馮 欣

(南陽醫(yī)學高等?？茖W校，河南 南陽 473000)

近年來，隨著我國腫瘤的發(fā)病率和死亡率不斷提升，腫瘤防治研究是當前醫(yī)學的重要研究內(nèi)容[1]。腫瘤臨床治療失敗的主要原因可能是腫瘤細胞對化療藥物產(chǎn)生廣泛的耐藥作用，致使腫瘤細胞逐漸喪失對結(jié)構(gòu)與藥理作用機制完全不同的化療藥物的敏感性。尋找多藥耐藥逆轉(zhuǎn)劑是克服腫瘤臨床耐藥、提高腫瘤化療敏感性的關(guān)鍵。我國中藥資源豐富，其中可能的腫瘤多藥耐藥逆轉(zhuǎn)劑具有多靶點、療效高、不良反應少等獨有的特點，引起研究者的廣泛關(guān)注。丹參酮ⅡA具有廣泛的抗腫瘤活性，參與抑制血管生成、抑制腫瘤侵襲和轉(zhuǎn)移、逆轉(zhuǎn)腫瘤多藥耐藥等多個環(huán)節(jié)[2]。研究[3]證明，丹參酮ⅡA亞微乳在體外能夠部分逆轉(zhuǎn)SMMC-7721/VCR的多藥耐藥性，但是其作用機制尚不清楚，本文模擬臨床常用紫杉醇聯(lián)合5-氟尿嘧啶及順鉑方案，觀察了丹參酮ⅡA亞微乳對小鼠S180多藥耐藥腹水癌多藥耐藥相關(guān)耐藥蛋白表達或活性的影響,以探討其干預化療多藥耐藥的作用和具體機制。

1 材料與方法

1.1 藥品與試劑丹參酮ⅡA原料藥(含量：98%，批號20140227)，四川省廣漢市世享原料藥業(yè)有限公司；丹參酮ⅡA亞微乳，由丹參酮ⅡA、豆卵磷脂(上海太偉藥業(yè)有限公司，藥用口服級)、玉米油、吐溫80和適量純水制成，丹參酮ⅡA濃度100 mg/mL。DMEM培養(yǎng)基，北京Solarbio科技責任有限公司；胎牛血清，杭州四季青生物工程材料有限公司；Anne xin V-FITC凋亡檢測試劑盒，南京凱基生物科技有限公司；流式細胞儀，美國BD Biosciences公司；注射用順鉑(批號：01611611)，山東齊魯制藥廠；5-氟尿嘧啶(批號：100112)，天津金耀氨基酸有限公司；注射用環(huán)磷酰胺(批號：080503)，上海華聯(lián)制藥有限公司。

1.2 實驗動物昆明種小鼠，體質(zhì)量19～24 g，由河南醫(yī)藥科學研究所提供；小鼠S180腹水癌模型，由河南醫(yī)藥科學研究所提供。

1.3 儀器CO2培養(yǎng)箱，法國Forme公司；680型全自動酶標儀、DK-8D型電熱恒溫水槽，上海晶宏實驗設(shè)備有限公司；倒置顯微鏡，德國Leica公司；1-15PK型臺式高溫冰凍離心機，美國Sigma公司。

1.4 實驗方法

1.4.1 小鼠S180多藥耐藥腹水癌模型的建立[4]在無菌條件下，抽取3只小鼠S180的腹水，置于離心管中，采用無菌生理鹽水將含瘤細胞密度稀釋至1×107個/mL，混勻，分別腹腔接種至10只昆明種小鼠(雌雄各5只)，接種體積為0.2 mL。接種24 h后，除正常對照組外，腹腔注射或灌胃給予多種化療藥物，具體如下：順鉑3 mg/kg，腹腔注射，每周1次；環(huán)磷酰胺(cyclophosphamide，CTX)和5-氟尿嘧啶各3 mg/kg灌胃，每天1次。待接種第15天，無菌條件下抽取存活小鼠的腹水，進行一對一傳代接種至新的昆明種小鼠腹腔，建立小鼠S180多藥耐藥腹水癌模型。

1.4.2 丹參酮ⅡA亞微乳抑瘤率觀察 1)造模：抽取已建立的小鼠S180多藥耐藥腹水癌模型腹水，采用無菌生理鹽水將含瘤細胞密度稀釋至1×107個/mL備用。取40只19～24 g昆明種小鼠，雌雄各20只，將稀釋好的腹水接種于每只小鼠左腋皮下，接種體積為0.2 mL，建立小鼠S180多藥耐藥實體瘤模型；2)小鼠分組及給藥：隨機將已建模成功小鼠分為4組，每組10只，即陽性對照組(經(jīng)腹腔注射CTX 20 mg/kg)，陰性對照組(經(jīng)腹腔注射無菌生理鹽水0.2 mL/10 g)，丹參酮ⅡA亞微乳大、小劑量組。丹參酮ⅡA亞微乳大、小劑量組給予相應濃度的丹參酮ⅡA亞微乳0.2 mL/10 g、0.1 mL/10 g，腹腔注射，每天給1次，共2周；3)計算丹參酮ⅡA亞微乳抑瘤率：末次給藥24 h之后，將小鼠實施安樂死，剝離腫瘤組織，稱其體質(zhì)量，記錄瘤質(zhì)量，按照以下公式計算抑瘤率：(對照組瘤質(zhì)量-藥物組瘤質(zhì)量)/對照組瘤質(zhì)量×100%；藥物對抑瘤作用的提高率按照以下公式進行計劃：(藥物組抑瘤率-對照組抑瘤率)/對照組抑瘤率×100%。

1.4.3 流式細胞儀檢測丹參酮ⅡA亞微乳對SMMC-7721/VCR細胞凋亡的影響 選取無細胞毒性作用的0.5 μg/mL丹參酮ⅡA亞微乳分別作用于SMMC-7721/VCR細胞24 h、48 h、72 h，每組均設(shè)有陰性對照。藥物處理結(jié)束后，用不含乙二胺四乙酸的質(zhì)量分數(shù)0.25%預冷胰酶消化各組細胞，并將其轉(zhuǎn)移至15 mL離心管中，800 r/min，離心5 min，棄上清液留細胞。向離心管中加入約5 mL預冷的磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline，PBS)，反復輕柔吹打，混勻，800 r/min，離心5 min，重復2次，棄去上清液留取底部細胞。按照Annexin V-FITC細胞凋亡檢測試劑盒說明書進行流式細胞儀上機前處理：將收集得到的藥物處理后的細胞，加入適量Binding Buffer液，輕柔吹打，制成細胞懸液，調(diào)整細胞濃度凋整至(1～5)×106個/mL。取500 μL細胞懸液至EP管中，分別依次加入Annexin V-FITC和PI各5 μL輕柔吹打，混勻，置于室溫，避光反應15 min。將獲得的細胞懸液于200目尼龍網(wǎng)過濾，轉(zhuǎn)移至流式檢測管中，1 h內(nèi)上流式細胞儀，檢測各組細胞不同時期的細胞凋亡率，記錄丹參酮ⅡA亞微乳作用下早期細胞凋亡率。采用以下條件進行檢測：激發(fā)波長=488 nm，發(fā)射波長=525 nm，通過BD FACSDiva軟件進行參數(shù)獲取和數(shù)據(jù)分析，實驗重復3次。

1.4.4 流式細胞儀檢測丹參酮ⅡA亞微乳對耐藥細胞膜表面耐藥相關(guān)蛋白P-gp表達的影響 將SMMC-7721、SMMC-7721/VCR細胞接種至6孔板，接種密度為2×105個/孔，24 h后待細胞貼壁后，于SMMC-7721/VCR細胞中加入0.5 μg/mL丹參酮ⅡA，以不加丹參酮ⅡA的SMMC-7721、SMMC-7721/VCR細胞作為陰性對照。作用48 h后，按照2.3中流式細胞儀檢測處理方法收集消化細胞、離心、預冷PBS洗2遍，棄上清留細胞，用含體積分數(shù)10%胎牛血清的預冷PBS將細胞濃度調(diào)整至(1～5)×105個/mL，輕柔吹打混勻，取細胞懸液90 μL，加入10 μL鼠抗人P-gp抗體，反復輕柔吹打，使細胞充分混勻，置于 4 ℃冰箱孵育30 min。取出細胞，離心，棄上清，用含體積分數(shù)10%胎牛血清的預冷PBS反復洗3次，從而除去未與蛋白結(jié)合的游離抗體。離心，棄上清，500 μL預冷PBS重懸細胞，細胞處理整個過程應于冰上進行。取200目尼龍網(wǎng)過濾的細胞懸液置于流式檢測管中，按照2.3中條件設(shè)置流式細胞儀參數(shù)，并進行數(shù)據(jù)分析，檢測到的P-gp熒光強度反應細胞內(nèi)P-gp含量，實驗重復3次。

1.4.5 羅丹明外排實驗 羅丹明作為P-gp的轉(zhuǎn)運底物能較好代表其轉(zhuǎn)運功能[5-6]，因此，為了檢測丹參酮ⅡA對SMMC-7721/VCR細胞P-gp的影響是否與轉(zhuǎn)運功能相關(guān)，我們進行了羅丹明外排實驗。將SMMC-7721/VCR細胞以2×105個/孔接種于24孔培養(yǎng)板，24 h待細胞貼壁后，吸棄上清液，PBS洗2次，加入終濃度為5 μg/mL的羅丹明于37 ℃孵育30 min，棄去上清，加入丹參酮ⅡA亞微乳至終濃度為0.5 μg/mL，對照組更換成新鮮培養(yǎng)基，分別于0、0.5、1、2 h收取細胞。收集方法參照2.3，離心后棄上清，加入500 μL預冷PBS重懸細胞，于流式細胞儀檢測，激發(fā)波長480 nm，發(fā)射波長540～660 nm，細胞內(nèi)羅丹明濃度以熒光強度平均值表示。

2 結(jié)果

2.1 丹參酮ⅡA亞微乳對小鼠多藥耐藥模型抑瘤率的影響與陰性對照組及陽性對照CTX組比較，丹參酮ⅡA亞微乳作用后，實體瘤質(zhì)量顯著降低，抑瘤率明顯提高(P均<0.05)。見表1。

表1 丹參酮ⅡA亞微乳對小鼠多藥耐藥模型抑瘤率的影響

2.2 丹參酮ⅡA亞微乳誘導發(fā)生早期細胞凋亡情況0.5 μg/mL丹參酮ⅡA亞微乳作用SMMC-7721/VCR細胞24、48、72 h后,早期細胞凋亡率隨丹參酮ⅡA亞微乳作用時間的延長而增加，且實驗組較陰性對照組明顯(P均<0.05)。見表2。

表2 丹參酮ⅡA亞微乳作用不同時間段SMMC-7721/VCR早期細胞凋亡率 %

2.3 丹參酮ⅡA亞微乳抑制多藥耐藥細胞膜表面P-gp情況SMMC-7721細胞P-gp相對含量明顯低于SMMC-7721/VCR細胞，SMMC-7721/VCR+丹參酮ⅡA亞微乳細胞(0.5 μg/mL丹參酮ⅡA亞微乳作用48 h后)，細胞膜表面P-gp相對表達量與SMMC-7721/VCR細胞比較，有一定程度的降低，但仍高于SMMC-7721細胞(P均<0.05)。見表3。

表3 各組細胞膜表面P-gp相對量比較

2.4 丹參酮ⅡA抑制SMMC-7721/VCR細胞內(nèi)羅丹明外排情況丹參酮ⅡA亞微乳組羅丹明濃度在每個時間段均顯著高于丹參酮ⅡA組，提示丹參酮ⅡA亞微乳可以明顯抑制細胞內(nèi)羅丹明的外排(P均<0.05)。見圖1。

圖1 羅丹明外排實驗結(jié)果

3 討論

本研究結(jié)果表明，丹參酮ⅡA亞微乳能提高對小鼠S180多藥耐藥實體瘤的抑瘤率，并且隨著濃度的升高，抑瘤率有所提高，這說明丹參酮ⅡA亞微乳能逆轉(zhuǎn)小鼠S180腫瘤獲得性多藥耐藥。目前，已知腫瘤細胞多藥耐藥的機制多樣且復雜，P-gp具有轉(zhuǎn)運蛋白表達增高、功能活躍的特點，是化療耐藥的經(jīng)典機制[7]。P-gp具有生物膜泵功能，可以將細胞內(nèi)藥物泵至細胞膜外，從而降低細胞內(nèi)的藥物濃度[8-9]。通過檢測丹參酮ⅡA亞微乳對P-gp表達的影響以及羅丹明外排的研究發(fā)現(xiàn)，抑制P-gp的外泵功能是其機制之一[10]。除此之外，流式細胞儀檢測丹參酮ⅡA亞微乳對SMMC-7721/VCR細胞凋亡的實驗表明逆轉(zhuǎn)腫瘤多藥耐藥機制可能與其提高耐藥細胞早期細胞凋亡率有關(guān)。通過本研究可以看出，運用丹參酮ⅡA亞微乳逆轉(zhuǎn)多藥耐藥有廣泛應用前景。我們由此推測出，丹參酮ⅡA亞微乳可以使細胞膜表面P-gp的含量降低，P-gp的轉(zhuǎn)運功能下降，腫瘤細胞對相關(guān)化療藥物的外排作用明顯減少，細胞內(nèi)化療藥物濃度提高，可以部分逆轉(zhuǎn)SMMC-7721/VCR的多藥耐藥性。本實驗僅初步研究了丹參酮ⅡA亞微乳對P-gp表達的影響及多藥耐藥對耐藥細胞早期凋亡的影響，下一步我們將繼續(xù)探索丹參酮ⅡA亞微乳逆轉(zhuǎn)腫瘤多藥耐藥的作用及具體機制。