許麗婷 于紅紅 許 滔 喻旭梅 徐彬人 田維毅 俞 琦

(貴州中醫(yī)藥大學(xué),貴陽 550025)

心血管疾病是全球范圍內(nèi)造成死亡的主要原因之一，截至2018年我國患心血管疾病人數(shù)高達2.9億[1]。動脈粥樣硬化(atherosclerosis，AS)是心血管疾病的常見病理過程，能夠?qū)е卵塥M窄性堵塞[2]。炎癥在AS發(fā)病過程中起重要作用，NLRP3炎癥小體是AS過程中的主要炎癥因子，能夠活化Caspase-1，使pro-IL-1β和pro-IL-18切割成成熟的IL-1β和IL-18，并引發(fā)一系列的炎癥反應(yīng)。因此干預(yù)NLRP3炎癥小體可以影響AS的病理過程[3]。黃連解毒湯出自中醫(yī)古籍《外臺秘要》，是經(jīng)典的清泄三焦之火的中藥方劑。研究表明黃連解毒湯具有抗炎和降脂的藥理作用，同時能調(diào)控AS中的脂質(zhì)和炎癥因子，達到抑制AS的治療作用[4-6]。本研究采用載脂蛋白E基因敲除(ApoE-/-)小鼠建立AS模型[7]，探討黃連解毒湯調(diào)控NLRP3炎癥小體對AS病變過程中炎癥因子的影響及其作用機制。

1 材料與方法

1.1材料 SPF級ApoE-/-小鼠購自北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司，許可證號為：SCXK(京)2016-0006，體重18～22 g。黃連解毒湯由黃連、黃芩、黃柏和梔子組成，為中藥飲片，購自同濟堂貴陽分店，經(jīng)貴州中醫(yī)藥大學(xué)生藥教研室鑒定為正品。三酰甘油(triglyceride，TG)測定試劑盒、總膽固醇(total cholesterol，TC)測定試劑盒、高密度脂蛋白膽固醇(high-density lipoprotein cholesterol，HDL-C)測定試劑盒、低密度脂蛋白膽固醇(low density lipoprotein cholesterol,LDL-C)測定試劑盒購自南京建成生物工程研究所；TNF-α、IL-18和IL-1β ELISA試劑盒購自武漢伊萊瑞特生物科技股份有限公司；蘇木素染液、伊紅染液購自武漢賽維爾生物科技有限公司；油紅O染色試劑盒購自上海索萊寶生物科技有限公司；RNA提取試劑盒購自美國Omega公司；反轉(zhuǎn)錄試劑盒、熒光定量PCR試劑盒購自日本TaKaRa公司；實時定量PCR儀、凝膠成像儀購自美國Bio-Rad公司；全波長酶標(biāo)儀、核酸蛋白分析儀、臺式高速冷凍離心機購自美國Thermo Scientific公司 ；DYCP-31DN型電泳儀購自北京六一儀器廠；vx-55高壓滅菌鍋購自德國 Systec公司；XSZ-HS3顯微鏡購自重慶光學(xué)儀器廠；sw-C7-2H潔凈工作臺購自上海博訊實業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠。

1.2方法

1.2.1小鼠AS模型制備 適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后開始造模。ApoE-/-小鼠30只，給予含脂肪21%、膽固醇0.15%的“西方類型膳食”照射滅菌高脂飼料；6只ApoE-/-小鼠給予照射滅菌的普通飼料。分別喂養(yǎng)12周。

1.2.2動物分組及藥物處理 普通飼料喂養(yǎng)的小鼠為空白組(control group)，將AS模型小鼠隨機分成模型組(model group)、陽性組(positive group)、黃連解毒湯大劑量組(HJD-H group)、黃連解毒湯中劑量組(HJD-M group)、黃連解毒湯小劑量組(HJD-L group)，每組6只，造模12周后灌胃給藥6周，每天1次?？瞻捉M和模型組給予等體積生理鹽水灌胃。

1.2.3各組小鼠體重計量 用電子秤稱量小鼠體重，監(jiān)測小鼠在AS病變過程中的體重變化情況。

1.2.4小鼠主動脈HE染色 給藥結(jié)束后，取一部分小鼠主動脈組織于液氮速凍30 min后保存于-80℃，一部分主動脈用4%的多聚甲醛中固定。將主動脈鋪平后進行石蠟包埋，置于二甲苯中固定20 min。依次將切片放入二甲苯Ⅰ20 min，二甲苯Ⅱ20 min，無水乙醇Ⅰ10 min，無水乙醇Ⅱ10 min，95%酒精5 min，90%酒精5 min，80%酒精5 min，70%酒精5 min，蒸餾水洗脫蠟。脫蠟至水后，加入蘇木素染液5 min，1%的鹽酸酒精分化，0.6%氨水返藍(lán)，流水沖洗，加入伊紅染液2 min。脫水后用中性樹膠封片，在光學(xué)顯微鏡下觀察病理變化并拍照記錄。

1.2.5油紅O染色 主動脈竇橫切面：將主動脈竇部進行橫切制作成冷凍切片，用4%多聚甲醛固定后加入油紅工作液，用75%酒精分化后進行細(xì)胞核蘇木素復(fù)染，用甘油封片。主動脈大體油紅：取新鮮主動脈組織于固定液中固定24 h，用解剖剪沿血管壁小心地將血管縱向剖開，將剖開的血管浸入油紅染液中，37℃染色60 min后取出，用75%乙醇分化至管腔內(nèi)脂肪斑塊呈橘紅色或鮮紅色，將染好的大體組織固定好進行拍照，用Image J軟件分析斑塊面積。

1.2.6免疫組化染色 依次將石蠟切片放入二甲苯Ⅰ15 min，二甲苯Ⅱ15 min，二甲苯Ⅲ15 min，無水乙醇Ⅰ5 min，無水乙醇Ⅱ5 min，85%酒精5 min，75%酒精5 min，蒸餾水洗脫蠟。將組織切片置于檸檬酸(pH6.0)抗原修復(fù)液中進行抗原修復(fù)。用3%雙氧水溶液阻斷內(nèi)源性過氧化物酶后進行血清封閉。加一抗4℃孵育過夜，加二抗室溫孵育50 min。DAB顯色后加入蘇木素進行細(xì)胞核復(fù)染。最后脫水封片，用顯微鏡觀察分析并記錄實驗結(jié)果。

1.2.7ELISA法檢測血清中TNF-α、IL-18和IL-1β含量 血清中的TNF-α、IL-18和IL-1β含量采用ELISA進行檢測，具體操作參考試劑盒說明書。

1.2.8血脂檢測 采用GPO-PAP酶法檢測TC和TG含量，按試劑盒說明書操作，用酶標(biāo)儀檢測510 nm 波長OD值并計算出血清TC和TG的含量。采用直接法檢測HDL-C和LDL-C，按試劑盒說明書操作，酶標(biāo)儀檢測546 nm波長OD值并計算出血清HDL-C和LDL-C的含量。

1.2.9RT-qPCR檢測主動脈組織中IL-1β、Caspa-se-1、NLRP3和TNF-α mRNA的表達 按OMEGA試劑盒說明書提取小鼠主動脈中的RNA，得到純度較高完整性較好的總RNA。按照逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書，以RNA為模板進行反轉(zhuǎn)錄，得到cDNA。加入表1中引物，用熒光擴增試劑盒進行擴增。擴增程序：95℃預(yù)變性30 s，95℃變性5 s，60℃退火30 s，40個循環(huán)。以GAPDH 為內(nèi)參基因，采用2-ΔΔCt方法計算mRNA的相對表達量。

2 結(jié)果

2.1黃連解毒湯灌胃后小鼠的體重變化 記錄小鼠給藥過程中每周的體重變化。與空白組比較，模型組體重增加，差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。與模型組比較，陽性組、小劑量組和中劑量組小鼠體重減少，差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)，大劑量組體重變化不明顯。見圖1。

2.2黃連解毒湯對小鼠血清中HDL-C、LDL-C、TC和TG水平的影響 與空白組比較，模型組LDL-C、TC和TG水平均增高，HDL-C減少，差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。與模型組相比，陽性組、黃連解毒湯各劑量組LDL-C、TC和TG水平均降低，陽性組和中劑量組HDL-C水平升高，差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見圖2。

表1 RT-qPCR目的基因引物序列

Tab.1 RT-qPCR target gene primer sequence

GenePrimerLength(bp)GAPDHF:5′-GACATGCCGCCTGGAGAAAC-3′R:5′-AGCCCAGGATGCCCTTTAGT-3′95NLRP3F:5′-CTTTATCCACTGCCGAGAG-3′R:5′-AGCTCATCAAAGCCATCC-3′151TNF-αF:5′-GCAAAGGGAGAGTGGTCA-3′R:5′-CTGGCTCTGTGAGGAAGG-3′128IL-1βF:5′-CCCCAGGGCATGTTAAGGAG-3′R:5′-GTCTTGGCCGAGGACTAAGG-3′94Caspase-1F:5′-ACAACCACTCGTACACGTCTTGC-3′R:5′-CCAGATCCTCCAGCAGCAACTTC-3′115

圖1 小鼠給藥時的體重變化Fig.1 Changes of weight when administered to mice

2.3黃連解毒湯對小鼠血清TNF-α、IL-18和IL-1β含量的影響 與空白組比較，模型組小鼠血清TNF-α、IL-18、IL-1β表達量明顯增加(P<0.05)。與模型組比較，陽性組、黃連解毒物各劑量組小鼠血清TNF-α、IL-18、IL-1β表達量明顯減少(P<0.05)。見表2。

2.4HE染色觀察主動脈形態(tài)學(xué)變化 與空白組對比，模型組主動脈斑塊面積增大(P<0.05)，主動脈血管壁增厚且厚薄不一，可見泡沫細(xì)胞形成的動脈粥樣硬化斑塊。與模型組對比，陽性組、黃連解毒湯各劑量組小鼠主動脈血管泡沫化程度減輕，斑塊面積明顯減少(P<0.05)；黃連解毒湯中劑量組斑塊面積減少最顯著(P<0.05)。見圖3、4。

圖2 小鼠HDL-C、LDL-C、TC和TG水平的測定結(jié)果Fig.2 Determination of HDL-C,LDL-C,TC and TG in miceNote: Compared with the control group,*.P<0.05;compared with the model group,#.P<0.05;compared with the HJD-L group,△.P<0.05;compared with the HJD-M group,★.P<0.05.

GroupsTNF-α (pg/ml)IL-1β (pg/ml)IL-18 (pg/ml)Control group78.98±0.131 059.30±68.6228.68±0.38Model group137.83±0.131)2 199.60±84.811)73.78±0.051)HJD-L group117.01±0.092)1 006.48±93.272)60.82±0.022)HJD-M group114.05±0.312)3)948.49±60.702)58.32±0.052)3)HJD-H group131.95±0.202)3)4)1 157.23±78.892)3)4)63.55±0.032)3)4)Positive group110.98±0.112)1 093.71±37.952)55.17±0.032)

Note：Compared with the control group,1)P<0.05;compared with the model group,2)P<0.05;compared with the HJD-L group,3)P<0.05;compared with the HJD-M group,4)P<0.05.

圖3 HE染色觀察小鼠主動脈斑塊大小(×50)Fig.3 HE staining of mouse aortic plaque size(×50)Note: A.Control group;B.Model group;C.HJD-L group;D.HJD-M group;E.HJD-H group;F.Positive group.

圖4 小鼠主動脈粥樣硬化斑塊的面積Fig.4 Area of mouse aortic atherosclerotic plaqueNote: Compared with the control group,*.P<0.05;compared with the model group,#.P<0.05;compared with the HJD-L group,△.P<0.05;compared with the HJD-M group,★.P<0.05.

圖5 小鼠主動脈大體油紅O染色Fig.5 Mouse aorta with general oil red O stainingNote: A.Control group;B.Model group;C.HJD-L group;D.HJD-M group;E.HJD-H group;F.Positive group.

2.5油紅O染色評估AS斑塊的形態(tài)和面積 油紅O染色顯示，與空白組相比，模型組主動脈出現(xiàn)斑塊面積明顯增加(P<0.05)。與模型組對比，陽性組和黃連解毒湯各劑量組斑塊面積明顯減少，中劑量組斑塊面積減少最明顯(P<0.05)。見圖5～7。

圖6 小鼠主動脈竇油紅O染色(×40)Fig.6 Oil red O staining of mouse aortic sinus(×40)Note: A.Control group;B.Model group;C.HJD-L group;D.HJD-M group;E.HJD-H group;F.Positive group.

圖7 小鼠主動脈油紅O染色斑塊面積Fig.7 Oil red O staining plaque area of aorticNote: Compared with the control group,*.P<0.05;compared with the model group,#.P<0.05;compared with the HJD-L group,P<0.05;compared with the HJD-M group,★.P<0.05.

圖8 免疫組化檢測小鼠主動脈竇NLRP3(×200)Fig.8 Immunohistochemical detection of mouse aortic sinus NLRP3(×200)Note: A.Control group;B.Model group;C.HJD-L group;D.HJD-M group;E.HJD-H group;F.Positive group.

圖9 小鼠主動脈組織中IL-1β、Caspase-1、NLRP3、TNF-α mRNA表達量Fig.9 IL-1β,Caspase-1,NLRP3,TNF-α mRNA expression in mouse aortic tissueNote: Compared with the control group,*.P<0.05;compared with the model group,#.P<0.05;compared with the HJD-L group,△.P<0.05.

2.6NLRP3免疫組織化學(xué)檢測 細(xì)胞核為藍(lán)色，DAB顯示的陽性表達為棕黃色。與空白組比較，模型組NLRP3更為明顯。與模型組比較，黃連解毒湯小劑量組、中劑量組、大劑量組和陽性組NLRP3減少，中劑量組減少效果更為明顯，見圖8。

2.7黃連解毒湯對小鼠主動脈組織中IL-1β、Casp-ase-1、NLRP3和TNF-α mRNA表達影響 與空白組比較，模型組IL-1β、Caspase-1、NLRP3、TNF-α mRNA表達均升高(P<0.05)。與模型組對比，黃連解毒湯中劑量組、高劑量組和陽性組的IL-1β、Caspase-1、NLRP3、TNF-α mRNA含量均顯著降低(P<0.05)，小劑量組IL-1β、Caspase-1 mRNA表達下降(P<0.05)。見圖9。

3 討論

AS是一種慢性炎癥性疾病，由動脈脂質(zhì)沉積和炎癥的惡性循環(huán)引起[8,9]。中醫(yī)認(rèn)為，AS是由于氣血運行失調(diào)引起各種病理產(chǎn)物堆積造成的，主要的病理產(chǎn)物有血瘀、痰濁、熱毒，可累及全身使患者出現(xiàn)AS病變的臨床癥狀[10]。黃連解毒湯記載于《外臺秘要》，對熱毒熾盛、機體失調(diào)引起的癡呆、胃熱型潰瘍、痔瘡、AS等內(nèi)外婦兒疾病均有顯著療效[7,11]。黃連解毒湯通過降低血脂、抑制炎癥反應(yīng)[12,13]，減少主動脈上泡沫細(xì)胞的數(shù)量，減輕小鼠AS斑塊的病理損傷[5,14]，達到抗AS的作用。

血脂含量異常會增加AS發(fā)生的風(fēng)險[15]。HDL-C可清除血液中的LDL-C和中密度脂蛋白達到抗AS的作用[16]。本研究發(fā)現(xiàn)，黃連解毒湯小劑量組和中劑量組小鼠血清LDL-C、TC和TG水平明顯降低，同時HDL-C水平顯著升高。說明一定劑量范圍的黃連解毒湯能增加AS小鼠的HDL-C水平和下調(diào)LDL-C、TC、TG水平，這與劉玲等[13]和伍世文等[4]的研究一致。同時，高脂飼料喂養(yǎng)的ApoE-/-小鼠體重增長較快，經(jīng)黃連解毒湯治療后，小、中劑量組小鼠體重顯著降低，說明黃連解毒湯能抑制AS模型小鼠的體重上升。為了研究黃連解毒湯對AS斑塊的影響，本研究通過組織形態(tài)計量，采用HE染色和油紅O染色觀察主動脈組織，結(jié)果顯示，模型組出現(xiàn)明顯斑塊，提示造模成功。陽性對照組和小、中劑量組斑塊明顯減少，提示一定劑量的黃連解毒湯具有減少AS斑塊的作用，其中，中劑量組治療效果最為顯著。

在AS病變過程中，大量炎癥因子和脂質(zhì)在血管壁積聚，激活免疫細(xì)胞使血管內(nèi)細(xì)胞受損，促進炎癥反應(yīng)，從而使膽固醇自胞內(nèi)外流并堆積，形成AS斑塊[11]。NF-κB通路是體內(nèi)關(guān)鍵的炎癥信號傳導(dǎo)途徑之一，NLRP3炎癥小體和TNF-α在該通路上起重要作用，共同促進炎癥的形成[17]，NLRP3炎癥小體被認(rèn)為是AS有力的藥物靶標(biāo)[9]。NLRP3炎癥小體是由NLRP3、凋亡相關(guān)斑點樣蛋白和Caspase-1組成[18]，高脂飲食誘導(dǎo)NLRP3炎癥小體活化，激活的Caspase-1介導(dǎo)IL-1β和IL-18的成熟，增強炎癥和AS斑塊生成[19]。本研究結(jié)果表明，模型組NLRP3、Caspase-1、IL-1β和TNF-α mRNA含量均升高，NLRP3表達更為明顯且血清IL-1β、IL-18和TNF-α高表達。經(jīng)過一定劑量黃連解毒湯治療后，血清炎癥因子IL-1β、IL-18和TNF-α表達量下調(diào)，NLRP3炎癥小體通路上的NLRP3蛋白和NLRP3、Caspase-1、IL-1β、TNF-α mRNA指標(biāo)含量均降低。提示黃連解毒湯抗AS作用可能與抑制NLRP3炎癥小體有關(guān)。說明黃連解毒湯可通過調(diào)控NLRP3炎癥小體阻斷IL-1β和IL-18的成熟和分泌來減輕機體的炎癥反應(yīng)。

綜上所述，一定濃度的黃連解毒湯能夠改善AS小鼠體重和血脂，減少小鼠AS斑塊的面積；更值得注意的是，黃連解毒湯可抑制NLRP3炎癥小體及其活化通路中Caspase-1、IL-1β、IL-18和TNF-α mRNA的表達，推測與其抗AS的作用有關(guān)。其中，黃連解毒湯中劑量對NLRP3炎癥小體的調(diào)控效果最顯著。黃連解毒湯治療小鼠AS模型的量效關(guān)系還需進一步研究。