surflex-Dock對接法是一種半柔性分子對接方法,采用經驗打分函數(shù)和分子相似性搜索引擎考察活性小分子與蛋白間幾何匹配和能量匹配的識別過程,確定二者的復合物構象[30]。異甘草素與α-葡萄糖苷酶的分子對接結果如圖5所示,異甘草素僅與酶蛋白的Asp202和Arg400殘基發(fā)生了氫鍵作用,而與周圍眾多的疏水殘基(Phe147、Phe166、Gly228、Glu271、Phe297、Asp333、Tyr389、Phe397)存在疏水作用,這與熒光猝滅實驗結果一致。根據(jù)分子對接結果可推測,異甘草素的酶抑制機制包括:1)與α-葡萄糖苷酶的活性口袋結合后,阻礙了底物的進入;2)改變了α-葡萄糖苷酶活性中心的構象,降低了酶活力。
圖5 異甘草素與α-葡萄糖苷酶的分子對接結果Fig. 5 Docking results between isoliquiritigenin and α-glucosidase
本實驗采用酶抑制、熒光猝滅以及分子模擬對接等方法,系統(tǒng)研究了異甘草素抑制α-葡萄糖苷酶的分子機制。結果表明異甘草素以競爭性與非競爭性抑制相混合的方式抑制α-葡萄糖苷酶,其抑制效果明顯優(yōu)于阿卡波糖。熒光猝滅分析表明在疏水作用力驅動下異甘草素可與α-葡萄糖苷酶結合生成復合物,結合位點數(shù)為1。分子對接結果進一步表明,異甘草素位于酶的疏水口袋中,與殘基Asp202和Arg400以氫鍵結合,并與周圍眾多的疏水殘基存在疏水作用,共同維持該復合物結構。本研究對于開發(fā)新型的食源性α-葡萄糖苷酶抑制劑,推動異甘草素在功能性食品領域的應用具有一定的參考價值。