鄭克文,潘 悅,黃 航,陳洪德,盧湧湧,吳可明,鄧哲憲,翁志梁,余志賢,陳 偉
膀胱癌是泌尿系統(tǒng)最常見的惡性腫瘤之一,嚴重威脅著人類的生命健康。據(jù)統(tǒng)計,世界范圍內(nèi),每年新發(fā)膀胱癌患者數(shù)逾30萬,在人類常見腫瘤中位居前列[1]。非肌層浸潤性膀胱癌的治療主要以手術(shù)聯(lián)合術(shù)后膀胱灌注化療為主。由于膀胱癌發(fā)病率高且術(shù)后復發(fā)率高,因此,研究膀胱癌發(fā)生發(fā)展相關(guān)的基因并尋找潛在的治療靶點迫在眉睫。Notch-1廣泛存在于各種細胞生物學行為過程中,參與多種細胞的增殖分化。研究顯示,膀胱癌細胞中Notch1的表達量與其惡性程度呈正比[2-3],抑制Notch-1的表達可以抑制膀胱癌細胞的增殖[4]。但Notch-1基因?qū)τ诎螂装┘毎木唧w作用機制目前尚不清楚。因此,本文以人膀胱癌RT4細胞為研究對象,通過沉默Notch-1,觀察其對RT4細胞增殖、侵襲、凋亡及上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化等生物學行為的影響,為臨床治療膀胱癌提供潛在靶點及相應(yīng)的理論依據(jù)。
1.1 實驗材料 人膀胱癌RT4細胞(中國科學院上海細胞庫);TEMED、丙烯酰胺(Amreso公司);BCA蛋白濃度測定試劑盒、RIPA裂解液、PMSF、磷酸酶抑制劑(上海碧云天公司);PLVX-shRNA2載體(美國Addgene公司);Trizol試劑,限制性內(nèi) 切 酶EXORI、BamHI(美 國Thermo Fisher公司);逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、SYBR Green PCR試劑盒(大連Takara公司);兔單抗E-cadherin、N-cadherin、Vimentin、Bcl-2(美國CST公司);兔多抗Bad、兔單抗Bid(英國Abcam公司);Transwell小室(美國BD公司);細胞凋亡檢測試劑盒、細胞周期檢測試劑盒(南京凱基生物有限公司)。
1.2 細胞的復蘇、培養(yǎng) 將人膀胱癌RT4細胞從-80℃冰箱取出后,按照“慢凍速溶”原則進行復蘇,將細胞置于事先升溫至37 ℃ 的水浴鍋中使其融化,融化時間不超過1 min,然后將細胞分別培養(yǎng)于含有10%胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基(100 U/mL青霉素和0.1 mg/L的鏈霉素),并置于37℃,5% CO2恒溫培養(yǎng)箱中進行培養(yǎng)。
1.3 質(zhì)粒的構(gòu)建及轉(zhuǎn)染 本試驗所用干擾序列于吉瑪生物合成,序列如下:Notch1-shRNA上游序列:GATCCCCAACATCCAGGACAACATTTCAA GAGAATG TTGTCCTGGATGTTGGTTTTTTCT CGAGG,下 游 序 列:AATTCCTCGAGAAAA AACCAACATCCAGGACAACATTCTCTTG AAATGTTGTCCTGGATGTT GGG;shRNANc上 游 序 列:GATCCTTCTCCGAACGTGTC ACGTTTCAAGAGAACGTGACACGTCGGA GAATTTTTTCTCGAGG,下游序列:AATTCCTC GAGAAAAAATTCTCCGAACGTGTCACGTTCT CTTG AAACGTGACACGTCGGAGAAG。序列退火成雙鏈后,連接克隆到經(jīng)EXORI、BamHI酶切的PLVX-shRNA2載體上。然后轉(zhuǎn)化到感受態(tài)的大腸桿菌DH5α后,挑單克隆提取質(zhì)粒并行測序分析,驗證得到正確克隆的質(zhì)粒。取對數(shù)生長期細胞于24孔板中,調(diào)整細胞濃度,使每個孔中的細胞數(shù)約為4×105個,在細胞融合度為70%~80%時進行轉(zhuǎn)染。按照Lipofectamine 2000轉(zhuǎn)染說明書對RT4細胞進行轉(zhuǎn)染操作,轉(zhuǎn)染8 h后更換含有氨芐青霉素(30 μg/mL)的培養(yǎng)基,繼續(xù)于含5%CO2的37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng),48 h后取出培養(yǎng)板,收集細胞進行后續(xù)實驗,并用RT-PCR法分別檢測T24細胞中Notch-1的表達。實驗共分為2組,分別為Notch-1陰性對照組(shRNA NC),Notch-1干擾組(Notch-1 shRNA)。
1.4 MTT檢測細胞增殖變化 取對數(shù)生長期細胞,調(diào)整細胞密度到5×104個/mL,接種于96孔板中,每孔100 μL細胞懸液,置于5% CO2,37℃的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)過夜,然后向每孔中加入10 μL的MTT檢測液,37 ℃培養(yǎng)4 h,吸棄培養(yǎng)基,加入150 μL的DMSO震蕩10 min,然后將96孔板置于酶標儀中,于568 nm波長處測定各孔的吸光度。
1.5 Transwell法檢測細胞侵襲能力變化 將轉(zhuǎn)染成功后繼續(xù)培養(yǎng)48 h的各組細胞分別用0.25%的胰蛋白酶進行消化收集,1000 r/min離心5 min,棄上清,用預(yù)冷的PBS清洗2次,然后在無血清培養(yǎng)基中對細胞進行重懸,采用細胞計數(shù)板進行計數(shù),然后在24孔板中加入含有10% FBS的培養(yǎng)基,在Transwell小室上室底部中央垂直加入100 μL終濃度為1 mg/mL的Matrigel,待Matrigel凝固后在Transwell上室分別加入200 μL的細胞懸液,5% CO2,37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,然后取出Transwell,用PBS小心清洗小室,用10%甲醇溶液對細胞進行固定30 min,然后切下膜,滴入5%結(jié)晶紫染液,室溫靜置20 min后,顯微鏡下進行觀察拍照。
1.6 流式細胞術(shù)檢查細胞凋亡的變化 取轉(zhuǎn)染繼續(xù)培養(yǎng)48 h后的各組細胞,用0.25%胰酶消化,充分吹打混勻細胞懸液并收集至流式專用管中;取約105個重懸細胞,1200×g,4℃離心5 min,棄上清;加入1 mL預(yù)冷PBS進行重懸,1200×g,4 ℃離心5 min,棄上清,重復兩次;按照AnnexinVAPC/7-AAD細胞凋亡檢測試劑盒說明書進行檢測,將細胞重懸于50 μL binding buffer,加入5 μL 7-AAD,輕輕混勻,4 ℃,避光孵育15 min;再加入450 μL binding buffer,混勻,加入1 μL Annexin V-APC混勻,室溫下避光反應(yīng)15 min,然后進行流式細胞儀上機檢測。
1.7 RT-PCR檢測E-cadherin、N-cadherin、vimentin、Bcl-2、Bad、Bid mRNA表達情況 轉(zhuǎn)染后,繼續(xù)培養(yǎng)48 h,采用Trizol法提取各組細胞的總RNA,然后根據(jù)逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書反轉(zhuǎn)錄成相應(yīng)的cDNA。利用Real-time PCR檢測E-cadherin、N-cadherin、Vimentin、Bcl-2、Bad、Bid mRNA表達水平(引物序列見表1),PCR反應(yīng)程序:50 ℃,2 min;95 ℃,10 min;95 ℃,30 s;60 ℃,30 s,40個循環(huán);65 ℃,5 min;95 ℃,50 s。以GAPDH作為內(nèi)參,結(jié)果采用2-△△Ct法進行分析。
表1 引物序列表
1.8 Western blot檢 測E-cadherin、N-cadherin、Vimentin、Bcl-2、Bad、Bid蛋白表達情況 轉(zhuǎn)染后繼續(xù)培養(yǎng)細胞48 h,然后收集并提取各組細胞的蛋白,采用BCA蛋白濃度檢測試劑盒對所提取的蛋白進行濃度測定。然后取20 μg蛋白與4 μL 2×SDS上樣緩沖液混合均勻,100 ℃變性10 min,上樣,電泳,轉(zhuǎn)膜后,用5%脫脂奶粉制成的封閉液進行封閉2 h,加入稀釋后的 一 抗(Bcl-2:1∶1000;Bad:1∶500;Bid:1∶1000;Vimentin:1∶1000;E-cadherin:1∶500;N-cadherin:1∶1000;GAPDH:1∶1000),4 ℃孵育過夜,PBS洗膜后,加入HRP標記的二抗羊抗兔IgG(1∶50000),室溫孵育1 h,然后用ECL化學發(fā)光檢測,以目的蛋白光密度值/內(nèi)參蛋白光密度值作為目的蛋白的光密度值,重復3次獨立試驗。
1.9 統(tǒng)計學分析 采用統(tǒng)計學軟件SPSS 25.0進行數(shù)據(jù)分析,實驗數(shù)據(jù)采用±s表示,組間比較采用獨立樣本t檢驗,P<0.05表示差異具有統(tǒng)計學意義。
2.1 Notch-1 shRNA載體構(gòu)建 如圖1所示,構(gòu)建的Notch-1 shRNA載體經(jīng)測序分析表明插入的序列及位點正確,目的基因Notch-1的干擾載體質(zhì)粒構(gòu)建成功。
圖1 Notch-1 shRNA載體質(zhì)粒測序鑒定
2.2 兩組細胞Notch-1的表達變化 為了研究Notch-1在人膀胱癌RT4細胞中的作用,我們采用質(zhì)粒轉(zhuǎn)染的方法抑制了RT4細胞中Notch-1的表達,然后采用RT-PCR檢測兩組細胞中Notch-1的表達。結(jié)果如圖2所示,與RT4+shRNA NC組相比,RT4+Notch-1 shRNA組的Notch-1 mRNA表達量明顯下降(t=10.004,P<0.001)。
2.3 沉默Notch-1對膀胱癌RT4細胞增殖率的影響 結(jié)果如圖3所示,與RT4+shRNA NC組相比,RT4+ Notch-1 shRNA組細胞增殖率明顯降低(t=4.629,P=0.010)
圖2 兩組細胞Notch-1的表達水平變化
圖3 兩組細胞增殖率變化
2.4 沉默Notch-1對人膀胱癌RT4細胞的侵襲能力的影響 如圖4所示,與陰性對照組(RT4+shRNA NC)相 比,Notch-1干 擾 組(RT4+Notch-1 shRNA)的遷移細胞數(shù)目明顯減少(t=8.193,P=0.001)。
2.5 沉默Notch-1促進膀胱癌RT4細胞的凋亡 為了研究沉默Notch-1對人膀胱癌細胞凋亡的改變,我們采用流式細胞術(shù)對人膀胱癌RT4細胞進行了檢測。結(jié)果如圖5所示,與RT4+shRNA NC組相比,RT4+Notch-1 shRNA組的細胞凋亡率顯著上升(t= -18.441,P<0.001)。
2.6 沉默Notch-1對膀胱癌RT4細胞E-cadherin、N-cadherin、Vimentin、Bcl-2、Bad、Bid mRNA表達的影響 如圖6所示,與RT4+shRNA NC組比 較,RT4+Notch-1 shRNA組 中E-cadherin(t=-13.457,P<0.001)、Bad(t= -12.521,P<0.001)、Bid(t= -9.231,P<0.001)的mRNA表達量顯著升 高,N-cadherin(t=6.505,P<0.001)、Vimentin(t=9.135,P<0.001)、Bcl-2(t=10.651,P<0.001)mRNA表達量顯著降低。
2.7 沉默Notch-1對膀胱癌RT4細胞E-cadherin、N-cadherin、Vimentin、Bcl-2、Bad、Bid蛋 白 的影響 我們對人膀胱癌RT4細胞的凋亡及侵襲遷移相關(guān)蛋白表達水平進行了檢測,結(jié)果如圖7顯示,與陰性對照組相比,干擾組E-cadherin(t=-5.610,P=0.005)、Bad(t= -6.983,P=0.002)、Bid(t= -8.871,P=0.001)蛋白表達量顯著升高,N-cadherin(t=10.132,P=0.001)、Vimentin(t=5.630,P=0.005)、Bcl-2(t=6.973,P=0.002)蛋白表達量顯著降低。
圖4 兩組遷移細胞數(shù)量變化(×200)
圖5 兩組細胞凋亡率的變化
圖6 兩組細胞E-cadherin、N-cadherin、Vimentin、Bcl-2、Bad、Bid mRNA表達水平變化
圖7 兩組細胞E-cadherin、N-cadherin、Vimentin、Bcl-2、Bad、Bid蛋白表達量變化
Notch信號通路大量存在于哺乳動物的體內(nèi),參與著體內(nèi)眾多的生命活動調(diào)節(jié):維持細胞的分化、增殖和凋亡的動態(tài)平衡[5-6]。Notch信號通路由Notch受體、Notch配體及細胞內(nèi)效應(yīng)器分子所組成,Notch受體包括4種受體,分別為Notch-1、Notch-2、Notch-3、Notch-4、Notch配體 包 括JAG1、JAG2、DLL1、DLL3和DLL4。Notch信號通路的異??梢哉T導多種腫瘤的發(fā)生,其中,Notch-1的異常表達在腫瘤組織中最常被發(fā)現(xiàn)。Notch-1可以通過影響相鄰細胞之間的信息傳遞來維持干細胞的特性。Notch-1還可以通過影響細胞的增殖、分化和凋亡來參與各種類型腫瘤的發(fā)生發(fā)展[7-8]。李偉等[9]研究發(fā)現(xiàn),Notch-1能夠促進乳頭狀癌細胞增殖、侵襲和轉(zhuǎn)移。郝俊龍等[10]發(fā)現(xiàn),抑制Notch-1的表達能夠抑制骨肉瘤細胞的生長。Shi等[3]研究發(fā)現(xiàn),在膀胱癌中,Notch-1的表達量隨著膀胱癌的病理分級升高而逐漸增加,腫瘤的生長與凋亡密切相關(guān)。Bcl-2家族蛋白在細胞凋亡過程中起著關(guān)鍵作用,Bcl-2基因是一種原癌基因,能夠改變線粒體外膜的通透性,抑制細胞色素C釋放到細胞質(zhì),從而阻止Caspase的活化級聯(lián),進而抑制細胞凋亡[11]。當Bcl-2呈高表達時,則抑制凋亡的發(fā)生;當Bcl-2呈低表達時,則促進凋亡[11]。Bid蛋白是Bcl-2家族中唯一含有1個BH-3結(jié)構(gòu)域的重要的前凋亡分子,Bid 是促凋亡蛋白。在靜息狀態(tài)下,Bid以非激活狀態(tài)分布在胞漿中,在細胞發(fā)生凋亡的過程中,全長的Bid通過多種蛋白酶被切割形成tBid,tBid轉(zhuǎn)位到線粒體發(fā)揮凋亡功能[12]。Bad是Bcl-2相關(guān)死亡啟動子,也是參與細胞凋亡的重要調(diào)控蛋白[12]。在本研究中,Notch-1抑制組細胞的增殖率和遷移數(shù)量顯著降低,表明抑制Notch-1能抑制人膀胱癌RT4細胞增殖和遷移活動。Notch-1 shRNA組中凋亡相關(guān)蛋白Bad、Bid的表達量顯著升高,抗凋亡蛋白Bcl-2的表達量顯著降低,提示抑制Notch-1可以促進膀胱癌細胞的凋亡,這與以上Notch-1抑制細胞凋亡的結(jié)論相符。
上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)是指上皮細胞在某些因素的刺激下,失去極性和細胞間的緊密連接,從而獲得浸潤性和游走性遷移的能力。生理情況下,上皮細胞發(fā)生EMT轉(zhuǎn)化可以修復受傷的正常組織。在腫瘤的發(fā)生發(fā)展過程中,EMT發(fā)揮著重要的作用。轉(zhuǎn)移是腫瘤死亡的主要原因,EMT是轉(zhuǎn)移級聯(lián)反應(yīng)中的一個起始和重要事件,在轉(zhuǎn)移級聯(lián)反應(yīng)中上皮癌細胞失去極性和細胞接觸,細胞間相互作用及黏附力減弱,癌細胞的遷移能力增強,伴隨著E- cadherin等蛋白的表達下降,E- cadherin表達的降低目前已被認為是EMT最顯著的特征,可使癌細胞獲得易于侵襲的特性,Vimentin、N-cadherin等蛋白的表達升高,使得癌細胞獲得促進遷移和侵襲的間充質(zhì)特征[13]。研究發(fā)現(xiàn),Notch-1可以通過介導各種EMT相關(guān)基因的表達從而誘導EMT的發(fā)生[14-15]。E-cadherin、N-cadherin和Vimentin蛋白是EMT相關(guān)蛋白。E-cadherin廣泛分布于胞膜和胞漿中,可維持上皮細胞間的緊密連接,對維持細胞的形態(tài)穩(wěn)定具有重要的作用[16],N-cadherin則主要是介導神經(jīng)組織及成纖維細胞之間的黏附,Vimentin廣泛分布于細胞間質(zhì)之間。Kang等[17]研究發(fā)現(xiàn),抑制Notch-1基因可以通過促進E-cadherin的表達、抑制Vimentin的表達,從而減輕肺癌細胞的EMT[18]。研究發(fā)現(xiàn)Notch還可以通過促進N-cadherin的表達從而促進癌細胞發(fā)生EMT。因此,為了進一步研究Notch-1 shRNA是否通過抑制膀胱癌細胞EMT從而發(fā)揮其作用,我們分別采用RT-PCR和Western blot對EMT相關(guān)蛋白進行了檢測。在本實驗中,E-cadherin表達量顯著升高,N-cadherin、Vimentin表達量顯著降低。而E-cadherin與腫瘤的轉(zhuǎn)移、侵襲關(guān)系密切,且其表達量與癌癥患者的生存率呈正比[19-20],N-cadherin和Vimentin蛋白則具有促進細胞黏附和信號傳導的作用[21],提示抑制Notch-1的活性可以抑制EMT相關(guān)蛋白的表達,從而抑制膀胱癌細胞的侵襲轉(zhuǎn)移。
綜上所述,抑制Notch-1的表達能夠抑制人膀胱癌細胞的侵襲遷移,促進細胞凋亡,其機制可能與誘導Bad、Bid、E-cadherin,抑制Bcl-2、N-cadherin、Vimentin的表達有關(guān)。