楊飛,孟紅明,崔浩哲,范多青,王穎,劉珊珊,范子彥,唐綱嶺,趙蔚
1 國家煙草質(zhì)量監(jiān)督檢驗中心,鄭州高新技術(shù)產(chǎn)業(yè)開發(fā)區(qū)翠竹街6號 450001;
2 云南中煙工業(yè)有限責任公司,昆明市五華區(qū)紅錦路181號 650023;
3 蘇州科技大學(xué)化學(xué)生物與材料工程學(xué)院,蘇州市高新區(qū)科銳路1號 215009
順反異構(gòu)是一種重要的立體異構(gòu)現(xiàn)象?;衔锓肿又杏捎诰哂邢拗菩D(zhuǎn)的因素,使各個基團在空間的排列方式不同而出現(xiàn)順反異構(gòu)[1],這些異構(gòu)體的性質(zhì)不完全相同?;衔锓肿又杏须p鍵或是環(huán)狀結(jié)構(gòu)經(jīng)常會有這種現(xiàn)象。其中雙鍵的順反異構(gòu)又以C=C 雙鍵最為常見,此外還有C=N 雙鍵、N=N 雙鍵、C=S 雙鍵等。構(gòu)型不同的化合物,生物活性差別較大,有時可能達到幾十甚至幾百倍[2]。例如,啶菌惡唑Z、E 異構(gòu)體雖然殺菌譜均較廣,有較好的抑菌活性,但對部分真菌活性存在差異[3]。滅多威E 體殺蟲活性也遠小于Z 體,對巢修尾蚜的室內(nèi)藥效測定表明,E 體僅為Z 體的1/40;對家蠅成蟲的藥效測定也表明E 體活性只有Z 體的1/10,且Z體較E 體穩(wěn)定[4]。又如辛硫磷Z 體對蚊幼蟲的殺蟲活性明顯優(yōu)于E 體,Z 體的殺蟲活性比E 體高約3倍[5]。
磷胺又名大滅蟲,在中性和弱酸性溶液中較穩(wěn)定,在堿性液中會迅速分解。磷胺對人、畜毒性大,屬高毒農(nóng)藥。磷胺對煙草上的害蟲和螨類具有強烈的觸殺和胃毒作用。磷胺為廣譜性有機磷殺蟲劑,可防治刺吸式口器和咀嚼式口器的多種害蟲。磷胺分子結(jié)構(gòu)中含有C=C,具有一對順反異構(gòu)體(圖1),其中順式異構(gòu)體具有較強活性[6]。速滅磷又名磷君,在堿性條件下分解較快。速滅磷為觸殺性,內(nèi)吸性殺蟲、殺螨劑。速滅磷分子結(jié)構(gòu)中含有C=C,具有一對順反異構(gòu)體(圖1),在植物體內(nèi)順式異構(gòu)體比反式異構(gòu)體代謝速度快,其順反異構(gòu)體毒性也不盡相同,順式異構(gòu)體比反式異構(gòu)體毒性大20 倍左右[7]。
圖1 磷胺和速滅磷的化學(xué)結(jié)構(gòu)Fig. 1 Chemical structures of phosphamidon and mevinphos
在國際煙草科學(xué)研究合作中心(Cooperation Centre for Scientific Research Relative to Tobacco,CORESTA)農(nóng)用化學(xué)品咨詢委員會(Agro-Chemical Advisory Committee,ACAC) 制 定 的106 種 農(nóng) 用化學(xué)品指導(dǎo)性殘留限量表(Agrochemical Guidance Residue Levels,GRL)中,速滅磷和磷胺的限量均是按各異構(gòu)體總和計,速滅磷(E-速滅磷和Z-速滅磷之和)和磷胺(E-磷胺和Z-磷胺之和)的殘留限量分別為0.04 mg/kg 和0.05 mg/kg[8]。
目前未見關(guān)于磷胺和速滅磷順反異構(gòu)體拆分和測定的報道。順反異構(gòu)體的拆分主要采用液相色譜(HPLC)[9-12],該方法需要消耗大量有毒有害的有機溶劑,而且分析時間長。如李大婧等用HPLC 分離和測定了葉黃素的順反異構(gòu)體,分析時間長達30 分鐘,且消耗較多的有機溶劑[10]。近幾年來,作為一種新的分析技術(shù),超臨界流體色譜(SFC)引起了研究人員越來越多的關(guān)注[13-14]。SFC 主要以超臨界CO2和少量的有機溶劑為流動相,與HPLC 相比,分析速度快、時間短、分離效率高。同時,SFC 的有機溶劑消耗量低于HPLC,更環(huán)保。這些優(yōu)點使得SFC 已廣泛應(yīng)用于不同基質(zhì)中手性化合物的分析,測定和制備分離[15-23]。
本文通過超臨界流體色譜串聯(lián)質(zhì)譜(SFC-MS/MS)首次研發(fā)了一種環(huán)境友好,靈敏,快速的順反異構(gòu)體分離和測定的方法,用于選擇性拆分和測定煙草中的磷胺和速滅磷順反異構(gòu)體。而且,SFC 和MS/MS 的組合可以進一步提高方法的靈敏度。
20 個烤煙實際樣品全部來自2018 年度國家煙草專賣局農(nóng)殘普查分析樣品。所有樣品烘干后粉碎,并過2 mm(10 目)篩后貯存于棕色玻璃瓶中,4℃下保存。
E-磷胺標準品(CAS:297-99-4)、Z-磷胺標準品(CAS:23783-98-4),E-速滅磷標準品(CAS:298-01-1)、Z-速滅磷標準品(CAS:338-45-4)(純度>98.0%,天津阿爾塔科技有限公司)。甲醇、乙醇、乙腈、異丙醇和甲酸(色譜純,德國Merck 公司);無水硫酸鎂(MgSO4)、氯化鈉(NaCl)、N-丙基乙二胺(PSA)(分析純,上海安普實驗科技股份有限公司);水為超純水;高純氮(純度> 99.99%,鄭州源正科技);高純氬(純度>99.99%,鄭州源正科技)。
ACQUITY 超臨界流體色譜儀、ACQUITY TQD四極桿串聯(lián)質(zhì)譜儀(配電噴霧電離源,美國Waters公司);Acquity UPC2Trefoil AMY1、Acquity UPC2Trefoil CEL1 和Acquity UPC2Trefoil CEL2 柱(100 mm×2.1 mm,1.7 μm)( 美 國Waters 公 司);Chiralpak IG-3 柱(100 mm×3.0 mm,3.0 μm)(日本Daicel 公司);VX200 渦旋振蕩儀(美國Labnet公司);SG3-30K 高速離心機(德國sigma 公司);Milli-Q 超純水系統(tǒng)(美國Millipore 公司);CP224S電子天平(感量:0.0001 g,德國Sartorius 公司)。
1.2.1 樣品前處理
樣品前處理過程采用本文作者之前的研究[24]。稱取2 g 樣品(精確至0.01 g)于50 mL 具蓋離心管中,加入10 mL 超純水和10 mL 乙腈,然后以2000 rpm 的速率渦旋振蕩2 min。向離心管中加入4 g 無水硫酸鎂和1 g 氯化鈉、1 g 檸檬酸鈉和0.5 g 檸檬酸二氫鈉,繼續(xù)以2000 rpm 的速率渦旋混合2 min。移取1 mL 上清液于1.5 mL 離心管中,加入150 mg 無水硫酸鎂及25 mg PSA 吸附劑,于漩渦混合振蕩儀上以2000 rpm 的速率振蕩2 min,以6000 rpm 的速率離心5 min。吸取上清液經(jīng)0.22 μm 有機相濾膜過濾,取200 μL 的濾液加入800 μL 的乙腈,混勻,進SFC-MS / MS 檢測。
1.2.2 基質(zhì)匹配標準工作溶液的配制
分別稱取10 mg 的E-磷胺,Z-磷胺,E-速滅磷,Z-速滅磷標準品于100 mL 容量瓶中,用乙腈溶解并定容至刻度,制得E-磷胺、Z-磷胺、E-速滅磷和Z-速滅磷的質(zhì)量濃度均為100 μg/mL 的一級混合標準儲備液。
移取1.0 mL 一級混合標準儲備液于100 mL 容量瓶中,用乙腈定容,得到E-磷胺、Z-磷胺、E-速滅磷和Z-速滅磷的質(zhì)量濃度均為1.0 μg/mL 二級混合標準儲備液。
分別移取二級混合標準儲備液500 μL、200 μL、100 μL、50 μL、20 μL 至5 個10 mL 容量瓶中,用乙腈定容,制得不同質(zhì)量濃度的標準工作溶液。
分別移取0.2 mL 標準工作溶液和0.2 mL 空白樣品提取液,混合后用乙腈稀釋至1 mL。各基質(zhì)匹配標準工作溶液中各異構(gòu)體的質(zhì)量濃度分別為10.0 ng/mL、4.0 ng/mL、2.0 ng/mL、1.0 ng/mL 及0.4 ng/mL。所有溶液避光儲存在-20℃的冰箱中。
1.2.3 加標樣品的制備
在最優(yōu)化的試驗條件下,通過對實際樣品的分析,選取1 個煙葉樣品作為空白樣品。添加不同含量(20 μL、100 μL、400 μL)的二級混合標準儲備液到2.0 g空白樣品中,獲得三個不同濃度的空白加標樣品,加標樣品中各異構(gòu)體的含量為0.01 mg/kg、0.05 mg/kg、0.2 mg/kg。然后在樣品中加入10 mL 甲醇并用渦旋振蕩混勻10 分鐘。之后,放置于通風櫥中在室溫下讓溶劑蒸發(fā)。加標樣品按照1.2.1 節(jié)方法處理,每個濃度水平重復(fù)測定5 次,連續(xù)測定3 天,采用基質(zhì)匹配標準工作曲線定量分析。
色 譜 柱:Acquity UPC2Trefoil AMY1 柱(150 mm×3 mm,2.5 μm);背壓:13.79 MPa;柱溫:35℃;樣品室溫度:10℃;補償溶劑:0.1%甲酸的甲醇溶液,流速0.2 mL/min;進樣量:2 μL;流動相流速:2.0 mL/min;流動相:A 相為CO2,B 相為乙醇;梯度洗脫程序:初始至第2 分鐘CO2和乙醇的體積比由99% : 1%變成92% : 8%;第2 分鐘到第3.5 分鐘CO2和乙醇的體積比從92%:8%變成88% : 12%;第3.5 分中到第4 分鐘CO2和乙醇的體積比從88% : 12%變成99% : 1%;第4 分鐘到第5分鐘CO2和乙醇的體積比為99% : 1 %。質(zhì)譜掃描方式:正離子掃描;離子源:電噴霧電離源(ESI);離子源溫度:150℃;脫溶劑氣溫度:350℃;脫溶劑氣流量:650 L/h;錐空氣流量:60 L/h;停留時間:100 ms;毛細管電壓:3.5 KV;采集模式:多反應(yīng)監(jiān)測(MRM);質(zhì)譜參數(shù)見表1。
表1 磷胺和速滅磷的質(zhì)譜參數(shù)Tab. 1 MS parameters for phosphamidon and mevinphos
數(shù)據(jù)采集采用MassLynxV4.1 軟件。平均值、回收率和相對標準偏差的計算采用Microsoft Excel 2007版軟件。
2.1.1 手性柱的選擇
分別考察了四種不同的手性柱(Acquity UPC2Trefoil CEL1,Acquity UPC2Trefoil CEL2,Acquity UPC2Trefoil AMY1,Chiralcel IG-3)對磷胺和速滅磷順反異構(gòu)體的分離情況[25,26]。Acquity UPC2Trefoil CEL1 和Acquity UPC2Trefoil CEL2 均為改性的多聚糖型固定相,其中Acquity UPC2 Trefoil CEL1 硅膠表面涂敷有纖維素-三(3,5-二甲基苯基氨基甲酸酯),Acquity UPC2Trefoil CEL2 硅膠表面涂敷有纖維素-三(3-氯-4-甲基苯基氨基甲酸酯),Chiralpak IG-3硅膠表面共價鍵合有直鏈淀粉-三(3-氯-5-甲基苯基氨基甲酸酯),Acquity UPC2Trefoil AMY1 硅膠表面共價鍵合有直鏈淀粉-三(3,5-二甲基苯基氨基甲酸酯)。
當 使 用Acquity UPC2Trefoil CEL1 和Acquity UPC2Trefoil CEL2 時,不能實現(xiàn)磷胺和速滅磷順反異構(gòu)體的完全分離。Acquity UPC2Trefoil AMY1,Chiralcel IG-3 均可實現(xiàn)對映體的分離,但是使用Acquity UPC2Trefoil AMY1 時,異構(gòu)體之間的分離度較好。從分離及色譜峰峰形綜合考慮,選用Acquity UPC2Trefoil AMY1 柱對磷胺和速滅磷異構(gòu)體進行分離(圖2)。
圖2 在四種不同色譜柱上磷胺和速滅磷順反異構(gòu)體的SFC-MS/MS 色譜圖Fig. 2 Typical SFC-MS/MS chromatograms of isomers of phosphamidon and mevinphos on four columns
2.1.2 改性劑的影響
超臨界流體色譜以非極性的超臨界CO2流體為流動相,其對極性化合物的溶解性能和洗脫能力較弱,為增強流動相對分析物的溶解性能和洗脫能力,達到更好的分離效果和改善峰形,往往在超臨界二氧化碳流體中加入少量的極性有機溶劑(改性劑)[27,28]。在Acquity UPC2Trefoil AMY1 手性柱上,不添加任何改性劑即以純超臨界二氧化碳為流動相條件下(其他色譜條件為溫度35℃,系統(tǒng)背壓13.79 Mpa,流動相流速2 mL/min),磷胺和速滅磷均不能被洗脫(洗脫時間大于30 min)。這是由于這幾種物質(zhì)分子極性大,與手性柱產(chǎn)生較強的相互作用力使得洗脫困難造成的。如圖3 所示,本文對三種有機改性劑(甲醇、乙醇和異丙醇)對磷胺和速滅磷順反異構(gòu)體在Acquity UPC2Trefoil AMY1 柱上的分離情況進行了考察。如圖3 所示,使用異丙醇作為改性劑后面一組峰的分離度較差,使用甲醇和乙醇作為改性劑均可以實現(xiàn)磷胺和速滅磷異構(gòu)體的基線分離,但乙醇更為環(huán)保。實驗中還考察了甲酸、乙酸和甲酸銨對磷胺和速滅磷異構(gòu)體分離的影響,結(jié)果表明,加入甲酸、乙酸等并沒有改善異構(gòu)體之間的分離度和響應(yīng)強度。因此,最終選擇乙醇作為流動相改性劑。
圖3 改性劑對磷胺和速滅磷順反異構(gòu)體分離情況的影響Fig. 3 The effect of modifier solvent on the separation of isomers of phosphamidon and mevinphos
2.1.3 系統(tǒng)背壓的影響
系統(tǒng)背壓的變化會改變流動相的密度,從而影響對目標化合物的洗脫能力和選擇性。隨著系統(tǒng)背壓的升高,超臨界CO2流體密度隨著增加,對分析物的溶解和洗脫能力增強,目標物的保留時間隨著減小[29]。分別考察了不同的背壓(11.03 Mpa、12.41 Mpa、13.79 Mpa 和15.17 Mpa)對磷胺和速滅磷異構(gòu)體的分離情況。如圖4 所示,隨著背壓的增加,保留時間減小,但是背壓對異構(gòu)體的分離效率沒有顯著影響,磷胺與速滅磷異構(gòu)體的分離度幾乎不變。但是當背壓為13.79 MPa 時對映體的響應(yīng)強度最高,而且較高的壓力會縮短手性柱的使用壽命。因此,選擇13.79 Mpa 的系統(tǒng)背壓作為推薦值。
圖4 背壓對磷胺和速滅磷順反異構(gòu)體分離情況的影響Fig. 4 The effect of ABPR on the separation of isomers of phosphamidon and mevinphos
2.1.4 柱溫的影響
一般情況下,在液相色譜中,隨著溫度的升高,目標化合物在固定相上的吸附/脫附會加快,從而加快樣品的分離。而在SFC 中,隨著柱溫的升高,超臨界CO2流體的密度和粘度降低,從而減慢了目標化合物在固定相上的吸附/脫附過程,導(dǎo)致保留時間延長[30,31]。在背壓13.79 MPa、流速2 mL/min 的條件下,研究了不同溫度(35℃、40℃、45℃、50℃)下磷胺和速滅磷順反異構(gòu)體的分離效果。如圖5 所示,隨著溫度的升高,保留時間增加,但是異構(gòu)體之間的分離度幾乎不變。因此選擇35℃作為最優(yōu)色譜柱溫度。
圖5 柱溫對磷胺和速滅磷順反異構(gòu)體分離情況的影響Fig. 5 The effect of column temperature on the separation of isomers of phosphamidon and mevinphos
2.1.5 磷胺和速滅磷順反異構(gòu)體的洗脫順序
在優(yōu)化的色譜條件下分別將E-磷胺和E-速滅磷標準溶液注入SFC-MS/MS 中來鑒定每種異構(gòu)體的洗脫順序。磷胺和速滅磷順反異構(gòu)體在手性柱(Acquity UPC2Trefoil AMY1)上按以下順序洗脫:E-速滅磷(1.33 min)、Z-速滅磷(1.48 min)、E-磷胺(2.37 min)、Z-磷胺(2.48 min)。在最優(yōu)化的分離條件下,煙草實際加標樣品的選擇離子色譜圖如圖6 所示。
圖6 煙草實際加標樣品的色譜圖(0.2 mg/kg)Fig. 6 Chromatogram of actual spiked samples of tobacco (0.2 mg/kg)
2.2.1 基質(zhì)效應(yīng)[32]
以各個異構(gòu)體在煙草基質(zhì)中的線性方程斜率與其在乙腈中的線性方程斜率的比值來考察基質(zhì)效應(yīng),當比值在0.9~1.1 之間時,基質(zhì)效應(yīng)不明顯,當比值大于1.1 時為基質(zhì)增強效應(yīng),小于0.9 則為基質(zhì)抑制效應(yīng)。結(jié)果(表2)表明,各個異構(gòu)體的基質(zhì)效應(yīng)在0.10~0.75 之間,說明在煙草基質(zhì)中存在顯著的基質(zhì)抑制效應(yīng)。因此,煙草樣品中所有異構(gòu)體的測定均使用基質(zhì)匹配標準溶液進行定量。
對樣品基質(zhì)進行稀釋可以降低基質(zhì)效應(yīng)。本文考察了不同稀釋倍數(shù)下烤煙樣品中各對映體的基質(zhì)效應(yīng),由表2 可知,隨著稀釋倍數(shù)的增加,分析物的相對響應(yīng)強度(各樣品的響應(yīng)強度與標樣的響應(yīng)強度之比)也隨著增大,表明稀釋有助于減小基質(zhì)效應(yīng)。但是稀釋倍數(shù)過高,分析物濃度則降低,影響方法靈敏度。因此,選用乙腈將其稀釋5 倍進樣。
2.2.2 標準曲線、檢出限和定量限
選用空白煙葉試樣按1.2 節(jié)實驗步驟提取凈化后,添加不同級別的混合標準工作溶液配制成基質(zhì)匹配標準工作溶液,進行SFC-MS/MS 分析。通過各農(nóng)藥異構(gòu)體的峰面積對其濃度進行回歸分析,得到標準曲線、相關(guān)系數(shù)。標準曲線的形式為y=Ax+B,其中A 和B 分別表示為斜率和截距。對于每種異構(gòu)體,在各自的濃度范圍內(nèi)分析純?nèi)軇藴使ぷ髑€和不同基質(zhì)匹配的標準工作曲線,以確定該方法的線性關(guān)系。按信噪比(S/N)=3 確定方法檢出限,信噪比(S/N)=10 確定方法定量限。結(jié)果表明(表2),不同基質(zhì)中各異構(gòu)體線性關(guān)系良好(相關(guān)系數(shù)R2≥0.9922),LOD 和LOQ 范圍分別為0.6 μg/kg~1.7 μg/kg 和2.0 μg/kg~5.5 μg/kg,可以滿足定量分析的需要。
表2 各異構(gòu)體的線性方程、基質(zhì)效應(yīng)、檢出限和定量限Tab. 2 Regression equation, matrix effect, LODs, and LOQs for the isomers of phosphamidon and mevinphos
2.2.3 方法的回收率及精密度
將空白煙葉樣品分成3 份,分別添加0.02 mL、0.1 mL 和0.4 mL 的混合標準溶液,每個濃度的樣品每天重復(fù)測定5 次,重復(fù)試驗3 天,按照1.2.1 節(jié)的方法進行前處理。通過空白樣品加標回收實驗來測試該方法的準確度和精確度,其精確度由重復(fù)性實驗確定,并以RSD 表示。通過比較同一天內(nèi)加標樣品的回收率的標準偏差來測量日內(nèi)精密度。通過分析三個不同日期的加標樣品來確定日間精確度。結(jié)果(表3)表明,在所有濃度水平下的加標回收率為84.7%~96.7%,日內(nèi)精密度(RSD)為2.0%~4.2%,日間精密度(RSD)為2.4%~4.3%。說明在所有濃度水平下均獲得令人滿意的回收率,且精密度良好,該方法適用于煙草中磷胺和速滅磷異構(gòu)體的分離和測定。
表3 方法的精密度和準確度Tab. 3 Accuracy and precision of the proposed method
采用本方法對20 個烤煙樣品進行了測定,所有樣品均未檢出磷胺和速滅磷的異構(gòu)體。
本文采用超臨界流體色譜與串聯(lián)質(zhì)譜聯(lián)用建立了分離和測定磷胺和速滅磷順反異構(gòu)體的方法。在最優(yōu)化的實驗條件下,磷胺和速滅磷順反異構(gòu)體的回收率在84.7%~96.7%之間,日內(nèi)精密度為2.0%~4.2%,日間精密度為2.4%~4.3%。該方法以CO2和乙醇作為流動相,綠色環(huán)保、簡單快速、靈敏度高、選擇性強、結(jié)果準確,在5 min 內(nèi)即可實現(xiàn)磷胺和速滅磷順反異構(gòu)體的基線分離,在實際樣品的批量檢測中有巨大的優(yōu)勢。